Espécie nova de Asemostera Simon e primeiro registro de A. latithorax (Keyserling) para o Rio Grande do Sul, Brasil (Araneae, Linyphiidae)

New species of Asemostera Simon and first record of A. latithorax (Keyserling) from Rio Grande do Sul, Brazil (Araneae, Linyphiidae)

Espécie nova de Asemostera Simon e primeiro registro de A. latithorax (Keyserling) para o Rio Grande do Sul, Brasil (Araneae, Linyphiidae)¹

New species of Asemostera Simon and first record of A. latithorax (Keyserling) from Rio Grande do Sul, Brazil (Araneae, Linyphiidae)

Everton N. L. Rodrigues

Programa de Pós-Graduação em Biologia Animal, Departamento de Zoologia, Instituto de Biociências, Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Avenida Bento Gonçalves 9500, Bloco IV, Prédio 43435, 91501-970 Porto Alegre, Rio Grande do Sul, Brasil. Bolsista do CNPq. E-mail: [e-mail]

RESUMO

Asemostera tacuapisp. nov. do estado do Rio Grande do Sul é descrita e ilustrada e A. latithorax (Keyserling, 1886) é registrada pela primeira vez para esse estado.

Palavras-chave: Aranhas; Erigoninae; Neotropical; nova ocorrência; taxonomia.

ABSTRACT

Asemostera tacuapisp. nov. from Rio Grande do Sul state is described and illustrated and A. latithorax (Keyserling, 1886) is newly recorded for that state.

Key words: Erigoninae; Neotropical; new record; spiders; taxonomy.

O gênero Asemostera Simon, 1898 foi proposto por SIMON (1898) designando como espécie-tipo A. latithorax (Keyserling, 1886). O gênero manteve-se monotípico até a recente revisão da subfamília Erigoninae na região Neotropical, realizada por MILLER (2007), o qual incluiu como sinônimos quatro gêneros monotípicos: Pelidida Simon, 1898, Caleurema Millidge, 1991, Asemonetes Millidge, 1991 e Ochronetria Millidge, 1991. Atualmente o elenco de Asemostera é composto por sete espécies neotropicais: A. arcana (Millidge, 1991), A. daedalus Miller, 2007, A. enkidu Miller, 2007, A. involuta (Millidge, 1991), A. janetae Miller, 2007, A. latithorax e A. pallida (Millidge, 1991). Somente A. latithorax é registrada para o Brasil e nenhuma para o Rio Grande do Sul (MILLER 2007).

Essas aranhas são caracterizadas pelo cefalotórax, aproximadamente, mais largo do que longo, com uma porção de cerdas entre os olhos; esterno fortemente truncado; palpo do macho com proeminente membrana embólica, projetando-se distalmente, êmbolo e processo radical anterior filiformes; fêmea com tarso do palpo longo e intumescido, epígino com trajetória dos ductos copulatórios complexa e átrio saliente ou simples com curtos ductos copulatórios (MILLER 2007).

Neste trabalho, A. latithorax é registrada pela primeira vez para o Rio Grande do Sul e é descrita uma espécie nova, cujo material está depositado na coleção aracnológica do Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre (MCN; E.H. Buckup). A posição da tricobótria no metatarso da perna I (TmI) foi calculada conforme Millidge (1980). Descrições seguem MILLER (2007). O estudo das estruturas internas da genitália da fêmea foi realizado mergulhando o epígino em ácido láctico 85%. Medidas são fornecidas em milímetros (mm). Abreviaturas utilizadas para os olhos: (OLA) olhos laterais anteriores, (OLP) olhos laterais posteriores, (OMA) olhos médios anteriores e (OMP) olhos médios posteriores.

Asemostera tacuapi sp. nov.

Figs 1-9

Material-tipo. Holótipo macho macho, BRASIL, Rio Grande do Sul: Triunfo (Parque Copesul de Proteção Ambiental), 15.III.2007, M.A.L. Marques leg. (MCN 43254). Parátipo fêmea, mesma localidade do holótipo, 12.XII.2006, A. Barcellos & R. Ott leg. (MCN 42741); macho, fêmea, mesma localidade e coletor do holótipo, 24.XI.1999 (MCN 31633).

Etimologia. O nome específico provém do guarani e refere-se a uma espécie de canudo (bomba) de taquara, utilizada pelos índios para sorver o chimarrão (mate) em uma cabaça (cuia).

Diagnose. O palpo do macho de Asemostera tacuapi sp. nov. assemelha-se ao de A. enkidu Miller, 2007 (MILLER 2007, figs 127e, f, i) por apresentar em comum o rádix não encobrindo o supratégulo e pelo processo radical anterior não tão longo e seguindo o mesmo percurso do êmbolo (Fig. 4), mas difere pela membrana embólica distalmente mais curta, paracímbio afilado, apófise tibial retrolateral arredondada, intumescida distalmente, apófise tibial prolateral menos projetada e com ápice agudo, rádix afilado próximo à margem do címbio. Fêmea com epígino similar ao de A. janetae Miller, 2007 (MILLER 2007, figs 124d, 128a, 131a, b) por compartilhar os ductos de copulação direcionados sobre as espermatecas e o átrio amplo e conspícuo (Fig. 7), diferencia-se pelos ductos de fertilização mais distantes entre si e medianos, ductos de copulação não tão longos, aberturas de copulação próximas à margem posterior do epígino desembocando diretamente no átrio (Figs 7-9).

Descrição. Holótipo macho. Comprimento total 1,23. Carapaça, comprimento 0,55, largura 0,55, altura 0,32. Clípeo, altura 0,11. Esterno, comprimento 0,31, largura 0,33. Abdome, comprimento 0,78, largura 0,57, altura 0,57. Fórmula das pernas 1/2/4/3. Comprimento 1/2/3/4: fêmures 0,55/0,52/0,44/0,55; patelas 0,20/0,20/0,15/0,17; tíbias 0,40/0,37/0,27/0,40; metatarsos 0,42/0,40/0,30/0,40; tarsos 0,37/0,37/0,15/0,27. Total 1,94/1,86/1,31/1,79. Posição da tricobótria no metatarso da perna I (TmI) 0,24. Metatarsos I-III com tricobótria dorsal, ausente no IV. Carapaça amarelo-clara, mais escura nas laterais. Região mediana com uma série de cerdas e uma fila disposta até a altura dos OMP. Clípeo amarelo-claro e glabro. Área ocular enegrecida, mais larga do que longa, com longas cerdas entre os OLP e OMP. Fila ocular anterior 0,23 e posterior 0,27. OLP apresentando o maior diâmetro (0,08) e OMA, o menor (0,03). Quelíceras amarelo-claras com quatro dentes na promargem e três na retromargem. Lábio muito piloso. Esterno amarelo-claro, truncado posteriormente (Fig. 2). Enditos amarelo-claros. Pernas com coxas amarelo-claras, ampla distância entre o par de coxas IV. Artículos das pernas amarelo-claros, exceto metatarso e tarso mais escuros. Abdômen oval (Fig. 1), com dorso amarelo-claro, amplamente coberto por pêlos curtos; posteriormente, com mancha negra terminal cobrindo o tubérculo anal. Fiandeiras laterais anteriores e médias negras, fiandeiras laterais posteriores amareladas. Colulo amarelo-claro, densamente piloso. Palpo com êmbolo filiforme, longo, com porção terminal junto à membrana embólica (Figs 3, 4 e 6), apófise tibial retrolateral projetada e esclerotinizada distalmente (Fig. 3), apófise tibial prolateral pouco desenvolvida (Fig. 5) e rádix estreito, cujo ápice ultrapassa a borda do címbio (Fig. 4).

Parátipo fêmea (Triunfo, MCN 42741). Comprimento total 1,62. Carapaça, comprimento 0,57, largura 0,55, altura 0,26. Clípeo, altura 0,08. Esterno, comprimento 0,35, largura 0,44. Abdome, comprimento 1,20, largura 1,03, altura 0,80. Fórmula das pernas 1/2/4/3. Comprimento 1/2/3/4: fêmures 0,62/0,62/0,47/0,62; patelas 0,18/0,18/0,17/0,20; tíbias 0,50/0,47/0,35/0,42; metatarsos 0,47/0,44/0,42/0,47; tarsos 0,38/0,40/0,32/0,36. Total 2,15/2,11/1,73/2,07. Posição da tricobótria no metatarso da perna I (TmI) 0,30. Metatarsos com tricobótria dorsal, exceto o IV. Carapaça amarela, tonalidade mais escura do que no macho. Região mediana com várias cerdas e uma fila disposta até os OMP. Clípeo amarelo e glabro. Área ocular enegrecida, exceto entre os OMP, mais larga do que longa. Fila ocular anterior 0,25 e posterior 0,27. OLP apresentando o maior diâmetro (0,07) e OMA, o menor (0,03). Quelíceras amarelo-claras, promargem com quatro dentes e retromargem com três. Lábio castanho-escuro amplamente piloso. Esterno amarelo com bordas castanho-amareladas, truncado posteriormente. Enditos amarelos. Pernas amarelas, com coxas IV bem distantes entre si. Pedipalpo com tarso longo e intumescido. Abdômen oval, dorsalmente amarelo-claro, densamente revestido por pêlos curtos; posteriormente, com mancha negra terminal cobrindo o tubérculo anal. Fiandeiras laterais anteriores e médias negras, laterais posteriores amarelas. Colulo densamente piloso, amarelado. Epígino com ductos de copulação curtos e com trajeto simples, direcionado sobre as espermatecas, aberturas de copulação localizadas no átrio, espermatecas alongadas e ductos de fertilização medianos, pouco esclerotinizados, originando-se na porção posterior das espermatecas (Figs 7-9).

Material examinado. Brasil, Rio Grande do Sul: Canela (Usina Hidrelétrica Canastra), macho, 28.IX.2000, M. A.L. Marques leg. (MCN 33357); Montenegro, fêmea, 13.IX.2004, R.M. Morais leg. (MCN 42195); fêmea, 07.VII.1977, E.H. Buckup leg. (MCN 6162); Triunfo (Parque Copesul de Proteção Ambiental), fêmea, 18.IX.2006, R. Ott & A. Barcellos leg. (MCN 42163); 10 machos, 3 fêmeas, 25.I.1990, 11.IX.1992, 24.IX.1999, M. A. L. Marques leg. (MCN 19395, 22382, 43326); fêmea, 28.VIII.2007, E.N.L. Rodrigues leg. (MCN 43497).

Distribuição. Sul do Brasil (Rio Grande do Sul).

Asemostera latithorax (Keyserling, 1886)

Erigone latithorax Keyserling, 1886: 274-275, fig. 324, holótipo macho, Blumenau, Santa Catarina, Brasil, depositado no BMNH, não examinado; Keyserling, 1891: 244.

Asemostera latithorax; Simon, 1898: 269-270, figs 268-271; Petrunkevitch, 1911: 529; 1928: 92; Mello-Leitão, 1927: 389; Roewer, 1954b: 1715; Roth, 1965: 291-292; Platnick, 2007; Miller, 2007: 168-171, figs 122, 124f, 126e, f, i, 128d.

Agelenopsis latithorax; Roewer, 1954a: 43. Lapsus calami.

Pelidida albida Simon, 1898: 270, síntipos machos, 2 fêmeas, Serra do Caraça, Catas Altas, Minas Gerais, Brasil, depositado no MNHN, não examinado; Petrunkevitch, 1911: 535; 1928: 93; Roewer, 1954a: 69; Bonnet, 1958: 3455; Roth, 1965: 292; Miller, 2007: 169; Platnick, 2007.

Novo registro. BRASIL, Rio Grande do Sul: Canela (Passo dos Bugres, Usina Hidrelétrica Canastra), 2 fêmeas, 27.IX.2000, M.A.L. Marques leg. (MCN 33316); São Francisco de Paula (Barragem dos Bugres), 2 machos, 18.XI.1997, M.A.L. Marques leg. (MCN 28758).

Distribuição. Brasil, região Sudeste (Minas Gerais e Rio de Janeiro) e Sul (Santa Catarina e Rio Grande do Sul).

AGRADECIMENTOS

À curadora da coleção aracnológica do Museu de Ciências Naturais (MCN) Erica H. Buckup, pelo acesso ao material e à bibliografia. À direção do MCN pelo uso das dependências e equipamentos do museu. A Jeremy A. Miller pelo envio de bibliografia. Aos revisores anônimos pelas sugestões apresentadas. Ao CNPq pela concessão da bolsa de doutorado.

Recebido em 29.V.2007; aceito em 12.XI.2007.

• BONNET, P. 1958. Bibliographia Araneorum. Volume 2, part 4, N-S. Toulouse, Les Frères Douladoure, 3027-4230p.
• KEYSERLING, E. 1886. Die Spinnen Amerikas: Theridiidae. Nürnberg, vol. 2, part 2, 295p.
• KEYSERLING, E. 1891. Die Spinnen Amerikas: Brasilianische Spinnen. Nürnberg, vol. 3, 278p.
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1

Trabalho realizado no Laboratório de Aracnologia, Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul. Rua Dr Salvador França 1427, 90690-000 Porto Alegre, Rio Grande do Sul, Brasil.

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  08 Fev 2008
• Data do Fascículo
  Dez 2007

Histórico

• Recebido
  29 Maio 2007
• Aceito
  12 Nov 2007