Mandevilla guanabarica é uma planta endêmica do Brasil, com potencial farmacológico e ornamental inexplorados. Este estudo estabeleceu um eficiente meio de cultura para manutenção da planta in vitro e eficazes protocolos de regeneração e calogênese a partir de diferentes explantes. O meio para plantas lenhosas suplementado com o dobro da concentração de boro (WPM B) e com 2,27 µM de thidiazuron ou 0,49 µM 2-isopenteniladenina proporcionou taxas de multiplicação maiores que 1:6. Os brotos foram 100% enraizados em WPM B, com 83% de sobrevivência após aclimatização. Na calogênese, o meio MS suplementado com altas concentrações de picloram ou ácido 2,4-diclorofenoxiacético produziu, respectivamente, calos não morfogênicos friáveis ou compactos. Este protocolo de micropropagação permite a produção de mudas de M. guanabarica para uso ornamental, comercial e com finalidades de conservação; os calos podem ser utilizados para o estabelecimento de culturas em suspensão na prospecção de compostos bioativos.

Mandevilla guanabarica is an endemic plant from Brazil, with pharmacological and ornamental potential, both unexplored. This study established the best culture medium for in vitro plant maintenance, efficient protocol for its regeneration, and callogenesis from different explants excised from in vitro-grown plants. Woody plant medium with double boron concentration (WPM B) plus 2.27 µM thidiazuron or 0.49 µM 2-isopentenyladenine provided multiplication rates higher than 1:6. Shoots were 100% rooted on WPM B. After acclimatization, plants showed 83% survival. For callogenesis, the use of MS media supplemented with high concentrations of picloram or 2,4-dichlorophenoxyacetic acid produced, respectively, friable or compact non-morphogenic calluses from different types of explants. This micropropagation protocol allows the production of seedlings of M. guanabarica for ornamental or commercial uses, and for conservation purposes; calluses can be used to establish suspension cultures in prospecting for bioactive compounds.

Exigências como matérias-primas vegetais fidedignas fazem parte das necessidades da fitoterapia moderna. A propagação in vitro permite a obtenção em massa de genótipos superiores, em curto espaço de tempo. Este estudo teve como objetivo desenvolver um protocolo de organogênese direta e indireta de Phyllanthus tenellus Roxb. Segmentos nodais de plântulas obtidas por germinação in vitro foram introduzidos em meio Murashige e Skoog adicionado de diferentes reguladores de crescimento vegetal: AIA (ácido indol-3-acético), AIB (ácido indol-3-butírico), AG3 (ácido giberélico-3) e CIN (cinetina). A maior taxa de proliferação foi obtida utilizando as combinações: AIB, CIN + AG3 (3,5 mg L-1) e AIB + CIN (2,4 mg L-1). A rizogênese foi intensificada após 40 dias de cultivo, atingindo 100% para todos os meios contendo AIB. A adição de ácido 2,4 diclorofenoxiacético (2,4D) proporcionou os melhores resultados para produção de calos friáveis. A aclimatização foi 100% eficaz para as plantas cultivadas em meio controle, com a diminuição da taxa de sobrevivência para as plantas cultivadas em meios adicionados de reguladores de crescimento.

Exigencies as ethic plant raw material are part of the needs of modern phytotherapy. Micropropagation offers opportunities to obtain mass propagation of superior genotypes in short time. This study aimed to develop a protocol of direct and indirect organogenesis of Phyllanthus tenellus Roxb. Nodal segments from plantlets obtained by in vitro germination were subcultured in modified Murashige and Skoog medium added with different plant growth regulators: IAA (indole-3-acetic acid), IBA (indole-3-butyric acid), GA3 (3-giberelic acid) and KIN (kinetin). The highest proliferation rate was obtained using the combinations: IBA, KIN + GA3 (3.5 mg L-1) and IBA + KIN (2.4 mg L-1). Rooting was intensified after 40 days, reaching 100% for all media with indole-3-butyric acid. Addition of 2,4 dichlorophenoxyacetic acid (2,4D) provided the best results for production of friable calli. Acclimatization was 100% effective for plantlets cultured in control medium, with decrease in survival rate in grown plantlets from media added with growth regulators.