Doença do músculo branco em três bezerros para carne e leite deficientes em selênio na Argentina e Uruguai

Rodriguez, Alejandro Martín; Schild, Carlos Omar; Cantón, Germán José; Riet-Correa, Franklin; Armendano, Joaquín Ignacio; Caffarena, Rubén Darío; Brambilla, Emilio César; García, Juan Agustín; Morrell, Eleonora Lidia; Poppenga, Robert; Giannitti, Federico

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PATHOLOGY • Cienc. Rural 48 (5) • 2018 • https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20170733 copiar

Doença do músculo branco em três bezerros para carne e leite deficientes em selênio na Argentina e Uruguai

Autoria SCIMAGO INSTITUTIONS RANKINGS

RESUMO:

Doença do músculo branco (DMB), miodegeneração nutricional ou distrofia muscular enzoótica é uma condição nutricional associada à deficiência de selênio e/ou vitamina E em ruminantes. Esses elementos são constituintes dos principais sistemas antioxidantes do corpo. O esgotamento de selênio resulta em dano oxidativo às células musculares cardíacas e esqueléticas, resultando em miodegeneração e mionecrose, lesões típicas da DMB. A deficiência de selênio é comum na América do Sul, mas a DMB está subnotificada. Este trabalho descreve os achados clínicos, bioquímicos e patológicos em dois surtos de DMB associados à deficiência de selênio em bezerros para carne e leite na Argentina e Uruguai com concomitante deficiência de cobre em um surto, que resultaram em mortalidade espontânea de bezerros. São necessários mais estudos para estimar a verdadeira incidência e impacto econômico das deficiências minerais clínicas e subclínicas nos sistemas de produção pecuária no sul da América do Sul.

Palavras-chave:
mortalidade de bezerros; insuficiência cardíaca; deficiências minerais; miopatia nutricional; América do Sul.

Autoria

Alejandro Martín Rodriguez ^*E-mail: rodriguez.alejandro@inta.gob.ar. *Corresponding author.

Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA), Cuenca del Salado, Rauch, 7203, Buenos Aires, Argentina. Instituto Nacional de Tecnología AgropecuariaArgentinaBuenos Aires, ArgentinaInstituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA), Cuenca del Salado, Rauch, 7203, Buenos Aires, Argentina.

http://orcid.org/0000-0001-6445-8780

Carlos Omar Schild

Instituto Nacional de Investigación Agropecuaria (INIA), La Estanzuela, Colonia, Uruguay.Instituto Nacional de Investigación AgropecuariaUruguayLa Estanzuela, Colonia, UruguayInstituto Nacional de Investigación Agropecuaria (INIA), La Estanzuela, Colonia, Uruguay.

Germán José Cantón

Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA), Balcarce, Buenos Aires, Argentina.Instituto Nacional de Tecnología AgropecuariaArgentinaBuenos Aires, ArgentinaInstituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA), Balcarce, Buenos Aires, Argentina.

Franklin Riet-Correa

Joaquín Ignacio Armendano

Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional de Mar del Plata, Balcarce, Buenos Aires, Argentina. Universidad Nacional de Mar del PlataArgentinaBuenos Aires, ArgentinaFacultad de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional de Mar del Plata, Balcarce, Buenos Aires, Argentina.

Rubén Darío Caffarena

http://orcid.org/0000-0002-2141-3264

Emilio César Brambilla

Juan Agustín García

Centro Universitario Regional Este, Universidad de la República, Treinta y Tres, Uruguay.Universidad de la RepúblicaUruguayTreinta y Tres, UruguayCentro Universitario Regional Este, Universidad de la República, Treinta y Tres, Uruguay.

Eleonora Lidia Morrell

Robert Poppenga

California Animal Health and Food Safety (CAHFS), Laboratory, School of Veterinary Medicine, University of California, Davis, CA, USA.University of CaliforniaUSADavis, CA, USACalifornia Animal Health and Food Safety (CAHFS), Laboratory, School of Veterinary Medicine, University of California, Davis, CA, USA.

Federico Giannitti

Veterinary Population Medicine Department, University of Minnesota, Saint Paul, MN, USA.University of MinnesotaUSASaint Paul, MN, USAVeterinary Population Medicine Department, University of Minnesota, Saint Paul, MN, USA.

E-mail: rodriguez.alejandro@inta.gob.ar. ^*Corresponding author.

The authors declare that they do not have any conflict of interest.

SCIMAGO INSTITUTIONS RANKINGS

Figuras | Tabelas

Figuras (1)
Tabelas (2)

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Figure 1
A: calf C. The heart has a rounded shape due to dilation of the right ventricle. B: calf C. Heart, transmural section of the right ventricular free wall showing a diffuse, indiscrete band of pallor on the subendocardial myocardium (right side). C: Calf C. Heart, segmental sarcoplasmic mineralization of two myocardiocytes (center). HE stain. D: calf C. A cross section of the hepatic parenchyma shows a diffuse enhancement of the lobular pattern, typical of chronic hepatic congestion secondary to heart failure (“nutmeg liver”). E: Calf C. Severe diffuse pulmonary edema with marked expansion of the interlobular septae. F: calf C. Lung, alveolar macrophages contain intracytoplasmic hemosiderin granules, known as “heart failure cells” (center). HE stain.

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Table 1
Hepatic Se and Cu, and serum Cu concentrations in calves from two episodes of white muscle disease. Reference ranges: Hepatic Se (MAAS & VALBERG 2015MAAS, J.; VALBERG, S.J. Nutritional and toxic rhabdomyolysis. In: B.P. Smith (ed), Large Animal Internal Medicine. 5th Ed. Elsevier, St Louis, Missouri (USA), pp. 1291-1294. 2015.), hepatic and serum Cu (MAAS & SMITH 2015MAAS, J.; SMITH, B.P. Copper deficiency in ruminants. In: B.P. Smith (ed), Large Animal Internal Medicine. 5th Ed. Elsevier, St Louis, Missouri (USA), pp. 837-840. 2015.).

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Table 2
Plasma activity of glutathione peroxidase in 19 asymptomatic calves from episode 1. Reference value: MAAS & VALBERG, 2015MAAS, J.; VALBERG, S.J. Nutritional and toxic rhabdomyolysis. In: B.P. Smith (ed), Large Animal Internal Medicine. 5th Ed. Elsevier, St Louis, Missouri (USA), pp. 1291-1294. 2015..

Figure 1 A: calf C. The heart has a rounded shape due to dilation of the right ventricle. B: calf C. Heart, transmural section of the right ventricular free wall showing a diffuse, indiscrete band of pallor on the subendocardial myocardium (right side). C: Calf C. Heart, segmental sarcoplasmic mineralization of two myocardiocytes (center). HE stain. D: calf C. A cross section of the hepatic parenchyma shows a diffuse enhancement of the lobular pattern, typical of chronic hepatic congestion secondary to heart failure (“nutmeg liver”). E: Calf C. Severe diffuse pulmonary edema with marked expansion of the interlobular septae. F: calf C. Lung, alveolar macrophages contain intracytoplasmic hemosiderin granules, known as “heart failure cells” (center). HE stain.

Table 1 Hepatic Se and Cu, and serum Cu concentrations in calves from two episodes of white muscle disease. Reference ranges: Hepatic Se (MAAS & VALBERG 2015MAAS, J.; VALBERG, S.J. Nutritional and toxic rhabdomyolysis. In: B.P. Smith (ed), Large Animal Internal Medicine. 5th Ed. Elsevier, St Louis, Missouri (USA), pp. 1291-1294. 2015.), hepatic and serum Cu (MAAS & SMITH 2015MAAS, J.; SMITH, B.P. Copper deficiency in ruminants. In: B.P. Smith (ed), Large Animal Internal Medicine. 5th Ed. Elsevier, St Louis, Missouri (USA), pp. 837-840. 2015.).

Calf	Episode	Hepatic Se (ppm, dry weight)	Hepatic Cu (ppm, dry weight)	Serum Cu (ppm, wet weight)
A	1	0.63	2.5	NA
B	1	0.44	31.1	0.64
C	2	0.29	NA	NA
D	1	NA	NA	0.23
E	1	NA	NA	0.37
Reference range		0.9-1.75	90-350	0.7-1.2

NA: not available.

Table 2 Plasma activity of glutathione peroxidase in 19 asymptomatic calves from episode 1. Reference value: MAAS & VALBERG, 2015MAAS, J.; VALBERG, S.J. Nutritional and toxic rhabdomyolysis. In: B.P. Smith (ed), Large Animal Internal Medicine. 5th Ed. Elsevier, St Louis, Missouri (USA), pp. 1291-1294. 2015..

Calf	GPx activity (U/gHb/min)
F	29
G	31
H	31
I	39
J	26
K	38
L	31
M	29
N	47
O	42
P	36
Q	32
R	32
S	30
T	24
U	29
V	22
W	32
X	33
Reference value	>30

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