Acessibilidade / Reportar erro

Efeito do pH do solo rizosférico e não rizosférico de plantas de soja inoculadas com Bradyrhizobium japonicum na absorção de boro, cobre, ferro, manganês e zinco

Effect of pH of rhizospheric and non-rhizospheric soil on boron, copper, iron, manganese, and zinc uptake by soybean plants inoculated with Bradyrhizobium japonicum

Resumos

Alterações no pH da rizosfera de plantas fixadoras de N2 parecem exercer papel fundamental na absorção de micronutrientes que têm sua disponibilidade dependente de alterações da acidez do solo. Estudaram-se variações na absorção de B, Cu, Fe, Mn e Zn durante o ciclo de crescimento e desenvolvimento da soja, induzidas pela fixação biológica de N2 e pelo pH inicial de amostras de dois solos (um LV argiloso e outro arenoso), em um ensaio conduzido em casa de vegetação. Essas amostras foram incubadas com doses de CaCO3 + MgCO3 (4:1) para elevar o pH (H2O) a valores de 5,2, 5,6, 6,2 e 6,6 no solo argiloso e 5,3, 5,6, 5,9 e 6,3 no solo arenoso. Após 60 dias de incubação, essas amostras receberam 450 mg dm-3 de P e 120 mg dm-3 de K no solo. Sementes de soja (Glycine max (L) Merrill), variedade Paranaíba, inoculadas com Bradyrhizobium japonicum, estirpes SEMIA 587 e SEMIA 5019, foram colocadas para germinar. Foram cultivadas quatro plantas por vaso (2,2 dm³) e colhidas aos 16, 20, 24, 28, 32, 36, 40, 46 e 54 dias após a emergência. Determinaram-se o pH da rizosfera (pHr), o pH do solo entre raízes - não rizosférico (pHnr), os teores de B, Cu, Fe, Mn e de Zn na parte aérea e raiz, o N apenas na parte aérea, o número de nódulos e o peso da matéria seca de parte aérea, raiz e nódulos. Observou-se que as mudanças ocorridas no pHr e pHnr foram dependentes do pH inicial dos solos (pHs) e da fixação biológica de N2. O acúmulo de B e de Fe na parte aérea não foi alterado pelos valores de pHr, modificados em função do pHs, exceto para o Fe no solo argiloso. Todavia, aumentos significativos no acúmulo destes nutrientes na parte aérea ocorreram com o aparecimento dos nódulos, a partir de 24 dias após a emergência. Para Cu, Mn e Zn, as diferenças apareceram sobretudo quanto ao pHs. O conteúdo de micronutrientes na planta revelou-se sensível a mudanças no pH rizosférico, principalmente após a nodulação.

acidez; fixação biológica; micronutrientes


Changes in the pH of the rhizosphere of N2-fixing plants seem to play a key role in the uptake of micronutrient whose availability depends on changes in soil acidity. Variations in the B, Cu, Fe, Mn, and Zn uptake were studied during soybean development and growth cycle under the influence of biological N2 fixation and the initial pH of two soils samples (a clayey and a sandy Yellow Latosol; Oxisols), in a greenhouse experiment. These samples were incubated with rates of CaCO3 + MgCO3 (4:1) to raise the pH (H2O) to 5.2, 5.6, 6.2, and 6.6 in the clay soil and to 5.3, 5.6, 5.9, and 6.3, respectively, in the sandy soil. After 60 days of incubation, the soil samples were fertilized with 450 mg dm-3 P and 120 mg dm-3 K. Soybean (Glycine max (L) Merrill) seeds of the variety Paranaíba, inoculated with the strains SEMIA 587 and SEMIA 5019 of Bradyrhizobium japonicum were germinated. Four plants per pot (2.2 dm³) were grown and harvested 16, 20, 24, 28, 32, 36, 40, 46, and 54 days after emergence. The following variables were measured: pH of the rhizosphere (pHr), the non-rhizospheric soil pH (between roots) (pHnr), the B, Cu, Fe, Mn and Zn contents in shoots and roots, N in the shoot, number of nodules, and the shoot, root and nodule dry matter. It was observed that changes in pHr and pHnr depended on the initial soil pH (pHs) and on biological N2 fixation. The accumulation of B and Fe in the shoots was not influenced by the pHr values modified depending on the pH, except for Fe in the clay soil. However, nodules appeared 24 days after emergence and nutrient accumulation was significantly increased from then on. For Cu, Mn and Zn uptake seemed to be affected mainly by pHr. The micronutrient content in the plants proved to be sensitive to changes in the rhizospheric pH, particularly after nodulation.

acidity; biological fixation; micronutrients


SEÇÃO IV - FERTILIDADE DO SOLO E NUTRIÇÃO DE PLANTAS

Efeito do pH do solo rizosférico e não rizosférico de plantas de soja inoculadas com Bradyrhizobium japonicum na absorção de boro, cobre, ferro, manganês e zinco(1 (1 ) Parte da Tese de Doutorado do primeiro autor apresentada ao Departamento de Fitotecnia da Universidade Federal de Viçosa - UFV. )

Effect of pH of rhizospheric and non-rhizospheric soil on boron, copper, iron, manganese, and zinc uptake by soybean plants inoculated with Bradyrhizobium japonicum

Luiz Humberto SouzaI; Roberto Ferreira NovaisII; Víctor Hugo Alvarez V.II; Ecila Mercês de Albuquerque VillaniIII

IProfessor do Departamento de Fitotecnia e Zootecnia da Universidade do Sudoeste da Bahia - UESB. Caixa Postal 95, CEP 45083-900 Vitória da Conquista (BA). E-mail: lh.luizhumberto@gmail.com

IIProfessor do Departamento de Solos da Universidade Federal de Viçosa - UFV. CEP 36570-000 Viçosa (MG). E-mails: rfnovais@ufv.br; vhav@ufv.br

IIIEngenheira-Agrônoma, Pós-Doutoranda em Solos e Nutrição de Plantas. Bolsista da FAPEMIG. E-mail: ecilavillani@yahoo.com.br

RESUMO

Alterações no pH da rizosfera de plantas fixadoras de N2 parecem exercer papel fundamental na absorção de micronutrientes que têm sua disponibilidade dependente de alterações da acidez do solo. Estudaram-se variações na absorção de B, Cu, Fe, Mn e Zn durante o ciclo de crescimento e desenvolvimento da soja, induzidas pela fixação biológica de N2 e pelo pH inicial de amostras de dois solos (um LV argiloso e outro arenoso), em um ensaio conduzido em casa de vegetação. Essas amostras foram incubadas com doses de CaCO3 + MgCO3 (4:1) para elevar o pH (H2O) a valores de 5,2, 5,6, 6,2 e 6,6 no solo argiloso e 5,3, 5,6, 5,9 e 6,3 no solo arenoso. Após 60 dias de incubação, essas amostras receberam 450 mg dm-3 de P e 120 mg dm-3 de K no solo. Sementes de soja (Glycine max (L) Merrill), variedade Paranaíba, inoculadas com Bradyrhizobium japonicum, estirpes SEMIA 587 e SEMIA 5019, foram colocadas para germinar. Foram cultivadas quatro plantas por vaso (2,2 dm3) e colhidas aos 16, 20, 24, 28, 32, 36, 40, 46 e 54 dias após a emergência. Determinaram-se o pH da rizosfera (pHr), o pH do solo entre raízes - não rizosférico (pHnr), os teores de B, Cu, Fe, Mn e de Zn na parte aérea e raiz, o N apenas na parte aérea, o número de nódulos e o peso da matéria seca de parte aérea, raiz e nódulos. Observou-se que as mudanças ocorridas no pHr e pHnr foram dependentes do pH inicial dos solos (pHs) e da fixação biológica de N2. O acúmulo de B e de Fe na parte aérea não foi alterado pelos valores de pHr, modificados em função do pHs, exceto para o Fe no solo argiloso. Todavia, aumentos significativos no acúmulo destes nutrientes na parte aérea ocorreram com o aparecimento dos nódulos, a partir de 24 dias após a emergência. Para Cu, Mn e Zn, as diferenças apareceram sobretudo quanto ao pHs. O conteúdo de micronutrientes na planta revelou-se sensível a mudanças no pH rizosférico, principalmente após a nodulação.

Termos de indexação: acidez, fixação biológica, micronutrientes.

SUMMARY

Changes in the pH of the rhizosphere of N2-fixing plants seem to play a key role in the uptake of micronutrient whose availability depends on changes in soil acidity. Variations in the B, Cu, Fe, Mn, and Zn uptake were studied during soybean development and growth cycle under the influence of biological N2 fixation and the initial pH of two soils samples (a clayey and a sandy Yellow Latosol; Oxisols), in a greenhouse experiment. These samples were incubated with rates of CaCO3 + MgCO3 (4:1) to raise the pH (H2O) to 5.2, 5.6, 6.2, and 6.6 in the clay soil and to 5.3, 5.6, 5.9, and 6.3, respectively, in the sandy soil. After 60 days of incubation, the soil samples were fertilized with 450 mg dm-3 P and 120 mg dm-3 K. Soybean (Glycine max (L) Merrill) seeds of the variety Paranaíba, inoculated with the strains SEMIA 587 and SEMIA 5019 of Bradyrhizobium japonicum were germinated. Four plants per pot (2.2 dm3) were grown and harvested 16, 20, 24, 28, 32, 36, 40, 46, and 54 days after emergence. The following variables were measured: pH of the rhizosphere (pHr), the non-rhizospheric soil pH (between roots) (pHnr), the B, Cu, Fe, Mn and Zn contents in shoots and roots, N in the shoot, number of nodules, and the shoot, root and nodule dry matter. It was observed that changes in pHr and pHnr depended on the initial soil pH (pHs) and on biological N2 fixation. The accumulation of B and Fe in the shoots was not influenced by the pHr values modified depending on the pH, except for Fe in the clay soil. However, nodules appeared 24 days after emergence and nutrient accumulation was significantly increased from then on. For Cu, Mn and Zn uptake seemed to be affected mainly by pHr. The micronutrient content in the plants proved to be sensitive to changes in the rhizospheric pH, particularly after nodulation.

Index terms: acidity, biological fixation, micronutrients.

INTRODUÇÃO

Nas últimas décadas, os micronutrientes passaram a despertar maior interesse dos técnicos e dos agricultores brasileiros. Paralelamente, surgiram estudos, em maior volume, sobre deficiência e toxidez causadas por esses nutrientes em diferentes culturas. De modo geral, essas deficiências estão associadas à calagem excessiva e ao consequente elevado valor do pH do solo e, em alguns casos, à pobreza do material de origem dos solos (Abreu et al., 2007). Alterações no pH de plantas fixadoras de N2 parecem exercer papel fundamental na absorção de micronutrientes que têm sua disponibilidade dependente de alterações do pH do solo, particularmente daquele da rizosfera.

Maiores mudanças no pH da rizosfera (pHr) são atribuídas à extrusão e absorção de H+ ou de HCO3-, respiração da raiz, liberação de exsudatos de baixa massa molecular (ácidos orgânicos, açúcares, fenóis, etc.) e, especialmente, à relação entre a absorção de cátions e a de ânions (Hinsinger et al., 2003; Taiz & Zeiger, 2004). Dada a variação espacial (área superficial do sistema radicular) e temporal (mudanças induzidas pelo sistema radicular) quanto aos nutrientes absorvidos pelas plantas, verifica-se que elas raramente absorvem quantidades equivalentes de cátions e ânions. Como as raízes devem manter equilíbrio eletroquímico com o meio (rizosfera) e constância no pH intracelular, esses desbalanços na absorção iônica devem ser compensados pela simultânea extrusão de H+, quando em situações de predomínio da absorção de cátions, ou de liberação de OH- ou HCO3- ou RCOO-, quando do predomínio de ânions absorvidos. A extensão desse processo varia entre espécies e com o status nutricional da planta (Römheld & Marschner, 1984; Jungk, 1991).

Na prática, a alteração do pH rizosférico (relação H+/HCO3-) pode ser influenciada pela aplicação de fertilizantes, especialmente fontes de N, se amoniacal (N-NH4+) ou nítrica (N-NO3-). De acordo com Marschner & Römheld (1983), a absorção de N-NH4+ promove o efluxo de H+, e a absorção de N-NO3-, de HCO3-. Entretanto, a proporção entre N-NO3- e N-NH4+ absorvidos varia consideravelmente entre espécies e entre cultivares. Em plantas que fixam N2 simbioticamente, a origem principal do N é o molecular (N2), causando desbalanço na proporção de cátions/ânions (N-NO3- do solo, muito menos absorvido nessas condições), passando a planta a absorver mais cátions e a liberar H+ predominantemente (Marschner, 1995).

Presume-se que a diferença no pHr entre espécies de plantas nutridas com N-NO3- está relacionada com a capacidade de troca de cátions (CTC) do sistema radicular e, ou, de sítios de redução do NO3-. Com o aumento da CTC de raiz (dicotiledônea > monocotiledônea), a razão de absorção cátion/ânion é comumente alterada em favor de cátions e o pHr decresce (Hinsiger et al., 2003). Em leguminosas, a combinação de alta CTC com a fixação de N2 leva a um efetivo abaixamento do pHr.

Em solos ácidos, o aumento do pHr e o consequente decréscimo na atividade do Al podem ser considerados mecanismos de adaptação de espécies de plantas e de variedades a condições adversas de acidez do solo. Aumentos de pHr podem apresentar efeitos benéficos ou maléficos no crescimento de plantas. Em solos alcalinos ou que receberam calagem, o aumento do pH pode levar à menor disponibilidade de micronutrientes, como Fe, Mn, Cu e Zn (Souza et al., 2007). Novais et al. (1989), em Latossolo Vermelho-Amarelo com pH original de 6,7, relacionaram o aparecimento de sintomas de deficiência de Mn em plantas de soja com o alto pH do solo. Em solos ácidos, o aumento do pHr pode resultar em decréscimo da atividade do Al e, em alguns casos, também de Mn, bem como no aumento da disponibilidade de alguns nutrientes (Silva & Mendonça, 2007).

O objetivo deste trabalho foi estudar variações na absorção de B, Cu, Fe, Mn e Zn ao longo do ciclo inicial de crescimento de plantas de soja, como consequência de mudanças ocorridas no pH da rizosfera, induzidas pela fixação do N2 e pelo pH inicial do solo.

MATERIAL E MÉTODOS

Foram utilizadas amostras da camada superficial, de 0-20 cm, de um solo originário de Viçosa-MG (LV argiloso) e um de Três Marias-MG (LV arenoso), provenientes do Banco de Solos do Departamento de Solos da Universidade Federal de Viçosa - UFV (Quadro 1).


Foram adicionadas doses de CaCO3 + MgCO3 (4:1) correspondentes a 1,065, 2,085, 3,125 e 4,715 g dm-3 ao solo argiloso e 0,0, 0,144, 0,469 e 0,916 g dm-3 ao solo arenoso, para obtenção de quatro níveis de pH nos solos, na faixa de valores entre 5,0 e 6,5. As doses necessárias para atingir os valores de pH foram obtidas por meio de curvas de incubação dos solos. Amostras de 5,0 dm3 de solos foram incubadas em sacos plásticos, por 60 dias, em casa de vegetação, com teor de umidade de 80 % da capacidade de campo. Após esse período, foram determinados os valores de pH em água, na relação 1:2,5, encontrando-se: pH1 = 5,2, pH2 = 5,6, pH3 = 6,2 e pH4 = 6,6 no solo argiloso e pH1 = 5,3, pH2 = 5,6, pH3 = 5,9 e pH4 = 6,4 no solo arenoso.

Antes de serem acondicionadas em vasos, sem furos, as amostras de 2,2 dm3 receberam, em dose única, 450 mg dm-3 de P e 120 mg dm-3 de K de solo, nas formas superfostato simples e KCl, respectivamente. Nitrogênio e micronutirentes não foram aplicados. Foram utilizadas sementes de soja [Glycine max (L) Merrill], variedade Paranaíba, provenientes do banco de germoplasma da UFV, passadas em peneira de nº 15 e retidas na de nº 14. Antes da semeadura, as sementes foram inoculadas com Bradyrhizobium japonicum, estirpes SEMIA 587 e SEMIA 5019, na proporção de 10 g do inoculante comercial para 0,5 kg de sementes com, aproximadamente, 106 células viáveis por mL. Foram colocadas para germinar 10 sementes por vaso, deixando-se quatro plantas após o desbaste. Nove coletas de plantas foram realizadas para as análises, aos 16, 20, 24, 28, 32, 36, 40, 46 e 54 dias após a emergência.

A umidade dos solos nos vasos foi mantida próxima a 80 % da capacidade de campo, aplicando-se água destilada e pesando-se os vasos para recompor as diferenças.

O experimento foi conduzido em casa de vegetação, no período de agosto a outubro, com temperatura média mínima de 16 °C e máxima de 40 °C. Os tratamentos, constituídos de dois solos, quatro níveis de pH e nove coletas, no esquema fatorial 2 x 4 x 9, foram dispostos segundo o delineamento experimental em blocos casualizados, com quatro repetições. Foram colhidos 32 vasos a cada coleta.

Em cada coleta, as plantas foram cortadas rente ao solo, separando-se a parte aérea, que foi lavada em água destilada, seca em estufa a 70 °C, por 72 h, e posteriormente pesada e moída. O sistema radicular foi retirado dos vasos e separado do solo, para efetuar a determinação do pH rizosférico (pHr), pH do solo entre raízes - pH não rizosférico (pHnr) e número de nódulos.

Para determinação do pHr, 10 g de raízes mais solo aderido foram agitados em água destilada, por 1 h, na relação 1:2,5 (solo:água), e o pH, determinado após 30 min, conforme Luisi et al. (1983). Quanto à determinação do pHnr, foram retiradas amostras de solo na altura do terço médio do vaso com plantas, procedendo-se à agitação em água destilada, por 1 h, na relação 1:2,5, efetuando-se a leitura do pH após 30 min.

A determinação dos teores de Cu, Fe, Mn e Zn foi feita nos extratos obtidos da digestão nítrico-perclórica da parte aérea e do sistema radicular, por espectrofotometria de absorção atômica (Gallo et al., 1971). Antes da secagem das raízes, elas foram lavadas em água corrente, deixadas submersas em solução de NaOH 0,01 mol L-1 por 1 min, para permitir melhor retirada do solo, e passadas em água corrente e duas vezes em água destilada. Na extração do B, a digestão foi por via seca e a determinação pelo método da azometina-H (Wolf, 1989). O N total da parte aérea foi determinado pelo método micro-Kjeldahl (Concon & Soltess, 1973). Foi feita a contagem do número de nódulos e quantificação do peso de nódulos secos.

Os dados foram submetidos à análise de variância, e as médias, comparadas pelo teste de Tukey a 5 %.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Valores de pH da rizosfera e do solo entre as raízes

O pH inicial do solo (pHs) alterou de forma acentuada o pH rizosférico (pHr) em ambos os solos, com valores variando de 4,7 a 6,3, no solo argiloso, e de 4,7 a 5,6, no arenoso (Figura 1). Observou-se tendência de estabilidade do pHr até 36 dias após a emergência, aproximadamente, e queda a partir daí, até o final do experimento.


O pHs de ambos os solos alterou de forma significativa e positiva (p < 0,01) o pH do solo entre raízes (pHnr) (Figura 1). Até os 24 dias após a emergência, o pHnr aumentou, de modo geral, com a idade da planta, e, aos 40 e 36 dias após a emergência, para os solos argiloso e arenoso, respectivamente, o processo de acidificação acelerou. A acidificação ocorrida 36 dias após a emergência é coincidente com o início da mudança de fase vegetativa para a reprodutiva na soja, fase de maior atividade dos nódulos e maior fixação biológica de N2. Coincidindo com a queda do pHr, observou-se nesse período que maiores ΔpH (pHs-pHr) ocorrem em altos valores de pH, no solo argiloso (6,2 e 6,6) e no arenoso (6,3) (Figura 1). Schubert et al. (1990) afirmaram que o influxo de H+ não dependeu da maior absorção de cátions e sim da extrusão de prótons pela atividade da ATPase em solos com baixo pH; e a acidificação ocorrida na rizosfera, causada pela extrusão de prótons, não deve ser considerada resultado da fixação biológica de N2 (Zaharieva & Römheld, 1991; Rossum et al., 1994).

A extensão da acidificação depende da taxa de prótons liberados e de sua difusão no solo (Schaller, 1987). O poder-tampão da acidez dos solos influencia a difusão de H+; quanto maior esse tamponamento, menor sua difusão, gerando menores valores de ΔpH. Desse modo, foram encontradas maiores diferenças nos valores de 0,60 a 0,12 unidade de pH no solo argiloso (mais tamponado) e de 1,10 a 0,41 unidade de pH no solo arenoso (Figura 1c). Encontrou-se correlação positiva e significativa entre pHr e pHnr, sendo observados coeficientes de correlação maiores no solo argiloso que no arenoso (Quadro 2).


Produção de matéria seca da parte aérea e do sistema radicular

A produção de matéria seca da parte aérea e do sistema radicular das plantas, durante o período de 54 dias, foi diferente entre solos, observando-se maior crescimento no solo argiloso (Figura 2). A dependência da produção de matéria seca da parte aérea aos valores de pHs foi maior após 36 dias da emergência. Após esse período, as diferenças na acumulação de matéria seca tenderam a ampliar-se com a maior taxa de crescimento para as condições dos maiores valores de pH inicial: 6,6, no solo argiloso, e 6,3, no arenoso. Comportamento semelhante foi verificado para o sistema radicular, exceto no solo argiloso, que proporcionou o menor crescimento a pH 6,6; no solo arenoso, maior crescimento radicular foi observado nos valores de pH 5,9 e 6,3 (Figura 2).


Nitrogênio na parte aérea, número e matéria seca de nódulos

O acúmulo de N na parte aérea da planta mostrou diferente comportamento entre os dois solos (Figura 3). No solo argiloso, verificou-se aumento desde o início das avaliações, com pequenas variações de pH entre 5,6 e 6,6. No solo arenoso, houve dois períodos com diferentes tendências de comportamento de aumento do conteúdo de N: pequeno acréscimo desses conteúdos até 40 dias após a emergência, aproximadamente, e rápido incremento daí para frente até o final do experimento, com exceção dos valores de pHs 5,3 e 5,6.


O aparecimento de nódulos foi observado, visualmente, aos 24 dias após a emergência (Figura 2). Os valores de pHs influenciaram o número de nódulos. No solo arenoso, o pH inicial alterou o número de nódulos, principalmente aos 32 dias da emergência, observando-se maior número em pH mais elevado (pH 6,3). O solo argiloso, a pHs 6,6, apresentou pequeno aumento no número de nódulos, inferior ao dos demais tratamentos, devido, em parte, ao menor crescimento da raiz.

A produção da matéria seca de nódulos não diferiu entre solos, distinguindo-se duas etapas: a primeira até 32 dias, com pequeno aumento, e daí para frente com rápido ganho de peso. Contudo, a resposta ao pH inicial do solo, no fim do período de observação, mostrou que o maior incremento no peso de nódulo no solo argiloso foi encontrado nos valores de pH 5,2 e 5,6 e, no solo arenoso, em condições menos ácidas: pH 5,9 e 6,3 (Figura 2).

Não se verificou, inicialmente, crescimento satisfatório das plantas, ficando todas com coloração amarelada, típica do baixo suprimento de N, sobretudo no solo arenoso.

O teor de N decresceu rapidamente até 28 dias após a emergência, em razão do aparecimento tardio dos nódulos (Figura 3). No solo arenoso, no início do florescimento da soja (40 dias), nos valores de pHs 5,9 e 6,3, a fixação simbiótica de N2 aumentou sua efetividade, observada pelo rápido aumento no teor de N na planta. Uma hipótese seria que a decomposição dos nódulos poderia ter contribuído, nessa fase de crescimento das plantas, para um rápido incremento de N, observado pela redução no número de nódulos (Figura 2).

Micronutrientes na parte aérea e nas raízes

Boro

Os conteúdos de B na parte aérea e na raiz das plantas variaram entre os solos (Figura 4). As variações ocorridas nos conteúdos de B na parte aérea, em relação às mudanças no pH no solo argiloso e no arenoso, não foram significativas. O mesmo não ocorreu com o conteúdo de B na raiz (p < 0,01). O conteúdo de B na parte aérea das plantas cultivadas no solo argiloso mostrou aumento praticamente constante durante o experimento, enquanto no solo arenoso, no período de 24 a 40 dias da emergência, manteve-se estável, aumentando daí para frente, coincidindo com o início de formação dos botões florais.


O pH inicial dos solos não alterou o teor de B na parte aérea. Alguns autores mencionam que a biodisponibilidade do B é maior entre pH 5,5 e 7,5, decrescendo acima ou abaixo destes valores devido, principalmente, às reações pH-dependentes (Mortvedt, 1999). Essa resposta pode estar associada com a baixa solubilidade do B(OH)4- a pH 7. Com o abaixamento do pHr, o borato transforma-se em ácido bórico disponível para as plantas (Moraghan & Mascagni Jr., 1991).

A soja é uma planta que apresenta pouca exigência a B e, assim, constitui-se em uma planta boa indicadora da toxidez causada por esse elemento (Jones Jr., 1991). O teor de B na matéria seca das plantas de soja, neste experimento, foi de 32 e 29 mg kg-1, respectivamente no solo argiloso e no arenoso. Ambrosano et al. (1996) consideram ideal, para a soja, teor foliar de B entre 21 e 55 mg kg-1.

Nas raízes, foram verificados dois períodos de rápido incremento no conteúdo de B. O primeiro, entre 15 e 21 dias, como consequência do rápido crescimento radicular, e o segundo, aos 46 dias após a emergência, época de formação dos botões florais, período em que a planta intensifica a absorção de N e observa-se maior acidificação da rizosfera e do solo não rizosférico. Apesar de o B ser encontrado na solução do solo em forma de molécula não ionizada, B(OH)3, ele é móvel, sendo transportado principalmente por fluxo de massa (Moraghan & Mascagni Jr., 1991).

Cobre

Neste trabalho, observou-se que o conteúdo de Cu na planta apresenta uma curva semelhante à do acúmulo de matéria seca da parte aérea (Figura 5). Jarvis (1981) relacionou o incremento na translocação de Cu para a parte aérea ao aumento no suprimento de N, o que de fato ocorreu no solo arenoso nos valores de pH 5,9 e 6,3, aos 40 dias da emergência. Para o solo argiloso, o rápido acúmulo verificado no pHs 6,6, na última avaliação, pode estar relacionado com o rápido crescimento radicular. O Cu tem afinidade com o átomo de N do grupo amino, e parece que compostos nitrogenados solúveis atuam como carregadores desse elemento no xilema e floema.


A adsorção de Cu eleva-se consideravelmente com o aumento do pH do solo de 4 para 7 (Cavallaro & McBrige, 1984). Contudo, a absorção de Cu pelas plantas não é bem associada aos níveis menores de pH do solo. Essa baixa correlação pode ocorrer em solos onde existe predominantemente Cu ligado à matéria orgânica (quelatos) na fase sólida ou na solução do solo. Isso pode explicar por que em certos solos não ocorre deficiência desse elemento para as plantas com elevação do pH, apesar de o Cu apresentar diminuição no seu fluxo difusivo com o aumento do pH (Pegoraro et al., 2006; Cornu et al., 2007).

Ferro

O menor pH favoreceu o acúmulo de Fe na matéria seca da parte aérea da planta no solo argiloso após 28 dias da semeadura (Figura 6). No solo arenoso houve incremento na absorção desse elemento somente a partir de 36 dias da emergência.


O acúmulo de Fe no sistema radicular apresentou comportamento distinto entre os solos estudados (Figura 6). No solo argiloso, não ocorreu efeito de pHs nos valores de 5,2 e 6,6, porém, com o crescimento da planta, observaram-se acréscimos significativos no conteúdo de Fe na raiz. No solo arenoso, o crescimento da raiz aos 54 dias da emergência não apresentou acúmulo significativo nos valores de 5,3 e 5,6, exceto nos valores de pH do solo de 5,9 e 6,3.

A absorção de Fe pelas plantas é metabolicamente controlada, podendo ser absorvido como Fe3+, Fe2+ ou Fe-quelato, precisando ser reduzido antes de entrar na célula. Portanto, parece fundamental a capacidade das raízes em reduzir Fe3+ para Fe2+ para que haja sua absorção (Robello et al., 2007). No espaço livre aparente, esse elemento pode estar presente na forma iônica ou de quelato. O Fe na forma de quelato ou complexo orgânico fica protegido contra a insolubilização, porém a estabilidade do composto depende dos valores de pH. Segundo Römheld & Marschner (1983), o Fe3+ quelato é reduzido mais rapidamente do que o FeCl3. A velocidade de redução do Fe depende do pH do meio e é maior em baixos valores de pH. Dessa forma, a correção da acidez do solo para valores de pH em torno de 6,0 tende a restringir o efeito de aumento de disponibilidade de alguns micronutrientes (Cu e Mn) sobre a absorção do Fe (Bataglia, 1991). A elevação do pH do solo interfere sobremaneira no fluxo difusivo desse elemento. Nunes et al. (2004) verificaram que o aumento do pH do solo por meio da calagem restringe fortemente o fluxo difusivo de Fe e pode até, juntamente com teores elevados de P disponíveis e de déficits hídricos, causar o aparecimento de sintomas de deficiência de Fe pela absorção insatisfatória deste por plantas de café.

As mudanças ocorridas no sistema radicular das plantas antes do aparecimento de nódulos não foram suficientes para aumentar o acúmulo de Fe na parte aérea, no solo argiloso, até 28 dias. A baixa nodulação ocorrida no solo arenoso fez com que a capacidade de fixação do N2 abaixar o pH fosse retardada, iniciando-se aos 36 dias após a emergência, com consequente aumento no conteúdo de Fe na parte aérea. A soja pode demonstrar deficiência de Fe no início do crescimento, que desaparece à medida que a simbiose leguminosa com rizóbio se efetiva. Resultado semelhante foi observado por Wallace (1982), em soja, aos 35 dias da germinação.

Em muitas espécies de plantas, a indução da acidificação da rizosfera é importante mecanismo de mobilização do Fe3+. Se a taxa de extrusão de prótons não for uniformemente distribuída ao longo do sistema radicular, mas confinada a certas zonas das raízes, a eficiência dessas zonas pode ser alta em termos de absorção de Fe (Marschner & Römheld, 1994).

Manganês

A absorção de Mn pela soja foi significativamente modificada pelo pH inicial dos solos (Figura 7). O seu conteúdo no sistema radicular não apresentou diferenças entre solos. As plantas cultivadas no solo arenoso mostraram tendência de aumento na absorção de Mn, com maiores acúmulos na parte aérea e no sistema radicular, intensificada durante o início da floração (46 dias) da semeadura, coincidindo com queda constante do pHr e pHnr (Figura 1). No solo argiloso, nos valores de pHs de 6,2 e 6,6, o conteúdo total de Mn na matéria seca da parte aérea estabilizou-se quando a planta iniciou a floração. Em condições mais ácidas, pHs 5,2 e 5,6, a absorção foi contínua e crescente.


Observaram-se acréscimos no conteúdo de Mn no sistema radicular no solo argiloso, principalmente em condições mais ácidas. Em valores de pH 6,2 e 6,6, os acréscimos foram menores e tenderam a estabilizar durante o crescimento. No solo arenoso, o conteúdo no sistema radicular até 20 dias após a emergência não diferiu entre os diversos valores de pHs. Observou-se a superioridade da condição de maior acidez em favorecer maior absorção de Mn após esse período, que foi maior nos valores de pH inicial do solo de 5,3 e 5,6. Nos valores de pH 5,9 e 6,3, ocorreu acréscimo moderado na absorção de Mn após o aparecimento dos nódulos e, também, no início do florescimento, em que o incremento na absorção de Mn foi dado pelo crescimento das raízes e maior volume de solo explorado. Apesar de o crescimento radicular ser importante para aumentar a absorção de Mn, o processo de acidificação mostrou-se mais eficaz. No entanto, para o solo argiloso, a resposta à acidificação ocorrida nos valores de pH inicial do solo de 6,2 e 6,6, com valores de pHr de 5,5 a 5,8, aos 46 dias, foi pequena, devido ao maior poder-tampão conferido a esse solo e à menor fixação do N2.

A relação entre pH da rizosfera e absorção de Mn é muito complexa. No solo, o elemento encontra-se em amplo espectro de formas, porém é aceito como regra que decréscimo no pH rizosférico favorece a redução e aumenta a concentração de Mn2+, aumentando sua absorção pelas plantas. A adição de calcário em solos ácidos decresce a disponibilidade de Mn para a soja (Tanaka et al., 1990; Oliveira Jr. et al., 2000) e aumento na produção de matéria seca como resposta a doses de Mn no solo ocorre em níveis de pH acima de 6,8 (Oliveira et al., 1997). Comportamento diferencial entre cultivares, quanto à eficiência em absorver e, ou, utilizar Mn em condições de disponibilidade limitada no solo, tem sido observado. A variedade Paranaíba, segundo Oliveira et al. (1997), apresenta sintomatologia visual de deficiência de Mn, apesar de não se relacionar com a produção de matéria seca, a partir de pH 6,8. Novais et al. (1989) observaram sintoma de deficiência de Mn, nas folhas inferiores de plantas de soja, para pH acima de 6,5, em solo de textura média.

A quantidade de Mn solubilizado na rizosfera é muito maior que na solução do solo (Godo & Reisenauer, 1980). Raízes de plantas sensíveis à deficiência de Fe podem levar ao aumento na mobilização de Mn2+ na rizosfera e estimular a absorção desse elemento (Marschner et al., 1982).

Zinco

O acúmulo de Zn na parte aérea das plantas variou com os valores do pH inicial dos solos. A absorção desse nutriente decresceu à medida que o pH do solo aumentou (Figura 8). O conteúdo de Zn, sobretudo no sistema radicular, aumentou com o crescimento da planta, de modo mais intenso após 40 dias da emergência. Nesse período, o processo de acidificação da rizosfera proporcionado pela intensificação da fixação biológica do N2, no início da floração, tornou-se mais ativo. De acordo com Bressan et al. (2006), os fungos micorrízicos têm maior importância na absorção de nutrientes de baixa difusão no solo, como P, Zn e Cu.


O efeito do pH inicial do solo sobre o conteúdo de Zn na parte aérea das plantas foi significativo apenas no solo argiloso. Maiores valores de pH proporcionaram menores teores de Zn na parte aérea e nas raízes das plantas de soja, especialmente no solo arenoso. Tisdale et al. (1985) relacionaram, além do pH e de outros fatores alterando a disponibilidade e transporte do Zn no solo, a adsorção ou precipitação causada pelos carbonatos do solo. A adsorção do Zn é maior em carbonato de magnésio; em dolomita, apresenta grau intermediário; e em carbonato de cálcio, menor adsorção. O Zn ocupa o lugar do Mg na superfície do cristal ou, então, precipita na forma de hidróxido ou de carbonato de Zn. Neste trabalho, devido ao forte tamponamento do solo argiloso, adicionaram-se maiores quantidades de carbonato de cálcio e de magnésio para atingir valores de pH semelhantes aos do solo arenoso.

O transporte de Zn da solução do solo até a superfície das raízes ocorre principalmente por difusão (Moraghan & Mascagni Jr., 1991). Oliveira et al. (1999) e Pegoraro et al. (2006) observaram grandes restrições ao fluxo difusivo de Zn após elevarem o pH do solo por meio da calagem. Segundo Bar-Yosef et al. (1980), o efluxo de H+ na rizosfera de plantas é mais efetivo em aumentar a absorção de Zn que a liberação de agentes quelantes pelas raízes, o que foi verificado por Subramanian et al. (2009) ao avaliarem a absorção de Zn por milho micorrizado. Sarkar & Wyn (1982) relacionaram modificações no pH da rizosfera induzidas por diferentes fontes de N com a absorção de Zn e de Mn. Um decréscimo no pHr de 6,6 para 5,0 correlacionou-se com o incremento linear na concentração de Zn na planta. A diferença entre a absorção de Zn e a de Mn está relacionada, provavelmente, com o modo de aquisição na rizosfera: dessorção de cátions trocáveis (Zn2+, Mn2+) e combinação entre dissoluções e redução (Mn4+→ Mn2+) (Marschner, 1991).

CONCLUSÕES

1. As mudanças ocorridas no pH da rizosfera (pHr) e no pH não rizosférico (pHnr) foram dependentes do pH inicial dos solos e da fixação biológica de N2.

2. Menores valores de pHr e pHnr ocorreram no solo arenoso.

3. O acúmulo de B, Cu, Fe, Mn e Zn na parte aérea das plantas aumentou significativamente como consequência da acidificação da rizosfera, principalmente após a nodulação.

LITERATURA CITADA

Recebido para publicação em agosto de 2009 e aprovado em agosto de 2010.

  • ABREU, C.A.; LOPES, A.S. & SANTOS, G. Micronutrientes. In: In: NOVAIS, R.F.; ALVAREZ V., V.H.; BARROS, N.F.; FONTES, R.L.F.; CANTARUTTI, R.B. & NEVES, J.C.L., eds. Fertilidade do solo. Viçosa, MG, Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, 2007. p.645-736.
  • AMBROSANO, E.J.; TANAKA, R.T.; MASCARENHAS, H.A.A.; RAIJ, B.van; QUAGGIO, J.A. & CANTARELLA, H. Leguminosas e oleaginosas. In: RAIJ, B.van; CANTARELLA, H.; QUAGGIO, J.A. & FURLANI, A.M.C., eds. Recomendações de adubação e calagem para o Estado de São Paulo. 2.ed. Campinas, Instituto Agronômico & Fundação - IAC, 1996. p.187-203. (Boletim Técnico, 100)
  • BAR-YOSEF, B.; FISHMAN, S. & TALPAZ, H. A model of zinc movement to single roots in soils. Soil Sci. Soc. Am. J., 44:1272-1279, 1980.
  • BATAGLIA, O.C. Ferro. In: FERREIRA, M.E. & CRUZ, M.C.D., eds. Micronutrientes na agricultura. Piracicaba, Potafos-CNPq, 1991.p.159-172.
  • BRESSAN, W.; SIQUEIRA, J.O.; VASCONCELLOS, C.A. & PURCNO, A.A.C. Fungos micorrízicos e fósforo, no crescimento, nos teores de nutrientes e na produção de sorgo e soja consorciados. Pesq. Agropec. Bras., 36:315-323, 2001.
  • CAVALLARO, N. & McBRIE, M.B. Zinc and copper status and fixation by on acid soil clay: Effects of seletive dissolutions. Soil Sci. Soc. Am. J., 48:1050-1054, 1984.
  • CONCON, J.M. & SOLTESS, D. Rapid microkjeldahl digestion of cereal grains and other biological materials. Anal. Biochem., 53:35-41, 1973.
  • CORNU, J.Y.; STAUNTON, S. & HINSINGER, P. Copper concentration in plants and in the rhizosphere as influenced by the iron status of tomato (Lycopersicon esculentum L.). Plant Soil, 292:63-77, 2007.
  • GALLO, J.R.; BATAGLIA, O.C. & MIGUEL, P.T.N. Determinação de cobre, ferro, manganês e zinco num mesmo extrato de planta, por fotometria de chama. Bragantia, 30:155-167, 1971.
  • GODO, G.H. & REISENAUER, H.M. Plant effects on soil manganese availability. Soil Sci. Soc. Am. J., 44:993-995, 1980.
  • HINSINGER, P.; PLASSARD, C.; TANG, C. & JAILLARD, B. Origins of root-induced pH changes in the rhizosphere and their responses to environmental constraints: A review. Plant Soil, 248:43-59, 2003.
  • JARVIS, S.C. The uptake and distribution of copper in some forage grasses as affected by nitrate-nitrogen supply in following solution culture. Ann. Bot., 84:147-157, 1981.
  • JONES JR., J.B. Plant tissue analysis in micronutrients. In: MORTVEDT, J.J.; COX, F.R.; SHUMAN, L.M. & WELCH, R.M., eds. Micronutrients in agriculture. Madison, Soil Science Society of Agronomy, 1991. p.477-521.
  • JUNGK, A.O. Dynamics of nutrient movement at the soil-root interface. In: WAISEL, Y.; ESHEL, A. & KAFKAFI, V., eds. Plants roots: The hidden half. New York, Marcel Dekker, 1991. p.455-482.
  • LUISI, M.V.V.; ROSSIELLO, R.O.P. & FERNANDES, M.S. Acidificação do rizocilindro de milho em resposta à absorção de nutriente e sua relação com o crescimento radicular. R. Bras. Ci. Solo, 7:69-74, 1983.
  • MARSCHNER, H. Root-induced changes in the availability of micronutrients in the rhizosphere. In: WAISEL, Y.; ESHEL, A. & KAFKAFI, V., eds. Plants roots: The hidden half. New York, Marcel Dekker, 1991. p.503-528.
  • MARSCHNER, H. Mineral nutrition of higher plants. London, Academic, 1995. 889p.
  • MARSCHNER, H.; ROSSENBERG-NEUHAUS, H. & RÖMHELD, V. Rapid method for measuring changes in pH and reducing processes along roots of impact plants. Z. Pflanzenphysiol., 105:407-416, 1982.
  • MARSCHNER, H. & RÖMHELD, V. In vivo measurement of root-induced pH changes at the soil-root interface: Effect of plant species and nitrogen source. Z. Pflanzenphysiol., 111:241-251, 1983.
  • MARSCHNER, H. & RÖMHELD, V. Strategies of plant for acquisition of iron. Plant Soil, 165:261-274, 1994.
  • MORAGHAN, J.T. & MASCAGNI JR., H.J. Environmental and soil factors affecting micronutrient, deficiences and toxicities. In: MORTVEDT, J.J.; COX, F.R.; SHUMAN, L.M. & WELCH, R.M., eds. Micronutrients in agriculture. Madison, Soil Science Society of Agronomy, 1991. p.371-426.
  • MORTVEDT, J.J. Bioavailability of micronutrients. In: SUMMER, M.E., ed. Handbook of soil science. Boca Raton, CRC Press, 1999. D71-88.
  • NOVAIS, R.F.; NEVES, J.C.L.; BARROS, N.F. & SEDIYAMA, T. Deficiência de manganês em plantas de soja cultivadas em solos de cerrado. R. Bras. Ci. Solo, 13:199-204, 1989.
  • NUNES, F.N.; NOVAIS, R.F.; SILVA, I.R.; GEBRIM, F.O. & SÃO JOSÉ, J.F.B. Fluxo difusivo de ferro em solos sob influência de doses de fósforo e de níveis de acidez e umidade. R. Bras. Ci. Solo, 28:423-429, 2004.
  • OLIVEIRA, M.F.G.; NOVAIS, R.F.; NEVES, J.C.L.; ALVES, V.M.C. & VASCONCELLOS, C.A. Fluxo difusivo de zinco em amostras de solo influenciado por textura, íon acompanhante e pH do solo. R. Bras. Ci. Solo, 23:609-615, 1999.
  • OLIVEIRA, M.W.; SEDIYAMA, C.S.; NOVAIS, R.F. & SEDIYAMA, T. Crescimento de cultivares de soja em condições de baixa disponibilidade de manganês no solo. II. Concentração e alocação do manganês. R. Ceres, 44:43-52, 1997.
  • OLIVEIRA JR., J.A.; MALAVOLTA, E. & CABRAL, C.P. Efeitos do manganês sobre a soja cultivada em solo de cerrado do Triângulo Mineiro. Pesq. Agropec. Bras., 35:1629-1636, 2000.
  • PEGORARO, R.F.; SILVA, I.R.; NOVAIS, R.F.; MENDONÇA, E.S.; GEBRIM, F.O. & MOREIRA, F.F. Fluxo difusivo e biodisponibilidade de zinco, cobre, ferro e manganês nos olo: Influência da calagem, textura do solo e resíduos vegetais. R. Bras. Ci. Solo, 30:859-856, 2006.
  • ROBELLO, E.; GALATRO, A. & PUNTARULO, S. Iron role in oxidative metabolism of soybean axes upon growth. Effect of iron overload. Plant Sci., 172:939-947, 2007.
  • RÖMHELD, V. & MARSCHNER, H. Plant-induced pH changes in the rhizosphere of Fe-efficient and Fe-inefficient soybean and corn cultivars. J. Plant Nutr., 7:623-630, 1984.
  • RÖMHELD, V. & MARSCHNER, H. Mechanism of iron uptake by peanut plants. I. Fe(III) reduction, chelate splitting, and release of phenolics. Plant Physiol., 71:949-954, 1983.
  • ROSSUM, D.van; MUYOTCHA, A.; VERSELVELD, H.W.van; STOMTHAMER, A.H. & BOOGERD, F.C. Effects of Bradyrhizobium strain and host genotype, nodule dry weight and leaf area on groundnut (Arachis hypogaea) yield. Plant Soil, 154:279-288, 1994.
  • SARKAR, A.N. & WYN, J.R.G. Effect of rhizosphere pH on the availability and uptake of Fe, Mn and Zn. Plant Soil, 66:361-372, 1982.
  • SCHALLER, G. pH changes in the rhizosphere in relation to the pH-buffering of soils. Plant Soil, 97:439-444, 1987.
  • SCHUBERT, S.; SCHUBERT, E. & MENGEL, K. Effect of low pH of the root medium on proton release, growth, and nutrient uptake of yield beans (Vicia fabe). Plant Nutr. Physiol. Appl., 77:443-448, 1990.
  • SILVA, I.R. & MENDONÇA, E.S. Matéria orgânica do solo. In: NOVAIS, R.F.; ALVAREZ V., V.H.; BARROS, N.F.; FONTES, R.L.F.; CANTARUTTI, R.B. & NEVES, J.C.L., eds. Fertilidade do solo. Viçosa, MG, Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, 2007. p.275-374.
  • SOUZA, D.M.G.; MIRANDA, L.N. & OLIVEIRA, S.A. Acidez do solo e sua correção. In: NOVAIS, R.F.; ALVAREZ V., V.H.; BARROS, N.F.; FONTES, R.L.F.; CANTARUTTI, R.B. & NEVES, J.C.L., eds. Fertilidade do solo. Viçosa, MG, Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, 2007. p.205-274.
  • SUBRAMANIAN, K.S.; TENSHIA, V.; JAYALAKSHMI, K. & RAMACHANDRAN, V. Biochemical changes and zinc fraction in arbuscular mycorrhizal fungus (Glomus intraradices) inoculated and uninoculated soils under differencial zinc fertilization. Appl. Soil Ecol., 43:32-39, 2009.
  • TAIZ, L. & ZEIGER, E. Fisiologia vegetal. São Paulo, Artmed, 2004. 719p.
  • TANAKA, R.T.; MASCARENHAS, H.A.A.; MIRANDA, M.A.C.; DEGASPARI, N. & CARMELO, Q.A.C. Ocorrência de deficiência nutricional em soja cultivada em solo de cerrado devido a incorporação superficial do calcário. Inf. Agron., 51:15-21, 1990.
  • TISDALE, S.L.; NELSON, W.L. & BEATON, J.D. Soil fertility and fertilizers. New York, MacMillan, 1985. 754p.
  • ZAHARIEVA, T. & RÖMHELD, V. Factors affecting cation-anion uptake balance and iron acquisition in peanut grow on calcareous soils. Plant Soil, 130:81-86, 1991.
  • WALLACE, A. Effect of nitrogen fertilizer and nodulation on lime-induced chlorosis in soybeans. J. Plant Nutr., 5:363-368, 1982.
  • WOLF, B. The determination of boron in soil extracts, plant materials, composts, manure, water and nutrients solutions. Soil Sci. Plant Nutr., 35:461-468, 1989.
  • (1
    ) Parte da Tese de Doutorado do primeiro autor apresentada ao Departamento de Fitotecnia da Universidade Federal de Viçosa - UFV.
  • Datas de Publicação

    • Publicação nesta coleção
      16 Dez 2010
    • Data do Fascículo
      Out 2010

    Histórico

    • Recebido
      Ago 2009
    • Aceito
      Ago 2010
    Sociedade Brasileira de Ciência do Solo Secretaria Executiva , Caixa Postal 231, 36570-000 Viçosa MG Brasil, Tel.: (55 31) 3899 2471 - Viçosa - MG - Brazil
    E-mail: sbcs@ufv.br