Análise da microbiota em tonômetros de aplanação de Goldmann

RESUMO

Objetivos: Analisar a prevalência da microbiota nos tonômetros de aplanação de Goldmann nos consultórios do SUS e definir o grau de contaminação dos tonômetros e a eficácia da assepsia do cone do tonômetro de aplanação. Métodos: Estudo transversal em que foi realizado a coleta de 60 “swabs”, divididos nos três tonômetros de aplanação dos ambulatórios do SUS em dois momentos distintos. No primeiro realizou-se a coleta no início dos atendimentos e no segundo momento, a coleta foi realizada ao final de todos os atendimentos. Todos “swabs” foram colhidos no meio Stuart e foi realizada a cultura em meio de bactérias. Resultados: Das 60 amostras, apenas uma apresentou crescimento de agente patogênico, a Escherichia coli. Conclusão: Independente dos vários métodos que o oftalmologista escolher para realizar a assepsia, a mesma é imprescindível para a manutenção de uma boa saúde ocular do paciente, evitando assim a transmissão e propagação de patógenos por meio do exame oftalmológico e concluímos também que o método utilizado pelo nosso serviço parece ser eficaz nesta profilaxia.

Descritores:
Tonômetro; Glaucoma; Microbiota

ABSTRACT

Objective: Analyze the microbiota prevalence in the Goldmann applanation tonometers in the clinic of the SUS to define the contamination of the tonometers and the efficacy of asepsis of the applanation tonometer cone. Methods: A cross-sectional study was carried out to collect 60 “swabs” divided into the three aplanation tonometers of SUS clinics at two different times. In the first one, the collection will be performed at the beginning of the visits and at the second moment, the collection will be performed at the end of all the visits. All swabs will be harvested in the Stuart medium and culture was carried to sow bacteria. Results: Of the 60 samples, only one showed pathogen growth, Escherichia coli. Conclusion: Regardless of the various ways the ophthalmologist chooses to perform asepsis, it is essential for the maintenance of good patient eye health, thus avoiding the transmission and propagation of pathogens through ophthalmologic examination, and we also conclude that the method used by our patient seems to be effective in this prophylaxis.

Keywords:
Tonometer; Glaucoma; Microbiota

INTRODUÇÃO

O glaucoma é uma das principais causas de cegueira irreversível no mundo, sendo definida por uma neuropatia óptica irreversível na qual há perda das células ganglionares e o seu principal fator de risco é o aumento da pressão intraocular (PIO). ⁽¹⁾

A PIO de um indivíduo pode ser determinada por meio da tonometria de aplanação de Goldman, em que sua técnica original foi descrita em 1957 por Goldmann e Schimdt.Baseia-se no princípio de Imbert-Fick, em que a pressão (P) aplicada é igual à força (F) necessária para aplanar uma superfície dividida pela área (A) de aplanação (P=F/A).⁽²⁾ Apesar de existirem diversas novas técnicas para a avaliação, essa continua sendo a técnica padrãoouro de aferição da PIO.

Para tal, é utilizado um cone plástico em que se contém dois prismas cuja extremidade livre encosta diretamente na córnea do paciente, tornando possível a aferição.⁽³⁾ O uso de fluoresceína para esta é primordial,⁽⁴⁾ porém não é obrigatório. Devido ao contato direto do cone plástico com a córnea, o mesmo torna-se potencialmente contaminado, uma vez que tanto o saco conjuntival pode conter bactérias e fungos,⁽⁵⁾ como a fluoresceína pode estar contaminada com a Pseudomonas aeroginosa.^(6,7)

O objetivo do trabalho foi analisar a prevalência e o tipo da microbiota nos tonômetros de aplanação de Goldmann, definir o grau de contaminação dos tonômetros, assim como a eficácia da assepsia do cone do tonômetro de aplanação.

MÉTODOS

Trata-se de um estudo transversal, cuja coleta foi realizada com “swabs” nos três tonômetros de aplanação dos ambulatórios do SUS em dois momentos distintos. No primeiro momento a coleta foi realizada no início dos atendimentos, para que se pudesse quantificar a prevalência e o tipo da microbiota presente nos tonômetros. No segundo momento, a aferição foi feita ao final de todos os atendimentos, para que a eficácia da assepsia ao longo do dia e a mudança da microbiota durante o dia fosse analisada.

Todas as coletas foram realizadas entre os dias 13 de novembro de 2017 e 20 de novembro de 2017, totalizando 20 períodos de coletas e 60 amostras. As amostras foram separadas em três grupos, Consultório I, II e III, que são divididas de acordo com a sala em que se encontra o tonômetro.

Todas as amostras foram coletadas por meio de “swabs” estéreis envoltos em meio de Stuart, que possuem a conservação de microrganismos patogênicos como: Haemophilus spp., Pneumococcus, Salmonella spp., Shigella spp., entre outros⁽⁸⁾. Depois de 24h da coleta o material foi encaminhado ao laboratório creditado para ser semeado em meio de cultura para bactérias, que ocorreu em 48h após a coleta. Antes de cada coleta foi realizada a assepsia dos aparelhos com o uso de lenços de papel, embebidos em álcool 70%, seguido de fricção no local de contato com o paciente, desde o suporte para a cabeça na lâmpada de fenda até o cone do tonômetro de Goldmann.

RESULTADOS

Todos os “swabs” do Consultório I e do Consultório II não apresentaram crescimento de bactérias. Enquanto que no Consultório III houve crescimento de Escherichia coli em apenas uma amostra, resistente a ciprofloxacina e a trimetoprima + sulfadiazina e sensível às demais classes de antimicrobianos. Tal amostra foi conseguida no primeiro momento, antes do início dos atendimentos no consultório (Tabela 1).

Tabela 1
Resultados das culturas

	Consultório I		Consultório II		Consultório III
	1º mom.	2º mom.	1º mom.	2º mom.	1º mom.	2º mom.
1	SC	SC	SC	SC	SC	SC
2	SC	SC	SC	SC	SC	SC
3	SC	SC	SC	SC	SC	SC
4	SC	SC	SC	SC	SC	SC
5	SC	SC	SC	SC	SC	SC
6	SC	SC	SC	SC	SC	SC
7	SC	SC	SC	SC	SC	SC
8	SC	SC	SC	SC	SC	SC
9	SC	SC	SC	SC	Eschericia Coli	SC
10	SC	SC	SC	SC	SC	SC

• SC = sem crescimento

DISCUSSÃO

Há vários produtos para a assepsia do tonômetro de Goldmann, que consistem desde água e sabão, algodão seco, algodão com álcool e soro, água corrente, algodão com colírio antibiótico, Soapex^®, radiação ultravioleta, álcool mais éter, germikil, xampú, soro fisiológico, Methiolate^®, hipoclorito de sódio a 1%, água oxigenada a 3 %até produtos para lentes de contato e éter. ^(9,10) Existem também diversos modos de higiene, que vão desde a fricção do cone com algodão ou lenço, até a imersão do cone do tonômetro em solução asséptica.⁽³⁾

A Academia Americana de Oftalmologia recomenda para a assepsia ideal, a imersão do cone durante 5 a 10 minutos em uma solução de peróxido de hidrogênio a 3% ou de hipoclorito de sódio a 0,5% precedido de enxague e secagem.⁽¹¹⁾

Nosso estudo demonstrou que apenas uma amostra teve a cultura de bactéria e esse resultado vai ao encontro do estudo de Netto et al.⁽¹¹⁾, que também demonstrou que a maioria dos tonômetros não apresentaram crescimento de nenhum agente patogênico.

Contudo, nosso estudo difere-se dos outros em relação ao agente patogênico da amostra. No estudo de Netto et al.⁽¹¹⁾ e de Norn et al.⁽¹²⁾, o Stapyhylococcus sp coagulase negativo era o microrganismo mais prevalente, enquanto que em nosso estudo, só obtivemos o crescimento de Escherichia coli e somente em uma amostra isolada.

Em nosso estudo utilizamos o meio de cultura de Stuart, considerado o mais ideal para coletas de materias que demoraram a ser semeados ^(8,13) e descartamos qualquer alteração devido à má utilização do meio de cultura. Sabe-se que para a viabilidade da microbiota no meio Stuart, o mesmo pode esperar até 72 h para a semeadura⁽¹³⁾ e em nosso estudo a semeadura foi realizada em ate 48 h após a coleta do material.

Como o “swab” que apresentou crescimento era do primeiro momento de coleta, acreditamos que esse resultado pode demonstrar contaminação da amostra, já que esta não é a microbiota normal da conjuntiva. O achado pode sugerir ainda que essa bactéria estava presente no saco conjuntival do último paciente atendido no dia anterior à coleta, demonstrando um potencial de contaminação caso não seja realizada a correta assepsia do tonômetro.

CONCLUSÃO

Independente dos vários métodos que o oftalmologista possui para realizar a assepsia, a mesma é imprescindível para a manutenção de uma boa saúde ocular do paciente, evitando assim a transmissão e propagação de patógenos por meio do exame oftalmológico. E por último, concluímos também que o método utilizado pelo nosso serviço parece ser eficaz nesta profilaxia.

• Pesquisa desenvolvida no Instituto de Olhos de Goiânia, Goiânia, GO, Brasil.

REFERÊNCIAS

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  Vaughan DG, Taylor A, Riordan-Eva P. Oftalmologia geral. 4a ed. São Paulo: Atheneu; 1997.
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  Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA). Descrição dos meios de cultura empregados nos exames microbiológicos. Modulo IV. [citado 2018 Abr 23]. Disponível em: http://www.anvisa.gov.br/servicosaude/manuais/microbiologia/mod_4_2004.pdf
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  Nogueira DC, Ueda SM, Murça MA, Hida WT, Felberg S, Serruya L, et al. Comparação entre dois meios de coleta e transporte para estudo da microbiota conjuntival de indivíduos normais. Arq Bras Oftalmol. 2007;70(6):929-34.

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  Jul-Aug 2018

Histórico

• Recebido
  31 Jan 2018
• Aceito
  19 Maio 2018