MODIFICAÇÃO DE MEMBRANA DE POLIAMIDA VIA SOL-GEL E INCORPORAÇÃO DE COMPOSTO DE EURÓPIO (III) LUMINESCENTE

MODIFICATION OF POLYAMIDE MEMBRANE BY SOL-GEL AND INCORPORATION OF LUMINESCENT EUROPIUM (III) COMPLEX

Resumo

Over the last decades, the combination of different technologies to search for systems with new properties and features has brought various segments of biological and earth sciences together. Additive manufacturing, known as rapid prototyping, combined with the sol-gel methodology enables the production of novel systems with applications in many scientific fields. In this work, flexible polyamide membranes were obtained by additive manufacturing, functionalized by the sol-gel methodology, and incorporated with the coordination compound between Eu(III) and 1,10-phenanthroline. The presence of vibrations at 1100 cm^-1 in the FTIR spectrum of the material, which is a band typical of the Si-O-Si group in the alkoxide employed during the process, confirmed the polyamide membrane functionalization. The thermogravimetric curve showed that a residue remained after heating at 700 ºC, which was attributed to SiO₂. The membrane was highly luminescent, which confirmed incorporation of the Eu³⁺ compound into the material and pointed to the possible application of this system as a topical medication for the treatment of skin diseases.

Keywords:
sol-gel; photodynamic therapy; luminescence; europium III compounds

Keywords:
sol-gel; photodynamic therapy; luminescence; europium III compounds

INTRODUÇÃO

A terapia fotodinâmica (TFD) é uma técnica aplicada no tratamento de câncer de pele e que utiliza a luz (radiação eletromagnética) para tal. Resumidamente, a área tratada é exposta a radiação monocromática, região do visível (600 à 800 nm), após a administração de um fotossensibilizador que absorve a radiação e em seguida transfere a energia ao oxigênio molecular, gerando espécies reativas de oxigênio e, consequentemente, a oxidação dos lipídios, aminoácidos e proteínas, o que resulta na destruição do tumor.^1,2 A técnica TFD utiliza emulsões, microemulsões, nanoemulsões, que são aplicadas diretamente sobre a pele e, após um determinado tempo, são absorvidas pelas células tumorais. A literatura tem relatado a utilização de vários sistemas que contém nanopartículas e fotossensibilizados.^3-5

Os elementos lantanídeos apresentam, como uma de suas principais carcterísticas, a propriedade fotoluminescentes, amplamente aplicadas na geração de radiação eletromagnética nas regiões do visível e infravermelho. As transições interconfiguracionais f - f são as responsáveis por essas propriedades.^6-8 Os íons lantanídeos podem sofrer excitação nas regiões do ultravioleta, visível e infravermelho, o que resulta em linhas de emissão monocromáticas na região do visível e do infravermelho. Por exemplo, o íon Eu³⁺ apresenta intensa emissão na região vermelha do espectro eletromagnético, aproximadamente em 620 nm, quando excitado no ultravioleta (394 nm) e visível (460 nm).^9-11 A combinação de elementos adequados também pode apresentar alta eficiência de emissão na região do visível quando se utiliza a radiação infravermelha, chamado de conversão ascendente, como por exemplo o par Yb³⁺-Tm³⁺.¹² Portanto, os íons lantanídeos apresentam características para serem utilizados como emissores de radiação na região visível entre 600 e 800 nm, atuando como fotossensibilizador e com possibilidade de aplicação na terapia fotodinâmica.

A Manufatura Aditiva (MA), também conhecida como Prototipagem Rápida (PR), é um conjunto de tecnologias utilizadas para a produção de peças complexas, que são construídas camadas-por-camadas.¹³ A Sinterização Seletiva a Laser (SLS) é uma das técnicas da MA que utiliza pó de poliamida como matéria prima para produzir peças através da sinterização do pó pelo laser.¹⁴

Pensando em unir as tecnologias, SLS e sol-gel, atrelando às propriedades espectroscópicas dos íons lantanídeos, esse trabalho teve como principal objetivo modificar as membranas flexíveis de poliamida obtidas por SLS e a elas incorporar compostos luminescentes para possíveis aplicações na terapia fotodinâmica. As membranas foram caracterizadas por difração de raios X, espectroscopia vibracional na região do infravermelho, análise térmica e fotoluminescência.

O diferencial dessa proposta é utilizar a membrana de poliamida modificada via metodologia sol-gel para suportar agentes senssibilizadores como os íons e os compostos de terras raras por meio de suas propriedades de emissão de luz após absorção de radiação na região do visível e infravermelho.

PARTE EXPERIMENTAL

Preparação das Membranas

Lavagem das membranas

A membrana de poliamida (PA), Figura 1, obtida por MA na divisão de Tecnologias Tridimensionais do Centro de Tecnologia da Informação Renato Archer, possui dimensões de 7,0 × 5,0 cm e espessura de 200 µm. A membrana de PA foi dividida em unidades com área de 1,0 cm², com massa aproximada de 25,30 mg, que foram previamente lavadas em 30,0 mL de água destilada, sob agitação por 1 h, para retirada do pó de poliamida, que não sofreu sinterização. Após a lavagem, as membranas foram secas à temperatura ambiente.

Figura 1
Foto da membrana de poliamida preparada por manufatura aditiva, a) dimensões da membrana, b) flexibilidade, c) transparência

Pré-Tratamento com ácido acético 1,0 mol L^-1

As membranas sofreram pré-tratamento, conforme descrito na literatura.¹⁵ Para tanto, foram mergulhadas em solução 1,0 mol L^-1 de ácido acético, sob agitação por 24 h. As mesmas foram lavadas com água destilada em banho de ultrassom e secas em temperatura ambiente por mais 24 h. Esse tratamento foi realizado a fim de ativar a superfície da membrana pela protonação dos grupos NH da poliamida, o que facilita a interação da membrana com os alcóxidos.

Modificação da membrana com os alcóxidos tetraetilortosilicato (TEOS) e 3-cloropropiltrietoxisilano (CPTES)

As membranas de PA com área de 1,0 cm² foram colocadas em um balão de fundo redondo de duas bocas contendo 15,0 mL de etanol (EtOH), 3,7 mL de TEOS e/ou 3,4 mL de CPTES e 5,0 mL de água destilada. A mistura foi mantida em temperatura de 80 ºC, sob refluxo e agitação constante por 24 h. Após esse processo, as membranas foram lavadas com água destilada em um banho de ultrassom e secas a 60 ºC por 2 h. As amostras foram designadas de PA TEOS e PA CPTES.

Modificação da amostra PA TEOS com CPTES

As membranas PA, após serem funcionalizadas com TEOS, sofreram funcionalização com CPTES, nas mesmas quantidades utilizadas isoladamente (3,4 mL de CPTES), e assim obteve-se a amostra designada de PA TEOS CPTES.

Preparo do complexo [Eu(phen)₂ (H₂ O)₂]Cl₃

O complexo de európio III foi preparado como descrito na literatura,¹⁶ 200 mg de 1,10-fenantrolina foram adicionados à 10,0 mL de EtOH seguida da adição de 2,0 mL da solução etanólica 0,1 mol L^-1 de EuCl₃. A mistura permaneceu sob agitação por 1 h, adicionou-se 18,0 mL de acetona na mesma e o precipitado foi filtrado, lavado e seco com temperatura de 50 ºC e pressão reduzida por 4 h. A análise termogravimétrica confirmou a formação do composto com a fórmula molecular [Eu(phen)₂(H₂O)₂]Cl₃.

Incorporação do complexo nas membranas PA funcionalizada

As membranas modificadas foram colocadas em contato com a solução etanólica do complexo [Eu(phen)₂(H₂O)₂]Cl₃. A mistura foi mantida sob agitação constante por 1 h e após esse processo, as membranas foram lavadas com água destilada em um banho de ultrassom e secas a 60 ºC por 2 h. A amostra foi designada de PA CPTES Compl e PA TEOS CPTES Compl.

Caracterizações

Difratometria de raios X (DRX)

Os difratoframas de raios X foram obtidos em temperatura ambiente em um difratômetro Rigaku Geigerflex D/Max-c, com monocromador de radiação CuKα (λ = 1,5405 Å), num intervalo de 2θ entre de 5 a 70° com passo de 0,02°/10 s.

Análises térmicas (TG e DSC)

As análises térmicas TG e DSC foram obtidas em um aparelho TA Instruments-SDT Q600-Simultaneous DTA-TGA, por meio da utilização de um gradiente de temperatura, que compreende desde a temperatura ambiente (~25 ºC) até 700 ºC, a uma velocidade de 20 ºC/min, com o fluxo de nitrogênio de 100 mL/mim.

Espectroscopia de absorção na região do infravermelho (FTIR)

Para as análises de FTIR, foi utilizado um espectrofotômetro PerkinElmer Frontier com faixa de operação entre 400-4000 cm^-1. O espectro de absorção foi realizado por ATR (Espectroscopia de absorção no FTIR por refletância total atenuada), com varredura de 16 scans.

Fotoluminescência (FL)

Os espectros de excitação e emissão foram realizados em um espectrofluorímetro FluoroLog - Horiba Jobin Yvon. As medidas foram coletadas a 90° em relação ao feixe incidente, utilizando filtro de 500 nm. As fendas de excitação (f_exc) e de emissão (f_em) foram 2,0 e 1,0 nm, respectivamente.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Difração de raios X (DRX)

A poliamida, no estado sólido, pode apresentar duas formas semi-cristalinas, forma α e γ.¹⁷ A forma α é caracterizada pela célula unitária triclínica com configuração planar em zig-zag, e apresentou dois picos no difratograma de raios X, 2θ = 20,5 e 24º e a forma g pseudohexagonal caracterizada por pico em 2θ = 21,5º.^18,19 A Figura 2 apresenta os DRX das membranas de poliamida após tratamento e modificação com os alcóxidos.

Figura 2
DRX para as membranas PA a) lavada com ácido acético, b) modificada com CPTES e c) modificada com TEOS e CPTES

As ligações de hidrogênio entre as cadeias de poliamida são responsáveis pelas formas amorfas e semicristalinas do polímero. As semicristalinas apresentam picos no DRX em 2θ = 20,5 (d = 0,43 nm) e 24,3º(d = 0,37 nm) para a forma α e 21,5 º(d = 0,41 nm) para a forma γ,^20-22 os mesmos observados nos difratogramas da Figura 2, θ = 20,2º (d = 0,44 nm), θ = 23,4º (0,37 nm) e θ = 21,3º(0,42 nm). A razão da intensidade dos picos correspondente às formas α e γ pode indicar o grau de conversão de uma forma na outra. A Figura 2 mostrou que as proporções entre os picos permaneceram constante para todas as membranas, indicando que o tratamento e modificação não afetaram as ligações de hidrogênio. A transição no estado sólido ocorre principalmente através da ação da temperatura e é caracterizada pela mudança da forma cristalina triclínica (α) para a pseudohexagonal (γ), caracterizada pela convergência de dois fortes sinais difração de raios X, para um valor intermediário. A mudança pode ser atribuída a um parcial rearranjo das ligações de hidrogênio entre as cadeias de hidrocarboneto.^21,23 Esse fato pode ser confirmado pela espectroscopia vibracional na região do infravermelho, no qual as bandas em 934 cm^-1 atribuídas ao estiramento C-CO e em 1202 cm^-1, a banda característica da interação de amida III com o esqueleto hidrocarboneto, indicam a existência das fases cristalinas.^23,24

Os DRXs das membranas modificadas após a adição do complexo de európio com 1,10-fenantrolina [Eu(phen)₂.(H₂O)₂]Cl₃ apresentaram as mesmas razões entre os picos das formas α e γ, indicando que o complexo também não influenciou na ligações de hidrogênio das cadeias.

Espectroscopia vibracional (FTIR)

A dissociação do ácido acético em água permite a liberação de prótons, os quais podem protonar os grupamentos -NH da poliamida, produzindo uma carga parcial positiva.^25,26 Os espectros vibracionais mostraram que a região -NH da membrana de poliamida sem prévio tratamento apresenta banda em 1537 cm^-1 e após tratado com ácido acético essa banda desloca para 1556 cm^-1 e essa diferença pode ser atribuída a protonação dos grupos -NH. Na membrana tratada com ácido e lavada com água, observou-se banda com o mesmo número de onda (1556 cm^-1), indicando que a desprotonação não ocorreu. O espectro vibracional para as amostras modificada apresentou um deslocamento da banda, nesta região para 1566 cm^-1, indicativo que interações podem ocorrer por meio dos grupos amidas do polímero com os agentes modificadores TEOS e CPTES.

Os espectros vibracionais na região do infravermelho apresentaram os principais modos vibracionais da poliamida, antes e após o tratamento com ácido acético, o que indica que o tratamento não promoveu alterações nas formas semicristalinas da poliamida que compõem a membrana, o que confirma o observado pela difração de raios X. Os espectros apresentam as vibrações características da deformação -NH e estiramento -CN de amida em 1556, 1639 e 3295 cm^-1. As bandas na região de 2846 e 2924 cm^-1 se devem às vibrações -CH₂, -CH₃ e NH e as bandas em 727, 1463, 1559 e 1639 cm^-1 podem ser atribuídas aos grupos N-H, C-CO-NH e C=O da poliamida.^27,28

A Figura 3 apresenta os espectros FTIR das membranas de poliamida antes e após sofrerem modificações com os alcóxidos CPTES e TEOS CPTES.

Figura 3
FT-IR da membrana de PA (a), modificada com CPTES (b) e TEOS CPTES (c)

A Figura 3 apresenta os espectros vibracionais das membranas e as bandas características da poliamida são observadas antes e após a modificação com os alcóxidos. Uma diminuição na intensidade das bandas para a amostra modificada com TEOS CPTES pode ser decorrente de um maior recobrimento da membrana pelos alcóxidos. Novas bandas surgiram no espectro das amostras modificadas, bandas atribuídas aos alcóxidos, comprovando a modificação da membrana. Vibrações da ligação de C-Cl podem ser observadas na região entre 698 e 695 cm^-1.^29,30 As bandas em 873 e 1279 cm^-1 são atribuídas às deformações C-Si presente no alcóxido CPTES. A região de 1067 cm^-1 pode ser associada ao estiramento dos grupos siloxanos presentes na rede de silício (Si-O-Si),^31,32 e em 923 cm^-1 que está associada ao estiramento simétrico dos grupos siloxanos (Si-O-Si) da rede inorgânica.^33,34

Os espectros das amostras após a incorporação do complexo [Eu(phen)₂.(H₂O)₂]Cl₃, apresentaram bandas de absorção em 1426 e 1425 cm^-1 atribuídos aos estiramento C=C e C=N do anel, presentes na 1,10-fenantrolina.^35,36 Essas bandas são observadas no espectro do complexo e nas amostras as quais foram incorporados o composto de coordenação. As bandas em 1583 e 1520 cm ^-1 podem ser atribuídas à vibração do esqueleto aromático das ligações C=C e duas bandas em 851 e 733 cm^-1 indicam deformações fora do plano da ligação C-H do anel aromático da molécula de 1,10-fenantrolina.³⁶

A banda em 1556 cm^-1, atribuída à forma protonada do grupo -NH da poliamida (-NH₂⁺) desloca-se para 1566 cm^-1 após a modificação, o que pode ser um indício de que a interação entre os grupos silanóis (Si-OH), formados a partir dos alcóxido, e -NH₂⁺ podem estar ocorrendo.

O íon európio III e os grupos -NH (poliamida) e ROH (dos alcóxidos) são classificados como ácido e bases duras, respectivamente, segundo a definição de Pearson.³⁷ Segundo essa teoria, o ácido duro reage preferencialmente com base dura, assim, a interação entre o complexo pode ocorrer diretamente com a membrana de poliamida ou com os grupos silanóis da sílica. A Figura 4 apresenta a ampliação no espectro vibracional das membranas modificadas com CPTES e TEOS CPTES, antes e após a incorporação do complexo da região do anel aromático do ligante phen e da região de protonação do grupo -NH da poliamida.

Figura 4
FT-IR da membrana de PA modificada com CPTES (a), CPTES Compl. (b), TEOS CPTES (c) e TEOS CPTES Compl. (d)

Análises térmicas (TG/DSC)

As análises térmicas foram realizadas a fim de avaliar o comportamento térmico envolvido nas modificações sofridas pela membrana de poliamida, bem como comprovar a adição dos alcóxidos na mesma. A Figura 5 apresenta as curvas termogravimétricas das membranas antes e após tratamento com ácido acético e modificação.

Figura 5
Curvas termogravimétricas (TG) da membrana pura (a), tratada com ácido acético (b), modificada com os alcóxidos, PA CPTES (c) e PA TEOS CPTES (d)

As análises térmicas mostraram apenas uma perda de massa entre 300 e 550 ºC para as membranas e que está associada à degradação completa do polímero (poliamida). As curvas termogravimétricas para as membranas modificadas com CPTES e TEOS CPTES apresentaram resíduos, atribuídos à formação da rede de sílica proveniente das reações de hidrólise e condensação dos alcóxidos. Para a membrana modificada com CPTES, o resíduo após 700 ºC foi de 10% e para a membrana modificada com TEOS-CPTES, esse resíduo foi de 19%. O resíduo após tratamento térmico é essencialmente a formação do óxido (SiO₂), desta forma, a curva termogravimétrica indica a presença de resíduos inorgânicos na membrana, o que indica a presença dos agentes modificadores (alcóxidos), fato constatado anteriormente através dos espectros de FTIR. As curvas DTG para as membranas apresentaram aumento na estabilidade térmica da poliamida após sofrerem o revestimento. A Tabela 1 apresenta o intervalo de temperatura de decomposição da membrana de poliamida, resíduo e a temperatura da máxima taxa de decomposição.

Tabela 1
Intervalo de temperatura de decomposição da matéria orgânica, resíduo inorgânico e temperatura da máxima taxa de decomposição para as membranas obtido através das curvas DTG

Amostra	Intervalo de temperatura (ºC)	Resíduo de massa (%)	Temperatura da máxima taxa de decomposição (ºC)
P.A	370-502	0	450
PA lav. ácido	368-553	0	453
PA CPTES	351-536	10	474
PA TEOS CPTES	333-536	19	475

O aumento na estabilidade térmica da poliamida após revestimento via sol-gel já havia sido observado em trabalhos anteriores.^15,34,38

Segundo Ballistreri et al.,³⁹ a degradação das poliamidas, em geral, ocorre em temperaturas superiores a 400 ºC e, neste trabalho, a degradação ocorreu em temperaturas acima de 450 ºC (Tabela 1), esse aumento pode estar relacionado às formas α e γ e o número de ligações de hidrogênio entre as cadeias.^40,41 As membranas modificadas com CPTES e TEOS CPTES apresentaram temperaturas superiores às membranas não modificadas, indicativo de mudanças na propriedade térmica da PA por meio da incorporação dos alcóxidos.

A Figura 6 apresenta as curvas termogravimétricas para as membranas após a incorporação do complexo.

Figura 6
Curvas termogravimétricas (TG) das membranas modificadas após incorporação do complexo, (a) PA CPTES Compl. e (b) PA TEOS CPTES Compl.

As curvas termogravimétricas apresentaram perfis diferentes com relação às curvas das membranas modificadas (Figura 5). As TGs apresentaram início de perda de massa abaixo de 300 ºC, também verificados nas curvas DTG. Observou-se um aumento no resíduo de cerca de 1% para as duas amostras e tal aumento é atribuído, provavelmente, à formação de óxido de európio III, produto da decomposição do complexo [Eu(phen)₂(H₂O)₂]Cl₃. A temperatura da máxima taxa de decomposição pode ser obtida através da curva DTG, que apresentou um aumento de 474 ºC da membrana modificada com CPTES para 483 ºC após a adição do complexo, e de 475 ºC para 477 ºC para a membrana modificada com TEOS CPTES e após a adição do complexo, respectivamente. Os dados da análise térmica confirmam o observado pela espectroscopia vibracional e fotoluminescência.

A Figura 7 apresenta as curvas de Calorimetria Exploratória Diferencial (DSC) para as membranas de poliamida e após a incorporação do complexo.

Figura 7
Curvas DSC para a membrana de PA (a), modificada e após incorporação do complexo, (b) PA CPTES Compl. e (c) PA TEOS CPTES Compl.

As curvas DSC apresentaram transição vítrea (Tg) próximas ao descrito na literatura,¹⁵ entre 70 e 90 ºC. A região com temperatura ao redor de 190 ºC corresponde à temperatura de fusão (Tf) da PA antes e após a modificação e incorporação do complexo. A temperatura de decomposição (TdPA) da PA ocorre ao redor de 470 ºC e apresentou deslocamento, o que indica influência dos alcóxidos na decomposição da PA. As membranas que tiveram o complexo de európio III incorporado apresentaram pico ao redor de 400 ºC atribuído à decomposição do complexo (TdCompl.),⁴² esses resultados corroboram os resultados da FTIR, TG e DTG.

Fotoluminescência (FL)

Os espectros de excitação apresentam uma larga banda entre 280 - 400 nm, atribuída à banda de transferência de carga ligante-metal (BTC),^43-46 com máximos em 356 nm para o complexo [Eu(phen)₂(H₂O)₂]Cl₃, 335 e 347 nm para as amostras PA CPTES Compl e PA TEOS CPTES Compl, respectivamente.

As linhas f - f do íon Eu³⁺ referente às transições ⁷F₀ → ⁵L₆ (394 nm) e ⁷F₀ → ⁵D₂ (465 nm) foram observadas para o complexo, para as membranas contendo o complexo, essas transições aparecem com menor intensidade.

A Figura 8 mostra os espectros de emissão do complexo [Eu(phen)₂(H₂O)₂]Cl₃ e dele incorporado às membranas, PA CPTES Compl e PA TEOS CPTES Compl.

Figura 8
Espectros de emissão, a) [Eu(phen)₂(H₂O)₂]Cl₃ (λ_exc = 356 nm), b) PA CPTES Compl (λ_exc = 335 nm) e c) PA TEOS CPTES Compl (λ_exc = 347 nm)

Os espectros de emissão apresentam as bandas características de emissão do íon Eu3+, correspondente às transições do estado excitado ⁵D₀ para o fundamental ⁷F_J (J = 0, 1, 2, 3 e 4), quando excitado na BTC e no nível ⁵L₆ do íon. A Figura 8 apresenta os espectros de emissão quando excitado na BTC. A banda relativa à transição ⁵D₀ → ⁷F₀ está presente nos espectros, indicando que o íon Eu³⁺ ocupa sítio de simetria sem centro de inversão.⁴⁷ A semelhança entre os espectros de emissão do complexo nas membranas em relação ao complexo isolado é mais um indicativo da incorporação do complexo nas membranas de poliamida modificadas, fato confirmado pelas outras técnicas de caracterização. Em prévio trabalho, a incorporação de complexo de európio III em peças de Acrilonitria-Butadieno-Estireno (ABS) obtidas por manufatura aditiva também foi confirmada através da espectroscopia luminescente.⁴⁸

O espectro de emissão é um indicativo de que não houve uma grande mudança no ambiente de simetria do íon. Comparando o número de bandas teóricas⁴⁹ com as experimentais, tem-se a indicação que o íon Eu³⁺ ocupa um sítio com o grupo pontual C_2v. A mudança na energia da transição ⁵D₀ → ⁷F₀ pode indicar uma mudança no campo cristalino ao redor do íon Eu³⁺, indicando uma mudança no grau de covalência da ligação Eu-O.⁵⁰ Neste trabalho, observou-se uma mudança para baixa energia da transição ⁵D₀ → ⁷F₀ quando comparada com o complexo isolado, sugerindo um aumento no grau de covalência da ligação após a incorporação do complexo na membrana, indicativo da interação complexo-membrana, esse comportamento também foi observado quando Rocha et al.⁵¹ incorporou compostos de Eu³⁺ em sílica mesoporosa, o mesmo foi observado por Azevedo et al.⁴⁶

A Tabela 2 apresenta a razão entre as intensidades relativas das transições (AR) AR(⁵D₀ → ⁷F₂)/AR (⁵D₀ → ⁷F₁), os parâmetros de intensidade Judd-Ofelt (Ω_{2 and 4}), os decaimentos radiativos e não-radiativos (A_rad, A_nrad), o tempo de vida experimental (τ) e a eficiência quântica (η) de emissão do íon Eu³⁺, calculados a partir dos espectros de emissão com ajuda do programa LUMPAC (Lanthanide Luminescence Software).⁵²

Tabela 2
Intensidade Relativa (AR(⁵D₀ → ⁷F₂)/AR(⁵D₀ → ⁷F₁)), parâmetros de intensidade Judd-Ofelt (Ω_{2 e 4}), decaimento radiativo e não-radiativo (A_rad e A_nrad), tempo de vida experimental (τ) e eficiência quântica (η)

Amostra	0 - 2/0 - 1	Ω2 x 10-20 (cm2)	Ω4 x 10-20 (cm2)	Arad (s-1)	Anrad (s-1)	τ (ms)	η (%)
[Eu(phen)2(H2O)2]Cl3 (λexc = 356 nm)	7,57	13,37	9,26	586,34	1739,24	0,43	25,21
PA CPTES Compl (λexc = 335 nm)	5,41	9,52	7,45	482,75	1055,71	0,65	31,38
PA TEOS CPTES Compl (λexc = 347 nm)	5,51	9,70	8,70	508,44	900,01	0,71	36,10

A literatura considera que o parâmetro Ω₂ pode indicar a covalência da ligação entre os íons lantanídeos e o retículo, maiores valores de Ω₂ mais covalente é a ligação e menor a simetria ao redor do íon Eu³⁺.^53,54 Na Tabela 2, pode-se observar que os valores de Ω₂ para o complexo incorporado à membrana diminui em relação ao complexo isolado, e isso é um indicativo da diminuição da covalência da ligação, indicando que o complexo está interagindo com os grupos existentes na superfície da membrana. A diminuição dos valores de Ω₂ indica uma diminuição da simetria ao redor do íon, comprovada pela diminuição da razão entre as áreas das bandas relativas as transições 0 - 2/0 - 1.

O parâmetro Ω₄ pode significar a rigidez estrutural e ser influenciado pelas vibrações do sistema (íon e ligante).⁵⁵ Os baixos valores dos parâmetros Ω₂ e Ω₄ sugere uma fraca polarizabilidade e um ambiente químico rígido ao redor do íon Eu³⁺, mais um indicativo da interação entre o complexo com a membrana modificada.⁵⁶

Os parâmetros A_rad, A_nrad e τ podem fornecer informações sobre a população do estado excitado e dos processos de decaimento radiativo e não-radiativo do íon.⁵⁷ A Tabela 2 apresenta alterações nos valores de A_rad, porém os valores de A_nrad apresentam maiores diferenças, a diminuição do A_nrad promove um aumento no tempo de vida da emissão e eficiência quântica, esses valores indicam que os complexos estão se ligando mais fortemente à membrana modificada. O tempo de vida experimental pode fornecer informações com relação ao número de moléculas de água coordenada ao íon Eu³⁺, calculadas segundo a equação descrita por Binnemans.⁴⁹ O tempo de vida da emissão para o complexo [Eu(phen)₂(H₂O)₂]Cl₃ é 0,43 ms, correspondendo a 2 moléculas de água, confirmando a fórmula proposta para o complexo através da curva TG. Após a incorporação do complexo nas membranas modificadas ocorreu um aumento para os tempos de vida, 0,65 e 0,71 para as amostras PA CPTES Compl e PA TEOS CPTES Compl, respectivamente, indicando a presença de apenas 1 molécula de água nos complexos. Esse fato pode explicar a diminuição do A_nrad e aumento da eficiência quântica.

CONCLUSÃO

A modificação da membrana de poliamida com alcóxidos de silício e posterior incorporação de compostos opticamente ativos, como os íons lantanídeos e seus complexos, abrem caminhos para aplicações envolvendo a emissão de radiação eletromagnética. A metodologia utilizada na modificação é versátil e pode ser utilizada para outros alcóxidos contendo diferentes grupos funcionais.

As técnicas envolvidas nas caracterizações indicaram a presença do alcóxido na membrana de poliamida, bem como a presença do complexo de európio III. A eficiência de emissão é um parâmetro importante para aplicação na terapia fotodinâmica, podendo reduzir o tempo de exposição do fotossensibilizador à fonte de excitação, consequentemente reduzindo a exposição do paciente à radiação. Sistemas contendo íons lantanídeos com excitação na região do visível e infravermelho e emissão na região utilizada na TFD são promissores para essa aplicação.

AGRADECIMENTOS

Os autores agradecem as agências de fomento CNPq, CAPES e a FAPESP pela bolsa de mestrado da E.A.S. 2013/20443-4.

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  Nov 2016

Histórico

• Recebido
  21 Jan 2016
• Aceito
  19 Maio 2016