Resumo A sobrevivência de Acidovorax citrulli Aac1Rif foi estudada em tecidos infectados de frutos e folhas de melão incorporadas ao solo a 0; 5; 10 e 15 cm de profundidade, em sete diferentes tipos de solo, às temperaturas de 10; 15; 20; 25; 30 e 35 ºC e umidade na capacidade de campo de 50 e 100%, na ausência da planta hospedeira. Aac1Rif foi detectado em frutos de melão e tecidos foliares a 0; 5 e 10 cm até 21 dias, e a 15 cm até 14 dias. A taxa de extinção relativa mais alta e mais baixa da população (TERP) para Aac1Rif ocorreu, respectivamente, nos tecidos de frutos e nos tecidos foliares, às profundidades de 0 e 5 cm. Para a maioria dos solos, a TERP mais baixa ocorreu a 10 ou 15 ºC, e a mais alta, a 30 ou 35 ºC. Maiores concentrações de Na+, silte e maiores populações de actinomicetos e Trichoderma foram correlacionadas com maior TERP de Aac1Rif no solo. Houve diferença significativa entre a TERP em 100% e 50% da capacidade do campo. O solo não foi considerado fonte primária potencial de inóculo de A. citrulli. Os frutos e folhas de melão infectados no solo foram considerados como fontes de inóculo, pelo menos por 21 dias.

Abstract The survival of Acidovorax citrulli Aac1Rif was accessed in infected melon tissues (fruits and leaves) incorporated to the soil at 0, 5, 10 and 15 cm depth, in seven different types of soil, at temperatures 10, 15, 20, 25, 30 and 35 ºC and moisture field capacity of 50 and 100% in the absence of the host plant. Aac1Rif was detected in melon tissues at 0, 5 and 10 cm until 21 days and at 15 cm until 14 days. The highest and lowest relative extinction rate of the population (RERP) for Aac1Rif occurred respectively in fruit tissues and leaf tissues at depths of 0 and 5 cm. Aac1Rif survived in seven types of soil only for three days. The lowest RERP occurred at 10 or 15 ºC and the highest at 30 or 35 ºC. Greater concentrations of Na+, silt, and greater populations of actinomycetes and Trichoderma were correlated with highest RERP of the Aac1Rif in the soil. There was significant difference between RERP at 100% and 50% of field capacity. The soil was not considered potential primary source of A. citrulli inoculum. Infected melon fruits and leaves in soil were considered as such sources, at least for 21 days.

Este trabalho investigou a habilidade de Acidovorax citrulli, agente causal da mancha-aquosa em cucurbitáceas, colonizar plantas de meloeiro. Em condições de casa de vegetação, folhas e sementes foram inoculadas com um mutante espontâneo de A. citrulli (grupo I) resistente a rifampicina (Ac1Rif) e a intervalos de três dias, amostras de hipocótilo, folhas cotiledonares, raízes, folhas ou ramos foram processadas. Após a inoculação no 1º par de folhas, A. citrulli foi detectada até o 10º par de folhas (1,3 x 10³ UFC g-1 de folha) e no ramo consecutivo (3,3 x 10³ UFC g-1 de ramo) aos 30 dias. A partir da inoculação das sementes A. citrulli colonizou efetivamente o hipocótilo, raízes, folhas cotiledonares, folhas e ramos, sendo a bactéria detectada até o 4º par de folhas (1,62 x 10² UFC g-1 de folha) e no ramo consecutivo (9,1 x 10¹ UFC g-1 e ramo) aos 24 dias após a inoculação. Pode-se concluir que A. citrulli colonizou diferentes partes do meloeiro ao longo do tempo, dependendo da localização do inóculo inicial, folhas ou sementes. Isto confirma o que tem sido observado nas condições de campo, ou seja, que folhas expandidas e ramos são fontes de inóculo para flores e frutos de melão, dando, portanto, suporte científico para o desenvolvimento de estratégias mais efetivas de manejo da mancha-aquosa do meloeiro.

The aim of this work was to investigate the ability of Acidovorax citrulli, the causal agent of bacterial fruit blotch (BFB) of cucurbits, to colonize melon tissues. Under greenhouse conditions leaves and seeds were inoculated with a spontaneous mutant of A. citrulli (group I) resistant to rifampicin (Ac1Rif), and samples of hypocotyls, cotyledonary leaves, roots, leaves and stems were processed at three-day intervals. When the 1st pair of melon leaves had been inoculated, A. citrulli was only detected until the 10th pair of leaves (1.3 x 10³ CFU g-1 of leaf) and the consecutive stem (3.3 x 10³ CFU g-1 of stem) on the 30th day. However, after seed inoculation A. citrulli colonized the hypocotyl, roots, cotyledonary leaves, leaves and stems and was only detected until the 4th pair of leaves (1.62 x 10² CFU g-1 of leaf) and the consecutive stem (9.1 x 10¹ CFU g-1 of stem) on the 24th day post-inoculation. In conclusion, A. citrulli colonized different parts of the melon plant over time, depending on its initial location, leaves or seed. This confirms what has been observed in the field, that expanded leaves and stems are the main inoculum sources for melon blossoms and fruit, therefore providing scientific bases for developing more effective strategies for BFB management.