Cromatografia gasosa quiral na resolução de enantiômeros envolvidos em flavours de frutas

Chiral gas chromatography in the resolution of enantiomers involved in fruit flavours

chromatography; enantiomers; flavour

REVISÃO

Cromatografia gasosa quiral na resolução de enantiômeros envolvidos em flavours de frutas

Chiral gas chromatography in the resolution of enantiomers involved in fruit flavours

Alexandre Porte^I,*; Luciana H. Maia Porte^II; Luciana M. de Oliveira^I

^IDepartamento de Tecnologia de Alimentos, Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro, Av. Pasteur, 296, 22290-240 Rio de Janeiro - RJ, Brasil

^IIDepartamento de Administração e Turismo, Instituto Multidisciplinar, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Rua Governador Roberto da Silveira, s/nº, 26020-740 Nova Iguaçu - RJ, Brasil

ABSTRACT

This work addresses the use of chiral gas chromatography in resolving optically active stereoisomers and racemates found in fruit flavours. It presents the types of chiral selectors applied to terpene-derived metal coordination compounds, polysiloxane-linked α-amino acid and mixed chiral stationary phases, and focuses on derivatized cyclodextrins, the most popular chiral stationary phases presently used in chromatographic analysis. Knowledge about the techniques involved in chiral recognition and enantiomer identification in the fruit flavour field is given along with examples from the latest studies.

Keywords: chromatography; enantiomers; flavour.

INTRODUÇÃO

Flavour é a sensação gerada a partir do cheiro, do gosto e de estímulos táteis no interior da boca provocados pelos alimentos, mas frequentemente o termo é usado como sinônimo de odor,¹ como aqui neste trabalho.

O conhecimento do flavour de um alimento é de grande interesse e importância para a indústria de alimentos, já que este exerce efeito decisivo na escolha do indivíduo em consumir um certo produto.

Já são conhecidos mais de 7.000 compostos e estima-se que até 10.000 substâncias voláteis estejam envolvidas na composição dos flavours dos alimentos. No morango, por exemplo, são mais de 300 substâncias voláteis e no café, mais de 1.000,¹ mas identificá-las e quantificá-las em matrizes complexas como os alimentos não é tarefa fácil, embora de importância vital para compreender o perfil de compostos aromáticos relevantes presentes e, assim, desenvolver alimentos mais atrativos para o consumidor.

As análises de identificação de substâncias voláteis tornam-se ainda mais difíceis de serem realizadas na presença de substâncias denominadas enantiômeros, que estão amplamente distribuídas nos alimentos.

Os enantiômeros ou compostos quirais são substâncias que apresentam a mesma fórmula molecular e imagem no espelho, mas não se sobrepõem devido à maneira como os átomos estão arranjados no espaço. Devido a esta grande semelhança estrutural, duas substâncias diferentes apresentam várias características físicas e químicas idênticas, como ponto de fusão, ponto de ebulição e solubilidade.² Estas características inviabilizam a separação fácil e identificação destes compostos quirais através de métodos convencionais. Desta forma, cromatografia com fluído supercrítico, eletroforese capilar e técnicas miniaturizadas, como cromatografia líquida capilar e nano cromatografia líquida têm sido experimentadas, mas a cromatografia líquida de alta eficiência (para substâncias termolábeis ou não voláteis) e a cromatografia gasosa quiral acoplada a espectrometria de massas (para substâncias voláteis ou não voláteis derivatizadas) são as técnicas mais empregadas.^3,4

A separação de enantiômeros por cromatografia gasosa usando fases estacionárias quirais foi desenvolvida por Gil-Av et al., na década de 60 em Israel.^5,6 Na literatura, esta técnica pode ser encontrada com os nomes de cromatografia gasosa quiral, cromatografia gasosa enantiosseletiva ou enantiocromatografia gasosa.

Atualmente, empregando-se cromatografia gasosa quiral e espectrometria de massas é possível detectar facilmente quantidades traços de enantiômeros presentes em matrizes complexas.⁷ É o caso da determinação de α-damascona e α-ionona, em meio a mais de 200 substâncias voláteis do chá preto (Camellia sinensis (L.) Kuntze).⁸

Em particular, a cromatografia gasosa bidimensional com fase estacionária quiral, que combina uma pré-coluna com fase estacionária aquiral a uma coluna principal com fase estacionária quiral ou a coluna com fase estacionária quiral primeiro seguida da coluna com fase estacionária aquiral, tem demonstrado ser um método poderoso de estereoanálise direta de substâncias voláteis sem qualquer processo prévio de derivatização, pois permite separar e "distribuir" melhor os picos no cromatograma.^7,9

Na área de alimentos, a cromatografia gasosa quiral tem sido aplicada na análise de leite, queijo, margarina, chá preto, carne, mel, bebidas alcoólicas, como vinho e cerveja, e compostos flavorizantes de frutas.^10-16

A separação e identificação dos enantiômeros é de grande importância na área de flavours e óleos essenciais, não apenas para caracterizar uma matriz vegetal, mas também para avaliar uma via biossintética de um ou mais compostos e estabelecer sua origem.¹² Vários estudos da composição química de óleos essenciais têm empregado a cromatografia gasosa quiral ou a cromatografia gasosa multidimensional para separar enantiômeros outrora relatados sem distinção.^6,17,18

Os flavours são resultantes de misturas complexas de substâncias voláteis e geralmente consistem de centenas de substâncias de funções orgânicas diferentes, e entre elas os estereoisômeros opticamente ativos.¹⁵

Como os enantiômeros de um composto podem apresentar características de odor e threshold distintos, é fundamental a utilização de técnicas que permitam a elucidação da configuração absoluta (R ou S) presente, bem como o conhecimento da proporção e da pureza enantiomérica destes compostos no alimento. A proporção enantiomérica é dada normalmente pelo excesso enantiomérico (ee) das substâncias quirais. A concentração do excesso enantiomérico é a diferença entre os percentuais dos dois enantiômeros, já a pureza enantiomérica é definida como a proporção (expressa em percentagem) dos enantiômeros detectados.^7,19,20

O termo threshold é utilizado para se referir à concentração mínima de um composto que pode ser detectada pelo olfato humano, geralmente presente em um volume de ar ou água definido. O (S)-(-)-limoneno e (R)-(+)-limoneno, por exemplo, encontrados nas cascas de frutas cítricas, possuem odores de laranja e limão, e thresholds de 8,4 µg m³ de ar e 5,9 µg m³ de ar, respectivamente.^7,21,22 Isto significa que concentrações menores do cheiro de limão, se comparado ao cheiro de laranja, são necessárias para que um indivíduo perceba este odor.

A determinação do valor do excesso enantiomérico pode ser usada para determinar uma aromatização com um composto quiral sintético, pois em muitos casos, a biossíntese forma preferencialmente um enantiômero, enquanto a síntese química forma racematos, que não são separados por razões econômicas.^10,19 E se naquele alimento o valor de excesso enantiomérico for disponível para aquele estereoisômero, este tipo de adição pode ser encontrada facilmente.^12,19 O suco de framboesa pode ser citado como exemplo. Naturalmente, ele contém 92,4% de excesso enantiomérico de (R)-trans-α-ionona, sendo que uma amostra contendo valores discrepantes de excesso enantiomérico deste composto pode indicar uma adição de (±)-trans -α-ionona. Além disso, o valor do excesso enantiomérico de um determinado par de enantiômeros pode ser modificado durante um processamento, como ocorre na torrefação da avelã.¹⁹ Dependendo do pH, temperatura, estado físico (líquido ou sólido), processamento industrial (como fermentação) e outros fatores, muitas moléculas quirais podem racemizar ou sofrer inversão de configuração parcial, sendo possível então usar a pureza enantiomérica para avaliar a idade, o processamento recebido e até efeitos da estocagem em bebidas alcoólicas e não alcoólicas.¹⁰

A cromatografia gasosa quiral associada à espectrometria de massas também tem sido aplicada na identificação de enantiômeros de precursores e metabólitos químicos, drogas, pesticidas, organoclorados, feromônios, fragrâncias, terpenóides e até em fragmentos da lua Titan de Saturno.^23-25

Diante do que foi exposto e da escassez de publicações nacionais sobre o tema, este trabalho apresenta uma revisão sobre cromatografia gasosa quiral com resultados relevantes sobre sua utilização na análise de enantiômeros envolvidos em flavours de frutas.

A CROMATOGRAFIA GASOSA QUIRAL

A cromatografia gasosa quiral é uma cromatografia gasosa comum, com os mesmos sistemas de injeção e detecção, cuja diferença encontra-se na fase estacionária. Trata-se de uma substância quiral enantiomericamente pura (denominada seletor quiral) presente na fase estacionária que interage com a mistura de enantiômeros da amostra, produzindo formas diasteroisoméricas transientes, que serão separadas na fase estacionária, uma vez que diferentemente dos enantiômeros apresentam propriedades químicas e físicas diferentes. As interações entre estereoisômeros da amostra e os seletores quirais da fase estacionária não são permanentes e os compostos separados retornam a sua configuração enantiomérica original e são então detectados.²⁶

As fases estacionárias quirais são quimicamente ligadas a uma matriz de polisiloxano, que por sua vez é ligada à parede da coluna cromatográfica, a fim de aumentar a eficiência da separação, a estabilidade em temperaturas elevadas e a robustez.^27,28

Os mecanismos exatos de separação, contudo, ainda não foram elucidados, mas sabe-se que estão envolvidos inclusão, ligações de hidrogênio, forças de dispersão e interações dipolo-dipolo.^5,15,21,29 Existem 3 tipos principais de fases estacionárias: compostos metálicos coordenados, derivados de aminoácidos e ciclodextrinas modificadas, que interagem com a amostra através de complexação, ligações de hidrogênio, e inclusão, respectivamente.^21,22,30

Fases estacionárias quirais baseadas em complexação metálica e em aminoácidos modificados

Um dos compostos metálicos quelados utilizados como seletor quiral era o dicarbonil ródio(I)-(IR)-canforato, mas outros derivados terpênicos de tujona, isomentona, carvona, pulegona associados a manganês, cobalto e níquel também eram encontrados. A temperatura de trabalho baixa (25-120 ºC) do ródio limitava seu uso, e fases estacionárias quirais à base de níquel (Chirasil-Níquel^®) apresentavam termoestabilidade maior. Era uma ferramenta útil, antes do surgimento das fases estacionárias quirais à base de dextrina modificada, para análise de compostos que não se ligam por ligações de hidrogênio, como feromônios, fragrâncias, produtos de reações enzimáticas e alguns flavours.³¹ Não foram encontrados trabalhos recentes empregando este tipo de seletor quiral.

A primeira fase estacionária quiral, produzida em 1966, era um derivado de isoleucina, e em 1977 surgiu a fase estacionária Chirasil-Val^® (produzida a partir do aminoácido valina) que é bastante conhecida.^26,30

Muitas vezes os estereoisômeros estudados nestas colunas com fase estacionária Chirasil-Val^® precisam ser derivatizados a fim de aumentar a volatilidade ou introduzir funções adequadas para formar ligações de hidrogênio entre analito e fase estacionária, e assim permitir uma análise mais refinada. Outra desvantagem do uso de colunas com fases estacionárias contendo seletores quirais à base de aminoácidos modificados ocorre na separação de aminoácidos de configuração relativa D e L, pois pode ocorrer a inversão de configuração do analito em temperaturas elevadas. Este fenômeno de inversão é denominado de inversão de esterosseletividade e pode ocorrer também em outras fases estacionárias, embora seja incomum.²¹

Não obstante, estas fases estacionárias quirais foram e ainda são utilizadas, por exemplo, na detecção da presença de D-aminoácidos em cervejas e vinhos.^13,32 Como o consumo de cerveja ocorre em volumes maiores que o de vinho, tem sido sugerido um perigo potencial na ingestão de teores elevados de aminoácidos D, daí a preocupação em conhecer as concentrações destes compostos em diferentes tipos de cerveja.³³

Embora o mecanismo exato de separação dos seletores quirais das fases estacionárias quirais das colunas à base de aminoácidos modificados ainda necessite ser completamente elucidado, é sabido que a extremidade carboxila não exerce papel seletor importante, ao contrário da extremidade amida (em um dipeptídeo), por isso, a carboxila foi substituída por um segundo grupo amino e quando se emprega seletor L na fase estacionária quiral, geralmente os D-enantiômeros derivatizados da amostra são eluídos primeiro.³¹

Várias tentativas têm sido realizadas para associar em uma única fase estacionária aminoácidos modificados e ciclodextrinas, e assim combinar os efeitos de ligações de hidrogênio e inclusão na separação de enantiômeros, com o intuito de obter resultados melhores na separação e quantificação de enantiômeros do que o obtido em cada seletor quiral isoladamente.^34-41

Fases estacionárias quirais a partir de oligômeros de prolina (diprolina) também vêm sendo desenvolvidas, mas infelizmente continuam dependendo da derivatização prévia dos estereoisômeros da amostra se estes forem aminas, aminoácidos ou hidroxiácidos.³⁰

Fases estacionárias quirais baseadas em inclusão (ciclodextrinas)

Estas fases estacionárias são produzidas a partir de ciclodextrinas. As ciclodextrinas são oligossacarídeos cíclicos que consistem de no mínimo 6 unidades de glicose unidas por ligação α (1→4).^42-44

Embora ciclodextrinas com 12 ou mais resíduos de glicose sejam conhecidas, apenas os 4 primeiros homólogos, com 6, 7, 8 e 9 unidades de glicose, α, β, γ e δ, respectivamente, são bastante estudados e utilizados (Figura 1). ^43,45 Dentre elas, a β-ciclodextrina (7 monômeros de glicose) é a ciclodextrina mais usada devido ao custo baixo e patente expirada.^46,47

No estado sólido e em solução a conformação macrocíclica das ciclodextrinas corresponde a uma estrutura cônica invertida, mais precisamente toroidal, onde os grupos hidroxila secundários situados nos carbonos C-2 e C-3 estão localizados na base superior, enquanto os grupos hidroxila primários em C-6 estão na base inferior e a dimensão da cavidade é dada em função do número de monômeros de glicose da ciclodextrina.^27,48

A ausência de grupos hidroxila livres orientados para o interior da cavidade faz com que esta apresente um caráter hidrofóbico, enquanto o exterior tem caráter hidrofílico e isto as credenciam como veiculadores eficientes de compostos hidrofóbicos, como compostos inorgânicos, fármacos, e moléculas aromáticas em meios aquosos.^49-54

Em alimentos, as ciclodextrinas foram consideradas GRAS (Generally Recognized As Safe = Geralmente Reconhecida Como Segura) e têm sido usadas para: a) proteger compostos lipofílicos sensíveis ao oxigênio ou ao aquecimento; b) mascarar o gosto amargo de sucos de laranja e toranja (grapefruit) ao complexar naringenina e limonina; c) evitar o escurecimento de sucos de pera, maçã e banana ao complexar a enzima polifenoloxidase; d) remover colesterol de leite, manteiga, queijo, creme de leite, gema de ovo, banha de porco e maionese; e) permitir a liberação lenta de agentes antioxidantes e antimicrobianos; f) encapsular substâncias voláteis, como baunilha e óleos essenciais de limão, laranja e framboesa.^55-57

O uso de α-ciclodextrina em alimentos é limitado devido à pequena cavidade interna que apresenta, mas seu uso como fibra tem se mostrado uma aplicação potencial. Além disso, elas são capazes de ligar 9 vezes seu próprio peso em lipídeos e poderiam ser usadas como suplementos para perda de peso.⁵⁸

As ciclodextrinas são produzidas a partir da ação da enzima ciclodextrina glicosiltransferase (CGTase EC 2.4.1.19) sobre amido de várias fontes, como milho e mandioca.^59,60 Como as ciclodextrinas são oriundas do amido, todas são dextrorrotatórias.²² Vários microrganismos, como Thermoanaerobacterium, Klebsiella oxytoca e algumas espécies de Bacillus, como B. macerans, B. circulans, B. megaterium, B. firmus, B. stearothermophilus e B. lentus produzem a enzima ciclodextrina glicosiltransferase.⁵⁹

No caso das fases estacionárias quirais, α, β e g ciclodextrinas são comercialmente disponíveis. Estas ciclodextrinas apresentam propriedades diferentes, como o número de centros quirais, diâmetro e volume da cavidade, conforme apresentado na Tabela 1.^27,42

As primeiras colunas empacotadas com fases estacionárias quirais de α-ciclodextrina e formamida surgiram em 1983, mas tinham vida e eficiência limitadas.^23,28 Isto provavelmente era devido à elevada polaridade e rigidez da ciclodextrina. A diluição em polisiloxano e a derivatização das hidroxilas resolveram este problema. Ainda hoje são desenvolvidos novos polímeros híbridos de ciclodextrina e siloxano.⁶¹

A polaridade dos polisiloxanos influencia na enantiosseletividade e é dependente da temperatura, contudo, na faixa de temperatura usada em cromatografia gasosa quiral, a enantiosseletividade parece ser favorecida por polisiloxanos apolares e/ou altas concentrações de ciclodextrinas modificadas.⁶²

Assim, a -ciclodextrinas foram substituídas por per-O-metil-β-ciclodextrinas concentradas e depois por per-O-metil-β-ciclodextrinas diluídas, que podem ser encontradas comercialmente e representam umas das ferramentas mais úteis na separação quiral.^23,28 A fase estacionária quiral 2,3,6-tri-O-metil-β-ciclodextrina é uma das mais empregadas atualmente.⁶³

Outra forma de produzir colunas com fases estacionárias quirais de ciclodextrina é partir de uma coluna capilar com fase estacionária convencional, como OV-1701, então a ciclodextrina derivatizada é quimicamente ligada e, assim, produzida a coluna com fase estacionária quiral.^9,23,28,64

Atualmente, a maioria das fases estacionárias quirais derivadas de ciclodextrinas são preparadas por diluição da ciclodextrina derivatizada em polisiloxano.⁶² E uma mudança na diluição da ciclodextrina modificada em polisiloxano pode mudar o tempo de retenção de cada componente na mistura, devido a variação da polaridade na fase estacionária.⁶⁵

As ciclodextrinas modificadas apresentam enantiosseletividade excepcional junto a moléculas quirais de muitas classes de compostos e são atualmente os seletores quirais mais populares na separação de misturas enantioméricas de substâncias voláteis por cromatografia gasosa por sua estabilidade e reprodutibilidade.^8,14,65 Além disso, mais de 90% das misturas não racêmicas de enantiômeros são separadas sem derivatização.^5,12,65 Mais de 40 fases estacionárias quirais estão disponíveis comercialmente e mais de 230 já foram descritas na literatura.¹⁵

Uma variação dessas fases estacionárias são as α, β ou g per-n -pentil-ciclodextrinas. Todas são denominadas comercialmente de Lipodex^® e podem ser aplicadas para a separação de uma série de enantiômeros.²³ As α, β e g per-O-pentil-ciclodextrinas são líquidas a temperatura ambiente, estáveis termicamente e solúveis na maioria dos solventes orgânicos apolares. Isto representa uma vantagem em relação às per-O-metil-ciclodextrinas, que são sólidas e só podem ser usadas diluídas em polisiloxano, enquanto as per-O-pentil-ciclodextrinas podem revestir colunas capilares diretamente.⁶⁶ Outra vantagem desta fase estacionária quiral é ser altamente enantiosseletiva para compostos halogenados.⁸

A faixa de operação das fases estacionárias quirais de ciclodextrinas peralquiladas normalmente é de -25 a 250 ºC e isto pode ser muito útil pois, em alguns casos, temperaturas baixas são necessárias, como ocorrem em moléculas enantioméricas com poucos átomos como bromoclorofluormetano. Já existem fases estacionárias peralquiladas com estabilidade térmica até 300 ºC, o que amplia consideravelmente a quantidade de compostos que pode ser analisada.⁶⁷

As fases estacionárias quirais de ciclodextrina apresentam como vantagens: a) alto grau de inércia, permitindo a análise de substâncias polares sem derivatização; b) compatibilidade com todas as técnicas de injeção; c) grande estabilidade térmica, permitindo o uso de temperaturas mais baixas para a eluição de amostras polares.^27,68

A principal desvantagem encontrada para as ciclodextrinas é a perda do poder de resolução após 1 ano e meio aproximadamente. Isto afeta principalmente as substâncias mais voláteis, pois a temperatura de operação mínima começa a se elevar, possivelmente por rearranjos na estrutura, mas isto não foi observado quando a coluna foi 2,6-di-O-metil-3-O-pentil-β-ciclodextrina/OV1701.⁶³

Colunas com fases estacionárias assimétricas, isto é, cujos substuintes nas posições 2 e 3 na molécula de glicose são diferentes, têm sido desenvolvidas, e embora a síntese seja mais complexa que as fases estacionárias quirais simétricas (cujos 2 substituintes são iguais nas posições 2 e 3 da glicose), elas podem apresentar melhor resolução enantiomérica e de um número maior de enantiômeros, se comparadas às fases estacionárias quirais simétricas equivalentes. Foi o que ocorreu quando foram testadas as fases estacionárias quirais 2-O-metil-3-O-etil-6-O-terc-butil-dimetil-silil-β-ciclodextrina e 2-O-etil-3-O-metil-6-O-terc-butil-dimetil-silil-β-ciclodextrina contra as fases estacionárias quirais 2,3-di-O-metil-6-O-terc-butil-dimetil-silil-β-ciclodextrina e 2,3-di-O-etil-6-O-terc-butil-dimetil-silil-β-ciclodextrina, respectivamente.⁶⁹

Uma fase estacionária quiral à base de ciclodextrina derivatizada com uso universal para enantioseparação em cromatografia gasosa quiral ainda não existe, mas um grupo de três fases estacionárias pode separar mais de 85% dos racematos e misturas enantioméricas não racêmicas na área de aromas. As fases estacionárias quirais de ciclodextrinas alquiladas (por exemplo 2,6-di-O-metil-3-pentil-β-ciclodextrina) e duas fases estacionárias quirais de ciclodextrinas substituídas na posição 6 por grupos terc-butil-dimetil-silil e nas posições 2 e 3 por grupos metil, etil ou acetil podem satisfazer as necessidades analíticas de um laboratório nesta área de aromas.¹²

Na contramão desta idéia, o conceito "one column for one pro blem" também vem sendo difundido. Ele estabelece a elaboração de fases estacionárias quirais únicas para separação de enantiômeros específicos.⁶⁹

Desde a década de 90, existem trabalhos com o objetivo de diminuir o tamanho das colunas com fases estacionárias quirais de ciclodextrinas de 25 m (comprimento) × 250 µm (diâmetro interno) para 1 m × 50 µm. Estas novas colunas não estão disponíveis comercialmente ainda porque o reduzido diâmetro interno é uma dificuldade para o preenchimento da coluna de forma industrial. As colunas miniaturizadas não perdem eficiência nem enantiosseletividade, se comparadas às colunas tradicionais, porque embora o tamanho seja reduzido, a temperatura de eluição também é diminuída e oferecem redução (cerca de 85% a menos) do tempo de análise, que ocorre por volta de 90 minutos nas colunas com seletores quirais convencionais. Todavia, são menos adequadas para uso em misturas complexas e são indicadas para separação de amostras contendo apenas pares de enantiômeros.^64,70 Isto, portanto, restringe de certo modo seu uso na análise de aroma de frutas, que via de regra são componentes de matrizes complexas.

Para Mallmann et al.,⁷¹ as principais fases estacionárias quirais conhecidas (3-O-butiril-2,6-di-O-pentil-γ-ciclodextrina ou Lipodex E^®; 3-O-pentil-2,6-di-O-metil-β-ciclodextrina e 3-O-metil-2,6-di-O-pentil-γ-ciclodextrina) foram obtidas nas décadas de 80 e 90, e por isso eles desenvolveram uma fase estacionária nova (3-O-pentafluoropropionil-2,6-di-O-pentil-β-ciclodextrina), que apresentou boa performance na separação de enantiômeros normalmente encontrados em óleos essenciais.

Ciclodextrinas derivatizadas são os seletores quirais mais usados e populares em colunas com fase estacionária quiral em uso na cromatografia gasosa.⁷² Trabalhos envolvendo detecção olfatométrica de compostos, isto é, detecção envolvendo um painel de experts em análise sensorial, não empregaram os outros tipos de seletores quirais.^73,74

SEPARAÇÃO DE SUBSTÂNCIAS POR CROMATOGRAFIA GASOSA QUIRAL

O reconhecimento molecular e a separação isomérica são fortemente governados pela substituição nos carbonos C-2, C-3 e C-6 (Figura 2). Estas posições no anel de glicose podem ser substituídas por diversos grupos funcionais, os quais provocam mudanças na ciclodextrina e influenciam no resultado das separações. Contudo, ainda é difícil dizer que fase estacionária quiral possui maior poder de separação dado um par de enantiômeros.⁷⁵

As ciclodextrinas derivatizadas diferem em suas propriedades físicas, químicas e cromatográficas dependendo do tamanho do anel da ciclodextrina e do tipo dos substituintes. Geralmente o C-6 aquiral é substituído por grupos apolares, como grupos alquil ou silil, para reduzir a polaridade ou liquefazer a ciclodextrina. Os substituintes nos C-2 e C-3, como grupos alquil ou acil, são introduzidos para alterar a seletividade quiral do material resultante.⁷⁶

A reatividade dos grupos hidroxila dos carbonos C-2, C-3 e C-6 são diferentes.⁷⁷ Os carbonos C-2 e C-6 são prontamente alquilados, mas o C-3 não, e exige procedimentos mais energéticos. Enquanto os grupos hidroxila em C-2 e C-6 são facilmente alquilados com NaOH como base catalítica, o grupo hidroxila em C-3 é estericamente menos acessível e necessita de mais tempo e NaOH em tetrahidrofurano seco para ser alquilado.^22,66

Quando o centro quiral está próximo à entrada da cavidade ou tem o substituinte orientado em posição específica, tal que possa formar uma interação com os grupos presentes na entrada da cavidade, a possibilidade de reconhecimento quiral é favorecida.²⁷

Di-O-pentil-ciclodextrinas ou per-O-pentil-ciclodextrinas são geralmente fases estacionárias satisfatórias, devido à flexibilidade conformacional dos grupos pentila, que diminuem o ponto de fusão das ciclodextrinas, ampliam a faixa operacional de trabalho e aumentam o tamanho da cavidade da molécula de ciclodextrina, resultando em um tamanho adequado para receber e acomodar as moléculas incluídas ou permitir uma distância adequada para a interação. O grupo cinamil também pode ser ligado a um dos carbonos para limitar a liberdade conformacional das moléculas de ciclodextrina e aumentar a cavidade de β-ciclodextrina.⁶⁶ As per-O-pentil-β-ciclodextrinas são mais enantiosseletivas do que a 3-O-acetil-2,6-di-O-pentil-β-ciclodextrina.⁸

Semelhantes às per-O-pentil-ciclodextrinas, as 6-O-metil-2,3-di-O-pentil-ciclodextrinas são versáteis e possuem uma enantiosseletividade única, principalmente a 6-O-metil-2,3-di-O-pentil-g-ciclodextrina. Surpreendentemente, a 6-acil-2,3-di-O-pentil-g-ciclodextrina perdeu quase toda a enantiosseletividade. Isto pode ter sido causado por interações dipolo-dipolo de resíduos de acila adjacentes, que provocaram a perda de flexibilidade da ciclodextrina, necessária para um arranjo de reconhecimento quiral somado ao efeito de proteção da entrada da cavidade, reduzindo sua dimensão.²⁹

É interessante notar que 3-O-acetil-2,6-di-O-pentil-ciclodextrinas são encontradas comercialmente e apresentam boa resolução, enquanto a inserção no C-6 do grupo acetil provocou a perda de enantiosseletividade.

Alguns grupos volumosos, como terc-butil-dimetil-silil (TDBMS) que influenciam na conformação da ciclodextrina aumentando a enantiosseletividade, foram adicionados em certas fases estacionárias quirais, mas existem diversos grupos que são usados como derivados nas posições 2, 3 e 6 das ciclodextrinas.^5,23 Possivelmente, este aumento de enantiosseletividade está relacionado com a ancoragem de uma conformação nos resíduos de glicose β-glicosidicamente ligados.

Quando o grupo metil de C-6 (2,3,6-tri-O-metil-β-ciclodextrina/OV-1701) foi substituído por um grupo terc-butil, a seletividade para um grande número de analitos foi aumentada e através de modelagem molecular foi percebido que as formas das ciclodextrinas eram diferentes. Na verdade, não apenas as formas eram diferentes, mas as faixas de temperatura de operação das colunas foram modificadas. Enquanto na coluna com fase estacionária per-O-metil a faixa de temperatura de operação era de 160-250 ºC, na coluna com fase estacionária terc-butil em C-6 a faixa de temperatura de operação foi de 20-250 ºC, permitindo assim a resolução de enantiômeros de massa molecular baixa.⁷⁶

Em contraste, outros autores acreditam na ancoragem da ciclodextrina ao polímero regiosseletivamente a partir da posição 6, de forma a não bloquear a entrada do tórulo na posição 2 ou 3. O bloqueio da entrada de ciclodextrina pelo tamanho dos substituintes é prejudicial à separação enantiomérica e pode ser evitado empregando-se ciclodextrinas com 7 resíduos de glicose e metilando-se todas as hidroxilas residuais que não estejam sendo ocupadas por nenhum substituinte.⁶⁸

Quando as ciclodextrinas são derivatizadas, os grupos hidroxilas são protegidos e substituídos por grupos éteres e portanto não se observa mais as interações do tipo ligações de hidrogênio, havendo com isso uma torção das estruturas destes derivados.²⁷

No entanto, quando são as fases estacionárias per-O-metil-ciclodextrinas essas torções são minimizadas podendo ainda ser capazes de formar complexos de inclusão. Com isso, a estereosseletividade das per-O-metil-ciclodextrinas é maior do que a das não derivatizadas, não levando a uma perda de eficiência do processo cromatográfico. De fato, as per-metil-β-ciclodextrinas representam uma fase estacionária útil na resolução de misturas enantioméricas de substâncias voláteis pertencentes a diferentes classes de compostos.²⁸

A enantiosseletividade também difere entre α e β ciclodextrinas, indicando claramente que a dimensão da cavidade macrocíclica exerce um importante papel na inclusão de substratos quirais.⁸

Todas estas modificações nas ciclodextrinas derivatizadas e os efeitos observados levam a crer que o modo de formação de complexos de inclusão parece ser provável no reconhecimento quiral. A substância a ser analisada entra na cavidade da ciclodextrina e se liga a pelo menos um centro quiral. A parte restante da molécula pode interagir com a ciclodextrina em outro ponto ajustando a molécula.²⁹

A interação via formação de um complexo na inclusão entre a ciclodextrina e o analito pode ser uma explicação da resolução quiral e alguns resultados experimentais são favoráveis a essa idéia. Primeiramente, enantiosseletividade comparável não pode ser observada quando oligômeros lineares de per-O-pentil-glicose são usados como fase estacionária quiral em cromatografia gasosa e, segundo, há claras indicações que a resolução óptica na ciclodextrina depende do tamanho da cavidade e da molécula a ser identificada.²⁹

Entretanto, uma vez que a separação de enantiômeros também pode ser realizada em per-n-pentil-amilose (bem menos eficientemente), a inclusão dentro da cavidade não pode ser pré-requisito para o reconhecimento quiral em ciclodextrinas modificadas. Nenhuma associação molecular forte é necessária, pois hidrocarbonetos saturados também são reconhecidos.^21,27 Além do mais, muitas substâncias são tão grandes que não cabem na cavidade e mesmo assim seus isômeros são resolvidos e, como as ciclodextrinas contém de 30 a 40 centros quirais em cada molécula, a interação enantiosseletiva pode ocorrer em outra parte da molécula.²⁹ Isso evidencia que o processo de reconhecimento quiral pode envolver mecanismo de inclusão, assim como interação do tipo ligação de hidrogênio e dipolo-dipolo.²⁷ De fato, "aciclodextrinas", como tem sido chamadas as versões lineares das ciclodextrinas derivatizadas, mostraram enantiosseletividade maior que as próprias ciclodextrinas derivatizadas, quando foram comparadas (2,3-di-O-acetil-6-O-terc-butil-dimetil-silil)-β-ciclodextrina (CD 7, pois tem 7 unidades de glicose na ciclodextrina) com [(2,3-O,4"-O)-acetil-(1'-O,6-O)-terc-butil-dimetil-silil]maltoeptose (G7, pois tem 7 unidade de glicose na dextrina linear) e os respectivos congêneres com 8 carbonos.^78,79

IDENTIFICAÇÃO DE SUBSTÂNCIAS SEPARADAS POR CROMATOGRAFIA GASOSA QUIRAL

A identificação de compostos quirais pode ser realizada com ou sem a necessidade de evidências quirópticas via co-injeção de um composto de estereoquímica conhecida.^15,31 Contudo, o composto de interesse é sintetizado ou adquirido comercialmente e co-injetado em grande parte dos trabalhos.

O método de rotulagem enantiomérica consiste em adicionar uma solução padrão de concentração conhecida do composto e pela diferença determina-se a amostra.^8,31

Em alguns casos, os enantiômeros também podem ser previamente convertidos em estereoisômeros por agentes derivatizantes e então serem separados sem a necessidade de fases estacionárias quirais, mas é bastante sujeito a falhas devido à possibilidade de ocorrência de racemização ou uma derivatização incompleta.¹⁵ Este último método foi utilizado na análise quiral de substâncias voláteis do cajá (Spondias lutea L.).⁸⁰

Com apoio do banco de dados específicos para cromatografia gasosa acoplada a espectrometria de massas ("espectrotecas"), como o Chirbase^®, é possível distinguir e identificar dezenas de milhares de enantiômeros.^5,26 Eles fornecem as estruturas moleculares dos analitos, dados da separação, como tempo de retenção, dados bibliográficos, nomes de compostos, odores característicos de alguns enantiômeros, e seleciona condições ótimas de operação cromatográfica, tais como fase estacionária, temperatura, pressão, fase móvel, dimensão da coluna e, se necessário, permite o planejamento de reações de derivatização adequada.¹⁵ Uma outra biblioteca (sem nome comercial por enquanto) foi desenvolvida e correlaciona os espectros de massas com os índices de retenção lineares dos compostos presentes em flavours.⁹

Existe, ainda, um fenômeno que pode ocorrer e ser utilizado na identificação de substâncias. Trata-se da mudança de conformação ou configuração durante a análise, a qual resulta em um platô no registro, ao invés de um pico. Este processo é denominado enantiomerização e não racemização por ser um processo dinâmico que ocorre durante a cromatografia e não a transformação de uma mistura de enantiômeros em um racemato. Este fenômeno serve para reconhecer a labilidade de um estereocentro ou a integridade estereoquímica e é recomendado pela FDA (Food and Drug Administration) dos Estados Unidos na análise da integridade estereoquímica de drogas quirais.^10,31 O programa ChromWin^® permite determinar as taxas constantes de enantiomerização. A enantiomerização pode ocorrer dentro de uma primeira coluna com a interrupção do fluxo de gás, seguido de uma segunda coluna para separar os isômeros e uma terceira para analisar os compostos, ou simplesmente 2 colunas, uma para gerar a enantiomerização e outra para analisar os produtos, no caso de amostras menos complexas.⁸¹

CROMATOGRAFIA GASOSA QUIRAL NA PESQUISA DE FLAVOURS DE FRUTAS

Os enantiômeros predominantes encontrados em frutas e as colunas empregadas nas análises de diversas frutas são apresentados na Tabela 2.

Agathosma betuina Berth e Agathosma crenulata (L.) Hook são pequenos arbustos nativos da África do Sul, também referidos na literatura internacional como "buchu", e suas folhas são usadas como flavorizantes em vinhos e alimentos. Seus frutos são um tipo de groselha preta da qual se obtém o flavour tipo cassis, usado em alguns sorvetes. Trabalhando com a fase estacionária quiral (2,3,6-tri-O-metil)-β-ciclodextrina, os autores estudaram a composição do óleo essencial extraído das folhas e concluíram que todos os 4 estereoisômeros da 8-mercapto-p-mentan-3-ona eram de configuração absoluta (S).⁸²

Usando fases estacionárias quirais 2,6-di-O-metil-3-O-pentil-β-ciclodextrina/OV-1701 e 2,3-di-O-acetil-6-O-terc-butil-dimetil-silil-β-ciclodextrina/OV-1701 em polpa de mamão papayuela (Carica pubescens) foram identificados o 1,3-octanodiol e glicosídeos de 3-hidroxi-butanoatos, especificamente o 3-O-β-D-glicopiranosilbutanoato de etila e o 3-O-β-D-glicopiranosilbutanoato de butila, sendo que foram encontrados um valor de excesso enantiomérico de 90% de (R)-1,3-octanodiol, 96% de (S)-3-hidroxi-butanoato de etila e 24% de (S)-3-hidroxi-butanoato de butila, após a ação enzimática de β-glicosidase.⁸³ Esta fruta, Carica pubescens, não é o mamão papaia que normalmente é consumido no Brasil, mas sim uma espécie comum nas montanhas colombianas.⁸⁴ O mamão papaia que conhecemos trata-se do Carica papaya L.

Em maçãs (Malus sylvestris), utilizando a fase estacionária 2,3-di-O-acetil-6-O-terc-butil-dimetil-silil-β-ciclodextrina/OV-1701, foi encontrado o (R)-1,3-octanodiol com excesso enantiomérico superior a 99%. Este glicol, que possui atividade antifúngica, já havia sido identificado desde 1973 como uma das substâncias responsáveis pelo aroma de maçãs de diferentes cultivares, contudo a elucidação do enantiômero presente permaneceu obscura por mais de 20 anos. Também foram analisados o 5-(Z)-1,3-octenodiol e os ésteres destes dois álcoois, o 3-hidroxioctanoato de etila e o 5-(Z)-3-hidroxioctenoato de etila, e em todos foram encontrados excessos enantioméricos superiores a 99% da configuração (R).⁸⁵

A análise quiroespecífica do tamarilho (Cyphomandra batea cea Sendtn.), uma fruta nativa do clima temperado dos Andes e pertencente à família Solanaceae, revelou misturas racêmicas do 3-hidroxibutanoato de metila e do butanol-2, 50:50% e 48:52% de (S):(R), respectivamente. O butanol-2 é um componente comum em morango, banana, manga e mamão.⁸⁶ E em relação ao seu odor, nenhuma diferença significativa foi encontrada entre as configurações (R) e (S).²⁰ Já o 3-hidroxibutanoato de etila, o 3-hidroxiexanoato de metila e o 3-hidroxiexanoato de etila apresentaram uma distribuição enantiomérica de 68:32%, 73:27% e 63:37% de (S):(R), respectivamente. Os monoterpenos α-terpineol e 4-terpineol também foram encontrados com excesso enantiomérico da configuração (S), 76% e 48%, respectivamente, utilizando a fase estacionária quiral 2,3-diacetil-6-O-terc-butil-dimetil-silil-β-ciclodextrina/OV-1701.⁸⁶ Este trabalho também serve para ilustrar que nem sempre as vias biossintéticas vegetais produzem grandes excessos enantioméricos de um determinado enantiômero.

O ácido 2-metilbutanóico, produzido por uma bactéria do gênero Pseudomonas sp., presente no solo, também foi analisado por cromatografia gasosa quiral. Os achados mostraram que ácido (R)-2-metilbutanóico com excesso enantiomérico de 100% foi produzido. Este enantiômero, que não é produzido comercialmente, tem odor de queijo e adocicado, enquanto o enantiômero ácido (S)-2-metilbutanóico é produzido comercialmente e apresenta odor doce, frutal e tropical. A partir do ácido (R)-2-metilbutanóico foi possível sintetizar iminas, cetonas e ésteres com aroma frutal.⁸⁷

Suárez et al.,⁸⁸ estudaram a casca de uma fruta colombiana, a Solanum vestissimum D., e encontraram acentuadas diferenças entre o odor da casca e da polpa, bem como as suas substâncias voláteis. Usando como fases estacionárias quirais 2,6-dimetil-3-pentil-β-ciclodextrina para a análise de 3-hidroxiésteres e 2,6-dimetil-3-butiril-g-ciclodextrina para análise de lactonas, eles encontraram misturas racêmicas de linalol, 3-acetoxibutanoato de metila e de 3-hidroxibutanoato de metila, 51:49%, 52:48% e 52:48% de (R):(S), respectivamente. Já o 3-hidroximetanoato de metila, 3-hidroxibutanoato de etila e a g-hexalactona apresentaram relação 86:14%, 72:28% e 90:10% de (R):(S) e excesso enantiomérico de 70%, 44% e 80%, respectivamente.

De forma independente e empregando fases estacionárias quirais diferentes, dois trabalhos relataram a presença predominante de (R)-Δ-lactonas em coco, mas cujos conteúdos diminuiam com o aumento de número de carbonos, assim houve excesso enantiomérico decrescente de (R)-Δ-hexalactona, (R)-Δ-octalactona, (R)-Δ-decalactona, (R)-Δ-dodecalactona até um excesso enantiomérico de (S)-Δ-tetradecalactona.^89,90

Recentemente, Δ-octalactona, γ-nonalactona, γ-decalactona e γ-dodecalactona foram relatadas como importantes componentes do flavour de abacaxi durante o amadurecimento, mas infelizmente os pesquisadores não empregaram fase estacionária quiral na análise.⁹¹

Os enantiômeros monoterpênicos das bagas de Juniperus oxyce drus e Juniperus communis L. argelinos foram identificados e quantificados com o auxílio de microextração em fase sólida, cromatografia quiral usando β-ciclodextrina e padrões dos compostos.⁹²

Este trabalho serve para ilustrar como pode ser realizada, de forma simples e convencional, o estudo de substâncias voláteis em frutos através de microextração em fase sólida e cromatografia gasosa quiral. Os autores esmagaram manualmente 200 mg do fruto, transferiram para um frasco de 20 mL, fecharam com septo de silicone e aguardaram 30 minutos. Então, em triplicata, expuseram uma fibra para microextração em fase sólida constituída de divinilbenzeno-carboxen-polidimetilsiloxano ao headspace estático do frasco, durante 5 minutos, à temperatura ambiente. As substâncias foram desorvidas com a introdução manual da fibra no injetor do cromatógrafo a gás acoplado a um detector seletivo de massas a 250 ºC, por 2 minutos, sem divisão de fluxo (splitless). As substâncias enantiômeras foram separadas em uma coluna capilar Cyclodex B^® (fase estacionária de β-ciclodextrina - 10,5%) ligada a fase estacionária DB-1701) e foram identificadas através do uso de padrões analíticos analisados sob as mesmas condições (usando hélio como gás carreador com fluxo de 1 mL/minuto, a coluna mantida à temperatura de 40 ºC/5 min, que foi então aumentada até 180 ºC a uma velocidade de 1,5 ºC/min).⁹²

Em outro trabalho, a associação da cromatografia quiral com técnicas olfatométricas permitiu identificar o isômero prevalente do 3-metil-(E)-5-decen-4-olídeo, o enantiômero (3S,4R)-(-) e os outros compostos de impacto, como o (Z)-6-dodecen-4-olideo, do flavour de pêssego.¹

O trabalho de Flores et al.⁹³ é interessante, pois usaram fases estacionárias quirais 2 vezes na mesma investigação. Primeiro empregaram uma coluna com fase estacionária quiral de per-metil-β-ciclodextrina, especialmente projetada para eles, para separar os 4 estereoisômeros do jasmonato de metila de um produto comercial através de cromatografia líquida de alta eficiência. Este produto comercial de jasmonato de metila, normalmente é aplicado em framboesas e morangos para melhorar o aroma das frutas. Depois aplicaram cada um dos 4 isômeros separados sobre framboesas e avaliaram através de cromatografia gasosa quiral os efeitos destes sobre substâncias voláteis importantes para o aroma da framboesa: limoneno, α-ionona e β-pineno. Embora não tenham chegado a nenhuma conclusão sobre a ação dos isômeros de jasmonato de metila sobre β-pineno se comparado ao produto comercial (que contém uma mistura de estereoisômeros do jasmonato de metila), as framboesas tratadas com (-)-epijasmonato de metila ou [(-)-3S,7R)-jasmonato de metila] apresentaram maiores teores de (R)-(+)-(E)-α-ionona e (R)-(+)-limoneno. O (-)-epijasmonato de metila está presente na concentração de apenas 2,5% no produto comercial vendido como jasmonato de metila. A (R)-(+)-(E)-α-ionona apresenta aroma de framboesa, enquanto a (S)-(-)-(E)-α-ionona apresenta aroma de madeira (Figura 3).^7,21,22 Isto significa que é possível melhorar sensorialmente as framboesas aplicando o esteroisômero específico de jasmonato de metila. A (R)-(+)-(E)-α-ionona já havia sido relatada anteriormente como compoente do aroma de framboesa.⁹⁴ A Tabela 2 apresenta outras substâncias voláteis detectadas no perfil aromático de framboesas.^95,96

A cromatografia gasosa quiral (fase estacionária quiral de dietil-terc-butil-silil-β-ciclodextrina) tem sido uma ferramenta empregada para detectar fraudes e adulterações por misturas com óleo essencial de laranja ou óleos destilados de diferentes origens no valioso óleo essencial de tangerina italiano, usado como agente flavorizante em sucos de tangerina e na indústria de cosméticos. O artigo destes autores, entretanto, mostra a vantagem de se empregar cromatografia gasosa bidimensional com fase estacionária quiral para evitar a coeluição de alguns monoterpenos presentes no óleo essencial de tangerina, ao invés de apresentar a detecção de fraudes em óleos essenciais de tangerina.⁹⁷

Em outro trabalho, os autores apresentam claramente que a cromatografia gasosa quiral pode ser uma das ferramentas para controle de qualidade da autenticidade dos óleos essenciais de tangerina ao permitir a separação, quantificação e identificação, com a ajuda de padrões analíticos, de 12 monoterpenos quirais característicos deste óleo, cuja adulteração por adição de óleo essencial de laranja pode ser facilmente encontrada. Mas os autores destacam que a adulteração por adição de compostos aquirais pode acontecer e sugerem outros métodos analíticos complementares, como cromatografia gasosa de alta resolução (para compostos aquirais), cromatografia líquida de alta eficiência (para frações não voláteis) e cromatografia gasosa com combustão e espectrometria de massas para razões isotópicas.⁹⁸

Além da investigação das razões isotópicas de deutério e de ¹²C/¹³C, os ácidos orgânicos presentes nas frutas também podem servir para avaliar a autenticidade de produtos derivados de frutas, uma vez que são menos susceptíveis a alterações durante o processamento e armazenamento dos produtos e também porque o conjunto de ácidos orgânicos presentes forma uma perfil único para cada fruta.⁹⁹ Entretanto, na maioria das vezes, estes compostos precisam de derivatização prévia antes da análise por cromatografia gasosa.

Até a origem de sucos de laranja já foi possível ser investigada através da análise da distribuição enantiomérica de compostos quirais.¹⁰⁰

Também voltado para a detecção de fraudes, o estudo dos compostos quirais envolvidos no flavour de morango (Fragaria sp.) revelou a presença de (+)-linalol, (-)-furaneol (4-hidroxi-2,5-dimetil-3(2H)-furanona), (S)-2-metilbutanoato de metila, (S)-(+)-2-metilbutanoato de etila, (R)-α-ionona, (R)-4-decanolídeo e (R)-4-dodecanolídeo.^101,102 E no estudo dos compostos quirais relacionados ao flavour de polpa e geléia de morango, além dos compostos (S)-2-metilbutanoato de metila, (S)-(+)-2-metilbutanoato de etila, (R)-α-ionona, (R)-4-decanolídeo e (R)-4-dodecanolídeo também foi encontrado (R)-4-octanolídeo. Entretanto, quando iogurte, sobremesa gelada e geléias adquiridas no comércio foram analisados, estes compostos estavam ausentes ou presentes na forma de racematos, indicando a adulteração dos produtos.¹⁰²

Os sucos e as cascas de três frutas cítricas de origem japonesa: yuzu (Citrus junos Sieb ex Tanaka), sudachi (Citrus sudachi Hort ex Shirai) e kabosu (Citrus sphaerocarpa Hort ex Tanaka) usadas como temperos em frutos do mar grelhados, em sobremesas e licores foram estudados por cromatografia gasosa bidimensional com fase estacionária aquiral de polietilenoglicol e fase estacionária quiral de 2,6-diacetil-6-terc-butil-dimetil-silil-β-ciclodextrina e apresentaram os mesmos enantiômeros de linalol e citronelol em ambas as partes das frutas (suco e casca), mas enquanto o enantiômero (3R)-(-)-linalol foi majoritário no yuzu, o enantiômero (3S)-(+)-linalol foi majoritário no sudachi e no kabosu houve uma mistura racêmica dos compostos. Isto confere ao yuzu um odor madeirado, enquanto no sudachi o odor é frutal. Já o (3R)-(+)-citronelol foi o enantiômero encontrado na casca e no suco das três frutas.¹⁰³

Variedades de manga do Estado do Rio de Janeiro - Brasil tiveram seus compostos de impacto, isto é, as substâncias mais significativas que caracterizam um dado aroma, investigados. Entre eles, o (1R,5R)-(+)-α-pineno conferiu nota de odor verde à variedade Tommy Atkins, e enquanto o enantiômero 2-(S)-metilbutanoato de etila conferiu nota de odor frutal, lembrando maçã, à variedade Carlota, o enantiômero correspondente ao 2-(R)-metilbutanoato de etila foi detectado na variedade Rubi e relacionado à nota de odor rançoso desta última variedade (Figura 4).¹⁰⁴

CONSIDERAÇÕES FINAIS

Atualmente, a seleção de uma fase estacionária para a resolução quiral de enantiômeros de substâncias flavorizantes em frutas ainda é um pouco empírica, já que existem indicações de determinadas fases estacionárias, mas não há uma fase estacionária quiral com uso universal e diferentes ciclodextrinas podem resolver mais eficientemente um ou outro composto. Mas há que se reconhecer que em menos de 20 anos houve um avanço considerável na elaboração de colunas, por isso, acredita-se que tão logo se compreenda melhor os fenômenos de interação entre a amostra contendo a substância quiral e a fase estacionária quiral, a cromatografia enantiosseletiva terá suas aplicações ampliadas. Este processo já se iniciou e a identificação dos enantiômeros, bem como o valor do excesso enantiomérico, portanto, podem ser úteis como parâmetros de controle de qualidade na indústria de alimentos e de óleos essenciais, pois a proporção enantiomérica pode funcionar como uma impressão digital, capaz de indicar adulterações e alterações durante processos e armazenagem de diferentes produtos a base de frutas ou seus óleos essenciais.

Recebido em 27/02/2014; aceito em 04/08/2014; publicado na web em 22/09/2014

• 1. d'Acampora Zellner, B.; Dugo, P.; Dugo, G.; Mondello, L.; J. Chro matogr. A 2008,1186,123.
• 2. Cremasco, M. A.; Cienc. Cult. 2013,65,4.
• 3. Rocco, A.; Aturki, Z.; Fanali, S.; TrAC, Trends Anal. Chem. 2013,52,206.
• 4. Bonato, P. S.; Paias, F. O.; J. Braz. Chem. Soc. 2004,15,318.
• 5. Schurig, V.; Ann. Pharm. Fr. 2010,68,82.
• 6. König, W. A.; Hochmuth, D. H.; J. Chromatogr. Sci. 2004,42,423.
• 7. Mosandl, A.; Food Rev. Int. 1995,11,597.
• 8. König, W. A.; Evers, P.; Krebber, R.; Schulz, S.; Fehr, C.; Ohloff, G.; Tetrahedron 1989,45,7003.
• 9. Liberto, E.; Cagliero, C.; Sgorbini, B.; Bicchi, C.; Sciarrone, D.; Zellner, B. D. A.; Mondello, L.; Rubiolo, P.; J. Chromatogr. A 2008,1195,117.
• 10. Armstrong, D. W.; Chang, C. D.; Li, W. Y.; J. Agric. Food Chem. 1990,38,1674.
• 11. Bensch, W.; Mosandl, A.; Fischer, K.; Tetrahedron: Asymmetry. 1993,4,655.
• 12. Bicchi, C.; D'Amato, A.; Rubiolo, V.; J. Chromatogr. A: 1999,843,99.
• 13. Erbe, T.; Bruckner, H.; J. Chromatogr. A 2000,881,81.
• 14. König, W. A.; Lutz, S.; Hagen, M.; Krebber, R.; J. High Resolut. Chro matogr.1989,12,35.
• 15. Koppenhoefer, B.; Behnisch, R.; Epperlein, U.; Holzschuh, H.; Bernreuter, A.; Piras, P.; Roussel, C.; Perfum. Flavor. 1994,19,1.
• 16. Verzera, A.; Tripodi, G.; Condurso, C.; Dima, G.; Marra, A.; Food Control 2014,39,237.
• 17. Simionatto, E.; Porto, C.; Stücker, C. Z.; Dalcol, I. I.; Silva, U. F.; Quim. Nova 2007,30,1923.
• 18. Sciarrone, D.; Ragonese, C.; Carnovale, C.; Piperno, A.; Dugo, P.; Dugo, G.; Mondello, L.; J. Chromatogr. A 2010,1217,6422.
• 19. Belitz, H. D.; Grosch, W.; Food Chemistry, Springer: Berlin, 1999.
• 20. Boellens, M. H.; Boellens, H.; Van Gemert, L.; Perfum. Flavor. 1993,18,1.
• 21. Eliel, E. L.; Wilen, S. H.; Stereochemistry of Organic Compounds, John Wiley & Sons: Chichester, 1994.
• 22. Takeichi, T.; Toriyama, H.; Shimura, S.; Takayama, Y.; J. High Resolut. Chromatogr. 1995,18,179.
• 23. Bourgeaux, E.; Combret, J. C.; Tetrahedron: Asymmetry 2000,11,4189.
• 24. Yassaa, N.; Williams, J.; Atmos. Environ. 2005,39,4875.
• 25. Sicoli, G.; Kreidler, D.; Czesla, H.; Hopf, H.; Schurig, V.; Chirality 2009,21,83.
• 26. Schurig, V.; J. Chromatogr. B 2011,879,3122.
• 27. Silva, E. F.; Ramos, M. C. K. V.; Aquino Neto, F. R.; Quim. Nova 1996,19,473.
• 28. Schurig, V.; Schmalzing, D.; Mühleck, U.; Jung, M.; Schleimer, M.; Mussche, P.; Duvekot, C.; Buyten, J. C.; J. High Resolut. Chro matogr. 1990,13,713.
• 29. König, W. A.; Icheln, D.; Runge, T.; Pforr, I.; Krebs, A.; J. High Resolut. Chromatogr. 1990,13,702.
• 30. Li, M.; Huang, J.; Li, T.; J. Chromatogr. A 2008,1191,199.
• 31. Schurig, V.; J. Chromatogr. A 2001,906,275.
• 32. Ali, H. S. M.; Pätzold, R.; Brückner, H.; Amino acids 2010,38,951.
• 33. Sarkadi, L. S.; Em: Progress in Biological Chirality, Palyi, G.; Zucchi C.; Caglioti, L., eds. Elsevier: Amsterdam, Boston, Heidelberg, London, New York, Oxford, Paris, San Diego, San Francisco, Singapore, Tokyo, 2004.
• 34. Levkin, P. A.; Schurig, V.; J. Chromatogr. A 2008,1184,309.
• 35. Levkin, P. A.; Lekvina, A.; Czesla, H.; Schurig, V.; Anal. Chem 2007,79,4401.
• 36. Levkin, P. A.; Lekvina, A.; Schurig, V.; Anal. Chem 2006,78,5143.
• 37. Levkin, P. A.; Ruderisch, A.; Schurig, V.; Chirality 2006,18,49.
• 38. Levkin, P. A.; Lekvina, A.; Czesla, H.; Nazzi, S.; Schurig, V.; J. Sep. Sci 2007,30,98.
• 39. Uccello-Barretta, G.; Nazzi, S.; Balzano, S.; Levkin, P. A.; Schurig, V.; Salvadori, P.;Eur. J. Org. Chem 2007,3219.
• 40. Kreidler, D.; Czesla, H.; Schurig, V.; J. Chromatogr. B 2008,875,208.
• 41. Stephany, O.; Dron, F.; Tisse, S.; Martinez, A.; Nuzillard, J. M.; Peulon-Agasse, V.; Cardinaël, P.; Bouillon, J. P.; J. Chromatogr. A 2009,1216,4051.
• 42. Croft, A. P.; Bartsch, R. A.; Tetrahedron 1983,39,1417.
• 43. Pereira, C. S.; Moura, A. F.; Freitas, L. C. G.; Lins, R. D.; J. Braz. Chem. Soc. 2007,18,951.
• 44. Ribeiro, A. O.; Serra, O. A.; J. Braz. Chem. Soc. 2007,18,273.
• 45. Toma, S. H.; Toma, H. E.; J. Braz. Chem. Soc. 2007,18,279.
• 46. Xavier, C. R.; Silva, A. P. C.; Schwingel, L. C.; Borghetti, G. S.; Koester, L. S.; Mayorga, P.; Teixeira, H. F.; Bassani, V. L.; Lula, I. S.; Sinisterra, R. D.; Quim. Nova 2010,33,587.
• 47. Fraceto, L. F.; Gonçalves, M. M.; Moraes, C. M.; Araújo, D. R.; Zanella, L.; Paula, E.; Pertinhez, T. A.; Quim. Nova 2007,30,1203.
• 48. Britto, M. A. F. O.; Nascimento Jr., C. S.; Santos, H. F.; Quim. Nova 2004,27,882.
• 49. Zhu, J.; Wang, P.; Lu, M.; J. Braz. Chem. Soc. 2013,24,171.
• 50. Bustos, E.; Manriquez, J.; Juaristi, E.; Chapman, T. W.; Godínez, L. A.; J. Braz. Chem. Soc. 2008,19,1010.
• 51. Ali, S. M.; Maheshwari, A.; Asmat, F.; Koketsu, M.; Quim. Nova 2006,29,685.
• 52. Souza, A. O.; Santos-Jr, R. R.; Sato, D. N.; Azevedo, M. M.; Ferreira, D. A.; Melo, P. S.; Haun, M.; Silva, C. L.; Durán, N.; J. Braz. Chem. Soc. 2004,15,682.
• 53. Grillo, R.; Melo, N. F. S.; Fraceto, L. F.; Brito, C. L.; Trossini, G. H. G.; Menezes, C. M. S.; Ferreira, E. I.; Moraes, C. M.; Quim. Nova 2008,31,290.
• 54. Rezaei, B.; Ensafi, A. A.; Haghighatnia, F.; Aalaye, S. E.; J. Braz. Chem. Soc. 2012,23,2248.
• 55. Astray, G.; Gonzalez-Barreiro, C.; Mejuto, J. C.; Rial-Otero, R.; Simal-Gándara, J.; Food Hydrocolloids 2009,23,1631.
• 56. Ciobanu, A.; Landy, D.; Fourmentin, S.; Food Res. Int. 2013,53,110.
• 57. Del Valle, E. M. M.; Process Biochem. 2004,39,1033.
• 58. Li, Z.; Chen, S.; Gu, Z.; Chen, J.; Wu, J.; Trends Food Sci. Technol 2014,35,151.
• 59. Moriwaki, C.; Mazzer, C.; Pazzetto, R.; Matioli, G.; Quim. Nova 2009,32,2360.
• 60. Moraes, C. M.; Abrami, P.; Gonçalves, M. M.; Andréo Filho, N.; Fernandes, S. A.; Paula, E.; Fraceto, L. F.; Quim. Nova 2007,30,777.
• 61. Abbehausen, C.; Formiga, A. L. B.; Sabadini, E.; Yoshida, I. V. P.; J. Braz. Chem. Soc. 2010,21,1867.
• 62. Dietrich, A.; Maas, B.; Mosandl, A.; J. High Resolut. Chromatogr. 1995,18,152.
• 63. Bicchi, C.; Artuffo, G.; D'Amato, A.; Manzin, V.; J. High Resolut. Chromatogr. 1992,15,710.
• 64. Bicchi, C.; Liberto, E.; Cagliero, C.; Cordero, C.; Sgorbini, B.; Rubiolo, P.; J. Chromatogr. A 2008,1212,114.
• 65. Bicchi, C.; D'Amato, A.; Manzin, V.; Rubiolo, V.; Flavour Fragrance J. 1997,12,55.
• 66. Wenz, G.; Mischnick, P.; Krebber, R.; Richeters, M.; König, W. A.; J. High Resolut. Chromatogr. 1990,13,724.
• 67. Liang, M.; Qi, M.; Zhang, C.; Fu, R.; J. Chromatogr. A 2004,1059,111.
• 68. Schimalzing, D.; Jung, M.; Mayer, S.; Rickert, J.; Schurig, V.; J. High Resolut. Chromatogr. 1992,15,723.
• 69. Bicchi, C.; Cagliero, C.; Liberto, E.; Sgorbini, B.; Martina, K.; Cravotto, G.; Rubiolo, P.; J. Chromatogr. A 2010,1217,1106.
• 70. Cagliero, C.; Bicchi, C.; Cordero, C.; Rubiolo, P.; Sgorbini, B.; Liberto, E.; Food Chem. 2012,132,1071.
• 71. Mallmann, A. S.; Ethur, E. M.; Silva, U. F.; Dalcol, I. I.; Morel, A. F.; J. Braz. Chem. Soc. 2010,21,2005.
• 72. Takahisa, E.; Engel, K.-H.; J. Chromatogr. A 2005,1063,181.
• 73. Biniecka, M.; Caroli, S.; TrAC, Trends Anal. Chem. 2011,30,1756.
• 74. Chaintreau, A.; Begnaud, F.; Starkenmann, C.; Em Flavour Science: Recent Advances and Trends; Bredie, W. L. P.; Petersen, M. A.; eds. Elsevier: Amsterdam, Boston, Heidelberg, London, New York, Oxford, Paris, San Diego, San Francisco, Singapore, Sydney, Tokyo, 2006.
• 75. Varga, G.; Tárkányi, G.; Németh, K.; Iványi, R.; Jicsinszky, L.; Tőke, O.; Visy, J.; Szente, L.; Szemán, J.; Simonyi, M.; J. Pharm. Biomed. Anal. 2010,51,84.
• 76. Shitangkoon, A.; Vigh, G.; J. Chromatogr. A 1996,738,31.
• 77. Sandra, P.; J. High Resolut. Chromatogr. 1990,13,665.
• 78. Sicoli, G.; Jiang, Z.; Jicsinszky, L.; Schurig, V.; Angew. Chem. Int. Ed 2005,44,4092.
• 79. Sicoli, G.; Pertici, F.; Jiang, Z.; Schurig, V.; Chirality 2007,19,391.
• 80. Allegrone, G.; Barbeni, M.; Flavour Fragrance J. 1992,7,337.
• 81. Trapp, O.; Schurig, V.; Comput. Chem. 2001,25,187.
• 82. Mosandl, A.; Köpke, T.; Bensch, W.; Tetrahedron Asymmetry 1993,4,651.
• 83. Krajewski, D.; Duque, C.; Schreier, P.; Phytochemistry 1997,45,1627.
• 84. Morales, A. L.; Duque, C.; J. Agric. Food Chem 1987,35,538.
• 85. Beverle, T.; Schreier, P.; Brunerie, P.; Bicchi, C.; Schwab, W.; Phytochemistry 1996,43,145.
• 86. Torrado, A.; Suárez, M.; Duque, C.; Krajewski, D.; Neugebauer, W.; Schreier, P.; Flavour Fragrance J. 1995,10,349.
• 87. Tachihara, T.; Hashimoto, H.; Ishizaki, S.; Komai, T.; Fujita, A.; Ishikawa, M.; Kitahara, T.; Em Developments in Food Science; Wender, L. P. B; Petersen, M. A.; eds. Elsevier: Amsterdam, Boston, Heidelberg, London, New York, Oxford, Paris, San Diego, San Francisco, Singapore, Sydney, Tokyo, 2006.
• 88. Suárez, M.; Duque, C.; Bicchi, C.; Wintoch, H.; Full, G.; Schreier, P.; Flavour Fragrance J. 1993,8,215.
• 89. Nago, H.; Matsumoto, M.; Biosci., Biotechnol., Biochem 1993,57,427.
• 90. Lehmann, D.; Maas, B.; Mosandl, A.; Z. Lebensm.-Unters. Forsch. 1995,201,55.
• 91. Steingass, C. B.; Grauwet, T.; Carle, R.; Food Chem. 2014,150,382.
• 92. Foudil-Cherif, Y.; Yassaa, N.; Food Chem. 2012,135,1796.
• 93. Flores, G.; Blanch, G. P.; Ruiz del Castillo, M. L.; Food Chem. 2013,141,2982.
• 94. Lehmann, D.; Dietrich, A.; Schmidt, S.; Dietrich, H.; Mosandl, A.; Z. Lebensm.-Unters. Forsch. 1993,196,207.
• 95. Malowicki, S.; Martin, R.; Qian, M. C.; J. Agric. Food Chem. 2008,56,6648.
• 96. Malowicki, S.; Martin, R.; Qian, M. C.; J. Agric. Food Chem. 2008,56,4128.
• 97. Sciarrone, D.; Schipilliti, L.; Ragonese, C.; Tranchida, P. Q.; Dugo, P.; Dugo, G.; Mondello, L.; J. Chromatogr. A 2010,1217,1101.
• 98. Schipilliti, L.; Tranchida, P. Q.; Sciarrone, D.; Russo, M.; Dugo, P.; Dugo, G.; Mondello, L.; J. Sep. Sci 2010,33,617.
• 99. Kabir, Y.; Sidhu, J. S.; Handbook of Fruits and Fruit Processing, John Wiley & Sons Ltda: Ames, Chichester, Oxford, 2012.
• 100. Luykx, D. M. A. M.; van Ruth, S. M.; Food Chem. 2008,107,897.
• 101. Moreno, F. D. L. P.; Blanch, G. P.; Flores, G.; del Castillo, M. L. R.; J. Chromatogr. A 2010,1217,1083.
• 102. Kreck, M.; Shcarrer, A.; Bilke, S.; Mosandl, A.; Eur. Food Res. Technol. 2001,213,389.
• 103. Tomiyama, K.; Aoki, H.; Oikawa, T.; Sakurai, K.; Kasahara, Y.; Kawakami, Y.; Flavour Fragrance J. 2012,27,341.
• 104. Lopes, D. C.; Fraga, S. R.; Rezende, C. M.; Quim. Nova 1999,22,31.
• 105. Saltão, R.; Veiga, F.; Rev. Bras. Cienc. Farm. 2001,37,1.

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  28 Nov 2014
• Data do Fascículo
  2014

Histórico

• Recebido
  27 Fev 2014
• Aceito
  04 Ago 2014