O objetivo deste trabalho foi estabelecer um protocolo para a micropropagação do porta-enxerto de videira 420-A. O estabelecimento das culturas foi realizado com segmento nodal, cuja fonte dos explantes foram brotações de estacas lenhosas armazenadas sob refrigeração. No cultivo inicial, foram testados: o efeito de 6-benzilaminopurina e cinetina nas concentrações de 0; 1; 5 e 10 µM, diferentes meios de cultura (MS, NN e WPM) e diluições do meio básico (MS, MS/2, MS/4 e MS/8). Na fase de alongamento e multiplicação, os meios de cultura testados foram MS, MS/2, NN e WPM. No enraizamento, foram testados: o meio de cultura MS/2 sem e com carvão ativado (1gL-1). Na aclimatização, foram testados vermiculita, Plantmax® e casca de arroz carbonizada como substrato. A cinetina não apresentou efeito sobre a brotação e o crescimento dos segmentos nodais. Já o BAP promoveu um aumento no número de brotos por explante. O aumento na concentração de BAP reduziu o número de folhas emitidas por explante e aumentou os sintomas de vitrificação, sendo os melhores resultados obtidos com 1 µM de BAP. No cultivo inicial, o meio de cultura MS, com a concentração normal de sais, permitiu o maior crescimento das brotações. As diluições do meio MS em 1/4 e 1/8 mostraram-se prejudiciais ao desenvolvimento do porta-enxerto '420-A', afetando o crescimento das brotações após o primeiro subcultivo. Durante a multiplicação o meio MS/2 foi o que proporcionou melhores resultados. O enraizamento ocorreu naturalmente durante a multiplicação, sendo desnecessário o uso de carvão ativado no meio de cultura. A aclimatização foi realizada com sucesso em câmara de nebulização, com substrato vermiculita (95,8%) e Plantmax® (87%). Conclui-se que o porta-enxerto '420-A' pode ser micropropagado pelo cultivo inicial de segmentos nodais em meio de cultura MS + 1 µM de BAP, alongamento das brotações e multiplicação pelo seccionamento das mesmas em meio MS/2 e aclimatização em substrato vermiculita ou Plantmax®.

The objective of this work was to establish a protocol for the rootstock of 420-A micropropagation. The establishment of the cultures was accomplished with nodal segments, whose source of explants was the budding of woody stakes stored under refrigeration. In the initial cultivation were tested: the effect of 6-benzilaminopurine and kinetin with 0, 1, 5 and 10 µM concentrations, different culture medium (MS, NN and WPM) and dilutions of the basic medium (MS, MS/2, MS/4 and MS/8). In the alongation and multiplication steps were tested the following culture medium: MS, MS/2, NN and WPM. In the rooting were tested: the MS/2 culture medium with or without activated coal (1gL-1). In the acclimatization were tested the substrate vermiculite, Plantmax and carbonized rice hulls. The kinetin didn't present effect on the budding and the growth of the nodal segments. BAP already promoted an increase in the number of sprouts per explant. The increase in the concentration of BAP reduced the number of leaves emitted by explant and increased the vitrification symptoms, being the best results obtained with 1 µM of BAP. In the initial cultivation the MS medium culture with the normal concentration of salts allowed the largest growth of the buddings. The dilutions of the MS medium in ¼ and 1/8 showed very harmful to the development of the rootstock '420-A', being quite harmed the growth of the shoots after the first subcultivation. During the multiplication the medium MS/2 showed more appropriate. The roots happened naturally during the multiplication, being unnecessary the use of activated coal in the culture medium. The acclimatization was accomplished with success in a misty camera, being obtained high survival rates in vermiculite (95,8%) and Plantmax® (87%). It is concluded that the rootstock '420-A' can be micropropagated by initial cultivation of nodal segments in a culture medium of MS+1µM of BAP, multiplication by sectionalizing the shoots in MS/2 medium and acclimatization in vermiculite substratum or Plantmax®.