Descrição de uma nova espécie de Chlorotabanus (Insecta, Diptera, Tabanidae) da Região Neotropical

Description of a new species of Chlorotabanus (Insecta, Diptera, Tabanidae) from Neotropical Region

Descrição de uma nova espécie de Chlorotabanus (Insecta, Diptera, Tabanidae) da Região Neotropical

Description of a new species of Chlorotabanus (Insecta, Diptera, Tabanidae) from Neotropical Region

Tiago K. Krolow; Augusto L. Henriques

Coordenação de Pesquisas em Entomologia, Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, Caixa Postal 478, 69011-970 Manaus, AM, Brasil. ([e-mail]; [e-mail])

RESUMO

É descrita uma nova espécie de Tabanidae (Diptera), Chlorotabanus flagellatus sp. nov. , distribuída na região amazônica, Estados do Amazonas e Pará. Diagnose, discussão e ilustrações dos caracteres externos e internos são fornecidas.

Palavras-chave: Amazônia, Chlorotabanus, espécie nova, Tabanidae, taxonomia.

ABSTRACT

We described a new species of Tabanidae (Diptera), Chlorotabanus flagellatus sp. nov., distributed in the Amazon region, in the States of Amazonas and Pará. Diagnosis, discussion and illustrations of external and internal characters are provided.

Keywords: Amazon region, Chlorotabanus, new species, Tabanidae, taxonomy.

O gênero Chlorotabanus foi proposto por LUTZ (1913), para Tabanus mexicanus Linnaeus, 1758. Na última revisão do gênero, PHILIP & FAIRCHILD (1956) propuseram Cryptotylus Lutz como subgênero de Chlorotabanus, com cinco espécies para o subgênero nominal e outras cinco para o subgênero Cryptotylus. FAIRCHILD (1961) descreve Chlorotabanus (Chlorotabanus) leucochlorus. Em seguida Cryptotylus é novamente elevado ao status de gênero (FAIRCHILD, 1969). Posteriormente, WILKERSON (1979) descreve a última espécie do gênero. Atualmente, há sete espécies de Chlorotabanus descritas para as Américas, sendo encontradas do sul dos Estados Unidos à Argentina (FAIRCHILD & BURGER, 1994; BURGER, 1995).

As espécies do gênero são facilmente distinguíveis de outros gêneros de Tabanidae, devido à coloração esverdeada característica (quando em vida), ausência do calo frontal, flagelo antenal com no máximo um ângulo obtuso no dorso da placa basal, labela esclerotinizada e asa hialina ou com pequenas manchas escuras nos intercruzamentos das veias. Além disso, seu hábito é comumente associado à atividade noturna ou crepuscular, já que raramente são observados durante o dia (RAFAEL & CHARLWOOD, 1981).

O estudo de material das coleções amazônicas permitiu a determinação de uma nova espécie. Dessa forma, o trabalho tem como objetivo descrevê-la, apresentando os principais caracteres externos e internos, de forma detalhada possibilitando a diferenciação das demais espécies.

MATERIAL E MÉTODOS

Os espécimes foram obtidos através do empréstimo de material das seguintes instituições: Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia (INPA, Manaus), Coleção Zoológica Paulo Bührnheim (CZPB, Manaus) e Museu Paraense Emílio Goeldi (MPEG, Belém). Parátipos estão depositados nas instituições de empréstimo e nas seguintes coleções: California Academy of Sciences (CAS, San Francisco), Florida State Collection of Arthropods (FSCA, Gainesville) e Museu de Zoologiada Universidade de São Paulo (MZSP, São Paulo).

A terminologia morfológica externa segue MCALPINE (1981) e FAIRCHILD (1986), e para a terminália SINCLAIR et al. (1993). Para a dissecação das terminálias foi utilizado o protocolo de CUMMING (1992). Foram feitas medições de fronte e antena para a utilização de índices. Para fronte, foram utilizados os índices frontal (I.F.) e de divergência (I.D.) conforme FAIRCHILD (1985), enquanto para antenas, foram estimados outros dois índices, o índice de placa basal (I.P.B.), que consiste da maior alturada placa basal dividida pelo comprimento da mesma, e o índice do flagelo (I.Flg.), que é o comprimento da placa basal dividido pelo comprimento do estilo. As variações de medidas e índices são apresentadas do valor mínimo para o máximo, onde X e N significam respectivamente média e número de indivíduos observados. Para a melhor visualização do tegumento torácico, é utilizada a deposição de uma pequena gota de álcool.

Informações adicionais entre colchetes foram inseridas para completar os dados das etiquetas domaterial examinado.

Chlorotabanus flagellatus sp. nov.

(Figs. 1-14)

 

Chlorotabanus inanis; HENRIQUES & GORAYEB, 1993:9 (part., non Chlorotabanus inanis (Fabricius, 1787)); HENRIQUES, 1995:69 (part., non C. inanis (Fabricius, 1787)).

Diagnose (fêmea). Comprimento total entre 13,5-17 mm, corpo de amarelo-escuro a esverdeado, com pilosidade dourado-alaranjada. Olhos vermelho-escuros, com fronte estreita e alongada (I.F. > 8.0). Antena com placa basal alongada, esta, cerca de duas vezes e meia o comprimento do estilo.

Holótipo fêmea (Fig. 1). Comprimento do corpo sem antenas 15,8 mm; comprimento da asa 13,4 mm; largura da asa 3,9 mm.

Cabeça. Olhos nus, vermelho-escuros. Tubérculo ocelar ausente, em seu lugar, um pequeno triângulo de pêlos dourados. Fronte (Fig. 2) estreita e convergente nabase; índice frontal 9.0; índice de divergência 1.6; pruinosidade castanho-amarelada e pilosidade dourada, com pêlos cobrindo toda a fronte exceto na região mediana inferior. Subcalo, gena, parafaciália e face com pruinosidade idêntica a da fronte. Subcalo com grande área nua, exceto nas proximidades da parafaciália com pêlos amarelos e esparsos. Gena, parafaciália e face com pilosidade amarela. Palpo amarelo com pilosidade dourada. Teca da probóscide esclerotinizada, amarelada e com tamanho subigual ao comprimento do palpo. Labela esclerotinizada, com coloração verde-escuro. Antena (Fig. 3). Escapo e pedicelo amarelo-esverdeados com pêlos dourados, flagelo verde-escuro, exceto pelo último anulus amarelado. Flagelo com placa basal alongada, cerca de duas vezes mais comprida que alta (I.P.B. = 1.9). Estilo aproximadamente duas vezes e meia menor que o comprimento da placa basal (I.Flg. = 2.7).

Tórax. Escuto com tegumento alaranjado, coberto por uma camada de pruína branca (vistas dorsal e pósterodorsal) ou alaranjada (vistas lateral e ântero-dorsal), e uma camada pilosa dourado-alaranjada. Escutelo compruinosidade branca (vista ântero-dorsal) ou ausente (vistas póstero-dorsal e dorsal), camada pilosa concolor ao escuto. Lóbo pós-pronotal, notopleura e calo pós-alar com pruinosidade branca em vista lateral e dorsal. Pleura com pruinosidade branca e pilosidade dourada, com maior densidade de pêlos nas proximidades da inserção alar. Pernas delgadas, coxas com pruinosidade branca e pilosidade amarela; trocânteres e fêmures castanho-amarelados com pilosidade dourada, tíbias anterior e média, esverdeadas com pilosidade dourada, tíbia posterior castanho-amarelada, coberta de pêlos negros na face posterior nos 2/3 apicais, face anterior com pêlos dourados. Asa (Fig. 4) hialina, exceto pelo escurecimento das células basal costal, costal, subcostal (área central com mancha hialina) e basal radial (nas proximidades da veia radial), e pelo pterostigma verde-escuro. Incisão alular com mancha escura. Veia costa cerdosa alaranjada, com algumas cerdas escuras esparsas. Veia R₂₊₃ com sinuosidade proeminente, encontrando a veia costa distante da veia R₁ e próximada veia R₄. Pterostigma verde-escuro. Veias transversais mais escurecidas que as longitudinais, amareladas.

Abdômen. Amarelo-escuro, coberto por uma pilosidade dourada, exceto a partir do quinto tergito, onde aparecem faixas distais transversais de pêlos negros. Esternitos amarelo-escuro cobertos por pêlos dourados.

Terminália. Esternito oito e gonapófises (Fig. 5) vista ventral; tergitos nove e dez, cercos e hipoprocto (Fig. 6) vista dorsal; forquilha genital (Fig. 7) e espermateca (Fig. 8) vista dorsal.

Esternito oito coberto de pêlos, com uma forte reentrância na margem anterior; margens laterais arredondadas encontrando a gonapófises. Gonapófises coberta de pêlos, com uma leve reentrância na margem posterior; presença de uma projeção triangular na região mediana anterior, que se estende à porção posterior do esternito oito (vista dorsal). Tergitos nove, dez e cercos, cobertos de pêlos. Tergito nove com tamanho reduzido em relação ao décimo tergito; afilado nas margens externa anterior e interna posterior. Tergito dez com formato subretangular; margem externa arredondada na base, com região posterior levemente acuminada. Cercos com margens internas e externas arredondadas, ambas convergindo em direção ao ápice posterior, proporcionando um formato levemente acuminado. Hipoprocto quase totalmente encoberto pelos cercos em vista dorsal, apenas com sua região mediana visível; ápice e base arredondados. Forquilha genital com margem anterior escavada na região central; dois lobos posteriores laterais, paralelos e bem desenvolvidos; região apical com dois tufos fortes de cerdas paralelas, convergindo no ápice posterior. Espermateca tubular e translúcida, exceto pela cápsula espermática ovóide e escura.

Variações: os parátipos variam no tamanho do corpo sem antenas de 13,5-17,0 mm (X = 15,1 mm, N = 30); comprimento da asa 11,2-13,4 mm (X = 12,4 mm, N = 30); largura da asa 3,4-4,3 mm (X = 4,0 mm, N = 30); I.F. 8.0-10.4 (X = 9.2, N = 30); I.D. 1.3-2.0 (X = 1.6, N = 30); I.P.B. 1.7-2.2 (X = 2.0, N = 30); I.Flg. 2.0-3.4 (X= 2.5, N = 30).

Além do corpo, variando de amarelo-escuro a esverdeado, diversas estruturas também apresentam variação de cor entre os espécimes observados: olhos variando de tons acinzentados até vermelho-escuro; labela de castanho-escuro, verde-escuro a preto; antena de amarelo a verde-escuro, podendo variar nos três segmentos e entre os artículos; pterostigma de castanho-amarelado a verde;

Uma possível explicação para tantas variações é que, as espécies de Chlorotabanus possuem hemolinfa verde, e como a variação de cor muitas vezes está relacionada à distribuição interna dos pigmentos, estes podem ou não colorir partes como antenas, pernas, tórax e abdômen (WILKERSON, 1979), levando a inúmeras combinações de coloração ao longo do corpo. Outra variação comumente observada é quanto ao escurecimento dos últimos segmentos abdominais, que, conforme WILKERSON (1979) pode ser causada por pequenas diferenças de pigmentação externa ou pela presença de um repasto sanguíneo não digerido.

Macho. Comprimento do corpo sem antenas 15,0 mm, variando de 13,6-15,8 mm (X = 14,9 mm, N = 13); comprimento da asa 11,7 mm, 10,6-12,5 mm (X = 11,5 mm, N = 13); largura da asa 3,8 mm, 3,5-3,9 mm (X = 3,6 mm, N = 13).

Similar à fêmea, exceto por alguns caracteres como, olho holóptico (Fig. 9), com as facetas dorsais mais desenvolvidas, ocupando aproximadamente 2/3 da região superior do olho e distintamente delimitadas das facetas inferiores e marginais, ambas com tamanho reduzido; tubérculo ocelar ausente, com uma fenda; palpo porrecto, amarelo com pêlos dourados. Antena (Fig. 10) com estilo alongado em relação ao da fêmea, este, quase do tamanho da placa basal, I.Flg. 1.3, variando de 1.0-1.5 (X = 1.2, N =11). I.P.B. 1.8, 1.5-2.0 (X = 1.7, N = 11).

Terminália. Epândrio, cercos e hipoprocto (Fig. 11), vista dorsal. Hipândrio + gonocoxitos, gonóstilo e edeago (Fig. 12), vista ventral.

Epândrio, com região posterior dilatada e recoberta por pêlos, sofrendo um estreitamento e a perda da pilosidade a partir do primeiro terço até a extremidade proximal, exceto por dois ou três pêlos esparsos na região proximal. Cercos cobertos de pêlos; região anterior achatada, com um arredondamento das margens laterais internas e um leve afilamento na extremidade posterior, este ultrapassando a margem distal do hipoprocto. Hipoprocto encoberto pelos cercos, com apenas a extremidade médio-apical aparente, esta nua e com um pequeno sulco mediano dando um aspecto de fenda; pêlos visíveis apenas em vista ventral.

Hipândrio + gonocoxitos robusto, mais longo que largo; margem anterior truncada com leve arredondamento nas bases laterais. Hipândrio com a margem posterior fortemente escavada anteriormente; região escavada possui uma fileira de pêlos diminutos. Gonocoxitos tubulares, com tufo de pêlos fortes na margem interna, nas proximidades dos gonóstilos. Apódemas gonocoxais bem desenvolvidos, estreitos e alongados, sofrendo uma torção na região mediana, paralelos, ultrapassando a margem anterior do hipândrio + gonocoxito. Gonóstilos convergentes; tubulares; margem apical média deprimida projetando levemente as margens laterais. Bainha parameral alongada com formato triangular; margem anterior ligada lateralmente aos gonocoxitos; margem posterior afilada alcançando a porção distal dos gonóstilos. Edeago longo em forma de"lança", pouco maior que os apódemas gonocoxais.

Variações. Nove terminálias de macho foram dissecadas apresentando alta similaridade, entretanto, dois espécimes externamente idênticos aos demais, apresentaram variações na forma do hipândrio + gonocoxitos e gonóstilo (Figs. 13, 14, desenho esquemático), vista ventral. A peça, hipândrio + gonocoxitos e gonóstilo (Fig. 13) possui comprimento e largura semelhantes, dando um aspecto quadrado. Abertura do hipândrio + gonocoxitos (vista dorsal) tem formato retangular. Os gonóstilos são largos e truncados. Em outro espécime, hipândrio + gonocoxitos e gonóstilo (Fig. 14) se assemelham muito ao descrito na figura 12, exceto pelo leve estreitamento da base do hipândrio + gonocoxitos, dando um aspecto menos truncado, ou seja, com a base mais arredondada.

Material-tipo. Holótipo : BRASIL. Amazonas: Manaus (AM 010 km 54 BI-2, 02º45'33''S; 59º51'03''W, Tapir/anca, Clareira, 5:30-6:00h), 23.IX.1997, R.L.M. Ferreira, A.L. Henriques & J.F. Vidal leg. Chlorotabanus inanis (sem determinador). Parátipos: idem (Tapir/flanco, Clareira, 18:00-19:00h), , 22.VII.1997 (FSCA); idem, (Tapir/ventre, Clareira, 5:30-6:00h),, 23.IX.1997 (MZSP); idem, (Tapir/flanco, Clareira, 5:30-6:00h), , (MPEG); idem, (Tapir/anca, Clareira, 17:00-18:00h), , 24.IX.1997 (MZSP); idem, (Tapir/dorso, Clareira, 5:30-6:00h), , 11.XI.1997 (MPEG); idem, (Tapir/ventre, Clareira, 17:00-18:00h), , 12.XI.1997 (INPA); idem, (Tapir/anca, Clareira, 17:00-18:00h), , 12.XI.1997 (INPA); idem, (Tapir/dorso, Clareira, 5:30-6:00h), , 02.XII.1997 (FSCA); idem, (Tapir/coxa, Clareira, 18:00-18:30h), 3, 02.XII.1997 (INPA); idem, (Tapir/anca, Clareira, 5:30-6:00h), , 03.XII.1997 (MZSP); idem, (Tapir/anca, Clareira, 17:00-18:00h), , 03.XII.1997 (CZPB); idem, (Tapir/coxa, Clareira, 6:00-7:00h), , 21.I.1998 (CZPB); idem, (Tapir/flanco, Clareira, 5:30-6:00h), , 03.II.1998 (CAS); idem, (Tapir/anca, Clareira, 6:00-7:00h), 3, 03.II.1998 (INPA); idem, (Tapir/perna anterior, Clareira, 6:00-7:00h), , 03.II.1998 (CAS); idem, , 26.XI.1981, J.A. Rafael leg. (CAS); idem, (Bacia do Ig.[arapé] Tinga, isca humana,), , IX.2001, F.C. Costa leg. (INPA); idem, (Igarapé Barro Branco, arm. Malaise 04), 2, 09-12.II.2004, A. Henriques et al. leg. (INPA); idem, (Campus Universitário), 2, 14.XI.1978, J.A. Rafael leg. (INPA; FSCA); idem, (ZF-2 KM-14, Torre, 023521S-600655W, luz mista/ BL,BLB, lençol, 40 mt altura), , 18-21.II.2004, J.A. Rafael, C.S. Motta, F.F. Xavier Fº, A.Silva Fº & S. Trovisco leg. (INPA); idem, (Armadilha Malaise), , 16-19.VII.2004, J.A. Rafael, F.F. Xavier Fº & J.M. Ribeiro leg. (MPEG); idem, (Lençol: luz mista e BLB, 40 mts altura), , 16-19.VII.2004, J.A. Rafael, C.S. Motta, F.F. Xavier Fº, J.M.F. Ribeiro & S. Trovisco leg. (INPA); idem, (luz mista/BLB, lençol, 40 mts altura), , 16-19.VII.2004, J.A. Rafael, C.S. Motta, F.F. Xavier Fº, J.M.F. Ribeiro & S. Trovisco leg. (CAS); idem, (luz mista/BLB, lençol, 36 mts altura), , 12-15.X.2004, J.A. Rafael, C.S. Motta, F.F. Xavier Fº, A.Silva Fº & S. Trovisco leg. (FSCA); idem, (Lençol, luz mista e BLB, 35 mts altura), , 13-16.XI.2004, F.F. Xavier Fº, A.R. Ururahy, F. Godoi & S. Trovisco leg. (FSCA); idem, (armadilha luz móvel), , 01.XI.2005, J.A. Rafael, F.F. Xavier Fº, R. Machado, A.A. Agudelo & Y.K. Dantas leg. (MZSP); idem, (Estrada ZF-2, armadilha luz móvel), 3, 01.XI.2005, J.A. Rafael, F.F. Xavier Fº, R. Machado, A.A. Agudelo & Y.K. Dantas leg. (INPA); idem, (BR-174, Faz. Porto Alegre, Malaise), , VII.2002, L. Aquino leg. (FSCA); idem, (F.[azenda] Esteio, R. 1401, km-27 ZF-3, Malaise), , 05-20.IV. 1995, L.E.F.R.Silva leg. (MPEG); AM 240 (km 24, 2º00'55''S; 59º49'40''W, Luz mista/mercúrio), , , VIII.2005, Xavier-Filho leg. (INPA); Rio Urubu (02º10'S; 59º49'W), , 13-14.III.1983, P. Bührnhein, N. Otaviano & S. Leite leg. (CZPB); Parque Nacional do Jaú (Rio Carabinani, Igarapé Preguição), , 20-29.VI.1994, L. Aquino leg. (INPA); Itacoatiara (Madeireira Mil, 024510S; 583911W, armadilha luminosa móvel, 05-06hs), , 2, 29-30.XI.2005, J.A. Rafael, R.J.P. Machado & A.Silva Fº. leg. (INPA); idem, , 29-30.XI.2005, J.A. Rafael, R.J.P. Machado & A.Silva Fº. leg. (MZSP); idem, , 29-30.XI.2005, J.A. Rafael, R.J.P. Machado & A.Silva Fº. leg. (CAS); idem, , 29-30.XI.2005, J.A. Rafael, R.J.P. Machado & A.Silva Fº. leg. (MPEG); Novo Airão (ramal do Olimpio, 02º39'23''S; 60º55'44''W, luz mista de mercúrio), , 03-15.VII.1997, P.F. Bührnhein, N.O. Aguiar & N.F. Fé leg. (CZPB); idem, , 03-15.VII.1997, P.F. Bührnhein, N.O. Aguiar & N.F. Fé leg. (INPA); Pará: Benevides (PA-408 km 06), , 21.XI.1980, I.S. Gorayeb & F.F. Ramos leg. (INPA); idem, , 18.III.1981, I.S. Gorayeb leg. (INPA); idem, (cavalo), , 28.VII.1982, R.B. Neto leg. (MPEG).

Material adicional examinado. BRASIL. Amazonas: Manaus (AM 010 km 54 BI-2, 02º45'33''S; 59º51'03''W, Centro Instrução do CIGS, em lona azul, 18:08h), , 08.IV.1997, R.L.M. Ferreira, A.L. Henriques & J.F. Vidal leg. (INPA); idem, (Tapir/ escápula, Clareira, 17:00-18:00h), 2, 12.XI.1997 (INPA); idem, (Tapir/flanco, Clareira, 18:00-18:30h), , 21.I.1998 (INPA); idem, (Reserva Ducke), , 4.VI.1976, A. B. Anderson leg.. Chlorotabanus sp ., det. N.D. Penny (INPA); idem, 2, 26.XI.1981, J.A. Rafael leg. (INPA); idem, (26 km, NE, armadilha suspensa 10 metros), , 06.X.1988, J.A. Rafael leg. (INPA); idem, (Am 010 km 26, 2º55'S;59º59'W, 06- Malaise clareira), , 07.II.2001, R.L.M. Ferreira et al. leg. Chlorotabanus inanis (sem determinador) (INPA); idem, (Igarapé Acará Branco, coleta manual), 2, 09-13.XI.2007, A. S. B. Souza leg. (INPA); idem, (ZF-2, Torre 45 mts altura, luz mista/ mercúrio), 2, 7, 8.I.1997, R.L. Ferreira leg. Chlorotabanus inanis, A.L. Henriques, 1997 det. (INPA); Itacoatiara (Madeireira Mil, 024510S-583911W, armadilha luminosa móvel, 19-20hs), 2, 2930.XI.2005, J.A. Rafael, R.J.P. Machado & A.Silva Fº. leg. (INPA); Novo Airão (Ramal do Olimpio, 02º39'23''S; 60º55'44''W, luzmista de mercúrio), , 03-15.VII.1997, P.F. Bührnhein, N.O. Aguiar & N.F. Fé leg. (CZPB); AM 240 (km 24, 2º00'55''S; 59º49'40''W, Luz mista/mercúrio), , VIII. 2005, Xavier-Filho leg. (INPA); Parque Nacional do Jaú (Igarapé Miratuca, 1º57'08''S; 61º49'19''W, Malaise), , R. Andreaze, W. Costa & L. Aquino leg. (INPA); Rio Juruá (Minerauzinho, 033485S; 665915W, luz mista de mercúrio), , 25.I.1996, P.Bührnhein & N.Otaviano leg. (CZPB); Rio Urubu (02º10'S; 59º48'W), , 18-19.IX.1982, P. Bührnhein leg. (CZPB).

Etimologia. Do Latim flagellum, relacionado à placa basal alongada do flagelo antenal.

Discussão. O gênero Chlorotabanus é muito bem representado em diversas coleções brasileiras, entretanto, erros de identificação de espécies são constantes, devido à aparente semelhança entre algumas espécies e ao aumento significativo do material coletado desde a última revisão, feita por PHILIP & FAIRCHILD (1956). Dessa forma, Chlorotabanus flagellatus sp. nov. já havia sido identificada algumas vezes como Chlorotabanus inanis (Fabricius, 1787), esta de captura mais frequente e amplamente distribuída no Neotrópico.

Chlorotabanus inanis pode ser diferenciada de C. flagellatus sp. nov., pois apresenta placa basal mais curtae com o ângulo dorsal mais elevado, I.F. não atinge 8.0, além das diferenças de pruinosidade e pilosidade. Chlorotabanus flagellatus sp. nov. difere prontamente de C. fairchildi Wilkerson, 1979 e C. mexicanus (Linnaeus, 1758), pois ambas possuem fortes manchas nos cruzamentos das veias transversais e nos ápices das veias longitudinais. Chlorotabanus crepuscularis (Bequaert, 1926) também possui asa com manchas e ocorre apenas no sul dos Estados Unidos. Chlorotabanus ochreus Philip & Fairchild, 1956 foi descrito de um espécime único, coletado na serra da Bocaina, Estado de São Paulo. Esta espécie não possui outros registros em trabalhos posteriores, mas pode ser diferenciada de C. flagellatus sp. nov. por apresentar fronte paralela, baixa e larga (I.F. 4.0), bem como pelo formato da antena, onde a placa basal e o anuli possuem tamanhos similares. Chlorotabanus parviceps (Kröber,1934) pode ser distinguida pelo valor do I.F. que não ultrapassa 5.5, pelas tíbias anteriores com pêlos pretos no ápice dorsal, e pelas proporções de placa basal e anuli. Chlorotabanus leucochlorus Fairchild, 1961 possui pruinosidade branco-neve e pilosidade branco-prateado, além de pêlos negros esparsos na notopleura, e I.F. < 7.6.

COSCARÓN (1976) fez a ilustração dos caracteres internos de fêmea e macho de C. parviceps, por comparação é possível observar algumas pequenas diferenças entre as duas espécies: em C. parviceps a extremidade distal dos cercos da fêmea é bem mais arredondada, encobrindo praticamente todo o hipoprocto; os lobos laterais da forquilha genital diferem claramente entre as duas espécies, em C. flagellatus sp. nov. a margem externa anterior é arredondada e alongada, enquanto em C. parviceps é arredondada mas não apresenta o alongamento; as espermatecas são parecidas, embora em C. flagellatus sp. nov. apresente um afilamento mais acentuado na extremidade distal da cápsula espermática; a forma do hipândrio + gonocoxitos difere pelo estreitamento da porção anterior do hipândrio, e pela distância entre a cavidade basal (vista dorsal) do hipândrio + gonocoxitos e a escavação mediana posterior, a qual parece ser maior em C. parviceps. KROLOW & HENRIQUES (2008) descreveram a terminália do macho de C. leucochlorus, onde o epândrio e o hipoprocto são muito similares ao de C. flagellatus sp. nov. Os cercos diferem moderadamente, pois em C. leucochlorus possuem uma reentrância nas margens laterais posteriores. Hipândrio + gonocoxitos, gonóstilo e edeago são muito semelhantes.

Os trabalhos op. cit. são os únicos que tratam dos caracteres internos em Chlorotabanus, não obstante, foi possível diferenciar algumas estruturas internas entre as espécies, mas a sobreposição de caracteres internos não pode ser descartada, pois estas variações de caracteres possivelmente poderão ser observadas ao longo do gradiente morfológico (caracteres externos e internos) encontrado nas diferentes espécies do gênero.

Dados ecológicos. Os horários de coleta contidos nas etiquetas revelam que C. flagellatus sp. nov. procurou repasto sanguíneo em Tapirus terrestris (Linnaeus, 1758) entre os períodos de 5:00 e 7:00h e 17:00e 19:00h, horários característicos do gênero Chlorotabanus. Os ataques tiveram distribuição pelo corpo do Tapirus, exceto pescoço e cabeça, com maior incidência na porção posterior dorsal (anca).

Agradecimentos. Ao Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq), pela concessão da bolsa de mestrado ao primeiro autor.

Recebido em março de 2008.

Aceito em dezembro de 2008.

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  30 Out 2009
• Data do Fascículo
  Jun 2009

Histórico

• Aceito
  Dez 2008
• Recebido
  Mar 2008