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Calorimetria indireta

Calorimetry, indirect; Nutrition; Parenteral nutrition; Enteral nutrition; Metabolism

Calorimetria indireta; Suporte nutricional; Nutrição parenteral; Metabolismo

Artigo de Revisão

Calorimetria indireta

J.R.C. Diener

Serviço de Terapia Intensiva do Hospital de Caridade de Florianópolis. Comissão de Suporte Nutricional do Hospital Universitário da Universidade Federal de Santa Catarina, Florianópolis, SC.

UNITERMOS: Calorimetria indireta. Suporte nutricional. Nutrição parenteral. Metabolismo.

KEY WORDS: Calorimetry, indirect. Nutrition. Parenteral nutrition. Enteral nutrition. Metabolism.

INTRODUÇÃO

A calorimetria indireta é um método não-invasivo que determina as necessidades nutricionais e a taxa de utilização dos substratos energéticos a partir do consumo de oxigênio e da produção de gás carbônico obtidos por análise do ar inspirado e expirado pelos pulmões1,2.

Introduzida no início deste século, a calorimetria indireta (CI) teve papel fundamental na investigação do metabolismo dos seres vivos3,4. Na área clínica, foi amplamente utilizada até a década de 1950, para avaliar o estado funcional da glândula tiróide, mediante determinação do metabolismo basal. Com a introdução de métodos específicos de avaliação da função tiroidiana, os laboratórios de CI foram sendo progressivamente desativados nos hospitais, e esta metodologia permaneceu restrita a alguns poucos centros de pesquisa5-10.

A introdução do suporte nutricional, na década de 1970, renovou o interesse no estudo do metabolismo e nutrição dos pacientes gravemente enfermos11,12 e demonstrou a necessidade de se determinar, de maneira acurada, o dispêndio energético13,14. Os avanços recentes ocorridos na área da eletrônica e informática permitiram o desenvolvimento de aparelhos microprocessados compactos de CI na década de 198015-18. Esses monitores metabólicos tiveram ampla aceitação clínica e estão sendo cada vez mais empregados no manejo metabólico e nutricional dos pacientes hospitalizados19-22.

Esta revisão aborda as bases teóricas, os equipamentos disponíveis, a técnica de execução, a interpretação e as aplicações clínicas da CI.

METABOLISMO ENERGÉTICO

Os seres humanos são sistemas termodinâmicos que necessitam de energia para manter sua organização e estão em constante troca com o meio ambiente23,24. A energia para suportar os processos vitais é obtida pela oxidação dos nutrientes contidos nos alimentos ingeridos25. A energia química potencial contida nas ligações C-H dos carboidratos, lipídios e proteínas é liberada por oxidação desses substratos dentro das células, numa série de passos bioquímicos que ocorrem no citosol e nas mitocôndrias, conhecidos como metabolismo intermediário25. Esse processo consome oxigênio e produz água, gás carbônico, energia química armazenada nas ligações fosfato do trifosfato de adenosina (ATP) e calor que é dissipado para o meio ambiente. Aproximadamente 65% da energia liberada na oxidação do substrato é transformada em energia química armazenada no ATP e 35% da energia é liberada sob a forma de calor. O ATP é uma forma de armazenamento de energia intracelular prontamente disponível para realizar trabalho químico ou mecânico, por meio da sua hidrólise em difosfato de adenosina (ADP) com liberação da energia armazenada26,27.

O dispêndio energético diário compreende o dispêndio basal, o dispêndio da atividade física e o efeito térmico dos alimentos28. O dispêndio basal representa a energia despendida por um indivíduo mantido em repouso, em um ambiente termicamente neutro, pela manhã, ao acordar após 12 horas de jejum, e depende da massa corporal magra e, em menor extensão, da idade, do sexo e de fatores familiares29. O dispêndio basal representa 60% a 75% do custo energético diário e inclui a energia gasta com a bomba de sódio-potássio e outros sistemas que mantêm o gradiente eletroquímico das membranas celulares, a energia empregada na síntese dos componentes do organismo, a energia necessária para o funcionamento dos sistemas cardiovascular e respiratório e a energia despendida pelos mecanismos termorregulatórios para manter a temperatura corporal6,30. A condição basal não é encontrada nas situações clínicas habituais. O gasto energético despendido em repouso pelo indivíduo, em um ambiente que não é termicamente neutro e enquanto recebendo medicamentos ou tratamento suportivo incluindo o suporte nutricional, é referido como dispêndio energético de repouso. O dispêndio de repouso costuma ser 10% maior do que o dispêndio basal6,31,32. A energia despendida na digestão, transporte, transformação e armazenamento dos substratos energéticos inclui um componente de termogênese obrigatória e um componente de termogênese facultativa ou regulatória. Para uma dieta mista habitual, o efeito térmico teórico é de 5-7% do seu conteúdo energético33,34. Já a energia empregada para realizar trabalho mecânico externo representa 15% a 30% do dispêndio energético diário e varia com o nível de atividade física do indivíduo7,10.

As enfermidades clínicas e cirúrgicas, em geral, elevam o dispêndio energético como parte da resposta metabólica ao estresse que desencadeia nos pacientes35,36. A elevação depende da gravidade da doença, da extensão da agressão sofrida pelo paciente, da presença de febre, do desenvolvimento de complicações como sepse e disfunção de múltiplos órgãos e das medidas terapêuticas adotadas. Após cirurgias eletivas, o dispêndio de repouso aumenta de 5% a 20%. Fraturas múltiplas, injúrias abdominais extensas, traumatismos do sistema nervoso central e infecções graves elevam o dispêndio energético de repouso 50% a 60% acima do previsto, enquanto que, nos grandes queimados, o dispêndio pode chegar ao dobro do previsto5,6,21,37. Portadores de condições clínicas, como insuficiência cardíaca, insuficiência respiratória, pancreatite aguda, neoplasias e hemorragia subaracnóide, também apresentam dispêndio elevado21,38,39. Alguns pacientes apresentam dispêndio menor do que o previsto. Esta resposta hipometabólica tem sido associada a determinações na fase inicial da injúria (ebb phase), presença de choque ou instabilidade hemodinâmica, falência bioenergética celular, doença hepática avançada, hipotiroidismo, desnutrição, traumatismo raquimedular, hipotermia e utilização de analgesia e sedação14,40-42.

Durante a hospitalização, os cuidados médicos habituais elevam o dispêndio energético. Aumentos entre 10% e 15% são descritos durante a realização de eletrocardiograma, exame físico e outras interações de curta permanência com a equipe de saúde. Durante a realização de curativos, higiene no leito, exame radiológico no leito e fisioterapia respiratória, foram observados aumentos entre 20% e 35% do dispêndio energético de repouso. A movimentação do paciente, a presença de desconforto respiratório, dor, ansiedade e agitação aumentam o dispêndio, enquanto que analgesia e sedação o reduzem43-45. A influência desses fatores no dispêndio energético total diário, porém, é de 5% a 10% do dispêndio de repouso, já que durante a maior parte do período os pacientes estão imóveis, dormindo ou sedados43,46.

O dispêndio energético de repouso pode ser medido por CI ou estimado por equações preditivas. A equação de Harris-Benedict, que é a mais utilizada, estima o dispêndio de repouso com uma precisão de ±10% em 80% a 90% dos indivíduos normais6. Quando empregada em pacientes gravemente enfermos, porém, essa equação prediz corretamente o dispêndio em menos de 50% dos indivíduos. Essa variabilidade está relacionada à gravidade da doença, a modificações da composição corporal, atividade metabólica alterada e múltiplas intervenções clínicas termogênicas e termodepressivas38,47,48. A recomendação de empregar fatores de correção para adequar o dispêndio calculado ao estado clínico do paciente não melhora o poder preditivo e, freqüentemente, é causa de administração excessiva de calorias e nutrientes, com potenciais efeitos deletérios19,20,49,50.

Reconhecendo a necessidade de estimar o dispêndio energético em instituições que não dispõem de CI, vários pesquisadores têm proposto equações específicas, desenvolvidas a partir de estudos de calorimetria em grupos de pacientes com características clínicas similares51-55. Outros recomendam o emprego da equação clássica de Harris-Benedict sem fatores de correção ou empregando, no máximo, um fator de correção de 1,3 vez o valor calculado (Tabela 1). Ao se empregar uma equação preditiva, é importante saber se a equação prediz o dispêndio basal, de repouso ou total, a população da qual a equação foi obtida e os fatores que afetam e alteram a capacidade preditiva21.

BASES TEÓRICAS DA CALORIMETRIA INDIRETA

A CI mede a produção de energia a partir das trocas gasosas do organismo com o meio ambiente. A denominação indireta indica que a produção de energia, diferentemente da calorimetria direta que mede a transferência de calor do organismo para o meio ambiente, é calculada a partir dos equivalentes calóricos do oxigênio consumido e do gás carbônico produzido. Admitindo-se que todo o oxigênio consumido é utilizado para oxidar os substratos energéticos e que todo o gás carbônico produzido é eliminado pela respiração, é possível calcular a quantidade total de energia produzida. Essa "produção de energia" significa a conversão da energia química armazenada nos nutrientes em energia química armazenada no ATP mais a energia dissipada como calor durante o processo de oxidação33.

A CI é o único método prático para identificar a natureza e a quantidade dos substratos energéticos que estão sendo metabolizados pelo organismo. Sendo considerada uma teoria, ela se baseia em vários pressupostos1,56-58:

1) A entrada e saída dos gases envolvidos no processo de combustão metabólica ocorre só pelo nariz e pela boca. As perdas através da pele são mínimas e são desconsideradas. Nem o oxigênio e nem o gás carbônico são armazenados no organismo.

2) Não está ocorrendo produção anaeróbica de energia.

3) O aporte de substratos energéticos consiste de proteínas, carboidratos e gorduras, todos de uma dada composição química.

4) Os substratos energéticos participam só na reação de combustão, na lipogênese e na gliconeogênese. As concentrações de produtos intermediários não se modificam, apesar de as taxas das reações poderem variar.

5) A taxa de excreção de nitrogênio na urina como uréia representa a taxa de catabolismo protéico simultâneo.

6) O organismo está em estado de equilíbrio e a duração do estudo é suficiente para corrigir flutuações nos pools do gás carbônico, glicose e uréia.

Conhecendo-se as taxas de produção de gás carbônico, consumo de oxigênio e excreção de nitrogênio urinário num determinado período de tempo, pode-se calcular a taxa de desaparecimento dos substratos metabólicos a partir dos seus respectivos pools e definir a participação percentual de cada substrato na produção de energia. O conceito de desaparecimento metabólico é primordial para a interpretação da calorimetria. Embora não seja a única, a oxidação é a principal via pela qual o substrato desaparece do seu pool metabólico e é a via utilizada em condições normais. Devido a isso, os termos desaparecimento e oxidação são usados indistintamente, embora sob certas condições as taxas de oxidação e desaparecimento possam diferir consideravelmente33.

A quantidade de energia produzida, a quantidade de oxigênio consumido (VO2) e a quantidade de gás carbônico produzido (VCO2) por grama de substrato metabólico oxidado no organismo foram determinadas experimentalmente por Lusk e outros pesquisadores no início deste século28,58. A relação entre o VCO2 e o VO2 é referida como quociente respiratório (QR) e pode ser empregada para conhecer o tipo de substrato que está sendo oxidado pelo indivíduo em estudo (Tabela 2). O QR é dividido em quociente respiratório não-protéico (QRnp), que traduz a participação dos carboidratos e lipídios no VCO2 e VO2, e quociente respiratório protéico (QRp), que representa a participação das proteínas. Essa diferenciação no QR é realizada determinando-se a taxa de excreção diária do nitrogênio na urina28,33.

Os carboidratos e os lipídios são oxidados completamente até CO2 e H2O. As proteínas, além de produzir CO2 e H2O, liberam nitrogênio que é excretado pela urina. Uma estimativa da oxidação protéica pode ser obtida medindo-se a excreção do nitrogênio urinário. Considerando-se que o conteúdo nitrogenado das proteínas é 16% aproximadamente, admite-se que cada grama de nitrogênio urinário represente a oxidação de 6,25 gramas de proteína. As reações estequiométricas da oxidação dos substratos energéticos são1,33:

1g glicose (Gl) + 0,746L O2® 0,746L CO2 + 0,60g H2O

1g lipídio (Lp) + 2,019L O2® 1,427L CO2 + 1,09g H2O

1g proteína (Pt) + 0,966L O2® 0,774L CO2 + 0,45g H2O

Substituindo-se proteína pelo equivalente em nitrogênio (N), obtém-se:

1g N + 6,04L O2® 4,89L CO2 + 2,81g H2O

Pelas tabelas de equivalência calorimétrica, sabe-se que:

Consumo de O2 (VO2) = 0,746 Gl + 2,019 Lp + 0,966 Pt

Produção de CO2 (VCO2) = 0,746 Gl + 1,427 Lp + 0,774 Pt

Por substituição matemática nas equações, encontra-se:

glicose (Gl) = 4,57 VCO2 - 3,23 VO2 - 2,60 N

lipídio (Lp) = 1,69 VO2 - 1,69 VCO2 - 2,03 N

proteína (Pt) = 6,25 N

Calcula-se a produção de energia a partir dos equivalentes calóricos dos substratos33:

Produção de energia (PE) = 3,74 Gl + 9,46 Lp + 4,32 Pt

Substituindo-se em função das variáveis medidas VO2, VCO2 e N, obtém-se:

PE = 3,91 VO2, + 1,10 VCO2, - 1,93 N

Quando se exclui a oxidação das proteínas no cálculo da produção de energia, o erro introduzido é aproximadamente de 2% e pode ser desprezado33,59. Já o efeito de não considerar a oxidação protéica ou utilizar um valor que difere do real, ao se calcular as taxas de oxidação dos carboidratos e lipídios, é considerável e pode ser previsto pelo quociente respiratório. Quando o QR está próximo de 0,80, o QRnp é quase idêntico e uma estimativa precisa não é necessária para calcular as taxas de oxidação dos carboidratos e lipídios. Porém, quando o QR se afasta de 0,80, a diferença entre o QR e o QRnp se acentua e o erro se torna progressivamente maior. O erro absoluto no cálculo da oxidação dos lipídios é o dobro do erro da oxidação dos carboidratos33. Em pacientes gravemente enfermos com dispêndios calóricos entre 400 e 4.000 calorias, o erro relativo no cálculo da oxidação dos substratos varia de 9% a 44%, para os carboidratos, e de 15% a 59%, para os lipídios59.

Nos pacientes internados, muitas vezes, não se dispõe da excreção nitrogenada diária por ser esta de difícil determinação e sujeita a muitos erros. Costuma-se, então, empregar um valor médio para estimar a excreção nitrogenada. A equação de DeWeir assume uma excreção de 12 gramas diários. Já Bursztein et al. propõem uma excreção média de 18,25 gramas como um valor mais adequado para pacientes gravemente enfermos59.

A equação mais utilizada para calcular a produção de energia (dispêndio calórico diário de repouso) é a equação simplificada de DeWeir2,42:

PE (kcal/dia) = 3,9 x VO2 (L/min) + 1,1 x VCO2 (L/min) x 1.440

EQUIPAMENTOS DE CALORIMETRIA INDIRETA

Os aparelhos de CI medem o VO2 e o VCO2, analisando o ar inspirado e expirado pelo indivíduo num determinado período de tempo. De acordo com o princípio de funcionamento, os calorímetros são classificados em equipamentos de circuito fechado e equipamentos de circuito aberto16,28.

Nos equipamentos de circuito fechado, o VO2 e o VCO2 são medidos por alterações no volume dentro de um reservatório fechado contendo oxigênio. Os aparelhos clássicos consistem de um espirômetro de selo d'água contendo oxigênio a 100%, um filtro com cal-sodada para absorver o gás carbônico e um circuito respiratório com válvula inspiratória e válvula expiratória28. O indivíduo respira continuamente o gás contido no espirômetro por meio do sistema de válvulas direcionais. A redução no volume do gás contido no espirômetro, no período do exame, permite determinar o consumo do oxigênio. Esses aparelhos são considerados o padrão-ouro da calorimetria, pois foi com esse tipo de equipamento que se definiram as bases do metabolismo2. Embora ainda utilizados para estudos de calorimetria de pequenos animais, poucos equipamentos para uso humano empregam esse princípio19,60.

Na CI de circuito aberto, ambos os extremos do sistema se comunicam com o ambiente. O ar inspirado é mantido separado do ar expirado por meio de um sistema de válvulas unidirecionais. Nos estudos de fisiologia e, ocasionalmente, em estudos clínicos, o ar expirado é coletado em bolsa de Douglas ou espirômetro de Tissot e, depois, analisado por titulação por métodos convencionais ou analisadores eletrônicos7,10,61. Os monitores metabólicos utilizados atualmente são instrumentos microprocessados que empregam analisadores rápidos de oxigênio e gás carbônico capazes de medir instantaneamente as alterações nas concentrações dos gases analisados. O analisador de O2 pode ser do tipo eletroquímico que utiliza células de óxido de zircônio ou paládio ou do tipo paramagnético. O analisador de CO2 é do tipo sensor infravermelho e não é totalmente específico para o CO2, podendo sofrer interferência na presença de outros gases, como o óxido nitroso2,10. Os calorímetros indiretos de circuito aberto são classificados quanto ao sistema de análise dos gases em equipamentos de análise direta (breath-by-breath), equipamentos com câmara de mistura (mixing chamber) e equipamentos de análise por diluição do ar expirado15-17,62. Tanto os equipamentos de análise direta quanto os de câmara de mistura, além da concentração de O2 e CO2, medem o volume dos gases inspirado e expirado por meio de medidores de volume. Esses equipamentos podem realizar medições em pacientes respirando espontaneamente através de máscara, bocal ou campânula ventilada, e em pacientes que estão em ventilação mecânica. Ambos os sistemas utilizam as mesmas equações matemáticas para o cálculo do VO2 e VCO2 a partir das concentrações de O2 e CO2 no ar inspirado (FIO2, FICO2) e expirado (FEO2, FECO2) e do volume-minuto inspiratório (VI) e expiratório (VE)2,10:

VO2 = VI . (FIO2) - VE . (FEO2) VCO2 = VE . (FECO2) - VI. (FICO2)

Em geral, apenas o VE é medido (fig.1), sendo o VI calculado a partir da transformação de Haldane, que pressupõe que o nitrogênio (N2) é constante no ar inspirado (FIN2) e no ar expirado (FEN2)2:


VN2 = (VI . FIN2) - (VE . FEN2) = 0

Se não existirem outros gases presentes que não N2, O2 e CO2, o N2 inspirado e expirado pode ser determinado medindo-se só a concentração de O2 e CO2:

FIN2 = 1- FIO2 - FICO2 FEN2 = 1- FEO2 - FECO2

Substituindo-se na equação do VO2, tem-se:

Como a concentração do CO2 no ar inspirado é próxima de zero, a transformação de Haldane não é necessária, logo10,33:

VCO2 = VE . FECO2

O sistema de diluição do ar expirado consiste de uma câmara de mistura de gases de 4 litros, um analisador paramagnético diferencial de O2 de estado sólido, um analisador infravermelho de CO2 e um sistema gerador de fluxo que produz um fluxo constante que dilui o gás expirado com ar ambiente62-64. Não existe medidor de volume de gases neste sistema que pode ser empregado tanto em pacientes em respiração espontânea quanto em pacientes sob ventilação mecânica. No modo ventilação mecânica, o gás expirado do ventilador é equilibrado na câmara de mistura e as concentrações do O2 e CO2 são medidas. Após passar na câmara de mistura, o gás expirado é diluído pelo fluxo de ar do gerador de maneira que o fluxo total (Q) pelo sistema é constante, aproximadamente de 40 litros por minuto. Um microprocessador controla a amostragem dos gases. O CO2 é medido alternadamente no gás expirado (FECO2) e no gás diluído com o fluxo de ar ambiente (FE*CO2). O analisador paramagnético mede, diretamente, a diferença entre a concentração de O2 no gás inspirado e expirado (FIO2 - FEO2) e também a concentração de O2 no gás inspirado (FIO2). O gás inspirado é amostrado no ramo inspiratório do circuito do ventilador mecânico. As equações matemáticas empregadas para cálculo são64:

VCO2 = Q . FE*CO2

Pela transformação de Haldane:

No modo ventilação espontânea, o monitor emprega uma campânula plástica transparente ventilada, colocada sobre a cabeça do paciente. O gerador de fluxo mantém um fluxo constante do ar ambiente através da campânula para a câmara de mistura (Fig. 2). Neste modo, o VO2 e o VCO2 são calculados pelas equações64:


O FCO2 e o FO2 são obtidos por integração das diferenças de concentração de CO2 e O2,respectivamente no gás inspirado e expirado, durante o tempo de medição.

EXECUÇÃO DO EXAME

Vários cuidados devem ser observados antes e durante a realização da CI para se obter um resultado acurado. Esses cuidados incluem aspectos relacionados ao ambiente, condições referidas ao paciente e aspectos técnicos relacionados ao monitor metabólico em si. O ambiente deve ser silencioso, com pouca iluminação e estar numa temperatura confortável, para evitar alterações causadas por frio ou ansiedade. O paciente deve estar em repouso há pelo menos 30 minutos e observar um jejum de 2 a 3 horas14,38. Em pacientes que estejam recebendo suporte nutricional ou mesmo solução glicosada endovenosa, a taxa de infusão das soluções deve ser mantida constante19,42,46. Pacientes com dor devem receber analgésicos uma hora antes do exame21. O monitor deve ser ligado, no mínimo, 30 minutos antes do exame para aquecimento e estabilização adequados. Os analisadores de O2 e de CO2 devem ser calibrados com gás de concentração conhecida antes de cada determinação e, periodicamente, validados com o emprego da chama de metanol65.

Pacientes em assistência ventilatória mecânica necessitam cuidados adicionais para assegurar a validade do exame. Esses pacientes estão expostos a altas concentrações inspiratórias de O2 e de umidade, com pressão elevada nas vias aéreas e com taxas de O2 que podem flutuar bastante em curto período de tempo. É possível a ocorrência de vazamentos em vários pontos do circuito do ventilador. Muitas vezes, esses pacientes estão agitados, ansiosos, com dor e recebendo medicamentos e intervenções freqüentes por parte da equipe de saúde. Esses fatores podem alterar o dispêndio energético e as trocas gasosas, e devem ser considerados em todas as avaliações21,42,43,46.

Recomenda-se não modificar o regime ventilatório por 90 minutos antes da medição, colocar o tubo coletor de amostra de gás inspirado o mais próximo possível do paciente, assegurar que não haja vazamentos nas conexões do circuito respiratório e, também, que o tubo traqueal esteja perfeitamente adaptado e sem vazamentos42. Deve-se evitar ventilação com relação inspiratória:expiratória invertida e níveis de pressão positiva expiratória acima de 5cm de H2O, que falseiam as determinações das concentrações do O2 e CO2. A concentração do O2 no gás inspirado deve ser mantida abaixo de 60%, pois acima desse valor a estimativa do volume inspirado pela transformação de Haldane se torna imprecisa66. A estabilização da concentração do O2 no gás inspirado pode ser obtida pelo emprego de um misturador de ar e O2 externo, ou colocando um segundo umidificador vazio no ramo inspiratório do circuito do ventilador, próximo ao paciente, para funcionar como câmara de mistura e homogeneizar o gás inspirado67. A umidade dos gases amostrados também deve ser corrigida por meio de um sistema dessecante antes que eles sejam analisados21,42.

A duração do exame depende da obtenção de um estado de equilíbrio metabólico e respiratório, caracterizado pela estabilidade das leituras obtidas. Esta condição de equilíbrio é reconhecida quando o VO2 e o VCO2 variam menos de 10% e o QR menos de 5% num intervalo de tempo de cinco minutos. O dispêndio energético medido nesse intervalo de cinco minutos extrapolado para 24 horas é considerado como representativo do dispêndio energético de repouso diário14,20,42. Alguns pesquisadores recomendam um período inicial de adaptação de 5 a 10 minutos, para estabilização das leituras, e um período de medição de 20 minutos68,69. Quando a leitura não estabiliza, recomenda-se estender a determinação para 25 minutos70. Quando se utiliza o monitor metabólico como um parâmetro de perfusão tecidual, costuma-se medir continuamente o VO2 até a normalização do estado hemodinâmico71,72.

Algumas situações clínicas contra-indicam a realização da CI. Em portadores de fístula broncopleural com drenagem de tórax, a fuga dos gases inspirados e expirados impede uma determinação acurada. A difusão do CO2 pela membrana de diálise também impossibilita a execução da calorimetria durante sessões de hemodiálise. A administração de lactulose pode falsear a medição do VO2, pois ela sofre fermentação no cólon e produz CO2, que é inicialmente absorvido e depois eliminado pelos pulmões21,42.

INTREPRETAÇÃO DOS RESULTADOS

Uma interpretação adequada deve incluir análise do QR encontrado, comparação do estado metabólico encontrado, em relação ao previsto, e a estimativa da participação de cada substrato na produção de energia.

O QR encontrado costuma estar entre 0,67 e 1,30 (faixa fisiológica) e deve ser compatível com a ingesta nutricional nos últimos 3 a 4 dias. Valores fora desta faixa ou não compatíveis com o aporte nutricional ocorrem por falhas na técnica ou em condições clínicas específicas. Entre as causas técnicas, destacam-se analisadores de gases descalibrados e contaminação do gás expirado com ar ambiente42. O QR pode se alterar por hiperventilação ou hipoventilação, correção de acidose metabólica, cetose e diabetes melito descompensado1,21.

O estado metabólico é classificado em normometabólico, hipermetabólico ou hipometabólico, pela comparação do dispêndio energético medido com o dispêndio teórico calculado6. Considera-se o paciente hipermetabólico quando o dispêndio de repouso medido está 10% ou mais acima do valor previsto42. Pacientes com dispêndios menores do que 90% do previsto são considerados hipometabólicos. Para se obter o dispêndio energético total, multiplica-se o dispêndio de repouso encontrado por 1,05 a 1,10, nos pacientes confinados ao leito, e por 1,20 a 1,30, naqueles pacientes com algum grau de atividade física fora do leito43, 73.

Para se definir a participação de cada substrato energético na produção de energia é necessário conhecer, além do VO2 e do VCO2, o valor da excreção do nitrogênio urinário nas 24 horas. Como a determinação do nitrogênio urinário não é realizada de rotina, emprega-se um valor médio para a excreção nitrogenada ao calcular a participação dos carboidratos e lipídios. Embora menos acurado, o valor médio permite uma estimativa aceitável da utilização dos substratos59.

APLICAÇÕES CLÍNICAS DA CALORIMETRIA INDIRETA

A CI tem sido empregada no planejamento e na monitoração do suporte nutricional, na avaliação de pacientes com dificuldades para serem retirados da assistência ventilatória mecânica e na monitoração da perfusão tecidual em pacientes com instabilidade hemodinâmica.

A otimização do suporte nutricional dos pacientes gravemente enfermos é, no momento, a maior indicação da CI2. Como o dispêndio energético desses pacientes é muito variável, as estimativas baseadas em equações preditivas genéricas não são recomendadas, pois podem causar um erro considerável19,38,74. Recomenda-se realizar a CI semanalmente, nos pacientes estáveis, e 2 a 3 vezes por semana, nos pacientes mais graves38,74. Durante o suporte nutricional, a análise do QR permite identificar eventuais problemas com a utilização dos substratos calóricos e adequar a sua administração48. Nos portadores de doenças pulmonares, a monitoração por CI pode evitar a administração de quantidades excessivas de nutrientes, com conseqüente precipitação de insuficiência respiratória por produção aumentada de CO2. Nesses pacientes, o QR deve ser mantido abaixo de 1,00 pela modificação da composição da solução nutritiva administrada e pela redução do aporte calórico total se ele estiver acima das necessidades medidas75.

O custo metabólico da respiração, avaliado por CI, foi proposto como um indicador da probabilidade de sucesso no desmame de pacientes em assistência ventilatória mecânica. Definido como a diferença entre o VO2 durante a respiração espontânea e durante a respiração sob ventilação mecânica, no adulto normal esse custo está em torno de 13% do VO2 total76. Embora não exista unanimidade nos estudos, um custo abaixo de 15% tem sido considerado como indicativo de sucesso no desmame77-81.

A CI tem sido empregada para monitorar a perfusão tecidual global nos pacientes com instabilidade hemodinâmica. As variações no VO2 desses pacientes traduziriam mudanças no estado da perfusão tecidual causadas por modificações na oferta do oxigênio82,83. Utilizada de maneira contínua, a CI permitiria tanto a detecção precoce da hipoperfusão tecidual quanto a definição do ponto ideal de ressuscitação hemodinâmica84,85. Recentemente, o comportamento do QR durante a monitoração contínua também foi considerado um parâmetro promissor para avaliar a perfusão tecidual e guiar a ressuscitação volêmica86. A CI vem sendo testada associada à monitoração da saturação de O2 do sangue venoso misto por cateter de Swan-Ganz com sensor oximétrico para medir continuamente o débito cardíaco. Esse sistema tem demonstrado boa correlação com medições do débito por termodiluição e é provável que entre em uso clínico nos próximos anos71,87,88.

A CI deve se firmar como instrumento de monitoração no paciente gravemente enfermo e seu uso deverá aumentar nos próximos anos à medida que os equipamentos diminuam de preço e se tornem mais compactos e fáceis de operar.

  • 1. Ferrannini E. The theoretical bases of indirect calorimetry: a review. Metabolism 1988; 37: 287-301.
  • 2. Branson RD. The measurement of energy expenditure: instrumentation, practical considertions and clinical application. Respir Care 1990; 35: 640-59.
  • 3. Durnin JA. Practical estimates of energy requirements. J Nutr 1991; 121: 1.907-13.
  • 4. Webb P. The measurement of energy expenditure. J Nutr 1991; 121: 1.897-901.
  • 5. Kinney JM. Energy requirements of the surgical patient. In Ballinger WF, Collins JA, Drucker WR et al: Manual of surgical nutrition Philadelphia, WB Saunders, 1975; 223-35.
  • 6. Elwyn DH, Kinney JM, Askanazi J. Energy expenditure in surgical patients. Surg Clin North Am 1981; 61: 545-56.
  • 7. Astrand PO, Rodahl K. Textbook of work physiology. New York, McGraw-Hill Book, 1970.
  • 8. Mitchell JH, Blomqvist G. Maximal oxygen uptake. N Engl J Med 1971; 284: 1.018-22.
  • 9. Wasserman K, Whipp BJ. Exercise physiology in health and disease. Am Rev Respir Dis 1975; 112: 219-49.
  • 10. Jones NL. Equipment. In: Clinical exercise testing 3rd ed. Philadelphia, WB Saunders, 1988; 269-86.
  • 11. Dudrick SJ, Wilmore DW, Vars HM et al Long-term total parenteral nutrition with growth, development, and positive nitrogen balance. Surgery 1968; 64: 134-42.
  • 12. Dudrick SJ, Long JM, Steiger E et al Parenteral hyperalimentation. Med Clin North Am 1970; 54: 90-106.
  • 13. Cerra FB. The role of nutrition in the management of metabolic stress. Crit Care Clin 1986; 2: 807-19.
  • 14. Mullen JL. Indirect calorimetry in critical care. Proc Nutr Soc 1991; 50: 239-44.
  • 15. Beaver WL, Wassermann K, Whipp BJ. On-line computer analysis and breath-by-breath graphical display of exercise function tests. J Appl Physiol 1973; 34: 128-32.
  • 16. Wilmore JH, Davis JA, Norton AC. An automated system for assessing metabolic and respiratory function during exercise. J Appl Physiol 1976; 40: 619-24.
  • 17. Sue DY, Hansen JE, Blais M et al Measurement and analysis of gas exchange during exercise using a programmable calculator. J Appl Physiol 1991; 49: 456-61.
  • 18. Takala J, Keinänen O, Väisänen P et al Measurement of gas exchange in intensive care; laboratory and clinical validation of a new device. Crit Care Med 1989; 17: 1.041-7.
  • 19. Mann S, Wenstenskow DR, Houtchens BA. Measured and predicted caloric expenditure in the acutely ill. Crit Care Med 1985; 13: 173-7.
  • 20. Van Lanschot JJB, Feenstra BWA, Vermeij CG et al Calculation versus measurement of total energy expenditure. Crit Care Med 1986; 13: 981-5.
  • 21. Weissman C, Kemper M. Metabolic measurements in the critically ill. Crit Care Clin 1995; 11: 169-97.
  • 22. Smyrnios NA, Curley FJ. Indirect calorimetry. In Rippe JM, Irwin RS, Fink MP, Cerra FB (eds): Intensive care medicine 3rd edition. Boston, Little, Brown, 1996; 295-9.
  • 23. Benzinger TH. Thermodynamics of living matter: physical foundations of biology. Am J Physiol 1983; 244: R743-R750.
  • 24. Welch GR. Termodynamics and living systems: problems and paradigms. J Nutr 1991; 121: 1.902-6.
  • 25. Mueller CB, Thomas EJ. Nutritional needs of the normal adult. In Ballinger WF, Collins JA, Drucker WR (eds): Manual of surgical nutrition Philadelphia, WB Saunders, 1975; 142-65.
  • 26. McCoy S, Drucker WR. Carbohydrate metabolism. In Ballinger WF, Collins JA, Drucker WR (eds): Manual of surgical nutrition Philadelphia, WB Saunders, 1975; 13-32.
  • 27. Cahill Jr GF. Intermediary metabolism of protein, fat and carbohydrate. In Thorn GH, Adams RD, Braunwald E (eds): Harrison's Principles of Internal Medicine 8th ed. New York, McGraw-Hill Book, 1977; 352-64.
  • 28. Houssay BA, Caldeyro-Barcia R, Covian MR et al El intercambio material y energético del organismo. In: Fisiologia humana Buenos Aires, Libreria El Ateneo Editorial, 1969; 487-502.
  • 29. Bogardus C, Lillioja S, Ravussin E et al Familial dependence of the resting metabolic rate. N Engl J Med 1986; 315: 96-100.
  • 30. Devlin JT, Horton ES. Necesidades energéticas. In: Conocimientos actuales sobre nutrición 6a ed. Washington, OPAS, 1991; 1-7.
  • 31. Owen OE. Resting metabolic requirements of men and women. Mayo Clin Proc 1988; 63: 503-10.
  • 32. Chioléro R, Flatt J, Revelly J et al Effects of catecholamines on oxygen consumption and oxygen delivery in critically ill patients. Chest 1991; 100: 1.676-84.
  • 33. Simonson DC, DeFronzo R. Indirect calorimetry: methodological and interpretative problems. Am J Physiol 1990; 258: E399-E412.
  • 34. Molina P, Bursztein S, Abumrad N. Theories and assumptions on energy expenditure. Crit Care Clin 1995; 11: 587-601.
  • 35. Moore FD, Brennan MF. Surgical injury: body composition, protein metabolism, and neuroendocrinology. In Ballinger WF, Collins JA, Drucker WR (eds): Manual of surgical nutrition Philadelphia, WB Saunders, 1975; 169-222.
  • 36. Rolih CA, Ober KP. The endocrine response to critical illness. Med Clin North Am 1995; 179: 211-24.
  • 37. Way III CWV. Nutritional support in the injured patient. Surg Clin North Am 1991; 71: 537-48.
  • 38. Dickerson RN, Vehe KL, Mullen JL et al Resting energy expenditure in patients with pancreatitis. Crit Care Med 1991; 19: 484-90.
  • 39. Vermeij CG, Feenstra BWA, Oomen AMF et al Assessment of energy expenditure by indirect calorimetry in heathy subjects and patients with liver cirrhosis. JPEN 1991; 15: 421-25.
  • 40. Siegel JH. Relation between circulatory and metabolic changes in sepsis. Ann Rev Med 1981; 32: 175-94.
  • 41. Hotchkiss RS, Karl IE. Reevaluation of the role of cellular hypoxia and bioenergetic failure in sepsis. JAMA 1992; 267: 1.503-10.
  • 42. McClave SA, Snider HL, Greene L et al Effective utilization of indirect calorimetry during critical care. Intensive Care World 1992; 9: 194-200.
  • 43. Weissman C, Kemper M, Damask MC et al Effect of routine intensive care interactions on metabolic rate. Chest 1984; 86: 815-8.
  • 44. Weissman C, Kemper M, Elwyn DH et al The energy expenditure of the mechanically ventilated critically ill patient. Chest 1986; 89: 254-9.
  • 45. Bruder N, Lassegue D, Pelissier D et al Energy expenditure and withdrawal of sedation in severe head-injured patients. Crit Care Med 1994; 22: 1.114-9.
  • 46. Swinamer DL, Phang PT, Jones RL et al Twenty-four hour energy expenditure in critically ill patients. Crit Care Med 1987; 15: 637-43.
  • 47. Weissman C, Kemper M, Askanazi J et al Resting metabolic rate of the critically ill patient: measured versus predicted. Anesthesiol 1986; 64: 673-9.
  • 48. Makk LJ, McClave SA, Creech PW et al Clinical application of the metabolic cart to the delivery of total parenteral nutrition. Crit Care Med 1990; 18: 1.320-7.
  • 49. Quebbeman EJ, Ausman RK, Schneider TC. A re-evaluation of energy expenditure during parenteral nutrition. Ann Surg 1981; 195: 282-6.
  • 50. Elia M. Changing concepts of nutrient requirements in disease: implications for artificial nutritional support. Lancet 1995; 345: 1.279-84.
  • 51. Swinamer DL, Grace MG, Hamilton SM et al Predictive equation for assessing energy expenditure in mechanically ventilated critically ill patients. Crit Care Med 1990; 18: 657-61.
  • 52. Ireton-Jones CS, Turner Jr WW, Liepa GU et al Equations for the estimation of energy expenditure in patients with burns with special reference to ventilatory status. J Burn Care Rehabil 1992; 13: 330-3.
  • 53. Sherman MS. A predictive equation for determination of resting energy expenditure in mechanically ventilated patients. Chest 1994; 106: 544-9.
  • 54. Frankenfield DC, Omert LA, Badellino MM et al Correlation between measured energy expenditure and clinically obtained variables in trauma and sepsis patients. JPEN 1994; 18: 398-403.
  • 55. Gagliardi E, Brathwaite CEM, Ross SE. Predicting energy expenditure in trauma patients: validation of the Ireton-Jones equation. JPEN 1995; 19(suppl): 22S.
  • 56. Ben-Porat M, Sideman S, Bursztein S. Energy metabolism rate for fasting and postabsortive subjects. Am J Physiol 1983; 244: R764-R769.
  • 57. Livesey G, Elia M. Estimation of energy expenditure, net carbohydrate utilization, and net fat oxidation and synthesis by indirect calorimetry. Am J Clin Nutr 1988; 47: 608-28.
  • 58. Swyer PR. Assumptions used in measurements of energy metabolism. J Nutr 1991; 121: 1.891-6.
  • 59. Bursztein S, Saphar P, Singer P et al A mathematical analysis of indirect calorimetry measurements in acutely ill patients. Am J Clin Nutr 1989; 50: 227-30.
  • 60. Yamada TM, Gonçalves EL, Waitzberg DL et al Modelo de calorímetro indireto experimental. Acta Cir Bras 1989; 4: 30-5.
  • 61. Chan ATH, Fleming CR, O'Fallon WM et al Estimated versus measured basal energy requirements in patients with Crohn's disease. Gastroenterology 1986; 91: 75-8.
  • 62. Phang PT, Rich T, Ronco J. A validation and comparison study of two metabolic monitors. JPEN 1990; 14: 259-61.
  • 63. Makita K, Nunn JF, Royston B. Evaluation of metabolic measuring instruments for use in critically ill patients. Crit Care Med 1990; 18: 638-44.
  • 64. Weissman C, Sardar A, Kemper M. In vitro evaluation of a compact metabolic measurement instrument. JPEN 1990; 14: 216-21.
  • 65. Damask MC, Weissman C, Askanazi J et al A systematic method for validation of gas exchange measurements. Anesthesiol 1982; 57: 213-8.
  • 66. Westenskow DR, Cutler CA, Wallace WD. Instrumentation for monitoring gas exchange and metabolic rate in critically ill patients. Crit Care Med 1984; 12: 183-7.
  • 67. Browning JA, Linberg SE, Turney SZ. The effects of a fluctuating FiO2 on metabolic measurements in mechanically ventilated patients. Crit Care Med 1982; 2: 82-5.
  • 68. Isbell TR, Klesges RC, Meyers AW et al Measurement reliability and reactivity using repeated measurements of resting energy expenditure with a face mask, mouthpiece, and ventilated canopy. JPEN 1991; 15: 165-8.
  • 69. Stokes MA, Hill GL. A single, accurate measurement of resting metabolic expenditure. JPEN 1991; 15: 281-7.
  • 70. Cunningham KF, Aeberhardt LE, Wiggs BR et al Appro-priate interpretation of indirect calorimetry for determining energy expenditure of patients in intensive care units. Am J Surg 1994; 167: 547-9.
  • 71. Feustel PJ, Perkins RJ, Oppenlander JE et al Feasibility of continuous oxygen delivery and cardiac output measurements by application of the Fick principle. Am J Respir Crit Care Med 1994; 149: 751-8.
  • 72. Wahr JA, Tremper K. Noninvasive oxygen monitoring techniques. Crit Care Clin 1995; 11: 199-217.
  • 73. Hanique G, Dugernier T, Laterre PF et al Significance of pathologic oxygen supply dependency in critically ill patients. Intens Care Med 1994; 20: 12-8.
  • 74. Hunter DC, Jaksic T, Lewis D et al Resting energy expenditure in the critically ill: estimations versus measurement. Br J Surg 1988; 75: 875-8.
  • 75. Askanazi J, Weissman C, Rosenbaun SH et al Nutrition and the respiratory system. Crit Care Med 1982; 10: 163-72.
  • 76. Field S, Kelly SM, Macklem PT. The oxygen cost of breathing in patients with cardiorespiratory disease. Am Rev Respir Dis 1982; 126: 9-13.
  • 77. Kemper M, Weissman C, Askanazi J et al Metabolic and respiratory changes during weaning from mechanical ventilation. Chest 1987; 92: 979-83.
  • 78. Hubmayr RD, Loosbrock LM, Gillespie DJ et al Oxygen uptake during weaning from mechanical ventilation. Chest 1988; 94: 1.148-55.
  • 79. Räsänen J, Puhakka K, Leijala M. Spontaneous breathing and total body oxygen consumption in children recovering from open-heart surgery. Chest 1992; 101: 662-7.
  • 80. McDonald NJ, Lavelle P, Gallacher WN et al Use of the oxygen cost of breathing as an index of weaning ability from mechanical ventilation. Intens Care Med 1988; 14: 50-4.
  • 81. Shikora SA, Bistrian BR, Borlase BC et al Work of brea-thing: reliable predictor of weaning and extubation. Crit Care Med 1990; 18: 157-62.
  • 82. Shoemaker WC, Appel PL, Kram HB. Oxygen transport measurements to evaluate tissue perfusion and titrate therapy: dobutamine and dopamine effects. Crit Care Med 1991; 19: 672-88.
  • 83. Smithies MN, Royston B, Makita K et al Comparison of oxygen consumption measurements: indirect calorimetry versus the reversed Fick method. Crit Care Med 1991; 19: 1.401-6.
  • 84. Skootsky SA, Abraham E. Continuous oxygen consumption measurement during initial emergency department resuscitation of critically ill patients. Crit Care Med 1988; 16: 706-9.
  • 85. Shoemaker WC, Parsa MH. Invasive and noninvasive physiologic monitoring. In Shoemaker WC, Ayres SM, Grenvik A (eds): Textbook of critical care 3rd ed. Philadelphia, WB Saunders, 1995; 252-66.
  • 86. Cohen IL, Sheik FM, Perkins RJ et al Effect of hemorrhagic shock and reperfusion on the respiratory quocient in swine. Crit Care Med 1995; 23: 545-52.
  • 87. Keinänen O, Takala J, Kari A. Continuous measurement of cardiac output by the Fick principle: clinical validation in intensive care. Crit Care Med 1992; 20: 360-5.
  • 88. Räsänen J. Supply-dependent oxygen consumption and mixed venous oxyhemoglobin saturation during isovolemic hemodilution in pigs. Chest 1992; 101: 1.121-4.

Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    02 Out 2000
  • Data do Fascículo
    Set 1997
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