O objetivo deste trabalho foi identificar os biótipos de Bemisia tabaci (Genn.) presentes no estado do Paraná e determinar sua distribuição geográfica e plantas hospedeiras. Cerca de 50 adultos foram coletados em diversas culturas hospedeiras, plantas daninhas e ornamentais, nas regiões Norte, Noroeste, Nordeste, Oeste e Centro do estado, de janeiro a maio, durante os anos de 1998 e 1999. As espécies foram identificadas por meio de RAPD-PCR, usando-se o primer Operon H-16. Populações de mosca branca foram detectadas a partir do mês de fevereiro em ambos os anos, raramente atingindo níveis superiores a um adulto por folha. O inseto foi encontrado em somente 66% das áreas amostradas e o mosaico dourado do feijoeiro praticamente não foi detectado durante o período. Ambos biótipos A e B de B. tabaci foram coletados no estado do Paraná, sendo o biótipo B mais restrito à Região Norte. Apesar de este biótipo ter sido encontrado colonizando uma faixa maior de plantas hospedeiras, ele não ainda não se encontra amplamente distribuído nas diversas regiões e a maior parte dos espécimes coletados foram identificados como biótipo A. Um padrão de bandas distinto daqueles obtidos para os biótipos A e B de B. tabaci foi obtido exclusivamente com as populações coletadas em mandioca, indicando a possível presença de um biótipo específico para essa cultura.

This work was carried out in order to identify Bemisia tabaci (Genn.) biotypes present in the state of Paraná and to determine their geographical distribution and host plants. About 50 adults were collected in several host crops, weeds and ornamental plants in North, Northwest, Northeast, West and Central areas of the state, from January to May, 1998 and 1999. The species were identified by means of RAPD-PCR, using the primer Operon H-16. Whitefly populations were detected mainly from February on, in both years, seldom achieving more than one adult per leaf. The insect was found in only 66% of the sampled areas. Bean golden mosaic was almost never observed during the period. Both biotype A and biotype B of B. tabaci were found in the State of Paraná, the last one being more restricted to the north region. Although biotype B was found colonising a wider range of host plants, it has not spread out in all the state and most of the whitefly specimens found are still the biotype A. A banding pattern distinct of those obtained for A and biotype B of B. tabaci was obtained exclusively with the populations collected from cassava, thus indicating the possible presence of a biotype specific for this crop.

DNA de alta qualidade para estudos moleculares pode ser facilmente extraído de espécimes frescos. Entretanto, amostras frescas são difíceis de ser mantidas vivas por longos períodos tornando a sua preservação um sério problema, principalmente quando são coletadas e transportadas de locais distantes. Com o objetivo de estabelecer um método eficiente de preservação de Atta spp. (formigas cortadeiras) para extração de DNA visando análises de RAPD, seis diferentes métodos de armazenamento foram avaliados: 1) -70°C; 2) etanol 95% a -20°C; 3) etanol 95% a 4°C; 4) etanol 95% à temperatura ambiente; 5) sílica gel à temperatura ambiente; e 6) tampão (0,25 M EDTA, 2,5% SDS, 0,5 M Tris-HCl, pH 9,2) à temperatura ambiente. O DNA foi extraído (Cheung et al., 1993 - modificado) e examinado aos 90, 210 e 360 dias após o armazenamento. Espécimes frescos foram usados como controle. O DNA total foi medido com minifluorímetro. A qualidade do DNA foi determinada escaneando-se as fotos com densitômetro e a integral da varredura foi calculada para DNA > 9,4 kb. Os dados foram analisados usando o delineamento estatístico de blocos inteiramente casualizados com parcelas subdivididas e com quatro repetições. Todos os métodos foram eficientes para preservar Atta spp. até 210 dias. Até 360 dias, o DNA foi degradado somente em etanol 95% à temperatura ambiente, resultando na ausência de bandas no perfil RAPD quando comparado com os demais métodos de presevação. Embora a preservação a baixas temperaturas seja recomendada para longos períodos, o armazenamento em sílica gel e tampão pode ser considerado alternativa satisfatória quando refrigeração e transporte são fatores limitantes.

High quality DNA for molecular studies can be easily extracted from fresh specimens. However, live samples are difficult to keep for long periods thus making their preservation a serious problem, specially when they are collected and transported from remote locations. In order to establish an efficient method to preserve Atta spp. (leaf-cutting ants) for RAPD analysis, six different storage methods were examined: 1) -70°C; 2) 95% ethanol at -20°C; 3) 95% ethanol at 4°C; 4) 95% ethanol at room temperature; 5) silica gel at room temperature; and 6) buffer (0.25 M EDTA, 2.5% SDS, 0.5 M Tris-HCl, pH 9.2) at room temperature. DNA was extracted (Cheung et al., 1993 - modified) and examined after 90, 210 and 360 days of storage. Freshly killed specimens were used as control. DNA yield was measured with a minifluorometer. DNA quality was determined by scanning photographs with a densitometer and the integral of the scan was calculated for DNA of size > 9.4 kb. Data were analyzed using a completely randomized split-plot design with four replicates. All methods were efficient to preserve Atta spp. DNA up to 210 days. At 360 days, DNA was degraded only in 95% ethanol at room temperature, which resulted in RAPD profiles with missing bands. Although preservation at low temperatures is recommended for long periods, methods using silica gel and buffer can be considered satisfactory alternatives when refrigeration and transportation are limiting factors.