Capacidade fotossintética de genótipos de amendoim em ambiente natural e controlado

Photosynthetic capacity of peanut genotypes under natural and controlled environment

FISIOLOGIA VEGETAL

Capacidade fotossintética de genótipos de amendoim em ambiente natural e controlado

Photosynthetic capacity of peanut genotypes under natural and controlled environment

Norma de Magalhães Erismann; Eduardo Caruso Machado; Ignácio José de Godoy

Instituto Agronômico, Caixa Postal 28, CEP 13001-970 Campinas, SP. E-mail: [e-mail], [e-mail], [e-mail]

RESUMO

A capacidade fotossintética das cultivares de amendoim rasteiro (Arachis hypogaea L.) IAC-Caiapó e Runner IAC-886 foi avaliada sob condição controlada, em plantas cultivadas em vasos, mantidos em casa de vegetação, e sob condição natural, em plantas irrigadas, cultivadas em tanques de alvenaria. A resposta da taxa de assimilação líquida de CO₂ (A) em decorrência da densidade de fluxo de fótons fotossinteticamente ativos (DFFF) foi melhor em condição controlada, mas, nas duas condições, a mesma A máxima de ca. 28 µmol m^-2 s^-1 foi atingida. Em condição controlada, a saturação lumínica ocorreu próximo a 1.000 µmol m^-2 s^-1 , ao passo que sob condição natural, ocorreu em DFFF maiores. A temperatura foliar entre 23 e 36°C não afetou A. A diferença de pressão de vapor entre a folha e o ar causou o fechamento parcial dos estômatos, diminuindo A, quando acima de 3,0 kPa. As capacidades fotossintéticas das duas cultivares de amendoim foram iguais. Ambas cultivares apresentaram boa adaptação às variações diárias do ambiente, ocorridas durante o verão, apresentando fotoinibição dinâmica da fotossíntese no início da tarde (13–14h), manifestada pela queda reversível da eficiência quântica máxima (F_v/F_m) do fotossistema II.

Termos para indexação:Arachis hypogaea, fotossíntese, trocas gasosas, fluorescência da clorofila.

ABSTRACT

Photosynthetic capacity of runner peanuts (Arachis hypogaea L.) cv. IAC-Caiapó and cv. Runner IAC-886 was evaluated under controlled condition, in plants grown on pots maintained in a greenhouse, and in irrigated plants grown on soil-filled tanks made of concrete, and exposed to natural ambient condition. CO₂ net assimilation rate (A) response in relation to photosynthetic photon flux density (DFFF) was better in controlled condition, but in both conditions the same maximum A of ca. 28 µmol m^-2 s^-1 was reached. Under controlled condition, light saturation was about 1,000 µmol m^-2 s^-1 , although under natural condition, saturation occurred at higher DFFF. Leaf temperature between 23 and 36°C did not affect A, and leaf to air vapor pressure difference caused partial stomatal closing, decreasing A, when above 3.0 kPa. Photosynthetic capacities of the two cultivars were similar. Both cultivars showed good adaptation to daily changes of environmental conditions that occur during summer, showing dynamic photoinhibition of photosynthesis in the beginning of the afternoon (13–14h), as revealed by a reversible decrease in the maximum quantum efficiency (Fv/Fm) of photosystem II.

Index terms:Arachis hypogaea, photosynthesis, gas exchange, chlorophyll fluorescence.

Introdução

As cultivares de amendoim (Arachis hypogaea L.) do tipo Virginia (IAC-Caiapó e Runner IAC-886), padrão runner, além do alto potencial produtivo, possuem arquitetura de planta mais adequada para a colheita totalmente mecanizada. A cultivar Runner IAC-886 descende da cultivar multilinha Florunner, de origem americana, e é suscetível às doenças foliares, ao passo que a IAC-Caiapó apresenta resistência parcial e múltipla às mesmas doenças (Godoy et al., 1999).

Quando as doenças foliares são controladas, a produtividade da cultivar Runner IAC-886 supera à da IAC-Caiapó em 9 a 11%. A duração do ciclo (130 dias) é geralmente menor e mais definida do que na cultivar IAC Caiapó (130–140 dias) (Godoy et al., 2003).

As condições ambientais para a produção de amendoim, em São Paulo, são tipicamente tropicais, recomendando-se seu cultivo na época de verão (Godoy et al., 2003). Nessa época, no meio do dia, a intensa radiação solar associada ou não à alta temperatura e ao deficit de pressão de vapor poderiam provocar fotoinibição dinâmica ou, eventualmente, crônica da fotossíntese, como descrito para outras espécies (Öquist et al., 1992; Long et al., 1994).

As mudanças na razão fonte-dreno também podem causar alterações de longo prazo nas taxas de fotossíntese das fontes. Em plantas de amendoim, Bagnall et al. (1988) sugeriram que em temperaturas subótimas (15–20ºC), o acúmulo de carboidratos nas folhas é o responsável pela diminuição da taxa de assimilação de CO₂ (A), podendo ser a causa principal da redução da taxa de crescimento das plantas.

No melhoramento de plantas, visando ao desenvolvimento de novas variedades de amendoim rasteiro, é interessante caracterizar e comparar as cultivares, atualmente disponíveis no mercado, quanto à capacidade fotossintética.

Este trabalho teve por objetivo avaliar as capacidades fotossintéticas das cultivares de amendoim rasteiro IAC-Caiapó e Runner IAC-886, em condições ambientais controladas e sob condições naturais de variações, típicas de dias claros de verão.

Material e Métodos

Ensaios experimentais com as cultivares de amendoim rasteiro IAC-Caiapó e Runner IAC-886 foram realizados no Centro Experimental de Campinas, do Instituto Agronômico (IAC), na estação quente e chuvosa, no ano agrícola de 2003/2004. As medidas, realizadas em condições naturais, foram feitas em plantas irrigadas, cultivadas em tanques de alvenaria, expostos às condições naturais. As sementes de cada cultivar foram plantadas em cinco tanques, medindo 2,0 m de comprimento por 0,5 m de largura e 0,6 m de profundidade, contendo terra e areia na proporção volumétrica de 2:1. Foi realizada a calagem com 180 g m^-2 de calcário dolomítico e a adubação para reposição foi realizada por incorporação artificial (10 cm) na linha de plantio, com 15 g m^-2 da fórmula NPK 8–28–16. As cultivares foram semeadas em 21/11/2003, numa linha central, em tanques alternados. Depois da emergência e do desbaste foram mantidas 20 plantas por tanque.

As determinações em condições ambientais controladas foram realizadas no laboratório em plantas cultivadas em vasos de 20 L. As plantas foram irrigadas diariamente e mantidas em casa de vegetação até o dia de realização das medidas de trocas gasosas, quando foram transferidas para o laboratório. Ao substrato dos vasos, composto de partes iguais em volume de terra, areia e esterco, foram adicionados 30 g de calcário por vaso. Na semeadura em 17/12/2003, 5 g de superfosfato simples por vaso foram adicionados. Foram mantidos cinco vasos de cada cultivar, cada um com duas plantas.

Todas as variáveis de trocas gasosas, até mesmo a taxa de assimilação líquida de CO₂ (A) e de transpiração (E), a condutância estomática (g_s), a concentração interna de CO₂ (Ci), a diferença de pressão de vapor entre a folha e o ar (DPV_folha-ar), foram medidas com o equipamento portátil IRGA (Infra Red Gas Analyser), modelo LI-6400, que mede a concentração de CO₂ e de vapor de água, por radiação infravermelha. O equipamento ainda mede, e permite controlar, o microclima e a densidade de fluxo de fótons fotossinteticamente ativos (DFFF) dentro da câmara de medida, que abrange uma área foliar de 6 cm² (2x3 cm).

As medidas sob condições naturais foram efetuadas em folhas jovens, com idade entre 4 e 12 dias, totalmente expandidas, num folíolo da 2ª, 3ª ou 4ª folha, contadas a partir da extremidade do ramo. Uma determinação foi obtida mediante cinco repetições, em plantas diferentes do mesmo tanque, em folíolos diretamente expostos à radiação solar. A variação diária das trocas gasosas foi registrada em duas datas, 19/12/2003 e 14/1/2004, a primeira durante o período vegetativo, 28 dias após o plantio (dap), e a segunda, em plena floração (54 dap), em intervalos de aproximadamente uma hora, entre 5h45 e 17h.

A fim de homogeneizar as repetições, a DFFF foi gerada por um diodo emissor de luz acoplado à câmara de fotossíntese. No estádio vegetativo, as medidas foram feitas nas folhas totalmente expandidas da haste principal, que se desenvolve primeiro e é exclusivamente vegetativa. No estádio reprodutivo, foram selecionadas folhas dos ramos primários. A variação diária da fluorescência da clorofila a, do fotossistema II (FSII), foi medida em folíolos diretamente expostos à radiação solar, nas mesmas plantas (54 dap) e no mesmo dia (14/1/2004) da segunda data de realização das médias de trocas gasosas. A fluorescência da clorofila a foi determinada, com um fluorômetro modulado (PAM-2000), de acordo com o método descrito por Maxwell & Johnson (2000), utilizando a nomenclatura recomendada por Baker & Rosenqvist (2004). A partir de medidas da fluorescência máxima (F_m) e mínima (F_o), em folíolos adaptados ao escuro, primeiro por uma noite e depois por 30 minutos, foi determinada a eficiência quântica máxima do FSII (F_v/F_m, onde F_v = F_m - F_o). Na presença de radiação solar, foi novamente medida a fluorescência máxima (F_m'), a mínima (F_o', após a excitação do FSI pela luz no vermelho distante) e a fluorescência no estado de equilíbrio dinâmico (F'), permitindo determinar a eficiência operacional (F_q'/F_m', onde F_q' = F_m' - F') e a eficiência máxima do FSII (F_v'/F_m', onde F_v' = F_m' - F_o'). O fluxo alternativo de elétrons (FAE) foi estimado, sem considerar a respiração mitocondrial, pela razão: FAE = (F_q'/F_m')/(A/0,84DFFF), em que 0,84 é o coeficiente de absorção da luz pela folha (Edwards & Baker, 1993).

Os estudos do efeito da luz, de concentração interna de CO₂ (Ci) e da temperatura, nas trocas gasosas, foram realizados em folhas jovens de plantas cultivadas em vasos, no estádio reprodutivo (71 a 82 dap), correspondente ao final da floração e plena formação de vagens. As curvas de resposta de A à luz (CO₂ controlado em 38 Pa) e de A em função de Ci (DFFF de 1.250 µmol m^-2 s^-1) foram realizadas em câmara de crescimento (KTLK 1600), depois da aclimatização, pelo período mínimo de uma hora, em condições controladas de temperatura, DFFF e DPV (30ºC, 300 µmol m^-2 s^-1 e 1,0 kPa, respectivamente), mediante quatro repetições, em plantas diferentes. A DPV_folha-ar permaneceu próxima a 1,0 kPa, controlando-se a pressão de vapor da água no ar de entrada, com o auxílio de um medidor de ponto de orvalho (LI-610), acoplado ao IRGA LI-6400. A variação de Ci foi obtida pelo controle do CO₂, entre 5 e 140 Pa, do ar de entrada (referência) da câmara de medida, do IRGA LI-6400. A partir dos dados de A, foi estimada uma medida relativa da limitação estomática da fotossíntese (l, %), pela relação: l = 100(ACi - ACe)/ACi, em que: ACe é a assimilação líquida real, quando a concentração do CO₂ no ambiente externo (referência) é 40 Pa, e Aci é a assimilação líquida ideal (resistência à difusão do CO₂ = 0), assumindo que a concentração interna do CO₂ (Ci) seja de 40 Pa (Long & Bernacchi, 2003).

Os dados da curva de resposta de A em função da DFFF, de 2.000 até 0 µmol m^-2 s^-1, foram ajustados pela equação A = A_máx [1-e^-k(DFFF-Ic)], que permite estimar a assimilação líquida máxima (A_máx), em que: k é uma constante e I_c é o ponto de compensação lumínica (Prado & Moraes, 1997).

No ensaio da resposta de A em função da temperatura foliar foi realizada uma série de medidas num mesmo folíolo, sob DFFF saturante de 1.250 µmol m^-2 s^-1 e DPV_folha-ar de ca. 1,5 kPa, submetido a temperaturas crescentes, controladas pela temperatura do bloco metálico, de 20 a 40ºC, da câmara de medida, do IRGA LI-6400.

Resultados e Discussão

A Figura 1 mostra a variação diária da temperatura foliar, da DPV_folha-ar e da DFFF, registrada durante a execução das medidas de trocas gasosas (Figura 2) em condições naturais, nas cultivares de amendoim, no estádio vegetativo e em plena floração. Os valores de DPV_folha-ar permaneceram baixos (0,8 a 2,2 kPa) durante todo o segundo dia de medidas em 14/1/2004, mas na primeira data, 19/12/2003, os valores de DPV_folha-ar aumentaram a partir das 10h, acompanhando o aumento da temperatura foliar, atingindo picos de DPV_folha-ar acima de 3,5 kPa, no início da tarde, para a cultivar de amendoim Runner IAC-886 e, no final da tarde, para IAC-Caiapó. Nas duas datas de realização das medidas, a menor temperatura foliar (21 e 23°C, respectivamente) foi registrada no início do dia. No meio do dia e durante toda a tarde, as temperaturas foliares foram superiores a 30°C, atingindo valores máximos de 36–37°C, às 14h da primeira data, e de 35°C, às 12h30 da segunda data.

Os cursos diários de A, g_s, E (Figura 2), Ci e da eficiência do uso da água (A/E) (Figura 3), das duas cultivares de amendoim, foram muito semelhantes entre si, sobretudo na segunda data. Nos dois dias de medidas, A aumentou rapidamente, nas primeiras horas da manhã (até 8h), acompanhando o aumento da DFFF até 1.000 µmol m^-2 s^-1 (Figura 1), permanecendo estável ou subindo um pouco mais até 12h30 (DFFF máxima de 2.000 µmol m^-2 s^-1). No início da tarde, ao redor das 14h, foi notada uma baixa na curva de A, apesar dos valores saturantes de DFFF deste horário, com tendência à recuperação às 15h. A diminuição de A depois das 16h acompanha a baixa luminosidade da tarde. O valor máximo de A, medido no estádio vegetativo, foi de 21 µmol m^-2 s^-1 , às 12h45, ao passo que, em plena floração, foi de 28 a 29 µmol m^-2 s^-1 , às 11h20. Estes valores de A máxima estão dentro do intervalo de 13 a 41 mmol m^-2 s^-1 , relatado por Ketring et al. (1982), que reuniu dados de vários trabalhos de A em folhas de amendoim.

As respostas diárias de g_s e E acompanharam as variações de A. Os valores de E aumentaram com o aumento da temperatura foliar até o meio do dia; os valores máximos de A/E (Figura 3 C e D) foram observados no início da manhã. No período das 9h às 12h30, as plantas em plena floração apresentaram valores de A, g_s e E maiores que as plantas no estádio vegetativo. É provável que esta diferença de resposta, observada em estádios fisiológicos distintos, se deva à maior exigência por fotoassimilados, que ocorre durante o florescimento. Existem evidências de que os valores de A de folhas individuais são controlados pela necessidade do dreno em cultivares comerciais de amendoim, indicando que o acúmulo de carboidratos na folha inibe a fotossíntese (Bagnall et al., 1988).

Uma diferença de resposta, entre as duas cultivares, foi notada na primeira data de medidas, em horários da tarde. Entre 13 e 14h foram obtidos valores de A, g_s e E maiores para a cultivar IAC-Caiapó e, no final da tarde, esta tendência se inverteu, com a cultivar Runner IAC-886 apresentando uma resposta melhor. Uma das causas dessa diferença parece estar associada a variações de DPV_folha-ar, pois o fechamento estomático (g_s de 0,5–0,4 para 0,2–0,1 mol m^-2 s^-1 ) ocorreu, em cada cultivar, nos horários correspondentes aos valores de DPV_folha-ar acima de 3,0 kPa (Figura 1).

Nas plantas em plena floração, a baixa observada nas curvas de trocas gasosas, depois do meio-dia, parece não estar relacionada com a DPV_folha-ar, que permaneceu baixa (0,8 a 2,2 kPa) durante todo o dia. O fechamento estomático (g_s de 0,9–0,8 para 0,6–05 mol m^-2 s^-1 ) nesse horário, provavelmente, foi suficiente para limitar E, mas não A. Em ensaios realizados em condições controladas, os valores de g_s não passaram de 0,6 mol m^-2 s^-1 . Além disso, como conseqüência da limitação estomática de A, Ci deve diminuir (Long & Bernacchi, 2003). Esse fato foi observado no primeiro dia de medidas (Figura 3 A), quando DPV_folha-ar foi acima de 3,0 kPa, mas não na outra data (Figura 3 B), que mostra que Ci permaneceu estável das 7 às 16h.

Os dados de A dos dois dias de medidas, obtidos em condições próximas à saturação lumínica (DFFF > 900 µmol m^-2 s^-1), foram reunidos e apresentados em decorrência da DPV_folha-ar e da temperatura foliar (Figura 4). Os dados apresentaram um agrupamento de acordo com o dia de realização das medidas, e os pontos referentes aos menores valores correspondem às medidas obtidas durante o estádio vegetativo. Observou-se diminuição de A apenas quando a DPV_folha-ar foi superior a 3,0 (Figura 4 A).

Apesar da dispersão dos dados obtidos em condições naturais, nenhuma tendência de aumento ou diminuição de A foi verificada com a variação da temperatura foliar, de 23 a 36°C (Figura 4 B). Além disso, os valores de A, de 24–25 µmol m^-2 s^-1, obtidos em condições controladas de DFFF e DPV_folha-ar (Figura 4 B), permaneceram estáveis com o aumento da temperatura foliar. Pontos referentes à DPV_folha-ar maior que 3,0 kPa foram discriminados, pois, a diminuição de A, neste caso, se deve provavelmente ao efeito da DPV_folha-ar e não à elevação da temperatura foliar.

Vu (2005) também não observou diferenças entre os valores de A de plantas de amendoim aclimatizadas a temperaturas de 1,5 e 6,0°C acima da temperatura ambiente (ca. 35°C), relatando valores de A de 32,4 e 34,2 µmol m^-2 s^-1 , respectivamente, sob condições controladas de CO₂ em 360 µmol mol^-1. Bagnall et al. (1988) mostraram que as respostas de A de folhas individuais de amendoim são controladas pelo dreno; observaram pouca diferença na resposta imediata de A, quando a maior parte da planta (dreno) foi mantida a 30°C e a temperatura da folha (fonte) variou entre 15 e 30°C. Nessas condições, A diminuiu pouco (17%), quando a temperatura foliar foi de 19°C ou inferior, ao passo que o resfriamento (19°C) da maior parte da planta (dreno), por três dias, causou declínio de 70% em A das folhas (fonte) mantidas a 30°C.

Ensaios de trocas gasosas, realizados em condições controladas (Figura 5), também não mostraram nenhuma diferença entre as capacidades fotossintéticas das duas cultivares. Assim, dados referentes às duas cultivares foram reunidos e analisados juntos.

A resposta de A em função de Ci (Figura 5 B) mostra que A aumentou com o crescimento dos níveis de Ci, como esperado para uma planta C₃ típica (Long & Bernacchi, 2003). O valor máximo de A de 26 µmol m^-2 s^-1, observado em condições ambientais normais, foi para 39 µmol m^-2 s^-1 , em Ci de 58 Pa, aumentando pouco em níveis ainda mais altos de Ci. O ponto de compensação de CO₂, calculado a partir da porção linear do início da curva, foi de 6,4 Pa, próximo aos valores referentes a cultivares comercias de amendoim (Ketring et al., 1982). A eficiência de carboxilação, alcançada pela inclinação da reta inicial (Long & Bernacchi, 2003), foi de 1,85 µmol m^-2 s^-1 Pa^-1 . Ainda a partir desta curva, a limitação imposta pelo estômato na fotossíntese (l) foi estimada em 22,9%, determinada sob condições ótimas de temperatura e DFFF, quando g_s permaneceu entre 0,35 e 0,53.

A resposta de A em função de DFFF, obtida em condições ambientais ótimas (30ºC, DPV_folha-ar = 1,0 kPa), parece ser ligeiramente melhor do que a observada em condições naturais, com as plantas em floração (Figura 5 A). Em condições controladas, foi calculado (A = 27,8[1-e^{-0,00225(DFFF-39,93)} ], R² = 0,999) o valor de 27,8 µmol m^-2 s^-1 para A máxima, e 39,9 µmol m^-2 s^-1 para o ponto de compensação lumínica. A saturação lumínica ocorreu ao redor de 1.000 µmol m^-2 s^-1. Estes valores estão de acordo com o descrito anteriormente (Ketring et al., 1982) para diferentes genótipos de amendoim. O rendimento quântico máximo aparente, obtido pela inclinação da reta da porção inicial da curva, foi de 0,055 µmol CO₂ µmol^-1.

A curva de luz obtida em condições naturais (com as plantas em floração), quando comparada com a curva obtida em condições controladas, sugere a ocorrência de fotoinibição dinâmica ou fotoprotetora da fotossíntese (Long et al., 1994). A máxima tende ao mesmo valor, nas duas condições, ao passo que a eficiência quântica aparente de assimilação de CO₂, avaliada pela inclinação da reta inicial das duas curvas, parece diminuir (Figura 5 A), e a saturação lumínica tende a ocorrer numa DFFF maior, próxima à radiação solar máxima, em condições naturais.

As medidas de fluorescência da clorofila a, realizadas nas cultivares de amendoim Runner IAC-886 (Figura 6 A) e IAC-Caiapó (Figura 6 B), permitiram acompanhar a eficiência do transporte de elétrons do FSII, durante o mesmo dia das medidas das trocas gasosas, com as plantas em plena floração (54 dap). A ocorrência de fotoinibição dinâmica, manifestada pela queda diária reversível da eficiência quântica máxima do FSII (F_v/F_m) (Öquist et al., 1992; Long et al., 1994), foi verificada durante o início da tarde (13–15h), logo após o horário (12h30) de maior calor e DFFF, que também coincide com a baixa observada nas curvas de trocas gasosas (Figura 2 B, D e F).

O valor de F_v/F_m permaneceu em cerca de 0,8 até as 10h, diminuiu para 0,5–0,6 nas horas de maior excesso de energia luminosa (13–14h) e, no final da tarde, retornou a valores próximos ao do começo do dia. Essa fotoinibição dinâmica ou protetora do FSII tem sido freqüentemente correlacionada com o aumento da formação de zeaxantina e ao aumento da dissipação de energia térmica do FSII, promovidos pelo gradiente de pH transtilacóide gerado pelo transporte de elétrons (Long et al., 1994; Maxwell & Johnson, 2000).

A fotoinibição parece ser conseqüência inevitável do funcionamento do FSII, quando a luz causa o fechamento prolongado de mais de 40% dos centros de reação do FSII (Öquist et al., 1992). A queda diária da eficiência operacional (F_q'/F_m'), ao longo do dia, foi maior do que da eficiência máxima (F_v'/F_m'), com todos os centros do FSII abertos (Figura 6 A e B), mostrando um fechamento parcial (£44%) dos centros do FSII, ao longo do dia. Processos rápidos, não fotoquímicos, de dissipação da energia de excitação, induzidos por alto gradiente de pH, também contribuíram para diminuir F_q'/F_m' (Maxwell & Johnson, 2000). Entretanto, tais mecanismos de regulação da fotossíntese devem ter conferido proteção aos centros de reação do FSII (Öquist et al., 1992), evitando a inativação irreversível, nas cultivares de amendoim expostas às condições ambientais naturais de dias claros de verão.

O curso diário de F_q'/F_m' do FSII (Figura 6 A e B) também mostra que, em determinados horários (15–16h), ocorreram diferenças significativas entre as duas cultivares. Mas as variações, observadas nos valores de F_q'/F_m' ao longo do dia, parecem estar relacionadas às variações da DFFF incidente, no instante de realização das medidas, pois, tais medidas foram realizadas em condições naturais de DFFF (Figura 6 C), em que a queda de DFFF nos horários das 10–11h e das 15–16h (para IAC-Caiapó) correspondeu à passagem de nuvens. A queda de Fq'/Fm' acompanhou aumento da DFFF, atingindo valores mínimos (ca. 0,4) e estáveis em DFFF acima de 800 µmol m^-2 s^-1 (Figura 6 D). Nesse caso, a reposta de F_q'/F_m' das duas cultivares de amendoim, quando submetidas às mesmas condições de DFFF, foram semelhantes.

Em ambas cultivares, A apresentou pequenas variações entre 8h30 e 16h, ainda que a DFFF e a temperatura nesse período tenham aumentado (Figuras 1 e 2). No mesmo período, Fq'/Fm' permaneceu estável a partir de 800 µmol m^-2 s^-1 (Figura 6 D), indicando que, acima desta DFFF, ocorreu aumento no fluxo de elétrons através do FSII. Uma vez que o correspondente acréscimo em A foi pequeno, os elétrons em excesso, provavelmente, foram utilizados em rotas metabólicas alternativas, onde a fotorrespiração parece ser a principal (Cornic & Fresneau, 2002), como também foi observado por Ribeiro et al. (2004) em feijoeiro. De fato, o FAE às 8h foi, respectivamente, 19,5±1,9 e 16,8±1,1 em Runner IAC-886 e IAC-Caiapó, ao passo que este índice às 13h30 foi 25,0±1,4 e 27,1±3,0.

O aumento da relação entre a eficiência quântica operacional e eficiência quântica de redução do CO₂ indica incremento no dreno de elétrons para fotorrespiração (Edwards & Baker, 1993; Cornic & Fresneau, 2002). Em conseqüência da fotorrespiração, mais CO₂ é liberado, podendo causar diminuição na taxa de assimilação líquida de CO₂. Entretanto, como houve pequena variação em A, no período considerado, parte do excesso de elétrons também deve ter sido utilizada na própria assimilação de CO₂, mantendo o balanço de CO₂ ou A praticamente estável.

Conclusões

1. Em condições ambientais naturais ou controladas, as cultivares de amendoim rasteiro IAC-Caiapó e Runner IAC-886 apresentam capacidades fotossintéticas iguais entre si, não sendo possível diferenciá-las por esta variável.

2. A resposta da fotossíntese em função da luz é um pouco melhor em condições ambientais ótimas (controladas).

3. As cultivares demonstram boa adaptação às variações diárias das condições ambientais que ocorrem durante o verão, apresentando fotoinibição dinâmica da fotossíntese no horário de 13 às 14h, quando o excesso de energia luminosa é persistente e as temperaturas foliares e as diferenças de pressão de vapor entre a folha e o ar são elevadas.

4. O excesso de energia, nos horários de maior densidade de fluxo de fótons fotossinteticamente ativos, também é dissipado por meio do consumo de elétrons em processos alternativos.

Recebido em 29 de março de 2005 e aprovado em 29 de março de 2006

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  18 Set 2006
• Data do Fascículo
  Jul 2006

Histórico

• Aceito
  29 Mar 2006
• Recebido
  29 Mar 2005