Os Ácidos Graxos Poli-insaturados Ômega-6 e Ômega-3 Presentes nas Hemácias Exercem uma Influência Distinta sobre o Tamanho das Partículas de LDL e suas Alterações Estruturais

Resumo

Fundamento

Embora os ácidos graxos poli-insaturados ômega-3 e ômega-6 (AGPIs n-3 e n-6) tenham efeitos bem conhecidos sobre os fatores de risco de doenças cardiovasculares (DCV), ainda existe um conhecimento limitado sobre como eles afetam os indicadores de qualidade da LDL.

Objetivo

Avaliar as associações dos AGPIs n-3 e n-6 de hemácias com o tamanho da partícula da LDL, LDL-c pequena e densa (sdLDL-c) e com LDL eletronegativa [LDL(-)] em adultos com fatores de risco para DCV.

Métodos

Estudo transversal com 335 homens e mulheres de 30 a 74 anos com, pelo menos, um fator de risco cardiovascular. Foram realizadas análises de parâmetros bioquímicos, como glicose, insulina, HbA1c, proteína C reativa (PCR), perfil lipídico, subfrações de lipoproteínas, partícula eletronegativa de LDL [LDL(-)] e seu autoanticorpo, e os AGPIs n-3 e n- 6 de hemácias. Os testes t independente/teste de Mann-Whitney, ANOVA unidirecional/teste de Kruskal-Wallis e regressões lineares múltiplas foram aplicados. Todos os testes foram bilaterais e um valor de p inferior a 0,05 foi considerado estatisticamente significativo.

Resultados

A relação n-6/n-3 de hemácias foi associada ao aumento dos níveis de LDL(-) (β = 4,064; IC de 95% = 1,381 – 6,748) e sdLDL-c (β = 1,905; IC de 95% = 0,863 – 2,947), e redução do tamanho das partículas de LDL (β = -1,032; IC de 95% = -1,585 − -0,478). Individualmente, os AGPIs n-6 e n-3 apresentaram associações opostas com esses parâmetros, realçando os efeitos protetores do n-3 e evidenciando os possíveis efeitos adversos do n-6 na qualidade das partículas de LDL.

Conclusão

O AGPI n-6, presente nas hemácias, foi associado ao aumento do risco cardiometabólico e à aterogenicidade das partículas de LDL, enquanto o AGPI n-3 foi associado a melhores parâmetros cardiometabólicos e à qualidade das partículas de LDL.

Ácidos Graxos Insaturados; Receptores de LDL Oxidado; Lipoproteínas LDL

Abstract

Background

While Omega-3 and omega-6 polyunsaturated fatty acids (n-3 and n-6 PUFAs) have established effects on cardiovascular disease (CVD) risk factors, little is known about their impacts on LDL quality markers.

Objective

To assess the associations of n-3 and n-6 PUFA within red blood cells (RBC) with LDL particle size, small dense LDL-c (sdLDL-c), and electronegative LDL [LDL(-)] in adults with CVD risk factors.

Methods

Cross-sectional study involving 335 men and women aged 30 to 74 with at least one cardiovascular risk factor. Analyses were conducted on biochemical parameters, such as glucose, insulin, HbA1c, C-reactive protein (CRP), lipid profile, lipoprotein subfractions, electronegative LDL particle [LDL(-)] and its autoantibody, and RBC n-3 and n-6 PUFAs. Independent t-test/Mann-Whitney test, one-way ANOVA/Kruskal-Wallis test, and multiple linear regressions were applied. All tests were two-sided, and a p-value of less than 0.05 was considered statistically significant.

Results

The RBC n-6/n-3 ratio was associated with increased LDL(-) (β = 4.064; 95% CI = 1.381 – 6.748) and sdLDL-c (β = 1.905; 95% CI = 0.863 – 2.947) levels, and reduced LDL particle size (β = -1.032; 95% CI = -1.585 − -0.478). Separately, n-6 and n-3 PUFAs had opposing associations with those parameters, reinforcing the protective effects of n-3 and showing the potential negative effects of n-6 on LDL particle quality.

Conclusion

RBC n-6 PUFA was associated with increased cardiometabolic risk and atherogenicity of LDL particles, while n-3 PUFA was associated with better cardiometabolic parameters and LDL particle quality.

Fatty Acids, Unsaturated; Oxidized LDL Receptors; Lipoproteins, LDL

Introdução

As terapias redutoras de colesterol representam a primeira linha de prevenção de complicações ateroscleróticas devido à forte relação do LDL-c com DCVs. ¹ Apesar da LDL-c ser um excelente preditor de DCV, esta medida não reflete a qualidade das partículas de LDL. ¹ Biomarcadores que refletem a qualidade das partículas de LDL, como LDL-c pequena e densa (sdLDL-c), LDL eletronegativa [LDL(-)], e o tamanho da partícula de LDL, são subfrações mais suscetíveis à oxidação e à progressão da aterosclerose e apresentam melhor desempenho na predição do risco de DCVs quando comparado à sua LDL-c equivalente tradicional. ¹ , ²

Os ácidos graxos poli-insaturados ômega-3 (AGPI n-3) demonstraram efeitos benéficos sobre os parâmetros de saúde cardiometabólicos, ³ e outras evidências apontam para a influência do AGPI n-3 na composição lipídica das lipoproteínas e níveis de subclasses. ⁴ Os efeitos do AGPI n-3 dependerão, no entanto, do status do AGPI n-6 devido ao alto teor da família n-6 nas dietas ocidentais. ³ O ácido linoleico (LA; C18:2 n-6) é o AGPI n-6 mais comum na dieta, sendo convertido em ácido araquidônico (AA; C20:4 n-6), uma importante variedade precursora de metabólitos pró-inflamatórios envolvidos na fisiopatologia das DCVs. ³ , ⁵ Entretanto, vale ressaltar que nem todos os subprodutos do ácido araquidônico (AA) desencadeiam uma resposta pró-inflamatória, ⁶ e evidências indicam que os AGPIs n-6 circulantes e presentes na dieta estão correlacionados com um menor risco de ocorrência de doença arterial coronariana (DAC), acidente vascular cerebral isquêmico e mortalidade relacionada a DCVs. ⁷ - ¹⁰ Por outro lado, o LA dietético incorporado em todas as lipoproteínas pode aumentar a sua suscetibilidade à oxidação, associada à gravidade da aterosclerose. ¹¹ - ¹⁵

Assim, nosso estudo avaliou a associação dos AGPIs n-3 e n-6 presente nas hemácias com o tamanho da partícula de LDL, LDL-c pequena e densa (sdLDL-c) e LDL eletronegativa [LDL(-)] em adultos com fatores de risco para DCV.

Métodos

Desenho do estudo e participantes

Estudo transversal que utilizou os dados iniciais do estudo CARDIONUTRI (Registro Brasileiro de Ensaios Clínicos - ReBEC: RBR-2vfhfv) que incluiu 335 participantes com os seguintes critérios de elegibilidade: indivíduos de 30 a 74 anos sem histórico de doença cardiovascular. Indivíduos com doenças graves agudas ou crônicas, doenças infecciosas, gestantes e/ou lactantes foram excluídos. Todos os participantes foram selecionados no Hospital Universitário da Universidade de São Paulo (HU-USP), e todos os procedimentos seguiram as normas estabelecidas pelo Comitê de Ética em Pesquisa do HU-USP (CAAE n.º 0063.0.207.198-11).

Avaliação clínica e nutricional

As condições clínicas atuais e prévias foram investigadas por meio de questionários. O exame físico incluiu avaliação do índice de massa corporal (IMC), circunferência da cintura e pressão arterial. A avaliação da dieta foi obtida por meio de três recordatórios de 24 horas e realizada no software Food Processor (ESHA Research, OR, EUA), com posterior ajuste energético.

Medições bioquímicas

O sangue foi coletado após jejum de 12 horas; as hemácias foram separadas do plasma por centrifugação (3.000× g por 5 minutos a 4 ºC) e subsequentemente congeladas a -80 ºC. O nível plasmático de colesterol total, HDL-c, triglicerídeos (Labtest Diagnostica S.A., MG, Brasil), apoA-I, apoB (Wako Chemicals USA Inc., Richmond, VA, EUA), glicose (Labtest Diagnostica S.A., MG, Brasil), insulina (Life Technologies, Grand Island, NY, EUA) e proteína C reativa de alta sensibilidade (PCR-us) (Diagnostic System Laboratories, Inc., Webster, Texas, EUA) foram medidos por kits comerciais. O nível de LDL-c foi calculado pela equação de Friedewald. ¹⁶

Análise de subfrações de lipoproteínas

O tamanho das lipoproteínas (HDL e LDL) foi analisado utilizando o LipoprintSystem ^TM (Quantimetrix, Redondo Beach, CA), que se baseia na separação e quantificação de subfrações de lipoproteínas por gel de poliacrilamida não desnaturante. Sob análise eletroforética, as subfrações foram somadas para determinar a área relativa de cada subunidade de lipoproteína (expressa como porcentagem de cada subfração). Em seguida, essa relação foi multiplicada pelo nível plasmático de colesterol total para determinar a concentração de colesterol em cada subfração de LDL, e pelo colesterol em HDL para quantificar a concentração de colesterol em cada subfração de HDL. Com base nos resultados, sete subfrações de LDL foram identificadas, nas quais as subfrações LDL-1 e LDL-2 foram classificadas como grandes, e LDL-3 a LDL-7 como partículas menores e mais densas (sdLDL-c). Para a HDL, dez subfrações foram identificadas, nas quais as partículas de HDL-1 a HDL-3 foram classificadas como grandes, HDL-4 a HDL-7 como intermediárias e HDL-8 a HDL-10 como pequenas. Um ponto de corte de 25,5 nm foi utilizado para determinação dos fenótipos LDL A e não-A. O tamanho médio do LDL (nm) também foi determinado. Uma relação entre partículas grandes e pequenas de HDL foi calculada a partir da porcentagem de subfrações de lipoproteínas, como segue: (HDL-1 + HDL-2) / (HDL-9 + HDL-10). A relação para partículas grandes e pequenas de LDL foi calculada da seguinte forma: (LDL-1 + LDL-2) / LDL-3 a LDL-7).

Análise eletronegativa de LDL e autoanticorpos

A detecção de LDL eletronegativa [LDL(-)] e de autoanticorpos anti-LDL(-) foi realizada de acordo com método publicado anteriormente. ¹⁷ A LDL(-) eletronegativa foi detectada por meio do método ELISA sanduíche. As placas de microtitulação de poliestireno de fundo plano, com 96 poços (Costar, Corning Inc, NY, EUA), foram revestidas com 0,5 mg/poço de anticorpo monoclonal anti-LDL (-) 1A3H2 em 50 mL/poço de tampão carbonato-bicarbonato 0,05 M, pH 9,6, a 4 ºC, durante a noite. As placas foram lavadas três vezes com PBS, pH 7,4, contendo 0,05% de Tween-20 (200 mL/poço). Posteriormente, os sítios de ligação livres foram bloqueados pela adição de 150 mL/poço de PBS contendo 2% de leite em pó desnatado, previamente inativado por aquecimento (100 ºC), e 0,01% de Tween-20 por 1,5 h a 37 ºC, seguido de lavagem conforme mencionado acima. Padrão ou plasma (1:2000 diluído em PBS contendo 1% de leite desnatado e 0,01% de Tween-20) foi adicionado (50 mL/poço) nas placas e incubado por 1,5 h a 37 ºC. Em seguida, as placas foram lavadas e incubadas com 0,5 mg/poço de anticorpo monoclonal anti-LDL(-) 2C7D5F10 conjugado com biotina por uma hora a 37 ºC. Posteriormente, 50 mL/poço de peroxidase de rábano conjugada com estreptavidina (Invitrogen Corp., Carlsbad, CA, EUA) foram adicionados e incubados por uma hora a 37 ºC. A reatividade da peroxidase foi medida em placas lavadas por incubação com 50 mL de ortofenilenodiamina (OPD) diluída em tampão citrato fosfato, pH 5,3, a 37 ºC por 15 min. A reação foi interrompida pela adição de ácido sulfúrico 2 M, e a absorbância a 492 nm foi medida por espectrofotometria, usando um leitor de microplacas (Spectra Count Microplate Photometer, Packard Instruments Company, Downers Grove, IL, EUA). Uma curva de calibração (de 0,6 a 20 mg/mL) foi construída com LDL(-) humano obtido por FPLC usando uma coluna iônica. Os resultados foram expressos em U/L, com unidades representando 1 g/L de equivalente de apolipoproteína B oxidada.

Análise de ácidos graxos de hemácias

A análise de ácidos graxos (AG) das membranas eritrocitárias foi realizada com base em método previamente descrito. ¹⁸ Após a separação do plasma (3.000× g , 10 min, 4 °C), 300 µL de eritrócitos foram lavados com 5 mL de solução salina tamponada com fosfato (PBS) (pH 7,4) quatro vezes. O precipitado foi transferido para tubos rosqueados, aos quais foram adicionados 1,75 mL de metanol, 50 µL de solução padrão interno contendo 1 mg de ácido tridecanóico (C13:0)/1 mL de hexano e 100 µL de cloreto de acetila. Em seguida, a solução foi agitada em vórtex e aquecida em banho-maria a 90 °C por 1 hora. Na sequência, adicionou-se 1,5 mL de hexano e a solução foi homogeneizada por 1 min. As amostras foram centrifugadas a 1500× g , 4 °C, por 2 min, e 800 µL do sobrenadante foram transferidos para um tubo diferente. Esta etapa foi repetida com a adição de 750 µL de hexano. Os tubos contendo os sobrenadantes coletados foram transferidos para um concentrador centrífugo a 40 °C, por 20 min. Em seguida, os ésteres metílicos de AG foram dissolvidos em 150 µL de hexano e transferidos para um inserto de vidro em um frasco, que posteriormente foi enviado para análise por cromatografia gasosa (Shimadzu CG-2010 equipado com coluna capilar DB-FFAP, Agilent Technologies).

Os resultados foram expressos como percentual do total de AG. As análises foram realizadas considerando os ácidos graxos individualmente, bem como o n-3 total, formado pela soma do ácido α-linolênico (ALA; C18:3 n-3), ácido eicosapentaenoico (EPA; C20:5 n-3) e ácido docosahexaenoico (DHA; C22:6 n-3), e n-6 total, formado pela soma de ácido linoleico (LA; C18:2 n-6), ácido γ-linolênico (GLA; C18:3 n-6 ), ácido eicosadienoico (EDA; C20:2 n-6), ácido di-homo-γ-linolênico (DGLA; C20:3 n-6), ácido araquidônico (AA; C20:4 n-6) e ácido di-homo-linolênico (DLA; C22:2 n-6).

Análise estatística

O presente estudo utilizou amostragem de conveniência baseada em dados secundários de um ensaio clínico randomizado anterior (ReBEC: RBR-2vfhfv).

As variáveis contínuas foram expressas por meio de média ± desvio padrão (DP) ou mediana e intervalo interquartil (IIQ), conforme distribuição dos dados, e as variáveis categóricas foram expressas por meio de frequência absoluta (n) ou relativa (%). O teste de Kolmogorov-Smirnov foi realizado em variáveis contínuas para avaliar a distribuição. Os dados relativos das características da amostra foram obtidos por meio de teste t independente ou teste U de Mann-Whitney para variáveis contínuas de acordo com a normalidade dos dados e teste qui-quadrado para parâmetros categóricos. Os pacientes foram divididos em tercis de AG de hemácias (n-3 total, n-6 total e razão n-6/n-3) e, em seguida, foram aplicados testes ANOVA unidirecional ou Kruskal-Wallis com base na distribuição da variável, usando Bonferroni como teste posthoc.

Regressões lineares múltiplas foram realizadas para associar AGs com LDL(-), tamanho de LDL e sdLDL-c, sendo esta última a variável dependente. Todos os modelos foram ajustados por idade, sexo, tabagismo e uso de estatinas. Todas as suposições da regressão foram cumpridas (ou seja, sem multicolinearidade, homocedasticidade, erros normalmente distribuídos e independentes, independência das variáveis de resultado e linearidade das variáveis).

Todos os testes foram bilaterais, com p < 0,05 considerado significativo, e realizados no software SPSS versão 20.0.

Resultados

As características dos participantes estão descritas na Tabela 1 e na Tabela Complementar 1. As mulheres mostraram maior frequência de tratamento com estatinas e apresentaram níveis plasmáticos de colesterol total, HDL-c, LDL-c, apoA-I, HDL-c grande, intermediário e pequeno, LDL(-) e hs-CRP em comparação com os homens. Em contraste, os homens apresentaram triglicerídeos plasmáticos, sdLDL-c e glicose mais elevados. Em comparação com os homens, as mulheres apresentaram maior ingestão de lipídios (valores absolutos, mas não ingestão relativa), DGLA e EPA e menos energia (Tabela Complementar 2). O perfil de AG de hemácias analisado está descrito na Tabela Complementar 3.

Tabela 1
– Características da amostra

Variáveis	Total (n = 335)
	Média/mediana ou n	DP/IIQ ou %
Idade (anos)	52,4	10,5
Atividade física (pontos)	7,2	1,4
Pressão arterial sistólica (mmHg)	133	18,3
Pressão arterial diastólica (mmHg)	81,1	10
IMC (kg/m 2 )	30,9	5,7
Circunferência da cintura (cm)	100,6	13,6
Etnia
Branca	226	67,5
Outras	109	12,5
Tabagismo
Tabagista	64	19,1
Não tabagista	271	80,9
Consumo de álcool
Sim	66	19,7
Não	269	80,3
Escolaridade
Ensino médio completo ou incompleto	191	57
Ensino superior completo	144	43
Doenças não transmissíveis
Diabetes melito	66	19,7
Hipertensão	189	56,4
Hipotireoidismo	43	12,8
Dislipidemia	186	55,5
Medicamentos
Estatinas	95	28,4
Anti-hipertensivos	169	50,4
Anti-hiperglicêmicos	69	20,6
Fibratos	9	2,7
Características bioquímicas
Colesterol total (mg/dL)	204,4	42
HDL-c (mg/dL)	36	30,0-43,0
LDL-c (mg/dL)	137,2	38,7
Triglicerídeos (mg/dL)	130	97,0-190,0
Não-HDL-c (mg/dL)	167,8	41,3
ApoA-I (mg/dL)	132,8	26
ApoB (mg/dL)	103,9	24,8
HDL-c grande (mg/dL)	10	7,0-14,0
HDL-c intermediário (mg/dL)	18	15,0-21,0
HDL-c pequeno (mg/dL)	7,6	3
sdLDL-c (mg/dL)	3	1,0-9,0
lbLDL-c (mg/dL)	52,9	16,4
Tamanho da LDL (Å)	270	266,0-272,0
LDL(-) (U/L)	5,3	1,8-17,9
Anti-LDL(-) (μg/mL)	8,1	5,00-11,5
Glicose (mg/dL)	98	91,0-108,0
Insulina (μUI/mL)	16,1	12,7-22,1
HbA1c (%)	5	4,7-5,3
Adiponectina (μg/mL)	8,3	4,7-13,0
Leptina (ng/mL)	34,6	11,0-65,4
hs-CRP (mg/L)	2,7	2,7-5,8

• Os dados são apresentados em médias (desvio padrão) ou medianas (intervalo interquartil) dependendo da distribuição para dados contínuos e valor absoluto (n) e frequência (%) para dados categóricos. ApoA-I: apolipoproteína A-I; ApoB: apolipoproteína B; IMC: índice de massa corporal; hs-CRP: proteína C reativa de alta sensibilidade; lbLDL-c: colesterol LDL grande e flutuante; LDL(-): LDL eletronegativa.

Indivíduos do terceiro tercil do n-3 total apresentaram níveis plasmáticos significativamente mais baixos de lipoproteínas plasmáticas associadas a apoB, colesterol, triglicerídeos e apoB. Além disso, melhores aspectos qualitativos de LDL foram observados neste grupo, como menor sdLDL-c (p = 0,001) e maior tamanho de partícula de LDL (p = 0,003) (Tabela Complementar 4).

As associações encontradas com AGPI n-6 total de hemácias foram comparadas de forma oposta com AGPI n-3 (Tabela Complementar 5). Verificou-se que os indivíduos do terceiro tercil apresentavam níveis plasmáticos mais elevados de colesterol total, LDL-c, não-HDL-c, apoB e apoA-I. Quanto à qualidade das partículas de LDL, o terceiro tercil apresentou maiores níveis plasmáticos de sdLDL-c (p = 0,004), lbLDL-c (p = 0,037) e LDL(-) (p = 0,002). Além disso, o tamanho médio das partículas de LDL foi menor neste tercil (p = 0,026). Associações semelhantes foram observadas com o terceiro tercil da relação n-6/n-3 de hemácias (Tabela Complementar 6).

As associações dos AGPIs n-3 e n-6 com a qualidade das partículas de LDL são mostradas na Tabela 2 . O EPA foi inversamente associado ao LDL(-). O ALA foi significativamente associado à menor sdLDL-c e maior tamanho de partícula de LDL, influenciando a associação do n-3 total com esses parâmetros. Em relação aos AGPIs n-6, o n-6 total teve associações positivas com LDL(-) e sdLDL-c, embora uma associação inversa com o tamanho das partículas de LDL tenha sido observada. Entre as associações com LDL(-), DGLA e AA apresentaram associações positivas significativas, enquanto DLA apresentou associação inversa. Entre as associações de sdLDL-c, LA, GLA, DGLA e AA apresentaram associações positivas. Além disso, o tamanho das partículas de LDL foi inversamente associado apenas com LA e DGLA entre os AGPIs n-6. Por fim, a relação de AGPIs n-6/n-3 de hemácias foi positivamente associada ao LDL(-) e ao sdLDL-c e inversamente associada ao tamanho das partículas de LDL.

Tabela 2
– Associações entre ácidos graxos da membrana de hemácias e LDL eletronegativa, LDL pequena e densa e tamanho de partícula de LDL

Variáveis	LDL(-)
	R 2	β	EP	Valor de p	IC de 95%
C18:2 n-6 (LA)	0,034	0,551	0,779	0,480	-0,981 ₋ 2,083
C18:3 n-6 (GLA)	0,055	-6,071	3,643	0,097	-13,238 ₋ 1,096
C20:2 n-6 (EDA)	0,050	-7,125	7,121	0,318	-21,134 ₋ 6,885
C20:3 n-6 (DGLA)	0,065	10,724	4,253	0,012	2,356 ₋ 19,091
C20:4 n-6 (AA)	0,117	2,999	0,588	< 0,001	1,842 ₋ 4,157
C22:2 n-6 (DLA)	0,068	-12,869	4,760	0,007	-22,233 ₋ -3,506
Total n-6	0,075	1,163	0,367	0,002	0,440 ₋ 1,886
C18:3 n-3 (ALA)	0,054	-1,734	1,126	0,124	-3,949 ₋ 0,480
C20:5 n-3 (EPA)	0,061	-21,517	9,711	0,027	-40,621 ₋ -2,413
C22:6 n-3 (DHA)	0,048	-0,523	1,146	0,649	-2,777 ₋ 1,732
Total n-3	0,055	-1,443	0,850	0,090	-3,115 ₋ 0,229
Relação n-6/n-3	0,072	4,064	1,364	0,003	1,381 ₋ 6,748
	sdLDL-c
	R 2	β	EP	Valor de p	IC de 95%
C18:2 n-6 (LA)	0,053	0,948	0,301	0,002	0,357 ₋ 1,540
C18:3 n-6 (GLA)	0,039	3,105	1,422	0,030	0,307 ₋ 5,903
C20:2 n-6 (EDA)	0,025	-0,263	2,792	0,925	-5,756 ₋ 5,230
C20:3 n-6 (DGLA)	0,049	4,824	1,654	0,004	1,569 ₋ 8,078
C20:4 n-6 (AA)	0,037	0,491	0,237	0,039	0,025 ₋ 0,958
C22:2 n-6 (DLA)	0,030	-2,405	1,835	0,191	-6,015 ₋ 1,205
Total n-6	0,053	0,453	0,144	0,002	0,170 ₋ 0,736
C18:3 n-3 (ALA)	0,052	-1,340	0,437	0,002	-2,199 ₋ -0,481
C20:5 n-3 (EPA)	0,031	-5,492	3,827	0,152	-13,020 ₋ 2,036
C22:6 n-3 (DHA)	0,026	-0,283	0,447	0,527	-1,163 ₋ 0,597
Total n-3	0,049	-0,958	0,329	0,004	-1,606 ₋ -0,311
Relação n-6/n-3	0,062	1,905	0,530	< 0,001	0,863 ₋ 2,947
	Tamanho da partícula de LDL
	R 2	β	EP	Valor de p	IC de 95%
C18:2 n-6 (LA)	0,079	-0,504	0,160	0,002	-0,818 ₋ -0,190
C18:3 n-6 (GLA)	0,060	-1,313	0,758	0,084	-2,805 ₋ 0,179
C20:2 n-6 (EDA)	0,051	0,069	1,485	0,963	-2,851 ₋ 2,990
C20:3 n-6 (DGLA)	0,065	-1,955	0,884	0,028	-3,695 ₋ -0,215
C20:4 n-6 (AA)	0,061	-0,232	0,126	0,067	-0,480 ₋ 0,017
C22:2 n-6 (DLA)	0,055	1,007	0,977	0,303	-0,914 ₋ 2,928
Total n-6	0,075	-0,224	0,077	0,004	-0,374 ₋ -0,073
C18:3 n-3 (ALA)	0,077	0,699	0,232	0,003	0,242 ₋ 1,156
C20:5 n-3 (EPA)	0,060	3,465	2,032	0,089	-0,533 ₋ 7,462
C22:6 n-3 (DHA)	0,053	0,157	0,238	0,511	-0,311 ₋ 0,624
Total n-3	0,075	0,510	0,175	0,004	0,165 ₋ 0,854
Relação n-6/n-3	0,089	-1,032	0,281	< 0,001	-1,585 ₋ -0,478

• Modelos de regressão linear múltipla ajustados por idade, sexo, tabagismo e uso de estatinas. AA: ácido araquidônico; ALA: ácido α-linolênico; DGLA: ácido dihomo-γ-linolênico; DHA: ácido docosahexaenoico; DLA: ácido di-homo-linolênico; EDA: ácido eicosadienoico; EPA: ácido eicosapentaenoico; GLA: ácido γ-linolênico.

Discussão

O presente estudo mostrou que os AGPIs n-6 e n-3 de hemácias exerceram influências opostas nos marcadores de saúde cardiometabólicos e nas características das partículas de LDL.

Nossos resultados mostraram que indivíduos com níveis de AGPI n-6 de hemácias e relação n-6/n-3 mais elevados, e níveis de AGPI n-3 mais baixos, apresentaram níveis plasmáticos mais elevados de colesterol (total, LDL-c e não-HDL-c), apoB, apoA-I e triglicerídeos. Estes resultados são consistentes com estudos que mostram que uma elevada relação n-6/n-3 foi associada ao aumento da lipogênese e dos lípidos no sangue. ¹⁹ - ²⁴

Estudos clínicos de biomarcadores de AGPI n-6 e DCV na literatura mostram resultados inconclusivos. Em um estudo anterior, um padrão de AG de hemácias, contendo mais AGPI n-6, foi um preditor independente de classificação de risco cardiovascular mais elevada associada a fatores de risco estabelecidos. ¹⁸ Por outro lado, AGPIs n-6 teciduais ou sanguíneos não foram associados ao risco cardiovascular. ²⁵ , ²⁶ Além disso, estudos mostraram que altos níveis de AGPI n-6, especialmente LA, eram fatores de proteção contra a síndrome coronariana aguda. ²⁷ - ²⁹ Os autores de um desses estudos afirmaram que o consumo de AGPI n-6 deve ser incentivado, apesar do baixo consumo encontrado em um estudo. ²⁹ Além disso, vale ressaltar que o risco de desfechos cardiovasculares mostrou uma associação em forma de U com AA, ²⁸ e o LA não foi significativamente associado ao risco de infarto do miocárdio em um desses estudos, ²⁹ dificultando a conclusão dos autores sobre o real efeito do AGPI n-6 nas DCVs.

As evidências sugerem que os AGPIs n-6 reduzem o nível plasmático do colesterol, particularmente quando o AGS é substituído, sendo favorável para a redução do risco de DCV, ³⁰ - ³² mas os efeitos sobre os resultados permanecem inconclusivos. ³¹ Uma metanálise de ensaios clínicos randomizados (ECR) mostrou efeitos protetores do LA nas DCVs usando óleos vegetais, que também são fonte de ALA. ³³ Curiosamente, um ECR relatou um risco aumentado de DCV e mortalidade por todas as causas após a suplementação de AGPI n-6. ³³ Além disso, os resultados do Lyon Diet Heart Study indicaram que a redução do consumo de AGPI n-6 para menos de 5% da ingestão total de energia, abaixo das recomendações dos EUA de 5-10%, resultou em uma diminuição na mortalidade total e cardiovascular, sugerindo a existência de um possível risco associado ao consumo de AGPI n-6. ³⁴ , ³⁵

Em relação aos AGPIs n-3, as evidências clínicas recentes de DCV são mais consistentes. Estudos observacionais com AGPI n-3 de hemácias ¹⁸ , ³⁶ - ⁴⁰ e ensaios clínicos randomizados ⁴¹ - ⁴³ mostraram que o AGPI n-3 reduz o risco de DCV. Nossos resultados corroboram o efeito cardioprotetor dos AGPIs n-3, mas mostram forte influência do ALA devido à baixa ingestão de EPA e DHA (Tabela Complementar 1). Os resultados do nosso estudo estão alinhados com uma revisão sistemática e metanálise dose-resposta, que mostrou que uma maior ingestão de ALA foi significativamente associada a 10%, 8% e 11% de mortalidade por todas as causas, DCV e DAC, respectivamente. ⁴⁴

Os fatores de risco cardiovasculares tradicionais não refletem toda a complexidade da doença aterosclerótica, tanto que os fatores de risco cardiovasculares emergentes ganharam destaque na literatura, ¹⁸ , ⁴⁵ - ⁴⁸ e os efeitos dos AGPIs nas DCV estão além desses fatores. ¹⁸ Entre os diversos fatores de risco não tradicionais, o sdLDL-c demonstrou ser um melhor preditor de risco de DAC do que o LDL-c. ¹ O presente estudo descobriu que os AGPIs n-6 das hemácias e a relação n-6/n-3 estavam positivamente associados ao tamanho médio menor das partículas de LDL e a níveis mais elevados de sdLDL-c. Associações semelhantes foram observadas com LA, GLA, DGLA e AA individualmente. Em contraste com nossos achados, um estudo transversal mostrou que os AGPIs n-6 circulantes estavam modestamente associados ao tamanho do LDL. ⁴⁹

Por outro lado, os AGPIs n-3 foram associados a maiores tamanhos de partículas de LDL e a níveis mais baixos de sdLDL-c. Tais associações corroboram os resultados de ensaios anteriores, nos quais os AGPIs n-3 diminuíram o sdLDL-c e aumentaram o tamanho das partículas de LDL. ⁵⁰ - ⁵³ Essas associações podem estar ligadas ao TG. TGs mais elevados aumentam a apoC-III, dificultando a depuração de lipoproteínas que contêm apoE, e resultando em aumento dos níveis circulantes de sdLDL. ¹ Além disso, os AGPIs n-3 reduzem os níveis de apoC-III em VLDL, diminuindo os níveis de sdLDL. ⁵⁴

Observamos também que a relação n-6/n-3 de hemácias, AGPI n-6 total, DGLA e AA foram positivamente associados ao LDL (-), enquanto o EPA e o DLA apresentaram uma associação inversa. O LDL(-), intimamente relacionado ao oxLDL e ao sdLDL, possui propriedades aterogênicas, e níveis aumentados dessa partícula são encontrados em condições de estresse oxidativo e doenças não transmissíveis. ¹ , ² Níveis elevados de n-6/n-3 nos tecidos estão associados ao aumento da peroxidação lipídica, ¹⁹ - ²¹ e os AGPIs n-6 nas partículas de LDL, principalmente LA e AA, são mais facilmente oxidados, resultando no aumento da formação de partículas de LDL modificadas. ¹² Outro estudo mostrou que a redução do AGPI n-6 na dieta reduz seus metabólitos gerados pela peroxidação. ⁵⁵ Curiosamente, descobrimos que o EPA era um fator de proteção. Isto pode ser devido ao mecanismo antiinflamatório e antioxidante do EPA e seus metabólitos, que diminuem a modificação das partículas de LDL. ⁵⁶

Entre as limitações, não podemos inferir causalidade devido à natureza transversal do estudo. Além disso, os AGPIs de hemácias do nosso estudo diferem dos resultados anteriores. ⁴⁸ , ⁵⁵ , ⁵⁷ Isto pode ser devido à falta de padronização da análise de AG circulante. Os AG das hemácias são expressos em percentagens do AG total, o que significa que os níveis de AG dependem dos AG analisados pelo método. Outro fator que pode explicar esta divergência é que o estresse oxidativo diminui a quantidade de AGPI incorporados aos tecidos. ⁵⁸ Por fim, nosso estudo não possui uma amostra representativa e, portanto, a AG de hemácias e sua associação com fatores de risco cardiovascular podem diferir de outras populações.

Nossos resultados aumentam o conhecimento disponível sobre ácidos graxos e risco cardiovascular, especialmente em relação aos AGPIs n-6. A literatura propõe que uma maior ingestão de AGPI n-6 pode beneficiar os indivíduos em relação ao risco cardiovascular. ⁷ - ¹⁰ Contudo, os estudos apresentam resultados altamente variáveis devido à avaliação de diversos biomarcadores (como plasma, hemácias, tecido adiposo e dieta) e à ampla variação na alimentação das pessoas entre as diferentes regiões estudadas, incluindo países ocidentais e asiáticos. Com a associação de AGPI n-6 de hemácias e a relação n-6/n-3 com LDL(-) demonstrada, nosso estudo corrobora com experimentos de oxidação de LDL que mostraram que os AG oxidados são da família do AGPI n-6, ¹¹ - ¹⁴ sugerindo que o consumo excessivo de AGPI n-6 pode causar efeitos adversos. Isso chama a atenção para o fato de que os benefícios identificados do AL e de outros AGPIs n-6 na literatura provavelmente dependem do estado nutricional de AGPIs n-3, uma vez que mostramos associações metabólicas favoráveis com este último.

Por fim, a presente pesquisa evidencia que estudos futuros sobre o estado nutricional dos AGPIs devem considerar ambas as famílias de ácidos graxos, uma vez que a análise por si só pode ignorar fatores de confusão. Mais estudos são necessários para avaliar a associação de AGPIs de hemácias com fatores de risco e desfechos cardiovasculares, bem como fatores de risco emergentes, como subfrações de LDL.

Conclusão

Nosso estudo mostrou que os AGPIs n-6 de hemácias estavam associados com fatores de risco cardiometabólico desfavoráveis, bem como níveis mais elevados de sdLDL-c e LDL(-), sugerindo que um alto consumo de n-6 na dieta pode aumentar a susceptibilidade da LDL a modificações oxidativas. Por outro lado, os AGPIs ômega-3 das hemácias, especialmente ALA e EPA, demonstraram associações benéficas para a saúde cardiovascular, manifestando níveis mais baixos de sdLDL-c e LDL(-) e maior tamanho da partícula de LDL.

Consequentemente, a ingestão do AGPI n-6 (LA ou AA) deve ser reduzida, ao passo que a ingestão de AGPIs n-3 deve ser estimulada, uma vez que uma relação mais elevada de n-6 para n-3 nas hemácias e uma maior concentração de AGPI n-6 foram associados a uma menor qualidade das partículas de LDL e a fatores de risco cardiometabólicos desfavoráveis.

Referências

• ¹
  Ivanova EA, Myasoedova VA, Melnichenko AA, Grechko AV, Orekhov AN. Small Dense Low-Density Lipoprotein as Biomarker for Atherosclerotic Diseases. Oxid Med Cell Longev. 2017;2017:1273042. doi: 10.1155/2017/1273042.
  » https://doi.org/10.1155/2017/1273042
• ²
  Mello AP, Silva IT, Abdalla DS, Damasceno NR. Electronegative Low-Density Lipoprotein: Origin and Impact on Health and Disease. Atherosclerosis. 2011;215(2):257-65. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2010.12.028.
  » https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2010.12.028
• ³
  Elagizi A, Lavie CJ, Marshall K, DiNicolantonio JJ, O‘Keefe JH, Milani RV. Omega-3 Polyunsaturated Fatty Acids and Cardiovascular Health: a Comprehensive Review. Prog Cardiovasc Dis. 2018;61(1):76-85. doi: 10.1016/j.pcad.2018.03.006.
  » https://doi.org/10.1016/j.pcad.2018.03.006
• ⁴
  Yang ZH, Amar M, Sampson M, Courville AB, Sorokin AV, Gordon SM, et al. Comparison of Omega-3 Eicosapentaenoic Acid Versus Docosahexaenoic Acid-Rich Fish Oil Supplementation on Plasma Lipids and Lipoproteins in Normolipidemic Adults. Nutrients. 2020;12(3):749. doi: 10.3390/nu12030749.
  » https://doi.org/10.3390/nu12030749
• ⁵
  Schmitz G, Ecker J. The Opposing Effects of n-3 and n-6 Fatty Acids. Prog Lipid Res. 2008;47(2):147-55. doi: 10.1016/j.plipres.2007.12.004.
  » https://doi.org/10.1016/j.plipres.2007.12.004
• ⁶
  Gleim S, Stitham J, Tang WH, Martin KA, Hwa J. An Eicosanoid-Centric View of Atherothrombotic Risk Factors. Cell Mol Life Sci. 2012;69(20):3361-80. doi: 10.1007/s00018-012-0982-9.
  » https://doi.org/10.1007/s00018-012-0982-9
• ⁷
  Di Angelantonio E, Chowdhury R, Forouhi NG, Danesh J. Association of Dietary, Circulating, and Supplement Fatty Acids with Coronary Risk. In Response. Ann Intern Med. 2014;161(6):458-9. doi: 10.7326/L14-5018-11.
  » https://doi.org/10.7326/L14-5018-11
• ⁸
  Marklund M, Wu JHY, Imamura F, Del Gobbo LC, Fretts A, Goede J, et al. Biomarkers of Dietary Omega-6 Fatty Acids and Incident Cardiovascular Disease and Mortality. Circulation. 2019;139(21):2422-36. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.118.038908.
  » https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.118.038908
• ⁹
  Delgado GE, März W, Lorkowski S, von Schacky C, Kleber ME. Omega-6 Fatty Acids: Opposing Associations with Risk-The Ludwigshafen Risk and Cardiovascular Health Study. J Clin Lipidol. 2017;11(4):1082-90.e14. doi: 10.1016/j.jacl.2017.05.003.
  » https://doi.org/10.1016/j.jacl.2017.05.003
• ¹⁰
  Farvid MS, Ding M, Pan A, Sun Q, Chiuve SE, Steffen LM, et al. Dietary Linoleic Acid and Risk of Coronary Heart Disease: a Systematic Review and Meta-Analysis of Prospective Cohort Studies. Circulation. 2014;130(18):1568-78. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.114.010236.
  » https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.114.010236
• ¹¹
  Parthasarathy S, Litvinov D, Selvarajan K, Garelnabi M. Lipid Peroxidation and Decomposition--Conflicting Roles in Plaque Vulnerability and Stability. Biochim Biophys Acta. 2008;1781(5):221-31. doi: 10.1016/j.bbalip.2008.03.002.
  » https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2008.03.002
• ¹²
  Reaven P, Parthasarathy S, Grasse BJ, Miller E, Steinberg D, Witztum JL. Effects of Oleate-Rich and Linoleate-Rich Diets on the Susceptibility of Low Density Lipoprotein to Oxidative Modification in Mildly Hypercholesterolemic Subjects. J Clin Invest. 1993;91(2):668-76. doi: 10.1172/JCI116247.
  » https://doi.org/10.1172/JCI116247
• ¹³
  Harland WA, Gilbert JD, Steel G, Brooks CJ. Lipids of Human Atheroma. 5. the Occurrence of a New Group of Polar Sterol Esters in Various Stages of Human Atherosclerosis. Atherosclerosis. 1971;13(2):239-46. doi: 10.1016/0021-9150(71)90026-8.
  » https://doi.org/10.1016/0021-9150(71)90026-8
• ¹⁴
  Brooks CJ, Steel G, Gilbert JD, Harland WA. Lipids of Human Atheroma. 4. Characterisation of a New Group of Polar Sterol Esters From Human Atherosclerotic Plaques. Atherosclerosis. 1971;13(2):223-37. doi: 10.1016/0021-9150(71)90025-6.
  » https://doi.org/10.1016/0021-9150(71)90025-6
• ¹⁵
  Wang L, Gill R, Pedersen TL, Higgins LJ, Newman JW, Rutledge JC. Triglyceride-Rich Lipoprotein Lipolysis Releases Neutral and Oxidized FFAs that Induce Endothelial Cell Inflammation. J Lipid Res. 2009;50(2):204-13. doi: 10.1194/jlr.M700505-JLR200.
  » https://doi.org/10.1194/jlr.M700505-JLR200
• ¹⁶
  Friedewald WT, Levy RI, Fredrickson DS. Estimation of the Concentration of Low-Density Lipoprotein Cholesterol in Plasma, without use of the Preparative Ultracentrifuge. Clin Chem. 1972;18(6):499-502.
• ¹⁷
  Faulin TES, Sena KC, Telles AER, Grosso DM, Faulin EJB, Abdalla DSP. Validation of a Novel ELISA for Measurement of Electronegative Low-Density Lipoprotein. Clin Chem Lab Med. 2008;46(12):1769-75. doi: 10.1515/CCLM.2008.333.
  » https://doi.org/10.1515/CCLM.2008.333
• ¹⁸
  Gonçalinho GHF, Sampaio GR, Soares-Freitas RAM, Damasceno NRT. Omega-3 Fatty Acids in Erythrocyte Membranes as Predictors of Lower Cardiovascular Risk in Adults without Previous Cardiovascular Events. Nutrients. 2021;13(6):1919. doi: 10.3390/nu13061919.
  » https://doi.org/10.3390/nu13061919
• ¹⁹
  Araya J, Rodrigo R, Videla LA, Thielemann L, Orellana M, Pettinelli P, et al. Increase in Long-Chain Polyunsaturated Fatty Acid n - 6/n - 3 Ratio in Relation to Hepatic Steatosis in Patients with Non-Alcoholic Fatty Liver Disease. Clin Sci (Lond). 2004;106(6):635-43. doi: 10.1042/CS20030326.
  » https://doi.org/10.1042/CS20030326
• ²⁰
  Ghazali R, Mehta KJ, Bligh SA, Tewfik I, Clemens D, Patel VB. High Omega Arachidonic Acid/Docosahexaenoic Acid Ratio Induces Mitochondrial Dysfunction and Altered Lipid Metabolism in Human Hepatoma Cells. World J Hepatol. 2020;12(3):84-98. doi: 10.4254/wjh.v12.i3.84.
  » https://doi.org/10.4254/wjh.v12.i3.84
• ²¹
  Jeyapal S, Kona SR, Mullapudi SV, Putcha UK, Gurumurthy P, Ibrahim A. Substitution of Linoleic Acid with α-Linolenic Acid or Long Chain n-3 Polyunsaturated Fatty Acid Prevents Western Diet Induced Nonalcoholic Steatohepatitis. Sci Rep. 2018;8(1):10953. doi: 10.1038/s41598-018-29222-y.
  » https://doi.org/10.1038/s41598-018-29222-y
• ²²
  Wang S, Wu D, Matthan NR, Lamon-Fava S, Lecker JL, Lichtenstein AH. Reduction in Dietary Omega-6 Polyunsaturated Fatty Acids: Eicosapentaenoic Ecid Plus Docosahexaenoic Acid Ratio Minimizes Atherosclerotic Lesion Formation and Inflammatory Response in the LDL Receptor Null Mouse. Atherosclerosis. 2009;204(1):147-55. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2008.08.024.
  » https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2008.08.024
• ²³
  Wang S, Matthan NR, Wu D, Reed DB, Bapat P, Yin X, et al. Lipid Content in Hepatic and Gonadal Adipose Tissue Parallel Aortic Cholesterol Accumulation in Mice Fed Diets with Different Omega-6 PUFA to EPA Plus DHA Ratios. Clin Nutr. 2014;33(2):260-6. doi: 10.1016/j.clnu.2013.04.009.
  » https://doi.org/10.1016/j.clnu.2013.04.009
• ²⁴
  Yang LG, Song ZX, Yin H, Wang YY, Shu GF, Lu HX, et al. Low n-6/n-3 PUFA Ratio Improves Lipid Metabolism, Inflammation, Oxidative Stress and Endothelial Function in Rats Using Plant Oils as n-3 Fatty Acid Source. Lipids. 2016;51(1):49-59. doi: 10.1007/s11745-015-4091-z.
  » https://doi.org/10.1007/s11745-015-4091-z
• ²⁵
  Harris WS, Assaad B, Poston WC. Tissue Omega-6/Omega-3 Fatty Acid Ratio and Risk for Coronary Artery Disease. Am J Cardiol. 2006;98(4A):19i-26i. doi: 10.1016/j.amjcard.2005.12.023.
  » https://doi.org/10.1016/j.amjcard.2005.12.023
• ²⁶
  Harris WS, Tintle NL, Ramachandran VS. Erythrocyte n-6 Fatty Acids and Risk for Cardiovascular Outcomes and Total Mortality in the Framingham Heart Study. Nutrients. 2018;10(12):2012. doi: 10.3390/nu10122012.
  » https://doi.org/10.3390/nu10122012
• ²⁷
  Shearer GC, Pottala JV, Spertus JA, Harris WS. Red Blood Cell Fatty Acid Patterns and Acute Coronary Syndrome. PLoS One. 2009;4(5):e5444. doi: 10.1371/journal.pone.0005444.
  » https://doi.org/10.1371/journal.pone.0005444
• ²⁸
  Block RC, Harris WS, Reid KJ, Spertus JA. Omega-6 and Trans Fatty Acids in Blood Cell Membranes: a Risk Factor for Acute Coronary Syndromes?. Am Heart J. 2008;156(6):1117-23. doi: 10.1016/j.ahj.2008.07.014.
  » https://doi.org/10.1016/j.ahj.2008.07.014
• ²⁹
  Marangoni F, Novo G, Perna G, Filardi PP, Pirelli S, Ceroti M, et al. Omega-6 and Omega-3 Polyunsaturated Fatty Acid Levels are Reduced in Whole Blood of Italian Patients with a Recent Myocardial Infarction: the AGE-IM Study. Atherosclerosis. 2014;232(2):334-8. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2013.11.048.
  » https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2013.11.048
• ³⁰
  Froyen E, Burns-Whitmore B. The Effects of Linoleic Acid Consumption on Lipid Risk Markers for Cardiovascular Disease in Healthy Individuals: a Review of Human Intervention Trials. Nutrients. 2020;12(8):2329. doi: 10.3390/nu12082329.
  » https://doi.org/10.3390/nu12082329
• ³¹
  Hooper L, Al-Khudairy L, Abdelhamid AS, Rees K, Brainard JS, Brown TJ, et al. Omega-6 Fats for the Primary and Secondary Prevention of Cardiovascular Disease. Cochrane Database Syst Rev. 2018;7(7):CD011094. doi: 10.1002/14651858.CD011094.pub3.
  » https://doi.org/10.1002/14651858.CD011094.pub3
• ³²
  Wang DD. Dietary n-6 Polyunsaturated Fatty Acids and Cardiovascular Disease: Epidemiologic Evidence. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2018;135:5-9. doi: 10.1016/j.plefa.2018.05.003.
  » https://doi.org/10.1016/j.plefa.2018.05.003
• ³³
  Ramsden CE, Hibbeln JR, Majchrzak SF, Davis JM. n-6 Fatty Acid-Specific and Mixed Polyunsaturate Dietary Interventions have Different Effects on CHD Risk: a Meta-Analysis of Randomised Controlled Trials. Br J Nutr. 2010;104(11):1586-600. doi: 10.1017/S0007114510004010.
  » https://doi.org/10.1017/S0007114510004010
• ³⁴
  Renaud S, Lorgeril M, Delaye J, Guidollet J, Jacquard F, Mamelle N, et al. Cretan Mediterranean Diet for Prevention of Coronary Heart Disease. Am J Clin Nutr. 1995;61(6 Suppl):1360S-7S. doi: 10.1093/ajcn/61.6.1360S.
  » https://doi.org/10.1093/ajcn/61.6.1360S
• ³⁵
  Lorgeril M, Renaud S, Mamelle N, Salen P, Martin JL, Monjaud I, et al. Mediterranean Alpha-Linolenic Acid-Rich Diet in Secondary Prevention of Coronary Heart Disease. Lancet. 1994;343(8911):1454-9. doi: 10.1016/s0140-6736(94)92580-1.
  » https://doi.org/10.1016/s0140-6736(94)92580-1
• ³⁶
  Harris WS, Tintle NL, Etherton MR, Vasan RS. Erythrocyte Long-Chain Omega-3 Fatty Acid Levels are Inversely Associated with Mortality and with Incident Cardiovascular Disease: The Framingham Heart Study. J Clin Lipidol. 2018;12(3):718-27.e6. doi: 10.1016/j.jacl.2018.02.010.
  » https://doi.org/10.1016/j.jacl.2018.02.010
• ³⁷
  Kleber ME, Delgado GE, Lorkowski S, März W, von Schacky C. Omega-3 Fatty Acids and Mortality in Patients Referred for Coronary Angiography. The Ludwigshafen Risk and Cardiovascular Health Study. Atherosclerosis. 2016;252:175-181. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2016.06.049.
  » https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2016.06.049
• ³⁸
  Harris WS, Luo J, Pottala JV, Espeland MA, Margolis KL, Manson JE, et al. Red Blood Cell Polyunsaturated Fatty Acids and Mortality in the Women‘s Health Initiative Memory Study. J Clin Lipidol. 2017;11(1):250-9.e5. doi: 10.1016/j.jacl.2016.12.013.
  » https://doi.org/10.1016/j.jacl.2016.12.013
• ³⁹
  Harris WS, Kennedy KF, O‘Keefe JH Jr, Spertus JA. Red Blood Cell Fatty Acid Levels Improve GRACE Score Prediction of 2-yr Mortality in Patients with Myocardial Infarction. Int J Cardiol. 2013;168(1):53-9. doi: 10.1016/j.ijcard.2012.09.076.
  » https://doi.org/10.1016/j.ijcard.2012.09.076
• ⁴⁰
  Bargalló N, Gilabert R, Romero-Mamani ES, Cofán M, Calder PC, Fitó M, et al. Red Blood Cell Eicosapentaenoic Acid Inversely Relates to MRI-Assessed Carotid Plaque Lipid Core Burden in Elders at High Cardiovascular Risk. Nutrients. 2017;9(9):1036. doi: 10.3390/nu9091036.
  » https://doi.org/10.3390/nu9091036
• ⁴¹
  Bowman L, Mafham M, Wallendszus K, Stevens W, Buck G, Barton J, et al. Effects of n-3 Fatty Acid Supplements in Diabetes Mellitus. N Engl J Med. 2018;379(16):1540-50. doi: 10.1056/NEJMoa1804989.
  » https://doi.org/10.1056/NEJMoa1804989
• ⁴²
  Manson JE, Cook NR, Lee IM, Christen W, Bassuk SS, Mora S, et al. Marine n-3 Fatty Acids and Prevention of Cardiovascular Disease and Cancer. N Engl J Med. 2019;380(1):23-32. doi: 10.1056/NEJMoa1811403.
  » https://doi.org/10.1056/NEJMoa1811403
• ⁴³
  Bhatt DL, Steg PG, Miller M, Brinton EA, Jacobson TA, Ketchum SB, et al. Cardiovascular Risk Reduction with Icosapent Ethyl for Hypertriglyceridemia. N Engl J Med. 2019;380(1):11-22. doi: 10.1056/NEJMoa1812792.
  » https://doi.org/10.1056/NEJMoa1812792
• ⁴⁴
  Naghshi S, Aune D, Beyene J, Mobarak S, Asadi M, Sadeghi O. Dietary Intake and Biomarkers of Alpha Linolenic Acid and Risk of all Cause, Cardiovascular, and Cancer Mortality: Systematic Review and Dose-Response Meta-Analysis of Cohort Studies. BMJ. 2021;375:n2213. doi: 10.1136/bmj.n2213.
  » https://doi.org/10.1136/bmj.n2213
• ⁴⁵
  Gonçalinho GHF, Roggerio A, Goes MFDS, Avakian SD, Leal DP, Strunz CMC, et al. Comparison of Resveratrol Supplementation and Energy Restriction Effects on Sympathetic Nervous System Activity and Vascular Reactivity: a Randomized Clinical Trial. Molecules. 2021;26(11):3168. doi: 10.3390/molecules26113168.
  » https://doi.org/10.3390/molecules26113168
• ⁴⁶
  Gonçalinho GHF, Nascimento JRO, Mioto BM, Amato RV, Moretti MA, Strunz CMC, et al. Effects of Coffee on Sirtuin-1, Homocysteine, and Cholesterol of Healthy Adults: does the Coffee Powder Matter? J Clin Med. 2022;11(11):2985. doi: 10.3390/jcm11112985.
  » https://doi.org/10.3390/jcm11112985
• ⁴⁷
  Leal DP, Gonçalinho GHF, Tavoni TM, Kuwabara KL, Paccanaro AP, Freitas FR, et al. The Interplay of Sirtuin-1, LDL-Cholesterol, and HDL Function: A Randomized Controlled Trial Comparing the Effects of Energy Restriction and Atorvastatin on Women with Premature Coronary Artery Disease. Antioxidants (Basel). 2022;11(12):2363. doi: 10.3390/antiox11122363.
  » https://doi.org/10.3390/antiox11122363
• ⁴⁸
  Kemp JA, Esgalhado M, Macedo RA, Regis B, Damasceno NRT, Torres EAFS, et al. A Possible Link Between Polyunsaturated Fatty Acids and Uremic Toxins from the Gut Microbiota in Hemodialysis Patients: a Hypothesis. Hemodial Int. 2019;23(2):189-97. doi: 10.1111/hdi.12725.
  » https://doi.org/10.1111/hdi.12725
• ⁴⁹
  Mäntyselkä P, Niskanen L, Kautiainen H, Saltevo J, Würtz P, Soininen P, et al. Cross-Sectional and Longitudinal Associations of Circulating Omega-3 and Omega-6 Fatty Acids with Lipoprotein Particle Concentrations and Sizes: Population-Based Cohort Study with 6-year Follow-Up. Lipids Health Dis. 2014;13:28. doi: 10.1186/1476-511X-13-28.
  » https://doi.org/10.1186/1476-511X-13-28
• ⁵⁰
  Hartwich J, Malec MM, Partyka L, Pérez-Martinez P, Marin C, López-Miranda J, et al. The Effect of the Plasma n-3/n-6 Polyunsaturated Fatty Acid Ratio on the Dietary LDL Phenotype Transformation - Insights from the LIPGENE Study. Clin Nutr. 2009;28(5):510-5. doi: 10.1016/j.clnu.2009.04.016.
  » https://doi.org/10.1016/j.clnu.2009.04.016
• ⁵¹
  Griffin MD, Sanders TA, Davies IG, Morgan LM, Millward DJ, Lewis F, et al. Effects of Altering the Ratio of Dietary n-6 to n-3 Fatty Acids on Insulin Sensitivity, Lipoprotein Size, and Postprandial Lipemia in Men and Postmenopausal Women Aged 45-70 y: the OPTILIP Study. Am J Clin Nutr. 2006;84(6):1290-8. doi: 10.1093/ajcn/84.6.1290.
  » https://doi.org/10.1093/ajcn/84.6.1290
• ⁵²
  Khan S, Minihane AM, Talmud PJ, Wright JW, Murphy MC, Williams CM, et al. Dietary Long-Chain n-3 PUFAs Increase LPL Gene Expression in Adipose Tissue of Subjects with an Atherogenic Lipoprotein Phenotype. J Lipid Res. 2002;43(6):979-85.
• ⁵³
  Wilkinson P, Leach C, Ah-Sing EE, Hussain N, Miller GJ, Millward DJ, et al. Influence of Alpha-Linolenic Acid and Fish-Oil on Markers of Cardiovascular Risk in Subjects with an Atherogenic Lipoprotein Phenotype. Atherosclerosis. 2005;181(1):115-24. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2004.12.029.
  » https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2004.12.029
• ⁵⁴
  Oscarsson J, Hurt-Camejo E. Omega-3 Fatty Acids Eicosapentaenoic Acid and Docosahexaenoic Acid and Their Mechanisms of Action on Apolipoprotein B-containing Lipoproteins in Humans: a Review. Lipids Health Dis. 2017;16(1):149. doi: 10.1186/s12944-017-0541-3.
  » https://doi.org/10.1186/s12944-017-0541-3
• ⁵⁵
  Ramsden CE, Ringel A, Feldstein AE, Taha AY, MacIntosh BA, Hibbeln JR, et al. Lowering Dietary Linoleic Acid Reduces Bioactive Oxidized Linoleic Acid Metabolites in Humans. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2012;87(4-5):135-41. doi: 10.1016/j.plefa.2012.08.004.
  » https://doi.org/10.1016/j.plefa.2012.08.004
• ⁵⁶
  Garrido-Sánchez L, García-Fuentes E, Rojo-Martínez G, Cardona F, Soriguer F, Tinahones FJ. Inverse Relation Between Levels of Anti-Oxidized-LDL Antibodies and Eicosapentanoic Acid (EPA). Br J Nutr. 2008;100(3):585-9. doi: 10.1017/S0007114508921723.
  » https://doi.org/10.1017/S0007114508921723
• ⁵⁷
  Hodson L, Skeaff CM, Fielding BA. Fatty Acid Composition of Adipose Tissue and Blood in Humans and its use as a Biomarker of Dietary Intake. Prog Lipid Res. 2008;47(5):348-80. doi: 10.1016/j.plipres.2008.03.003.
  » https://doi.org/10.1016/j.plipres.2008.03.003
• ⁵⁸
  Schuster S, Johnson CD, Hennebelle M, Holtmann T, Taha AY, Kirpich IA, et al. Oxidized Linoleic Acid Metabolites Induce Liver Mitochondrial Dysfunction, Apoptosis, and NLRP3 Activation in Mice. J Lipid Res. 2018;59(9):1597-609. doi: 10.1194/jlr.M083741.
  » https://doi.org/10.1194/jlr.M083741

• Vinculação acadêmica
  Este artigo é parte de dissertação de mestrado de Gustavo Henrique Ferreira Gonçalinho pela Departamento de Nutrição – Faculdade de Saúde Pública – Universidade de São Paulo.
  Aprovação ética e consentimento informado
  Este estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética do Hospital Universitário da Universidade de São Paulo sob o número de protocolo 0063.0.207.198-11. Todos os procedimentos envolvidos nesse estudo estão de acordo com a Declaração de Helsinki de 1975, atualizada em 2013. O consentimento informado foi obtido de todos os participantes incluídos no estudo.
• Fontes de financiamento: O presente estudo foi financiado pela FAPESP nº2016/24531-3, FAPESP nº 2011/12523-2 e CAPES nº88882.330835/2019-01.

Material suplementar

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Editado por

Editor responsável pela revisão: Gláucia Maria Moraes de Oliveira

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  20 Nov 2023
• Data do Fascículo
  Nov 2023

Histórico

• Recebido
  07 Fev 2023
• Revisado
  05 Jul 2023
• Aceito
  16 Ago 2023