Checklist dos Rotifera (Animalia) do Estado de Mato Grosso do Sul, Brasil

Checklist of the Rotifera (Animalia) from Mato Grosso do Sul State, Brazil

RESUMO

Este estudo listou os táxons de Rotifera encontrado da literatura científica no estado de Mato Grosso do Sul. O estudo foi dividido em cinco áreas gerais: (1) rio Paraguai, (2) Pantanal de Nhecolândia, (3) rio Miranda, rio Negro, rio Abobral e Itaqueri, (4) represa Lago do Amor na cidade de Campo Grande, e (5) rios, lagos e canais do rio Paraná. Foram registrados um total de 364 táxons, sendo as famílias Lecanidae, Trichocercidae e Brachionidae as mais ricas, com 72, 32 e 30 táxons respectivamente. A maior riqueza de táxons foi registrada na área do rio Paraná (244 táxons), e em seguida no rio Paraguai na região da cidade de Corumbá (com 154 táxons encontrados), e nos lagos de água doce do Pantanal da Nhecolândia (com 148 táxons). É altamente provável que estes resultados são reflexos da quantidade e qualidade dos estudos nestas áreas.

PALAVRAS-CHAVE:
Biodiversidade; zooplancton de água doce; Bacia do Alto Paraguai; Bacia do rio Paraná; Programa Biota-MS.

ABSTRACT

This study comprises a list of rotifer taxa found in the state of Mato Grosso do Sul, gleaned from the scientific literature. The studies were divided in five general areas: (1) the River Paraguay, (2) the Pantanal of Nhecolândia, (3) the rivers Miranda, Abobral and Itaqueri, (4) a reservoir in the city of Campo Grande, and (5) rivers, lakes and canals of the River Paraná. In total, 364 taxa were registered, with the families Lecanidae, Trichocercidae and Brachionidae showing greatest taxonomic richness, with 72, 32 and 30 taxa, respectively. The greatest taxon richness was found in the area of the River Paraná (244 taxa), followed by the River Paraguay in the region of the city of Corumbá (with 154 taxa), and the freshwater lakes of Nhecolândia (with 148 taxa). This pattern is most probably due to the quantity and quality of the studies carried out in these areas.

KEYWORDS:
Biodiversity; freshwater zooplankton; Alto Paraguay River Basin; Paraná River basin; Biota-MS Program.

Os rotíferos são animais geralmente microscópicos, quase exclusivamente de água doce e geralmente abundantes em lagos, represas e rios, e também em solos úmidos. Tem grande importância nas teias alimentares de ambientes aquáticos, se alimentando de algas, protozoários, bactérias e detritos, servindo como presas para predadores invertebrados, bem como peixes, especialmente formas jovens e pequenas. Podem ter papéis muito importantes na reciclagem de nutrientes e serem úteis como indicadores de qualidade ambiental, na ecotoxicologia, e na aquicultura. O filo consiste de três grupos, o pequeno grupo marinho Seisonacea, e os grupos maiores de água doce, Bdelloidea e Monogononta. Em Bdelloidea não foram registrados machos, enquanto em Monogononta os mesmos são extremamente raros. Assim, a taxonomia é baseada quase exclusivamente das características das fêmeas. Para uma introdução à biologia, ecologia e sistemática do Rotifera, ver Wallace et al. (2006).

Nas ações de conservação e gestão da biodiversidade, estudos taxonômicos são de extrema importância ( Segers, 2008). Para se ter uma visão do estado do conhecimento taxonômico em uma região e apontar lacunas na informação e direções de futuras pesquisas, os inventários taxonômicos são fundamentais ( Oliveira-Neto & Moreno, 1999; Souza-Soares et al., 2011; Garrafoni & Lourenço, 2012). No presente estudo, pela primeira vez, um inventário taxonômico do grupo Rotifera é compilado para o Estado de Mato Grosso do Sul.

MATERIAL E MÉTODOS

Para a compilação da lista de táxons de rotíferos encontrados no Estado de Mato Grosso do Sul foram utilizados artigos da literatura científica, bem como uma dissertação de mestrado, uma tese de doutorado e relatórios não publicados. Táxons não reconhecidos por Segers (2007) são indicados na tabela da listagem; este trabalho é considerado como a mais correta revisão moderna, porque segue rigorosamente as regras do Código Internacional de Nomenclatura Zoológica ( ICZN, 1999).

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os estudos foram divididos em cinco áreas ( Tab. I), sendo o rio Paraguai, incluindo lagoas marginais e áreas inundadas, lagos de água doce e hiposalina do Pantanal da Nhecolândia, corpos de água associados com os rios Miranda, Negro, Abobral e Itaqueri, a represa Lago do Amor na cidade de Campo Grande, e rios, lagos e canais do rio Paraná.

Tab. I
Identificação das localidades de amostragem de Rotifera, com coordenadas geográficas e referências dos estudos, Mato Grosso do Sul., Brasil.

Código e localidade	Coordenadas (S-W)	Referência
RIO PARAGUAI
1. Lagoa Albuquerque	19°10’30”-57°10’30”	Espíndola et al., 1996
2. Corumbá; Canal do Tamengo	18°59’31”-57°38’14.8”	Koste, 1999; W. M. Silva Observ. (comun. pess.)
3. Baia de Castelo	18°34’38”-57°34’00”	Koste, 1999; Calheiros, 2003
4. Rio Paraguai (37 localidades entre Porto Cáceres até o rio Apa)	16°03’-26º23’ até 22°03’-58°00’	Frutos et al., 2006
PANTANAL DE NHECOLÂNDIA
5. Fazenda Nhumirim, lagos de água doce (“Baias”)	18°59’-56°39’	Koste, 1999; Medina Júnior, 1999
6. Fazenda Nhumirim; lago intermediário entre água doce e hiposalina (“Salitrada”)		Medina Júnior, 1999
7. Fazenda Nhumirim, lagos hiposalinos (“Salinas”) Rios Miranda/Negro/Abobral/Itaqueri		Koste, 1999; Silva et al., 2010
8. Fazenda Boa Sorte baia	19°22’-57°02’	Bonecker et al., 1998
9. Caixas de empréstimo, Passo do Lontra		Bonecker et al., 1998
10. Baia de Medalha, Passo do Lontra	19°34’38”-57°01’05”	Bonecker et al., 1998
11. Rio Miranda, Passo do Lontra		Bonecker et al., 1998
12. Rios Miranda, Abobral, Itaqueri		Oliveira-Neto, 1991
CAMPO GRANDE
13. Lago do Amor	20°30’12,1”-54°37’02”	Roche, 2010
RIO PARANÁ
14. Represa, cidade de Dourados	22°12’-54°54’	Martínez et al., 2000
15. Rios Baía, Ivinheima, Paraná; lagos Guaraná, Patos, Fechada, Pousada das Garças; canal Curutuba	22°43’-53°17’	Bonecker et al., 1994; Lansac-Tôha et al., 1997; Garcia et al., 1998; Serafim et al., 2003; Joko et al., 2008; Bonecker et al., 2009; Lansac-Tôha et al., 2009

Devido ao número reduzido de estudos e diferenças no esforço de amostragem (número de estudos, número de amostras analisadas), não é possível obter nenhuma conclusão em relação a padrões de biodiversidade de Rotifera no estado, em nível regional ( Oliveira-Neto & Moreno, 1999; Souza-Soares et al., 2011) ou em nível nacional ( Garrafoni & Lourenço, 2012). A maior riqueza foi registrada na área do rio Paraná, seguida do rio Paraguai na região da cidade de Corumbá, e nos lagos de água doce da Nhecolândia ( Tab. 2). É provável que estes resultados refletem principalmente a quantidade e qualidade de pesquisa nestas áreas, o rio Paraná sendo pesquisado detalhadamente por vários anos ( Lansac-Tôha et al., 2009), e os outros dois estudos beneficiados por estudos do taxonomista Walter Koste (Koste, 1978). Assim, o efeito esforço/especialista seria a explicação para estes elevados valores de riqueza ( Fontaneto et al., 2012). Pode-se concluir que mais estudos taxonômicos e ecológicos são necessários e urgentes, especialmente na região do Pantanal, uma Reserva da Biosfera e Patrimônio da Humanidade da UNESCO.

Quando amostras fixadas são analisadas, muitas formas de rotíferos, especialmente os aloricados sem apêndices distintos (sendo principalmente formas não planctônicas como membros das famílias de Notommatidae e Dicranophoridae, e o grupo Bdelloidea) não podem ser identificados. Assim, para identificação confiável e descrição de novas espécies, é necessário examinar organismos vivos. No Brasil, onde é frequentemente necessário viajar grandes distâncias para amostrar áreas de interesse longe de laboratórios, tais análises são muitas vezes inviáveis. A utilização de anestesia, por exemplo Bupivacaine ( Nogrady & Rowe, 1993), ou água carbonificada pode ser útil, mas nem sempre funciona eficientemente.

A identificação de rotíferos, especialmente os aloricados, frequentemente depende de análises da microestrutura do mástax (mandíbula) ( Obertegger et al., 2006). Tais análises são frequentemente viáveis com o uso de microscopia convencional (óptica). Porém, o uso de microscopia eletrônica pode revelar mais detalhes, com maior confiabilidade.

A técnica de microscopia eletrônica é de grande utilidade em análises de microcaracterísticas de rotíferos ( Clément & Wurdak, 1991), principalmente Microscopia Eletrônica de Varredura (SEM) aplicada ao mástax ( De Smet, 1998), sendo usada cada vez mais para a identificação de espécies ( De Smet, 2005). Markevich & Kutikova (1989) propõem uma classificação nova de Rotifera, baseada inteiramente em estudos da ultraestrutura do mástax utilizando SEM. Sanoamuang (1993b) e Shiel & Sanoamuang (1993) utilizaram SEM para distinguir, na base da ultraestrutura do mástax, espécies de Filinia. Por exemplo, para distinguir a F. teminalis (uma espécie de água temperada) de F. novaezealandiae (uma espécie de água tropical) ( Segers et al., 1996), é necessário contar o número de dentes do único do mástax; isto só pode ser feito com confiabilidade utilizando SEM. A frequente indisponibilidade deste equipamento é um obstáculo aos estudos taxonômicos de Rotifera no Brasil.

O conhecimento sobre a taxonomia morfológica deve-se aliar à ecologia e taxonomia molecular para aumentar a precisão dos diagnósticos. Silva & Matsumura-Tundisi (2005) sugeriram marcadores moleculares, ITS2 (Espaço transcrito interno 2) para Copepoda como auxílio a taxonomia tradicional. Esta abordagem pode ser também útil para os cladóceros ( Abreu et al., 2010). Em relação aos rotíferos, estudos desta categoria demonstraram que existem espécies crípticas em várias morfoespécies, como, por exemplo, Brachionus calyciflorus ( Gilbert & Walsh, 2005). Mais estudos deste tipo são necessários no Brasil.

Um fator que dificulta a taxonomia dos rotíferos é o alto grau de plasticidade fenotípico em morfologia de vários gêneros, como Brachionus e Keratella (Pejler, 1977), com a descrição de elevados números de subespécies, formas e variedades, de relações taxonômicas confusas. Assim, características utilizadas na taxonomia podem variar em relação às características do ambiente, como temperatura e predadores ( Sanoamuang, 1993a; Gilbert, 2011). Estudos espaço-temporais de biometria de populações destas formas podem ser importantes no esclarecimento de suas posições taxonômicas ( Roche, 1993; Giri & José de Paggi, 2006).

Finalmente, a necessidade de chaves de identificação em português é grande; a chave mais comumente usada ainda é de Koste (1978) que, além de antiquada, é na língua alemã. As chaves mais atualizadas de Segers (1995), Nogrady et al. (1995), De Smet (1996), De Smet & Pourriot (1997), Ricci & Melone (2000), e Nogrady & Segers (2002) são em inglês, e assim mais acessível. Porém, uma chave no modelo de El Moor-Loureiro (1997) para Cladocera seria útil em estudos taxonômicos de Rotifera no Brasil.

Tab. II
Lista dos táxons encontrados nas localidades do Mato Grosso do Sul, Brasil ( Tab. I). Táxons não reconhecidos por Segers (2007) são indicados pelo *.

Táxon

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DIGONONTA (=BDELLOIDEA)

HABROTROCHIDAE

Habrotrocha angusticollis (Murray, 1905)

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PHILODINIDAE

Dissotrocha aculeata (Ehrenberg, 1832)

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D. aculeata aculeata (Ehrenberg, 1832)

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*D. aculeata björki (Berzins, 1982) (= Dissotrocha bjoerki Bērziņš, 1982)

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D. aculeata inserta Bērziņš, 1982

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*D. macrodactyla (Ehrenberg, 1838)

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D. macrostyla (Ehrenberg, 1838)

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D. schlienzi Hauer, 1956

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Philodina megalotrocha Ehrenberg, 1832

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P. rugosa Bryce, 1903

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Pleuretra brycei (Weber, 1898)

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P. humerosa (Murray, 1905)

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Rotaria neptunia (Ehrenberg, 1830)

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R. rotatoria (Pallas, 1766)

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R. sordida (Western, 1893)

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R. tardigrada (Ehrenberg, 1830)

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MONOGONONTA

ASPLANCHNIDAE

Asplanchna brightwelli Gosse, 1850

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Asplanchna priodonta Gosse, 1850

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Asplanchna sieboldi (Leydig, 1854)

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Harringia rousseleti de Beauchamp, 1912

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ATROCHIDAE

Cupelopagis vorax (Leidy, 1857)

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BRACHIONIDAE

Anuraeopsis fissa Gosse, 1851

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Anuraeopsis navicula Rousselet, 1911

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Brachionus angularis Gosse, 1851

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B. bidentatus Anderson, 1889

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B. budapestinensis Daday, 1885

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B. calyciflorus Pallas, 1766

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*B. calyciflorus f. spinosus Rousselet, 1901

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B. caudatus Barrois & Daday, 1894

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*B. caudatus f. austrogenitus Ahlstrom, 1940

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*B. caudatus f. insuetus Ahlstrom, 1940

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*B. caudatus f. majusculus Ahlstrom, 1940)

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*B. caudatus f. personatus Ahlstrom 1940 (= Brachionus ahlstromi Lindeman, 1939)

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*B. chelonis

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B. dimidiatus f. inermis Bryce, 1931

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B. dolobratus Harring, 1914

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B. falcatus Zacharias, 1898

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*B. forficula forficula Wierzejski, 1891

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B. havanaensis Rousselet, 1911

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*B. mirabilis Daday, 1897 (= Brachionus quadridentatus mirabilis Daday, 1897)

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B. mirus Daday, 1905

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*B. mirus angustus Koste, 1972 (= Brachionus mirus Daday, 1905)

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*B. mirus f. laticaudatus Paggi, 1973

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*B. mirus reductus Koste, 1972 (= Brachionus mirus Daday, 1905)

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B. quadridentatus Hermann, 1783

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B. quadridentatus quadridentatus Hermann, 1783

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B. quadridentatus melhemi Barrois & Daday, 1894

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B. quadridentatus mirabilis Daday, 1897

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B. rubens Ehrenberg, 1838

B. satanicus Rousselet, 1913

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B. urceolaris Müller, 1773

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*B. urceolaris amazonica Koste & Robertson, 1983

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Táxon

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*B. cf. urceus (Linnaeus, 1758)

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Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908)

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Keratella americana Carlin, 1943

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*K. americana hispida Lauterborn, 1898

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K. cochlearis (Gosse, 1851)

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K. cochlearis cochlearis (Gosse, 1851)

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*K. cochlearis f. macracantha (Lauterborn, 1900)

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*K. cochlearis var. tecta f. micracantha (Lauterborn, 1900)

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*K. cochlearis var. robusta (Lauterborn, 1900)

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K. lenzi Hauer, 1953

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K. paludosa (Lucks, 1912)

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K. tropica (Apstein, 1907)

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*K. tropica tropica (Apstein, 1907)

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*K. tropica f. aspina (Fadeew, 1927)

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*K. tropica f. taurocephalaKoste, 1978

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K. valga (Ehrenberg, 1834)

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Notholca acuminata (Ehrenberg, 1832)

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Plationus patulus (Müller, 1786)

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P. patulus patulus (Müller, 1786)

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P. patulus macracanthus (Daday, 1905)

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*P. macracanthus (Daday, 1905)

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Platyias leloupi Gillard, 1957

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P. quadricornis (Ehrenberg, 1832)

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*P. quadricornis var. brevispinus Daday, 1905

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P. quadricornis quadricornis (Ehrenberg, 1832)

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COLLOTHECIDAE

Collotheca campanulata (Dobie, 1849)

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Collotheca ornata (Ehrenberg, 1832)

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Collotheca tenuilobata (Anderson, 1889)

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CONOCHILIDAE

Conochilus coenobasis (Skorikov, 1914)

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Conochilus dossuarius Hudson, 1885

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Conochilus natans (Seligo, 1900)

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Conochilus unicornis Rousselet, 1892

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DICRANOPHORIDAE

Aspelta cf. angusta Harring & Myers, 1928

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*Dicranophoroides claviger (Hauer, 1965)

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Dicranophoroides caudatus (Ehrenberg, 1834)

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*D. caudatus brasiliensis Koste, 1972 [= Dicranophoroides caudatus (Ehrenberg, 1834)]

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Dicranophorus epicharis Harring & Myers, 1928

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Dicranophorus forcipatus (Müller, 1786)

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Dicranophorus grandis (Ehrenberg, 1832)

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Dicranophorus hercules Wiszniewski, 1932

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Dicranophorus kostei Pourriot & Zoppi de Roa, 1981

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Dicranophorus cf. robustus Harring & Myers, 1928

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Dicranophorus tegillus Harring & Myers, 1928

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Encentrum felis (Müller, 1773)

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Encentrum longisepes Wulfert, 1936

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Encentrum saundersiae (Hudson, 1885)

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* Paradicranophorus wockei Koste, 1961 [= de Kostea wockei (Koste, 1961)]

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EPIPHANIDAE

Epiphanes clavulata (Ehrenberg, 1832)

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Epiphanes macroura (Barrois & Daday, 1894)

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Mikrocodides robustus (Glascott, 1893)

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EUCHLANIDAE

Beauchampiella eudactylota (Gosse, 1886)

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Dipleuchlanis propatula (Gosse, 1886)

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* D. propatula f. macrodactyla (Hauer, 1965)

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Euchlanis deflexa (Gosse, 1851)

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Euchlanis dilatata Ehrenberg, 1832

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Euchlanis dilatata dilatata Ehrenberg, 1832

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Euchlanis dilatata lucksiana Hauer, 1930

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Euchlanis incisa Carlin, 1939

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Euchlanis incisa mucronata Ahlstrom, 1934

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Euchlanis meneta Myers, 1930

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Euchlanis oropha Gosse, 1887

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Euchlanis triquetra Ehrenberg, 1838

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*Tripleuchlanis plicata plicata (Levander, 1894) [= Tripleuchlanis plicata (Levander, 1894)]

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FILINIIDAE

Filinia longiseta (Ehrenberg, 1834)

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*F. longiseta longiseta (Ehrenberg, 1834)

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*F. longiseta var. limnetica (Zacharias, 1893)

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*F. longiseta var. saltator (Gosse, 1886)

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F. cf. novaezealandiaeShiel & Sanoamuang, 1993

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F. opoliensis (Zacharias, 1898)

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F. pejleri Hutchinson, 1964

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F. saltator (Gosse, 1886)

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F. terminalis (Plate, 1886)

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FLOSCULARIIDAE

Beauchampia crucigera (Dutrochet, 1812)

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Floscularia melicerta (Ehrenberg, 1832)

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F. pedunculata (Joliet, 1883)

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F. ringens (Linnaeus, 1758)

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Limnias ceratophylli Schrank, 1803

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L. melicerta Weisse, 1848

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*Octotrocha speciosa Thorpe, 1893

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Ptygura furcillata (Kellicott, 1889)

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P. linguata Edmondson, 1939

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P. longicornis (Davis, 1867)

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P. melicerta Ehrenberg, 1832

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P. melicerta ctenoida Koste & Tobias, 1990

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P. pedunculata Edmondson, 1939

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P. velata (Gosse, 1851)

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Sinantherina ariprepes Edmondson, 1939

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S. procera (Thorpe, 1893)

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S. semibullata (Thorpe, 1893)

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S. socialis (Linnaeus, 1758)

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S. spinosa (Thorpe, 1893)

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GASTROPODIDAE

Ascomorpha cf. agilis Zacharias, 1893

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Ascomorpha ecaudis Perty, 1850

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Ascomorpha klementi Hauer, 1965

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Ascomorpha minima Hofsten, 1909

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Ascomorpha ovalis (Bergendal, 1892)

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Ascomorpha saltans Bartsch, 1870

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Gastropus hyptopus (Ehrenberg, 1838)

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Gastropus stylifer (Imhof, 1891)

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HEXARTHRIDAE

Hexarthra intermedia (Wiszniewski, 1929)

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Hexarthra intermedia brasiliensis Hauer, 1953

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Hexarthra intermedia intermedia (Wiszniewski, 1929)

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Hexarthra mira (Hudson, 1871)

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ITURIDAE

Itura chamadis Harring & Myers, 1928

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Itura viridis (Stenroos, 1898)

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LECANIDAE

L. aculeata (Jakubski, 1912)

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*L. althausi Rudescu, 1960

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L. amazônica (Murray, 1913)

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L. arcuata (Bryce, 1891)

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Lecane bifurca (Bryce, 1892)

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L. bulla (Gosse, 1851)

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L. bulla bulla (Gosse, 1851)

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L. bulla goniata (Harring & Myers, 1926)

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*Lecane bulla styrax (Harring & Myers, 1926)

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L. closterocerca (Schmarda, 1859)

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*L. closterocerca amazonica Koste, 1978

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X

*L. closterocerca f. wulferti (Hauer, 1956)

X

X

L. copeis (Harring & Myers, 1926)

X

L. cornuta (Müller, 1786)

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X

X

X

X

*L. cornuta var. rotunda (Fadeew, 1927)

X

L. crenata (Harring, 1913)

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X

Lecane crepida Harring, 1914

X

L. curvicornis (Murray, 1913)

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X

*L. curvicornis nitida (Murray, 1913)

X

X

L. doryssa Harring, 1914

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X

L. elegans Harring, 1914

X

X

L. elsa Hauer, 1931

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X

X

L. eutarsa Harring & Myers, 1926

X

L. furcata (Murray, 1913)

X

X

X

X

L. galeata (Bryce, 1892)

X

X

L. grandis (Murray, 1913)

X

L. haliclysta Harring & Myers, 1926

X

X

X

L. hamata (Stokes, 1896)

X

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X

X

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X

X

X

L. hastata (Murray, 1913)

X

Lecane hornemanni (Ehrenberg, 1834)

X

L. imbricata Carlin, 1939

X

L. inermis (Bryce, 1892)

X

X

L. inopinata Harring & Myers, 1926

X

X

X

L. leontina (Turner, 1892)

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X

L. ludwigii (Eckstein, 1883)

X

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X

*L. ludwigii ludwigii (Eckstein, 1883)

X

*L. ludwigii f. ohioensis (Herrick 1885)

X

L. luna (Müller, 1776)

X

X

X

X

X

X

L. lunaris (Ehrenberg, 1832)

X

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X

X

X

*L. lunaris crenata (Harring, 1913)

X

L. marchantaria Koste & Robertson, 1983

X

L. margarethae Segers, 1991

X

X

L. melini Thomasson, 1953

X

L. monostyla (Daday, 1897)

X

X

X

*L. murrayi Hauer, 1965 [= Lecane amazonica (Murray, 1913)]

X

X

X

X

L. nana (Murray, 1913)

X

X

L. obtusa (Murray, 1913)

X

L. ohioensis (Herrick, 1885)

X

L. papuana (Murray, 1913)

X

X

X

X

X

X

L. pertica Harring & Myers, 1926

X

L. proiecta Hauer, 1956

X

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X

X

L. punctata (Murray, 1913)

X

L. pyriformis (Daday, 1905)

X

X

X

X

X

L. quadridentata (Ehrenberg, 1832)

X

X

X

X

X

X

L. remanei Hauer, 1964

X

L. rhytida Harring & Myers, 1926

X

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X

X

L. robertsonae Segers, 1993

X

X

X

L. sagula Harring & Myers, 1926

X

L.scutata (Harring & Myers, 1926)

X

X

X

X

L.signifera (Jennings, 1896)

X

X

X

L.signifera ploenensis (Voigt, 1902)

X

L. stenroosi (Meissner, 1908)

X

L. stichaea Harring, 1913

X

X

X

*L. submagna De Ridder, 1960 [= Lecane luna (Müller, 1776)]

X

X

L. subtilis Harring & Myers, 1926

X

X

L. tenuiseta Harring, 1914

X

L. thalera (Harring & Myers, 1926)

X

X

X

L. theinemanni (Hauer, 1938)

X

X

X

L. undulata Hauer, 1938

X

L. unguitata (Fadeev, 1925)

X

L. ungulata (Gosse, 1887)

X

X

X

X

Táxon

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

*L. wulferti Hauer, 1956 [= Lecane closterocerca (Schmarda, 1859)]

X

LEPADELLIDAE

Colurella obtusa (Gosse, 1886)

X

X

X

X

Colurella cf. salina Althaus, 1957

X

Colurella uncinata (Müller, 1773)

X

X

Colurella cf. uncinata

X

Colurella uncinata bicuspidata (Ehrenberg, 1832)

X

X

Lepadella acuminata (Ehrenberg, 1834)

X

L. benjamini Harring, 1916

X

X

X

L. cristata (Rousselet, 1893)

X

X

X

L. dactyliseta (Stenroos, 1898)

X

L. donneri Koste, 1972

X

X

X

X

X

X

*L. ehrenbergi (Perty, 1850)

X

*L. heterodactyla Fadeew, 1925

X

L. latusinus (Hilgendorf, 1899)

X

X

X

X

L. ovalis (Müller, 1786)

X

X

X

X

X

L. patella (Müller, 1773)

X

X

X

X

L. pterygoida (Dunlop, 1897)

X

L. quadricarinata (Stenroos, 1898)

X

L. quinquecostata (Lucks, 1912)

X

L. rhomboides (Gosse, 1886)

X

X

X

X

X

L. rottenburgi (Lucks, 1912)

X

L. triba Myers, 1934

X

L. triptera (Ehrenberg, 1832)

X

X

LINDIIDAE

Lindia truncata (Jennings, 1894)

X

MYTILINIDAE

Lophocharis oxysternon (Gosse, 1851)

X

Lophocaris salpina (Ehrenberg, 1834)

X

Mytilina acanthophora Hauer, 1938

X

Mytilina bisulcata (Lucks, 1912)

X

X

Mytilina crassipes (Lucks, 1912)

X

Mytilina macrocera (Jennings, 1894)

X

Mytilina mucronata (Müller, 1773)

X

Mytilina mucronata spinigera (Ehrenberg, 1830)

X

Mytilina trigona (Gosse, 1851)

X

X

X

M. cf. unguipes (Lucks, 1912)

X

Mytilina ventralis (Ehrenberg, 1830)

X

X

X

X

Mytilina ventralis brevispina (Ehrenberg, 1830)

X

*Mytilina ventralis macracantha (Gosse, 1886)

X

X

X

X

Mytilina ventralis ventralis (Ehrenberg, 1830)

X

NOTOMMATIDAE

Cephalodella anebodica Bērziņš, 1976

X

C. forficula (Ehrenberg, 1830)

X

X

C. gibba (Ehrenberg, 1830)

X

X

X

C. gigantea Remane, 1933

X

X

C. gracilis (Ehrenberg, 1830)

X

C. stenroosi Wulfert, 1937

X

C. sterea (Gosse, 1887)

X

X

X

C. tenuiseta (Burn, 1890)

X

X

Enteroplea lacustris Ehrenberg, 1830

X

Eosphora anthadis Harring & Myers, 1922

X

E. thoides Wulfert, 1935

X

Monommata actices Myers, 1930

X

M. enedra Myers, 1930

X

M. cf. longiseta (Müller, 1786)

X

M. maculata Harring & Myers, 1930

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X

Notommata allantois Wulfert, 1935

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X

N. cerberus (Gosse, 1886)

X

N. copeus Ehrenberg, 1834

X

X

X

N. cyrtopus Gosse, 1886

X

N. falcinella Harring & Myers, 1922

X

N. glyphura Wulfert, 1935

X

X

X

N. haueri Wulfert, 1939

X

N. pachyura (Gosse, 1886)

X

X

Táxon

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

N. prodota Myers, 1933

X

N. tripus Ehrenberg, 1838

X

Taphrocampa selenura Gosse, 1887

X

X

SCARIDIIDAE

Scaridium longicaudum (Müller, 1786)

X

X

X

X

X

SYNCHAETIDAE

*Ploesoma africana Wulfert, 1961

X

P. lenticulare Herrick, 1885

X

P. truncatum (Levander, 1894)

X

X

Polyarthea dolichoptera Idelson, 1925

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X

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X

P. vulgaris Carlin, 1943

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X

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X

X

X

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*P. vulgaris var. longiremisKoste, 1978 (= Polyarthra longiremis Carlin, 1943)

X

P. remata Skorikov, 1896

X

X

X

Synchaeta grandis Zacharias, 1893

X

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S. littoralis Rousselet, 1902

X

S. longipes Gosse, 1887

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X

S. pectinata Ehrenberg, 1832

X

X

X

X

S. stylata Wierzejski, 1893

X

X

X

TESTUDINELLIDAE

Pompholyx complanata Gosse, 1851

X

X

P. cf. sulcata Hudson, 1885

X

P. cf. triloba Pejler, 1957

X

Testudinella ahlstromi Hauer, 1956

X

X

X

X

T. amphora Hauer, 1938

X

X

T. cf. brevicaudata Yamamoto, 1951

X

X

T. emarginula (Stenroos, 1898)

X

X

T. greeni Koste, 1981

X

T. hauerensis Gillard, 1967

X

X

T. mucronata (Gosse, 1886)

X

X

*T. mucronata hauerensis (Gillard, 1967)

X

X

T. ohlei Koste, 1972

X

T. patina (Hermann, 1783)

X

X

X

X

X

X

X

X

X

X

X

X

*T. patina f. intermedia Anderson, 1889

X

X

T. tridentata Smirnov, 1931

X

*T. tridentata amazonica Thomasson, 1971

X

TETRASIPHONIDAE

Tetrasiphon hydrocora Ehrenberg, 1840

X

TRICHOCERCIDAE

Trichocerca bicristata (Gosse, 1887)

X

X

X

X

X

X

X

X

X

*T. bicristata var. mucosa (Stokes, 1896)

X

T. bidens (Lucks, 1912)

X

X

X

T. cf. brachyura (Gosse, 1851)

X

T. braziliensis (Murray, 1913)

X

X

X

X

X

X

X

T. capucina (Wierzejski & Zacharias, 1893)

X

X

T. chattoni (de Beauchamp, 1907)

X

X

X

T. cylindrica (Imhof, 1891)

X

X

T. cylindrica chattoni (de Beauchamp, 1907)

X

X

T. dixon-nuttali (Jennings, 1903)

X

T. elongata (Gosse, 1886)

X

X

X

T. flagellata Hauer, 1937

X

T. gracilis (Tessin, 1890)

X

X

T. heterodactyla (Tschugunoff, 1921)

X

T. iernis (Gosse, 1887)

X

T. insignis (Herrick, 1885)

X

X

X

X

X

T. longiseta (Schrank, 1802)

X

X

X

X

T. macera (Gosse, 1886)

X

T. myersi (Hauer, 1931)

X

T. plaka Myers, 1938

X

T. porcellus (Gosse, 1851)

X

T. pusilla (Jennings, 1903)

X

X

X

T. rattus (Müller, 1776)

X

X

X

T. rousseleti (Voigt, 1902)

X

X

T. ruttneri Donner, 1953

X

X

T. scipio (Gosse, 1886)

X

T. similis (Wierzejski, 1893)

X

X

X

X

X

Táxon

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

T. similis grandis Hauer, 1965

X

T. similis similis (Wierzejski, 1893)

X

X

T. stylata (Gosse, 1851)

X

X

X

X

T. tenuior (Gosse, 1886)

X

X

X

T. tigris (Müller, 1786)

X

X

X

X

TRICHOTRIIDAE

Macrochaetus collinsi (Gosse, 1867)

X

X

X

X

X

M. longipes Myers, 1934

X

M. multispinosus Myers, 1934

X

X

M. sericus (Thorpe, 1893)

X

X

X

X

X

M. subquadratus (Perty, 1850)

X

Trichotria tetractis (Ehrenberg, 1830)

X

X

X

X

T. tetractis similis (Stenroos, 1898)

X

X

X

TROCHOSPHAERIDAE

Horaella brehmi Donner, 1949

X

H. thomassoni Koste, 1973

X

Trochosphaera aequatorialis Semper, 1872

X

X

Riqueza de táxons

51

154

98

17

148

52

9

21

20

37

33

31

10

27

244

Agradecimentos

A Fundação de Apoio ao Desenvolvimento do Ensino, Ciências e Tecnologia do Estado de Mato Grosso do Sul (FUNDECT) e a Superintendência de Ciências e Tecnologia do Estado de Mato Grosso do Sul (SUCITEC/MS) pelo convite de participação neste fascículo especial da Iheringia, Série Zoologia e o suporte financeiro para sua publicação.

Referências Bibliográficas

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  2017

Histórico

• Recebido
  01 Dez 2016
• Aceito
  06 Fev 2017