Histopathological changes in the kidneys of vertebrate hosts infected naturally and experimentally with<underline> </underline>
					<i>Paratanaisia bragai</i> (Trematoda, Digenea)

Paratanaisia bragai is a trematode parasite that reaches sexual maturity in the kidney collecting ducts of domesticated and wild fowl and whose intermediate hosts are the snails Subulina octona and Leptinaria unilamellata. There are some discrepancies in descriptions of the pathology of this parasite in bird kidneys. Therefore, the purpose of this study was to analyze the kidneys of rock pigeons (Columba livia) naturally infected and of chickens (Gallus gallus) experimentally infected with Paratanaisia bragai, by means of macroscopic observation and by light and scanning electron microscopy. Both bird species showed significantly dilated collecting ducts. In addition, lymphocyte infiltration was observed in the kidneys of C. livia and metaplasia in the epithelial lining of the kidney collecting ducts of G. gallus.

Paratanaisia bragai ; Columba livia ; kidney; histopathology

Authorship

Vanessa Barreto Xavier

Pós-Graduação em Ciências Veterinárias, Departamento de Parasitologia Animal, Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, Seropédica, RJ, BrasilUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroBrasilSeropédica, RJ, BrasilPós-Graduação em Ciências Veterinárias, Departamento de Parasitologia Animal, Instituto de Veterinária, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, Seropédica, RJ, Brasil

Aleksandra Oliveira-Menezes

Universidade Federal do Rio de Janeiro – UFRJ, Polo Barreto, Campus Macaé, RJ, BrasilUniversidade Federal do Rio de JaneiroBrasilRJ, BrasilUniversidade Federal do Rio de Janeiro – UFRJ, Polo Barreto, Campus Macaé, RJ, Brasil

Marcos Antônio José dos Santos

Departamento de Biologia Animal, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, Seropédica, RJ, BrasilUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroBrasilSeropédica, RJ, BrasilDepartamento de Biologia Animal, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, Seropédica, RJ, Brasil

Suzana Bencke Amato

Departamento de Zoologia, Instituto de Biociências, Universidade Federal do Rio Grande do Sul – UFRGS, Porto Alegre, RS, BrasilUniversidade Federal do Rio Grande do SulBrasilPorto Alegre, RS, BrasilDepartamento de Zoologia, Instituto de Biociências, Universidade Federal do Rio Grande do Sul – UFRGS, Porto Alegre, RS, Brasil

Eduardo José Lopes Torres

Departamento de Imunologia, Microbiologia e Parasitologia, Faculdade de Ciências Médicas, Universidade do Estado do Rio de Janeiro – UERJ, Rio de Janeiro, RJ, BrasilUniversidade do Estado do Rio de JaneiroBrasilRio de Janeiro, RJ, BrasilDepartamento de Imunologia, Microbiologia e Parasitologia, Faculdade de Ciências Médicas, Universidade do Estado do Rio de Janeiro – UERJ, Rio de Janeiro, RJ, Brasil

Jairo Pinheiro ^**Corresponding author: Jairo Pinheiro. Departamento de Ciências Fisiológicas, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, BR465, km 7, CEP 23.890-000, Seropédica, RJ, Brasil. e-mail: jairopinheirodasilva@gmail.com

Departamento de Ciências Fisiológicas, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, Seropédica, RJ, BrasilUniversidade Federal Rural do Rio de JaneiroBrasilSeropédica, RJ, BrasilDepartamento de Ciências Fisiológicas, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, Seropédica, RJ, Brasil

Solange Viana Paschoal Blanco Brandolini

*Corresponding author: Jairo Pinheiro. Departamento de Ciências Fisiológicas, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, BR465, km 7, CEP 23.890-000, Seropédica, RJ, Brasil. e-mail: jairopinheirodasilva@gmail.com

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Figure 1
Kidney of Columba livia. 1a. Medullar region of a kidney naturally infected with Paratanaisia bragai, showing collecting tubules dilated by the presence of the parasite (P) and an inflammatory process (I) surrounding the tubule. Hematoxylin- eosin. Scale bar = 50 µm. 1b. Medullar region of an uninfected kidney, showing the collecting tubules (CT) with simple cuboidal epithelium. Gomori trichrome. Scale bar = 20 µm. 1c. Flattening (arrow) of the tubular epithelium (metaplasia) of a kidney from an experimentally infected G. gallus, which changed from simple cuboidal to simple squamous. Hematoxylin- eosin. Scale bar = 20 µm. 1d. Inflammatory process (I) with mononuclear cells (multifocal interstitial nephritis) in a kidney from C. livia. Gomori trichrome. Scale bar = 20 µm. 1e. Kidney collecting tubules from experimentally infected G. gallus, with formation of a digitiform structure (papilliform formation) projecting in the tubular lumen. Hematoxylin-eosin. Scale bar = 50 µm. 1f. Detail of the papilliform formation. Hematoxylin-eosin. Scale bar = 20 µm.

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Figure 2
Pseudostratified epithelium of the collecting tube wall of a kidney infected with P. bragai. 2a. Histological section of a kidney from G. gallus naturally infected with P. bragai, showing the pseudostratified epithelium with nuclei of different heights (oval detail). 2b and 2c. SEM micrographs of histological sections, showing pseudostratified epithelium with nuclei (arrows) in different positions of the collecting tubule wall after experimental infection of P. bragai (P) with eggs (E) in C. livia. Scale bars = 40 µm and 30 µm, respectively.

Figure 1 Kidney of Columba livia. 1a. Medullar region of a kidney naturally infected with Paratanaisia bragai, showing collecting tubules dilated by the presence of the parasite (P) and an inflammatory process (I) surrounding the tubule. Hematoxylin- eosin. Scale bar = 50 µm. 1b. Medullar region of an uninfected kidney, showing the collecting tubules (CT) with simple cuboidal epithelium. Gomori trichrome. Scale bar = 20 µm. 1c. Flattening (arrow) of the tubular epithelium (metaplasia) of a kidney from an experimentally infected G. gallus, which changed from simple cuboidal to simple squamous. Hematoxylin- eosin. Scale bar = 20 µm. 1d. Inflammatory process (I) with mononuclear cells (multifocal interstitial nephritis) in a kidney from C. livia. Gomori trichrome. Scale bar = 20 µm. 1e. Kidney collecting tubules from experimentally infected G. gallus, with formation of a digitiform structure (papilliform formation) projecting in the tubular lumen. Hematoxylin-eosin. Scale bar = 50 µm. 1f. Detail of the papilliform formation. Hematoxylin-eosin. Scale bar = 20 µm.

Figure 2 Pseudostratified epithelium of the collecting tube wall of a kidney infected with P. bragai. 2a. Histological section of a kidney from G. gallus naturally infected with P. bragai, showing the pseudostratified epithelium with nuclei of different heights (oval detail). 2b and 2c. SEM micrographs of histological sections, showing pseudostratified epithelium with nuclei (arrows) in different positions of the collecting tubule wall after experimental infection of P. bragai (P) with eggs (E) in C. livia. Scale bars = 40 µm and 30 µm, respectively.

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Colégio Brasileiro de Parasitologia Veterinária FCAV/UNESP - Departamento de Patologia Veterinária, Via de acesso Prof. Paulo Donato Castellane s/n, Zona Rural, , 14884-900 Jaboticabal - SP, Brasil, Fone: (16) 3209-7100 RAMAL 7934 - Jaboticabal - SP - Brazil
E-mail: cbpv_rbpv.fcav@unesp.br

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[1] *Corresponding author: Jairo Pinheiro. Departamento de Ciências Fisiológicas, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro – UFRRJ, BR465, km 7, CEP 23.890-000, Seropédica, RJ, Brasil. e-mail: jairopinheirodasilva@gmail.com