Compostos bioativos e atividade antirradicalar em farinhas de bagaço de uvas de diferentes cultivares desidratadas em liofilizador e em estufa

Bioactive compounds and antiradical activity in grape pomace flours from different cultivars dehydrated in a freeze dryer and in an oven

Resumo

Este estudo objetivou caracterizar compostos bioativos e atividade antirradicalar em farinhas de bagaços de uvas das cultivares Cabernet Sauvignon, Merlot, Sauvignon Blanc e Sangiovese (Vitis vinifera), desidratados em estufa de circulação de ar a 45 °C ou liofilizador a vácuo. Foram analisados compostos fenólicos totais e individuais, antocianinas monoméricas e atividade antirradicalar pelos métodos ABTS e HOCl. A perda total de antocianinas monoméricas foi maior para as cultivares Cabernet Sauvignon e Sangiovese, pelo método de desidratação em estufa. Todas as cultivares liofilizadas preservaram índices estatisticamente superiores de compostos fenólicos totais, com superioridade para a cultivar Sauvignon Blanc. Na análise individual destes compostos, as amostras liofilizadas tiveram maiores teores médios de todos os flavonoides (epicatequina, catequina, quercetina, ácido vanílico, rutina), enquanto que os ácidos gálico, cafeico e ferrúlico, aparentemente, não foram influenciados pelo método de secagem. Todas as amostras desidratadas em estufa tiveram menor capacidade de inibição dos radicais livres em relação às amostras liofilizadas, por ambos os métodos de IC50. O método ABTS apresentou os melhores resultados para as amostras liofilizadas, ou seja, quantidades menores das farinhas foram capazes de inibir em pelo menos 50% a atividade dos radicais livres ABTS e HOCl, com destaque para a cultivar Merlot.

Palavras-chave:
Compostos fenólicos; Resíduo vinícola, Vinificação, Alimento funcional; Nutrição; Atividade antirradicalar

Abstract

This study aimed to characterize the bioactive compounds and antiradical activity in grape pomace flours from the cultivars Cabernet Sauvignon, Merlot, Sauvignon Blanc and Sangiovese (Vitis vinifera), dehydrated either in an air circulation oven at 45 °C or a vacuum freeze dryer. The total and individual phenolic compounds, monomeric anthocyanins and antiradical activity were analysed by the ABTS and HOCl methods. The total loss of monomeric anthocyanins was higher for the cultivars Cabernet Sauvignon and Sangiovese dehydrated in the air circulation oven. All the freeze dried cultivars preserved a statistically higher index for the total phenolic compounds, the highest being the cultivar Sauvignon Blanc. In the individual analysis of these compounds the freeze dried samples showed higher average levels of all the flavonoids (epicatechin, catechin, quercetin, vanillic acid, rutin), whereas gallic, caffeic and ferulic acids were apparently not influenced by the drying method. All the samples dehydrated in the oven showed less free radical inhibition capacity than the freeze dried samples as determined by both IC50 methods. The ABTS method presented the best results for the freeze dried samples, that is, smaller amounts of the flours were able to inhibit at least 50% of the ABTS and HOCl free radical activities, with emphasis on the Merlot cultivar.

Keywords:
Phenolic compounds; Winery waste; Winemaking; Functional food; Nutrition; Antiradical activity

1 Introdução

A vitivinicultura é uma atividade de importância econômica mundial, com uma produção anual estimada em 60 milhões de toneladas. Cerca de 80% deste montante é destinado à elaboração de vinhos e derivados, o que resulta anualmente em cerca de 13 milhões de toneladas de resíduos ( OIV, 2016 ). A produção brasileira é bastante expressiva, com aproximadamente 1,3 milhão de toneladas de uvas destinadas à produção de vinho e para o consumo in natura, com destaque para os Estados da Região Sul ( BRASIL, 2016 ).

Botanicamente, a uva pode ser definida como um fruto da videira, pertencente à família das vitáceas e ao gênero Vitis, com as seguintes espécies: Vitis vinifera, Vitis labrusca, Vitis rupestris, Vitis aestivalis, Vitis riparia, Vitis cinerea, Vitis rotundifolia, entre outras ( POUDEL et al., 2008 ). Deste modo, esta ampla diversidade genética ocasiona diferenças na composição química das uvas, o que permite uma seleção, tanto para o seu uso industrial como para o consumo in natura ( NARDUZZI et al., 2015 ).

Abe et al. (2007 ) desenvolveram estudo com farinhas de bagaços de sete cultivares de uvas produzidas em Minas Gerais, mais especificamente das espécies Vitis labrusca (cv. Niágara rosada, nos porta-enxertos IAC 766 e 196-17, e cv. Folha de Figo, nos porta-enxertos 420A e 196-17) e três cultivares da espécie Vitis vinifera (cv. Syrah - porta-enxerto 3309 C, cv. Merlot - porta-enxerto 1103 P e cv. Moscato Embrapa - porta-enxerto IAC 766), safra 2005/2006. As antocianinas monoméricas foram os compostos encontrados em maior porcentagem nas cultivares Folha de Figo, nos porta-enxertos 420A e 196-17, Syrah e Merlot. A cultivar Moscato Embrapa, de bagas brancas, foi a que se destacou por apresentar menor quantidade de fenólicos totais. Esta cultivar demonstrou ausência de antocianinas monoméricas e também não apresentou nenhum outro composto em quantidades relevantes. Os autores afirmam que o perfil de compostos fenólicos nas cultivares avaliadas não dependeu necessariamente da espécie, sendo mais variável de acordo com a cultivar.

Os resíduos vitivinícolas apresentam alto conteúdo de fibras, flavonoides, antocianinas, substâncias aromáticas, ácidos, taninos e micro-organismos responsáveis pela fermentação do mosto ( KARLING et al., 2017 ). Em grande parte, este material é descartado e pode provocar impactos ambientais e um desperdício de matéria orgânica ( MELO et al., 2011 ). Na literatura científica, há relatos de inclusão de resíduos agroindustriais, tais como subprodutos do processamento de polpa de fruta e farinha de bagaço de uva em pães ( PAZ et al., 2015 ), biscoitos e cookies ( ABUD; NARAIN, 2009 ; PIOVESANA et al., 2013 ; KARNOPP et al., 2015 ) e snacks extrusados ( BENDER et al., 2016 ).

Os compostos fenólicos são definidos como o maior grupo de antioxidantes naturais, com cerca de 8.000 compostos diferentes. Estão largamente distribuídos nos alimentos vegetais, sendo metabólitos secundários destes e considerados fundamentais para o desenvolvimento adequado da planta e a defesa contra injúrias ambientais e processos infecciosos ( ABDRABBA; HUSSEIN, 2015 ). Apresentam ação antioxidante contra radicais livres e, segundo algumas evidências, supõe-se que os compostos fenólicos possuem efeitos em cardiopatias, principalmente na redução do infarto ( SOARES et al., 2008 ; DAVIDOV-PARDO et al., 2011 ).

Os flavonoides de maior relevância nas uvas e seus derivados são as antocianinas, as quais constituem a maior parte dos compostos fenólicos presentes, e encontram-se largamente distribuídos na natureza ( MUÑOZ-ESPADA et al., 2004 ). As antocianinas são responsáveis pela coloração arroxeada das uvas, ocorrendo naturalmente como glicosídeos dissolvidos no fluido celular, particularmente no tecido epidérmico. Sua concentração nos alimentos é condicionada por diversos fatores agronômicos, como cultivar, clima, tipo de solo e práticas agrícolas ( FALCÃO et al., 2007 ; SEGADE et al., 2008 ). As antocianinas também atuam como filtro das radiações ultravioletas das folhas e, quando consumidas na alimentação humana, desempenham diversas propriedades farmacológicas, como atividade antioxidante, prevenção de enfermidades cardiovasculares e neuronais, câncer e diabetes ( MANACH et al., 2004 ).

A quantidade de água livre presente nos alimentos é uma das principais causas dos processos de deterioração. Desta forma, a desidratação de alimentos tem sido proposta como um importante método de conservação, cujo objetivo principal é a remoção parcial de água dos alimentos. A desidratação em estufa, por exemplo, apresenta como vantagens principais o baixo custo e a obtenção de produtos com segurança microbiológica satisfatória ( GOMEZCACERES et al., 2013 ). Embora ainda sejam restritos os estudos que avaliam o efeito do método de desidratação sobre os compostos bioativos de alimentos, algumas pesquisas apontam que a temperatura de secagem também possa ter um efeito considerável sobre tais compostos ( HAMAMA; NAWAR, 1991 ; LARRAURI et al., 1997 ; MARFIL et al., 2008 ).

Processos de desidratação de alimentos que não empregam o calor como mecanismo de remoção de água, como a liofilização, são eficientes na conservação dos compostos bioativos de alimentos. Esta metodologia é particularmente interessante para a preservação dos polifenóis, os quais, segundo Malacrida e Motta (2005) , são sensíveis à elevação da temperatura.

Este estudo objetivou o desenvolvimento de farinhas a partir de resíduos de produção vinícola pelos métodos de desidratação em estufa e liofilização, verificando se estes processos influenciam nos índices de compostos bioativos e atividade antirradicalar nestes produtos provenientes de diferentes cultivares de uva.

2 Material e métodos

Para as análises de comparação entre os processos de desidratação em estufa e liofilizador, utilizaram-se as cultivares de uva Merlot, Cabernet Sauvignon, Sangiovese e Sauvignon Blanc, colhidas na safra 2015-2016, provenientes da Vinícola Abreu & Garcia, situada na cidade de Campo Belo do Sul, Santa Catarina, a 1.017 m de altitude, latitude 27° 53' 57” S e longitude 50° 45' 39” O.

Foram coletadas seis amostras de bagaço de uva, de cada cultivar, de aproximadamente 500 gramas, retiradas por ocasião da descuba, para serem armazenadas sob congelamento a -18 °C. A coleta deste material para transporte até o local do processamento da farinha só ocorreu após congelamento completo dos resíduos.

As amostras para secagem em estufa foram acondicionadas em bandejas de papel alumínio e mantidas em estufa microprocessada com circulação e renovação de ar modelo SL 102 (Solab, Piracicaba, São Paulo, Brasil) a 45 °C, até atingir a umidade mais baixa que o índice de 14% p/p, indicada para a produção de farinhas de resíduos de uvas ( APHA, 2001 ). Posteriormente, permaneceram em temperatura ambiente (22 °C) até total resfriamento.

Para o preparo das farinhas pelo método de desidratação em liofilizador, as amostras de bagaços previamente congeladas a -18 °C foram desidratadas em liofilizador de bancada modelo LD 1500 (Terroni, São Carlos, São Paulo, Brasil).

Após a secagem, todas as amostras foram submetidas à tamisação em conjunto de peneiras granulométricas do tipo tamis, com aberturas de malhas de 10, 14 e 18 Tyler (Bertel, Caieiras, São Paulo, Brasil). Em seguida, as cascas e sementes foram trituradas em moinho rotor tipo ciclone/Willey, modelo MA1340 (Marconi, Piracicaba, São Paulo, Brasil), até a obtenção da farinha de resíduos de uvas. Este material foi novamente submetido à tamisação em peneiras com aberturas de malhas de 28 Tyler. As alíquotas de farinhas empregadas nas análises foram acondicionadas em frascos de vidro âmbar e armazenadas em ultrafreezer a -80 °C até o momento das análises.

As amostras submetidas às análises de compostos fenólicos totais, antocianinas monoméricas e compostos fenólicos individuais, nas farinhas, foram extraídas pelo uso do solvente etanol. Utilizaram-se 2,5 g de farinha acrescidos de 15 mL de solvente etanol 80%. Para a determinação da atividade antirradicalar pelos métodos ABTS e HOCl, foram utilizados inicialmente 10 mg de farinha diluídos em 1 mL de etanol 80% (v/v).

Para a determinação do conteúdo total de antocianinas monoméricas, foram utilizados 200 µL dos extratos aquosos, seguindo-se o método de diferença de pH ( GIUSTI; WROLSTAD, 2001 ). Foram elaboradas duas soluções tampão, uma de cloreto de potássio (0,025M) de pH 1,0 e outra de acetato de sódio (0,4M) de pH 4,5. Foram feitas leituras a 520 nm e 700 nm, tanto no tampão de pH 1,0 quanto de pH 4,5 (espectrofotômetro UV-VIS, modelo UV-1800, Shimadzu, Barueri, São Paulo, Brasil). A leitura a 700 nm foi realizada para descontar a turbidez da amostra e os resultados foram apresentados em equivalentes de malvidina 3-glicosídeo.

A análise do teor de compostos fenólicos totais foi realizada de acordo com o método espectrofotométrico de Folin-Ciocateau descrito por Singleton e Rossi (1965) , utilizando ácido gálico como padrão. O procedimento foi realizado em triplicata, transferindo-se uma alíquota de 0,1 mL do extrato em etanol 80% (v/v) para um tubo de ensaio e adicionando-se 0,5 mL do reagente Folin-Ciocalteau 10 g L^-1 . A absorbância foi medida em espectrofotômetro UV-VIS a 740 nm (UV-1800, Shimadzu, Barueri, São Paulo, Brasil).

Os compostos fenólicos individualizados foram analisados pelo método de cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC), de acordo com metodologia adaptada por Silva (2016) . O procedimento foi realizado em Tubo Falcon, utilizando uma alíquota de 2,5 mL dos extratos de farinha de bagaço de uva, extraído duas vezes com 5 mL de etanol 80% (v/v) sob agitação em vórtex. As fases orgânicas foram combinadas e centrifugadas por 10 min a 3.000 rpm, para garantir uma melhor separação e retirada total da fase aquosa. Após centrifugação, o solvente da fase orgânica foi evaporado em evaporador e concentrador a vácuo, em temperatura ambiente. O resíduo obtido foi redissolvido em 1,2 mL de solução acetonitrila:água (40:60 v/v). A análise foi realizada utilizando-se um sistema LC 920 (Varian Inc., Walnut Creek, CA, EUA). O software Galaxie foi usado para controlar o amostrador automático, as configurações de gradiente, o monitor Diode Array (DAD) e a aquisição de dados. Uma coluna C18 RP (250 mm × 4,6 mm, 5 μm) (Eclipse Plus, Agilent Technologies, Wilmington, DE, EUA), mantida a 30 °C, foi empregada na análise. Foram injetados volumes de 10 μL de extratos a uma concentração de 80 g L^-1 . A fase móvel consistiu de uma mistura de gradiente de solvente A (solução aquosa de ácido acético a 2%) e solvente B (acetonitrilo a 40% acidificado com solução aquosa a 2% de ácido acético), a uma taxa de fluxo de 1 mL. O gradiente foi iniciado com 5% de solvente B e ajustado para 20% a 2 min; 25% de B, a 15 min; 85% de B, a 25 min, mantido durante 5 minutos; 20% de B, a 33 min; 5% de B, em 36 min, até 44 min, como etapa de condicionamento. As áreas de pico foram determinadas a 280 nm para ácido gálico, ácido vanílico e flavanóis: catequina e epicatequina; 300 nm para ácido cumárico, ácido salicílico e resveratrol; 320 nm para ácido cafeico e ferúlico, e 360 ​​nm para flavonoides: rutina, quercetina e miricetina.

Para as análises da atividade antirradicalar das amostras utilizou-se o extrato hidroalcoólico. Para o método do radical livre ABTS ( CAMARGO et al., 2016 ), trabalhou-se com 10 mg de amostra em 200 µL de solução estoque de ABTS e 200 mL de tampão (10 mg mL^-1). A partir desta solução estoque, realizaram-se diluições de 200 µL de solução estoque e 200 mL de tampão, até a proporção de 1:32 (v/v). Estas amostras foram submetidas ao radical livre, para avaliar até qual diluição estas eram capazes de apresentar atividade antirradicalar representativa.

Inicialmente, uma mistura aquosa de ABTS (7 mmol L^-1) e persulfato de potássio (2,45 mmol L^-1) foi incubada à temperatura ambiente e ao abrigo da luz, por 12 horas. A solução formada de ABTS^•+ foi diluída em tampão fosfato salina (PBS) 50 mmol L^-1, pH 7,4, a uma absorbância de 0,70 (734 nm). Soluções de diferentes concentrações dos extratos foram incubadas com o ABTS^•+ por 30 minutos, à temperatura ambiente, e a redução do ABTS^•+ pelos extratos foi observada a 734 nm em espectrofotômetro (modelo UV-1800, Shimadzu, Barueri, São Paulo, Brasil) ( CAMARGO et al., 2016 ).

Para a determinação da atividade antirradicalar pelo método HOCl ( CAMARGO et al., 2016 ), se utilizou a solução de ácido hipocloroso (HOCl 1 mmol L^-1 ) preparada a partir de uma solução de NaOCl em NaOH 50 mmol L^-1. A concentração da solução de HOCl foi verificada espectrofotometricamente usando o coeficiente de extinção molar 350 cm^-1M^-1 em 292 nm (espectrofotômetro modelo UV-1800, Shimadzu, Barueri, São Paulo, Brasil). A solução de 3,3',5,5'-tetramethylbenzidine (TMB) a 0,014 mol L ^-1 foi preparada se dissolvendo 0,017 g de TMB em 2,5 mL de dimetilformamida, 2,45 mL de ácido acético 0,8 mol L^-1 e 0,05 mL de KI 0,01 mol L^-1 . A reação ocorreu em PBS 50 mmol mL^-1, pH 7,4, contendo diferentes concentrações da amostra, adicionado de 75 μmol.L^-1 de HOCl, com incubação de 15 minutos, ao abrigo da luz e em temperatura ambiente de aproximadamente 17 °C. O HOCl remanescente foi revelado pela adição de uma solução de TMB (0,014 mol.L^-1), cujo produto de oxidação possui absorbância máxima em 652 nm ( CAMARGO et al., 2016 ).

Os resultados foram submetidos à análise de variância (ANOVA), com o teste de post-hoc SNK para comparação das médias (pacote estatístico SISVAR 5.6) ( FERREIRA, 2011 ). Para as análises de cromatografia, foi realizada a análise de componentes principais (PCA) por meio do software MINITAB R14 ( TABACHNICK; FIDELL, 2007 ).

3 Resultados e discussão

3.1 Conteúdo de antocianinas monoméricas e compostos fenólicos totais em farinhas de bagaços de uva desidratadas em estufa e liofilizador

As farinhas apresentaram teores de antocianinas que variaram entre 15,78 e 114,67 mg 100 g ^-1, para o processamento em estufa, e entre 20,74 e 218,19 mg 100 g^-1 , para o material liofilizado. As farinhas provenientes de bagaço da uva Cabernet Sauvignon apresentaram os maiores teores de antocianinas monoméricas, seguida pela cultivar Sangiovese, enquanto que os menores valores foram verificados para as cultivares Merlot e Sauvignon Blanc ( Figura 1 A). As amostras desidratadas em estufa das cultivares Cabernet Sauvignon e Sangiovese apresentaram teores significativamente inferiores de antocianinas monoméricas quando comparados aos valores obtidos pelo processo de liofilização. Para as cultivares Merlot e Sauvignon Blanc, não houve diferenças entre os processos de desidratação.

Figura 1
Conteúdo de antocianinas (A) e compostos fenólicos totais (B) em farinhas de bagaço de uvas desidratadas em estufa e liofilizador). Médias seguidas pela mesma letra (maiúsculas para tipo de processo e minúsculas para cultivares) não diferem entre si pelo teste de Student Neuman-Keuls ( p ≤ 0,05). Barras verticais representam o desvio padrão (n=3).

Verifica-se que tanto a cultivar quanto o método de secagem influenciaram os teores de antocianinas, mas a cultivar da uva foi mais importante em determinar os teores médios destes compostos ( Figura 1 A). De forma semelhante, Abe et al. (2007) , em estudo com farinhas de bagaços de uvas de sete cultivares distintas das espécies Vitis vinifera e Vitis labrusca, identificaram conteúdos de antocianinas variando entre 12,8 ± 0,1 e 248 ± 24 mg equivalentes de malvidina 3-glicosídeo 100 g^-1, com índices estatisticamente distintos das antocianinas malvidina, delfinidina e peonidina, entre as cultivares Folha de Figo, Syrah e Merlot.

Os índices de antocianinas nos bagaços de uvas são expressos por mais de cinquenta tipos destes compostos, sendo estas as principais: cianidina, peonidina, delfinidina, petunidina e malvidina ( OLIVEIRA et al., 2015 ). A degradação térmica destas antocianinas forma produtos de coloração marrom, especialmente na presença de oxigênio, que, juntamente com outros agentes oxidantes presentes nos alimentos, pode acelerar sua degradação ( JACKMAN; SMITH, 1992 ). Mourtzinos et al. (2008) , ao estudarem a estabilidade térmica de antocianinas, observaram um pico exotérmico em torno de 220 °C relacionado à oxidação deste pigmento. Isto poderia justificar as menores perdas deste composto, uma vez que as temperaturas utilizadas não atingiram este limiar térmico.

A liofilização proporcionou a manutenção de maiores conteúdos de compostos fenólicos totais para todas as variedades analisadas ( Figura 1 B). Em relação às cultivares, verificou-se que a farinha proveniente da cv. Sauvignon Blanc pelo método de liofilização apresentou o maior conteúdo de compostos fenólicos. Para as amostras secas em estufa, a farinha da cv. Merlot apresentou o menor teor de polifenóis ( Figura 1 B).

Neste estudo, foram observadas perdas maiores de compostos fenólicos totais, em comparação às antocianinas, no processo de desidratação em estufa em relação à liofilização. A secagem em estufa utilizou uma temperatura relativamente baixa (45 °C), porém por um longo período (quatro dias). O método de liofilização é particularmente benéfico para a preservação dos polifenóis, uma vez que estes compostos são sensíveis à temperatura ( CORREA-BETANZO et al., 2015 ). A extração a quente é capaz de converter compostos fenólicos insolúveis em solúveis ( CATANEO et al., 2008 ). Porém, este processo não consegue romper as ligações covalentes dos compostos fenólicos, acarretando perdas na quantidade destes compostos, principalmente devido à degradação de antocianinas ( MALACRIDA; MOTTA, 2005 ).

3.2 Conteúdos de compostos fenólicos individuais para as farinhas de bagaço de uva desidratadas em estufa e em liofilizador

A Figura 2 apresenta a projeção dos componentes principais (CPs) dos conteúdos de compostos fenólicos para as amostras desidratadas em estufa e liofilizador. No gráfico formado pelas CP-1 vs. CP-2, que juntas explicam 65% da variabilidade dos dados em relação ao método de secagem, observa-se que praticamente todas as amostras liofilizadas (independentemente da cultivar de uva) situam-se no eixo negativo da CP-1 (exceção da cultivar Merlot liofilizada e uma repetição da cv. Cabernet Sauvignon liofilizada). Por outro lado, quase todas as amostras submetidas à secagem em estufa encontram-se no eixo positivo da CP-1, com exceção de duas repetições da cultivar Sauvignon Blanc secas em estufa. Essa disposição sugere que o método de secagem influencia os teores de compostos fenólicos muito mais do que a característica do resíduo de cada cultivar de uva. Também se verificou que amostras de farinhas da mesma cultivar formam clusters distintos, dependendo do método de secagem ( Figura 2 ). Isso sugere que o método de secagem foi bastante preponderante na composição dos teores dos compostos fenólicos das amostras.

Figura 2
Projeção dos componentes principais das análises de compostos fenólicos para as amostras desidratadas em liofilizador e estufa. CS: Cabernet Sauvignon; S: Sangiovese; SB: Sauvignon Blanc; M: Merlot; E: Estufa; L: Liofilizador.

Observou-se também que, de maneira geral, as amostras liofilizadas tiveram maiores teores médios de todos os flavonoides (epicatequina, catequina, quercetina, ácido vanílico, rutina) ( Figura 2 ). Os teores dos ácidos gálico, cafeico e ferrúlico, aparentemente, não foram influenciados pelo método de secagem. Além disso, teores representativos de ácido cafeico foram identificados somente na cultivar Merlot (desidratadas pelos dois métodos), porém sendo maiores nas amostras desidratadas em estufa (9,46 mg 100g^-1) do que nas liofilizadas (4,27 mg 100g^-1 ). Isso deve estar relacionado a termolabilidade e volatilidade de cada composto. Observa-se o mesmo na análise hierárquica, conforme a Figura 3 .

Figura 3
Análise de Agrupamentos Hierárquicos (HCA) para as análises de compostos fenólicos individuais de farinhas de bagaço de uvas submetidas aos tratamentos de desidratação em estufa e em liofilizador. Diagrama para 24 casos apresentados em distâncias Euclidianas. CS: Cabernet Sauvignon; S: Sangiovese; SB: Sauvignon Blanc; M: Merlot; E: Estufa; L: Liofilizador.

Chamorro et al. (2012) avaliaram o efeito do aquecimento em estufa com circulação de ar sob temperatura de 100 °C por períodos de 15, 30 e 60 minutos ou em autoclave sobre o conteúdo de compostos fenólicos totais e individuais, antocianinas e atividade antirradicalar pelo método ABTS em farinhas de bagaços de uvas provenientes da vinícola Alcoholeras Reunidas, S.A. (Argamasilla de Alba, Cidade Real, Espanha). Não foram observadas alterações no teor de compostos fenólicos e procianidinas totais quando o bagaço de uva foi submetido ao tratamento térmico em estufa. Para as amostras autoclavadas, observou-se o aumento no teor de ácido gálico (71%), galocatequina (100%) e epicatequina galato (129%). Estes aumentos podem ser justificados pela hidrólise destes compostos a partir das sementes e pelo aumento da disponibilidade dos mesmos ( GU et al., 2008 ).

Para verificar os agrupamentos das amostras em relação à cultivar de uva, foi realizada análise separada ( Figura 4 ) para as amostras liofilizadas, sendo que de 3 a 4 componentes são adequados para explicar mais de 90% da variabilidade dos teores de compostos fenólicos nas amostras de farinhas liofilizadas.

Figura 4
Projeção dos componentes principais das análises de compostos polifenóis para as amostras desidratadas em liofilizador (Guarapuava-PR, 2017). CS-L= Cabernet Sauvignon Liofilizada; SB-L = Sauvignon Blanc Liofilizada; M-L= Merlot Liofilizada; S-L= Sangiovese Liofilizada.

Segundo o gráfico formado pelos componentes CP1 vs. CP2, as amostras da variedade Merlot se destacam por apresentar maiores teores dos ácidos fenólicos cafeico (4,27 mg 100 g^-1), ferrúlico (11,44 mg 100 g^-1), gálico (3,82 mg 100 g^-1) e vanílico (10,57 mg 100 g^-1 ) para 77% das amostras. Observa-se o mesmo, também, de rutina (29,88 mg 100 g ^-1) e quercetina (35,5 mg 100 g^-1), mas teores menores de epicatequina (12,68 mg 100 g^-1) e catequina (26,1 mg 100 g^-1). A farinha da cultivar Cabernet Sauvignon apresentou menores teores médios de praticamente todos os compostos, com exceção de epicatequina (77,58 mg 100 g^-1) e catequina (43,27 mg 100 g^-1). A farinha da cv. Sauvignon Blanc apresentou maiores teores médios de quercetina (60,61 mg 100 g^-1), rutina (46,88 mg 100 g^-1) e catequina (72,17 mg 100 g^-1). A cultivar Sangiovese apresentou maiores teores médios de ácido vanílico (18,94 mg 100 g^-1), como é possível observar também na Tabela 1 .

Tabela 1
Compostos fenólicos em farinhas de resíduos de produção vinícola desidratados em estufa e em liofilizador.

Compostos Fenólicos g 100 g-1 média ± desvio padrão
	Merlot Estufa	Merlot Liofilizada	Cabernet Sauvignon Estufa	Cabernet Sauvignon Liofilizada	Sangiovese Estufa	Sangiovese Liofilizada	Sauvignon Blanc Estufa	Sauvignon Blanc Liofilizada
Ácido Gálico	2,12 ± 0,594	3,82 ± 1,115	3,08 ± 1,669	4,48 ± 1,596	1,41 ± 1,249	1,10 ± 0,377	1,49 ± 0,376	2,91 ± 1,004
Catequinas	4,81 ± 2,342	26,1 ± 5,513	19,81 ± 3,809	43,27 ± 5,108	21,03 ± 1,278	73,55 ± 18,829	45,73 ± 11,52	72,17 ± 0,936
Ácido Vanílico	0,00 ± 0,00	10,57 ± 0,639	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00	18,94 ± 1,434	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00
Ácido Cafeico	9,46 ± 0,349	4,27 ± 1,457	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00
Epicatequina	0,00 ± 0,00	12,68 ± 1,53	14,33 ± 2,175	77,58 ± 8,79	23,00 ± 3,63	80,83 ± 12,996	46,97 ± 10,967	73,37 ± 5,08
Ácido Ferrúlico	0,00 ± 0,00	11,44 ± 2,5	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00	5,71 ± 1,032	0,00 ± 0,00	0,00 ± 0,00
Rutina	0,00 ± 0,00	29,88 ± 5,477	11,94 ± 0,497	7,44 ± 0,277	11,45 ± 2,382	20,15 ± 0,497	14,04 ± 1,005	46,88 ± 0,915
Quercetina	15,85 ± 0,367	35,5 ± 2,755	25,13 ± 1,74	13,95 ± 0,240	19,795 ± 1,565	23,84 ± 0,636	17,11 ± 0,781	60,61 ± 1,388

No estudo de Abe et al. (2007) , com farinhas de bagaços de sete cultivares de videiras produzidas em Minas Gerais, das espécies Vitis labrusca e Vitis vinifera , foi verificado conteúdo superior dos flavanóis catequina ‒ principalmente nas cultivares Niágara Rosada IAC 766 (34,6 mg 100 g ^-1) e Niágara Rosada 196-17 ‒ e epicatequina ‒ nas cultivares Folha de Figo (34,0 mg 100 g ^-1) e Niágara Rosada IAC 766 (26,0 mg 100 g ^-1).

Bender et al. (2016) avaliaram farinhas de cascas de uvas provenientes de bagaço de uva da cv Marselan ( Vitis vinífera) e obtiveram índices de 1,15 mg g ^-1 para ácido gálico, 0,21 mg g^-1 para ácido cafeico, 2,25 mg g^-1 para quercetina, 1,93 mg g^-1 para rutina e 1,10 mg g ^-1 para catequina.

Makris et al. (2007) analisaram a composição fenólica de bagaços de uva branca, tinta e engaço, e encontraram teores equivalentes em ácido gálico, de 48,26 mg g^-1 para bagaço de uva branca e 54,02 mg g^-1 para bagaço de uva tinta. Com base na análise cromatográfica por HPLC da cultivar Bordô (Vitis labrusca), proveniente do processamento vinícola em um vinícola na cidade de Mariópolis, Paraná, Karling et al. (2017) identificaram os compostos ácido gálico, ácido cafeico, ácido p-cumárico e trans-resveratrol, e ácido cafeico.

A Tabela 2 apresenta as correlações entre o método de avaliação de compostos fenólicos totais por Folin-Ciocalteu e compostos fenólicos individuais, confirmando a ideia de que este pode ser considerado um ensaio de poder redutor. A atividade antioxidante dos extratos dos resíduos agroindustriais por esses diferentes métodos de avaliação apresentou uma correlação alta e positiva com o conteúdo de compostos fenólicos totais. Isso sugere que os compostos fenólicos presentes nesses resíduos possuem alta capacidade de sequestro de radicais livres e, por isso, são fontes importantes de agentes antioxidantes primários, de grande importância para a indústria de alimentos ( MELO et al., 2011 ).

Tabela 2
Coeficientes de correlação (r²) entre atividade antioxidante e alguns compostos fenólicos dos extratos dos resíduos agroindustriais.

Correlação	r2	p
Cabernet Sauvignon
Compostos fenólicos totais × catequina	1,00	0,006
Compostos fenólicos totais × rutina	0,994	0,049
Compostos fenólicos totais × quercetina	0,989	0,048
Merlot
Compostos fenólicos totais × ácido gálico	1,00	0,003
Compostos fenólicos totais × ácido vanílico	0,999	0,033
Compostos fenólicos totais × quercetina	1,00	0,0012
Sangiovese
ABTS × HOCl
ABTS × ácido gálico	1,00	0,014
ABTS × rutina	1,00	0,019
ABTS × quercetina	1,00	0,007
Sauvignon Blanc
ABTS × rutina	1,00	0,006
Compostos fenólicos totais × quercetina	1,00	0,012

Os compostos em uva podem ser divididos em dois grupos: ácidos fenólicos (precursores de flavonoides) e flavonoides ( SHI et al., 2003 ). Sagdic et al. (2011) determinaram o teor de 18 compostos fenólicos pelo método de cromatografia líquida de fase reversa (RP-HPLC) em bagaços liofilizados e extraídos por hexano de cinco cultivares de uva [Emir, Gamay, Kalecik karasi, Narince e Okuzgozu (três vermelhas e duas brancas)] cultivadas na Turquia. Como resultados, dentre os ácidos fenólicos avaliados, um dos principais compostos presentes nos extratos foi o ácido gálico, com uma média de valor de 1,09 mg 100g^-1. No presente estudo os conteúdos de ácido gálico variaram entre 1,42 mg 100 g^-1 e 6,04 mg 100 g^-1 (cultivares Sangiovese e Cabernet Sauvignon, respectivamente). Entre os flavonoides, catequina foi o principal composto identificado como um valor médio de 508,3 mg 100 g^-1, o que vai ao encontro com o presente estudo, no qual catequina também apresentou os mais altos índices, para todas as cultivares avaliadas, com destaque para a cultivar Sauvignon Blanc (45,73 mg 100 g^-1). Por outro lado, ácido cumárico, ácido ferrúlico e trans-resveratrol não puderam ser identificados em todos os extratos testados, semelhantemente aos achados neste estudo.

3.3 Atividade antirradicalar em farinhas de bagaços de uva desidratadas em estufa e liofilizador

Pelos resultados das análises, ficou evidente que a secagem em estufa reduziu os teores da maioria dos compostos avaliados e, consequentemente, a atividade antioxidante das farinhas de bagaço de uva ( Figura 5 ). Observou-se que o IC50 para o radical ABTS apresentou os melhores resultados, principalmente para as amostras liofilizadas, para as cultivares Merlot (39,52 µg mL^-1 ), Cabernet Sauvignon (72,98 µg mL^-1), Sangiovese (93,18 µg mL^-1) e Sauvignon Blanc (105,48 µg mL^-1), nas quais quantidades menores dos bagaços foram capazes de inibir em, pelo menos, 50% a atividade do radical livre ABTS. Para o IC50 para o radical HOCl^- as farinhas da cv. Merlot liofilizada (86,76 µg mL^-1) foram superiores. As farinhas das cultivares Cabernet Sauvignon (246,48 µg mL^-1) e Sangiovese (234,66 µg mL^-1 ) não diferiram entre si, mas foram superiores às amostras de Sauvignon Blanc (385,77 µg mL^-1).

Figura 5
Atividade antioxidante de farinhas de bagaços de uvas desidratadas em estufa e liofilizads, demonstrada pela inibição dos radicais livres ABTS e HOCl- . 1 SA: sem atividade (não apresentou atividade antioxidante pelo método indicado); IC50>1000: valores superiores à 1000 IC50; Médias seguidas pela mesma letra (maiúsculas para tipo de processo e minúsculas para cultivares) não diferem entre si pelo teste de Student Neuman-Keuls ( p ≤ 0,05). Barras verticais representam o desvio padrão (n=3).

Pela análise multivariada, verificou-se que as amostras com maior atividade antirradicalar foram as liofilizadas e que estas se encontram no eixo negativo da PC1 ( Figura 6 ). Essas amostras também tiveram maiores teores médios de catequina, epicatequina, quercetina, rutina (flavonoides) e ácido vanílico. A atividade antioxidante das farinhas obtidas das diferentes cultivares de uva também apresentou alta correlação positiva com os teores de antocianinas, ácido vanílico e rutina ( Tabela 2 ).

Figura 6
Projeção dos componentes principais das análises de compostos fenólicos e atividade antiradicalar pelo método ABTS+ para as amostras desidratadas em estufa e liofilizador (Guarapuava-PR, 2017).

Embora as amostras secas em estufa tenham apresentado maior teor de fenólicos totais, esses compostos não contribuíram para o aumento da atividade antirradicalar. De maneira geral, os compostos determinantes para o aumento desta atividade foram: antocianinas, ácido vanílico, rutina, epicatequina, catequina e quercetina; no entanto, somente a quercetina apresenta correlação positiva para todas as cultivares estudadas, como também a rutina, exceto para a cultivar Merlot ( Tabela 2 ).

A variação da expressão da atividade antirradicalar pelos diferentes métodos sugere que os compostos fenólicos desses resíduos exercem esta atividade por mecanismos de ação distintos, dependendo da polaridade do meio reacional ( MELO et al., 2011 ).

Rockenbach (2008) avaliaram o teor de compostos fenólicos e a atividade antioxidante do bagaço de uvas tintas das variedades Cabernet Sauvignon e Merlot (Vitis vinifera ), Bordeaux e Isabel (Vitis labrusca). O bagaço da variedade Cabernet Sauvignon foi o que apresentou o maior teor de compostos fenólicos totais e a maior atividade antioxidante (485,42 μmol TEAC g^-1 para o método ABTS), resultados superiores aos encontrados neste trabalho.

No estudo de Kallithraka et al. (2005) , observou-se correlação estatisticamente insignificante entre antocianinas totais e capacidade antioxidante em cultivares de Vitis vinifera, o que demonstra a importância de outros constituintes da uva. Como exemplo, podem ser citadas catequinas e epicatequinas, que têm demonstrado alta capacidade antioxidante e inibição da proliferação celular ( FARIA et al., 2006 ).

Extratos de bagaços da cultivar Pinot Noir, autoclavados por 15 minutos a 121 °C e liofilizados, foram transformados em farinhas com diferentes tamanhos de partículas, obtidas por tamisação, e comparados com o bagaço cru. Foi avaliada atividade antirradicalar pelo método IC50 do radical livre ABTS. Os extratos liofilizados não mostraram diferença significativa na atividade antioxidante in vitro entre tratamentos, quando comparados aos bagaços crus. Respostas variáveis foram obtidas no extrato liofilizado, com valores de 8,00 ± 0,62 a 46,60 ± 2,03 mM de Trolox 100 g^-1. Chamorro et al. (2012) avaliaram o efeito do aquecimento em estufa com circulação de ar ou em autoclave, e também não foi observada modificação na atividade antirradicalar entre as amostras.

A comparação entre os processos utilizados para a desidratação das farinhas indica que as farinhas obtidas pela desidratação do bagaço em liofilizador apresentaram melhor atividade antioxidante pelos métodos avaliados. No entanto, embora em menor proporção, as farinhas obtidas pela desidratação do bagaço em estufa das cultivares Sauvignon Blanc e Sangiovese também apresentaram alguma atividade antirradicalar, tornando viável a introdução destes resíduos na alimentação humana, como alternativa de enriquecimento nutricional.

4 Conclusões

A comparação entre os processos de desidratação dos bagaços utilizados na produção das farinhas apresentou melhores resultados nos índices de compostos fenólicos totais, individuais, e de antocianinas para as amostras liofilizadas, quando comparadas às farinhas desidratadas em estufa, para todas as cultivares estudadas. Observou-se que catequinas, epicatequinas, quercetina e rutina estiveram entre os compostos fenólicos de maior expressão.

A avaliação da atividade antirradicalar mostrou que as farinhas desidratadas em estufa, sem exceção, tiveram menor capacidade de inibição dos radicais livres, por ambos os métodos de IC50, sendo que a atividade para o radical ABTS apresentou os melhores resultados, principalmente para as amostras liofilizadas, com destaque para a cv. Merlot. Estes resultados reforçam as informações de que as condições de temperatura influenciam na disponibilidade de compostos bioativos nestes alimentos.

• Cite as:Bioactive compounds and antiradical activity in grape pomace flours from different cultivars dehydrated in a freeze dryer and in an oven. Braz. J. Food Technol., v. 21, e2017205, 2018.

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  18 Out 2018
• Data do Fascículo
  2018

Histórico

• Recebido
  13 Nov 2017
• Aceito
  26 Jun 2018