A química na avaliação do impacto à saúde humana diante da exposição aos pesticidas

THE CHEMISTRY IN THE HUMAN HEALTH RISK ASSESSMENT DUE PESTICIDES EXPOSURE

Resumo

Pesticides are widely used worldwide in urban and rural environments. Since most pesticides are not selective for target species the concern about possible impacts on human health has increased for the workers exposed to these substances (occupational exposure) and for the general population (environmental exposure). Epidemiological studies, in vivo and in vitro have associated several diseases with pesticide exposure, such as cancer, diabetes, Parkinson’s, and others. Therefore, chemistry plays an important role in evaluation of external (food and drinking water) and internal (human biomonitoring) exposure to pesticides through of analytical methodologies, for instance, chromatography coupled with mass spectrometry, proving to be an important complement in the evaluation of risks of pesticides in human health.

Keywords:
pesticides; human health; internal and external exposure; analytical methods

Keywords:
pesticides; human health; internal and external exposure; analytical methods

INTRODUÇÃO

Pesticidas são substâncias utilizadas no controle de organismos indesejados, incluindo insetos, roedores, fungos e ervas daninhas.¹ Sua classificação pode ocorrer por diferentes critérios, tais como: origem (orgânica ou inorgânica), estrutura química, toxicidade e finalidade. No entanto, a classificação mais usual considera o tipo de organismos alvo (algicida para algas, acaricida para ácaros, bactericida para bactérias, fungicida para fungos, herbicida para ervas daninhas, inseticidas para insetos, molucida para moluscos, nematicidas para nematoides, rodenticida para roedores, entre outros).² No Brasil é mais frequente a utilização do termo “agrotóxico”, definido pela Lei n^o 7.802, de 11 de julho de 1989, que evidencia a toxicidade desses produtos ao meio ambiente.³ O Brasil está entre os maiores consumidores de pesticidas no mundo e segundo o Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento (MAPA) existem 329 ingredientes ativos⁴ e 2.471 produtos formulados⁵ registrados atualmente.

Os pesticidas são utilizados principalmente para fins agrícolas, entretanto eles também são empregados na saúde pública, em residências e locais públicos.² Na saúde pública esses compostos são utilizados no controle de doenças transmitidas por vetores, por exemplo, malária e dengue. Em residências e locais públicos os pesticidas são utilizados no controle de plantas indesejadas, paisagismo, parques e jardins para evitar ou suprimir a proliferação de pragas domésticas. Além disso, são empregados em repelentes domésticos, no combate a caspas e piolhos ou no tratamento de animais de estimação, por exemplo, na eliminação de pulgas e carrapatos.⁶⁷⁸

A utilização dos pesticidas sintéticos foi iniciada no século XX e proporcionou muitos benefícios à saúde pública, por exemplo, o suprimento de alimentos se tornou mais abundante e a ocorrência de doenças transmitidas por vetores foi reduzida. Porém, apesar dos benefícios dos pesticidas, seu potencial impacto no meio ambiente e na saúde pública é substancial.⁹ Muller e colaboradores descobriram em 1939 as propriedades inseticidas do 1,1,1-tricloro-2,2-bis-(4-clorofenil)-etanol (DDT), um pesticida organoclorado que foi largamente utilizado durante e após a Segunda Guerra Mundial no combate de vetores de doença, como a malária, e na proteção de culturas. Contudo, em 1962, o livro Primavera Silenciosa de Rachel Carson, mostrou a ameaça que o DDT representava à biodiversidade e deste então, várias outras pesquisas reforçaram sobre o potencial tóxico do DDT que passou a ser proibido em diversos países.¹⁰¹¹¹²

Com o banimento ou restrição no uso dos organoclorados em diversos países, novas classes de pesticidas foram desenvolvidas, como os organofosforados, carbamatos, piretróides, neonicotinóides, entre outras. Os organofosforados são caracterizados por uma excelente atividade inseticida e falta de acúmulo biológico e ambiental, porém, esses compostos têm um mecanismo de ação tóxica, baseado na inibição da enzima acetilcolinesterase (AChE), que controla a função nervosa não apenas dos insetos, mas também dos seres humanos e animais. Entre os organofosforados comercializados, tem-se o fosmete, malation, acefato e clorpirifós. Os carbamatos também inibem a AChE, porém formam um complexo menos estável com a colinesterase, permitindo a recuperação da enzima mais rapidamente. Exemplos de pesticidas carbamatos são o carbaril, metomil e carbosulfano.¹²¹³¹⁴ Os piretróides são muito utilizados tanto na agricultura quanto em programas de saúde pública. Por apresentarem uma baixa toxicidade em mamíferos, esses compostos são muito utilizados como inseticidas domésticos. Entre os piretróides utilizados nas residências tem-se a cipermetrina, imiprotrina, transflutrina, praletrina e fenotrina.¹³,¹⁵ Os neonicotinóides são utilizados em uma variedade de culturas, eles atuam como agonistas nicotínicos dos receptores de acetilcolina, levando à interrupção dos estímulos nervosos nos insetos e são associados ao declínio global de abelhas. O neonicotinóide imidacloprido é um dos pesticidas mais utilizados no mundo.¹³,¹⁶ Atualmente os pesticidas são ainda indispensáveis nas práticas agrícolas e na saúde pública, porém o desenvolvimento de novos compostos que apresentam características menos persistentes e bioacumulativas é de suma importância para oferecer uma maior segurança para os seres vivos e o meio ambiente, que são continuamente expostos a estes compostos.

EXPOSIÇÃO HUMANA AOS PESTICIDAS

Os pesticidas podem oferecer risco à saúde, tanto para os trabalhadores expostos a essas substâncias quanto para a população em geral. Deste modo, para a liberação de um pesticida, ou seja, obtenção do seu registro no mercado, é necessário avaliá-lo quanto ao seu impacto à saúde humana, ao meio ambiente e sua eficácia agrícola. No Brasil, a Agência de Vigilância Sanitária (ANVISA) é o órgão responsável pela avaliação da toxicidade do princípio ativo.² Os pesticidas podem ser encontrados, geralmente em pequenas quantidades, em qualquer lugar no mundo. Dessa forma, os seres humanos estão constantemente sendo expostos a esses compostos e esta exposição ocorre de forma intencional, acidental, ocupacional, ambiental ou pela dieta alimentar.¹¹,¹²

O envenenamento por pesticidas é um problema de saúde pública, principalmente em países em desenvolvimento. No Brasil, os pesticidas são umas das principais causas de intoxicação humana, estando atrás apenas do envenenamento por medicamentos e domissanitários. O uso intencional de pesticidas ocupa o terceiro lugar no mundo como fonte de tentativa de suicídio devido à sua fácil disponibilidade. Estima-se que esses compostos estejam envolvidos entre 10 a 20% dos suicídios em todo o mundo. No Brasil, entre 2000 e 2017, houve 48.738 intoxicações e 2.266 óbitos após a tentativa de suicídio pelo uso de pesticidas (agrícolas e domésticos). Os pesticidas também são utilizados na tentativa de aborto, o mesmo estudo mostrou que entre estes anos, 156 pessoas foram envenenadas ao utilizar pesticidas para esta finalidade.¹⁷¹⁸¹⁹

A exposição acidental aos pesticidas ocorre principalmente pela via oral. Os casos mais frequentes ocorrem quando os pesticidas são transferidos de seu recipiente rotulado original para um frasco ou recipiente não rotulado. Existem diversos casos em que pessoas são envenenadas por beber pesticidas mantidos em garrafas de refrigerantes ou depois de beber água armazenada em garrafas contaminadas por pesticidas. Os trabalhadores que manipulam pesticidas ou utilizam equipamentos para sua aplicação também podem consumir pesticidas se não lavarem as mãos antes de comer ou fumar. No Brasil houve 55.657 casos relatados de intoxicação acidental por pesticida entre 2000 e 2017. A maioria desses casos ocorreram com indivíduos entre 20-49 anos.²,¹⁷,²⁰,²¹ A exposição ocupacional está associada ao ambiente de trabalho, incluindo pessoas envolvidas em indústrias de produção e formulação de pesticidas, agricultores e aplicadores de pesticidas. Na agricultura, a exposição ocorre durante a preparação da calda, aplicação, limpeza dos equipamentos e equipamentos de proteção individual (EPI). Em estudos que avaliaram as características da população rural brasileira foi demonstrado que a maioria dos agricultores entendem que os pesticidas são prejudiciais para a saúde, porém, a utilização de EPIs durante a aplicação não é uma prática comum. Entre 2000 e 2017, 25.038 trabalhadores foram intoxicados com pesticidas no Brasil.¹⁷,²²²³²⁴ Os casos de intoxicação intencional, acidental e ocupacional por pesticidas poderiam ser minimizados se essas substâncias fossem armazenadas de modo seguro e se o acesso e manuseio desses produtos fossem mais restritos. Na Figura 1 são apresentadas as intoxicações e óbitos por pesticidas de uso doméstico e agrícola no Brasil obtidos no Sistema Nacional de Informações Tóxico Farmacológicas (SINITOX).¹⁷

Figura 1
Casos de intoxicação e óbitos por pesticidas de uso doméstico e agrícola no Brasil entre 2000 a 2017 de acordo com os dados do Sistema Nacional de Informações Tóxico Farmacológicas (SINITOX)

Por outro lado, a exposição ambiental acomete a maioria da população e está relacionada com a presença dos pesticidas em diferentes matrizes ambientais (Figura 2). Após a aplicação, os pesticidas são particionados entre a planta, o solo, a água e a atmosfera. No solo, tais compostos podem sofrer evaporação, fotólise, escoamento superficial, adsorção, degradação química ou biológica, absorção pelas plantas e lixiviação. Sendo o solo, portanto, uma importante via da contaminação do ar e da água.²⁵,²⁶ Após a pulverização sobre a área desejada, os pesticidas podem entrar na atmosfera via volatilização direta no momento de sua aplicação ou evaporar posteriormente a partir da superfície do solo ou da vegetação. Uma vez na atmosfera, eles são distribuídos entre as fases gasosa e particulada, dependendo das suas propriedades físico-químicas e das condições ambientais. Os pesticidas presentes no ar podem sofrer fotólise, serem transportados pelo vento para áreas distantes do local de aplicação ou atingir a superfície terrestre por deposição úmida ou seca. Assim, eles podem permanecer na atmosfera por dias, semanas ou meses após sua aplicação, possibilitando um risco à saúde pública, bem como aos outros organismos.²⁷,²⁸ A contaminação das águas superficiais e subterrâneas por pesticidas tem sido relatada em todo o mundo. Os pesticidas podem atingir águas superficiais e subterrâneas pela ação da chuva e da irrigação que promove a lixiviação, escoamento e drenagem dos pesticidas presentes no solo e nas plantações. Essas substâncias também estão presentes no esgoto, tratado ou não, sendo também uma importante via para a entrada de pesticidas em ambientes aquáticos. Deste modo, a contaminação das águas superficiais e subterrâneas pode resultar em efeitos tóxicos para a saúde humana devido à sua utilização para práticas de lazer ou fontes de água para abastecimento público.^29303132

Figura 2
Fontes de exposição ambiental dos seres humanos aos pesticidas (Adaptado de Van Bruggen)²⁵

No Brasil a presença dos pesticidas no ar e no solo ainda não é legislada. Para matrizes aquáticas como a água potável, água superficial e subterrânea apenas cerca de 8% do total de pesticidas permitidos para uso são legislados. A Portaria da Consolidação nº 5 estabelece a quantidade máxima permitida de 27 pesticidas e alguns dos seus produtos de degradação na água potável. A Resolução CONAMA 357/2005 e 396/2008 tratam da qualidade das águas superficiais e subterrâneas, respectivamente.³³³⁴³⁵

Os alimentos também são uma importante via da exposição dos seres humanos aos pesticidas. Diversos países estabelecem diretrizes para o monitoramento dos resíduos de pesticidas nos alimentos. Neste monitoramento são determinados parâmetros como limites máximos de resíduos (LMR) e ingestão diária aceitável (IDA) que visam proteger a saúde humana. O LMR é definido como a quantidade máxima (expressa em mg kg^-1) de resíduo do pesticida que é legalmente permitida em alimentos. A IDA é um parâmetro de segurança definido como a quantidade estimada do pesticida nos alimentos que pode ser ingerida diariamente durante toda a vida, sem riscos consideráveis à saúde do consumidor.³⁶³⁷³⁸ No Brasil, os níveis de resíduos de pesticidas nos alimentos de origem vegetal são avaliados pela ANVISA por meio do Programa de Análise de Resíduos de Agrotóxicos em Alimentos (PARA)³⁹ e também através do Plano Nacional de Controle de Resíduos e Contaminantes (PNCRC),⁴⁰ vinculado ao MAPA. Além de realizar o monitoramento em vegetais, o PNCRC também monitora os alimentos de origem animal. Em 2018, 5.654 amostras de alimentos foram analisadas pelos programas da ANVISA e MAPA e, desse total, 1.106 foram consideradas em não conformidade.³⁹,⁴⁰ No entanto, ainda que a concentração dos pesticidas nos alimentos esteja abaixo dos LMRs, o risco à saúde da população não pode ser descartado, pois são necessárias abordagens mais complexas para a avaliação do risco para a saúde humana. Nessa avaliação deve-se levar em consideração a exposição cumulativa crônica e agregada a estes compostos.³⁹,⁴¹

As vias mais comuns de absorção de pesticidas no corpo humano são a dérmica, oral e respiratória. Após a entrada, eles são distribuídos, em sua maioria, através da corrente sanguínea e podem ser excretados pela urina, pele e ar exalado.²,²⁰ A via dérmica é uma das rotas mais comuns pelas quais os aplicadores de pesticidas são expostos. A absorção dérmica pode ocorrer como resultado de respingos e derramamentos durante a mistura, carregamento ou descarte dos pesticidas. O risco da absorção dérmica depende da quantidade do pesticida, da sua toxicidade para a pele, duração da exposição, formulação do pesticida e do uso de equipamentos de proteção individual. Os pesticidas em pó ou granulares têm uma menor absorção na pele em relação às formulações líquidas. Embora a via dérmica, em geral, seja considerada a principal via de exposição ocupacional a pesticidas, a inalação não deve ser negligenciada. A inalação de partículas ou vapores pode ocorrer durante o manuseio e a aplicação dos pesticidas. Esses compostos são rapidamente absorvidos pela via respiratória, podendo causar danos ao nariz, garganta e tecidos pulmonares. O potencial de envenenamento é maior quando a solução de pulverização forma vapores e partículas extremamente finas. Essa exposição pode ser ainda mais significativa se os pesticidas são aplicados em espaços confinados, por exemplo, em áreas de armazenamento não ventiladas ou em estufas.^424344454647 Na agricultura familiar brasileira geralmente são utilizados equipamentos de baixa tecnologia para a aplicação de pesticidas, como o pulverizador costal, além disso, muitos aplicadores não utilizam ou fazem o uso inadequado dos EPIs podendo ser expostos dermicamente durante a mistura ou inalarem a névoa durante a aplicação.²¹,⁴⁸,⁴⁹

O envenenamento mais grave pode ocorrer quando o pesticida é introduzido oralmente. Esse tipo de exposição ocorre por razões acidentais ou intencionais. Após serem ingeridos, os pesticidas podem ser absorvidos ao longo do trato gastrointestinal e atingir a corrente sanguínea, podendo se distribuir por todo o organismo.²,⁴³

EFEITOS DOS PESTICIDAS NA SAÚDE HUMANA

Nos últimos anos, os efeitos do uso de pesticidas na saúde humana têm sido muito estudados. Estudos observacionais em trabalhadores expostos aos pesticidas em conjunto com estudos in vivo e in vitro, demonstraram que diversos pesticidas são associados a efeitos prejudiciais à saúde. Entretanto, fazer uma associação direta não é simples, pois o efeito pode ser associado a diferentes fatores, como pré-disposição genética, tabagismo, envelhecimento, entre outros. A fim de buscar cenários mais críticos e, portanto, onde as evidências podem ser mais facilmente elucidadas, a maioria dos estudos na literatura são voltados para a exposição ocupacional. Assim, a exposição ambiental, que embora engloba a maior parte da população, ainda em concentrações menores e majoritariamente pela exposição crônica, não é muito avaliada.⁴³,⁴⁷,⁵⁰

Os efeitos à saúde devido à exposição não dependem apenas da toxicidade dos ingredientes ativos, mas também da quantidade do produto absorvido e do tempo de exposição.² Esses efeitos podem ser agudos (de manifestação rápida) ou crônicos (que aparecem após exposições repetidas a pequenas quantidades dos pesticidas por um longo período). Os efeitos relacionados à exposição aguda podem ter gravidade baixa (ex.: dor de cabeça), moderada (ex.: diarreia), alta (ex.: edema pulmonar) ou serem fatais. Irritação na pele, desidratação, alergias, ardência do nariz, tosse, coriza, dor no peito, dificuldade de respirar, irritação da boca e garganta, dor de estômago, náuseas, vômitos, diarreia, dor de cabeça, transpiração anormal, fraqueza, câimbras e tremores são alguns dos efeitos agudos associados à exposição aos pesticidas.⁵¹,⁵²

Diversas evidências relacionaram a exposição aos pesticidas e a taxa elevada de doenças crônicas, tais como, diabetes,⁵³ obesidade,⁵⁴ diferentes tipos de câncer,²² distúrbios neurodegenerativos (por exemplo, doença de Parkinson,⁵⁵ Alzheimer⁵⁶ e Esclerose Lateral Amiotrófica),⁵⁷ defeitos congênitos,⁵⁸ doenças reprodutivas,⁵⁹ respiratórias,⁶⁰ cardiovasculares,⁶¹ entre outros.²²,⁶² Os pesticidas modulam várias atividades celulares e subcelulares que podem levar a alterações genéticas causando várias doenças ou morte celular. Estudos experimentais demostraram que os pesticidas podem ocasionar danos no DNA, mutação genética, aberrações cromossômicas e modificações epigenéticas. Essas alterações estão ligadas ao desenvolvimento de cânceres e à indução de alterações epigenéticas que podem ser transmitidas às gerações subsequentes ou podem servir como base para doenças desenvolvidas posteriormente na vida.²⁶,⁶²,⁶³

Os pesticidas podem causar desregulação endócrina através da interrupção da atividade, tempo de liberação ou podem imitar hormônios do sistema endócrino que resultam na redução da fertilidade, irregularidades das glândulas da tireoide e comprometimento da função imunológica.²⁶,⁶² A atrazina é considerada um desregulador endócrino. Em Illinois, EUA, em um estudo epidemiológico preliminar com mulheres que moravam na área rural onde a atrazina era usada extensivamente, foi observado que elas apresentaram irregularidades no ciclo menstrual com fases foliculares mais longas e níveis reduzidos de metabólitos de estradiol e progesterona.⁶⁴

Os pesticidas também foram associados com a doença de Parkinson através da inibição da função mitocondrial. Os mecanismos específicos pelos quais esses compostos afetam os neurônios ainda são desconhecidos e apesar das evidências epidemiológicas e experimentais, ainda é difícil concluir que a exposição aos pesticidas possa causar a doença de Parkinson.²²,⁴⁷,⁶⁵ Estudos associaram que pessoas expostas ocupacionalmente aos pesticidas tem um risco aumentado de desenvolvimento da doença de Alzheimer, de transtornos mentais, como depressão e ansiedade, e tentativas de suicídio.⁶⁶⁶⁷⁶⁸

Através de estudos in vitro e in vivo foi observado que os pesticidas, tais como organoclorados e organofosforados, podem alterar o metabolismo da glicose de modo a ocasionar o desenvolvimento da diabetes. Como as evidências da ligação entre diabetes e uso de pesticidas são relativamente novas, ainda são necessárias pesquisas para descobrir mais detalhes sobre essa associação.²,⁶⁹ Por outro lado, a ligação entre a exposição aos pesticidas e o desenvolvimento de câncer tem sido relatada por muitos estudos. Por meio de evidências crescentes fornecidas por estudos epidemiológicos foram relatadas associações entre pesticidas e o desenvolvimento de diversos tipos de cânceres em crianças e adultos, tais como, câncer de mama,⁷⁰ próstata,⁷¹ pulmão,⁷² linfoma não-Hodgkin,⁷³ leucemia,⁷⁴ entre outros.

Os pesticidas também foram associados com a indução de sinais inflamatórios na célula e a geração de espécies reativas de oxigênio (EROs). As EROs podem levar ao acúmulo de agregados de proteínas desdobradas através da deformação do sistema ubiquitina-proteassoma. A desregulação desse sistema tem sido implicada na patogênese de várias doenças crônicas, principalmente neurodegeneração e cânceres. O pesticida organoclorado dieldrin foi associado à diminuição da atividade da proteassoma juntamente com um aumento da ocorrência de apoptose em células neuronais.⁶²,⁷⁵,⁷⁶ Os pesticidas também podem induzir o estresse do retículo endoplasmático, que está associado com o desenvolvimento de várias doenças, tais como diabetes,⁷⁷ Parkinson e Alzheimer.⁷⁸ Quando os mecanismos de defesa antioxidante são sobrecarregados, o estresse oxidativo pode causar danos no DNA, nas proteínas e lipídios das células, levando a alterações cromossômicas, mutação genética e/ou crescimento celular que, por fim, podem resultar em cânceres.⁶²,⁷⁹,⁸⁰ A Figura 3 apresenta de forma simplificada algumas alterações que os pesticidas podem ocasionar na célula.

Figura 3
Modelo simplificado das alterações que os pesticidas podem ocasionar na célula (Adaptado de Sabarwal, Kumar e Singh)²²

Em função da variedade de ingredientes ativos utilizados, a população, em geral, é exposta a uma mistura dessas substâncias. Deste modo, pesticidas que compõe uma mistura podem interagir entre si e o efeito dessa interação pode ser sinérgico ou antagônico. Por exemplo, na exposição simultânea de organofosforados geralmente é observado um efeito somado dos compostos individuais na inibição da atividade da enzima acetilcolinesterase (AChE). O entendimento dos efeitos devido às misturas de pesticidas na saúde humana ainda é limitado.⁸¹⁸²⁸³ Exames laboratoriais podem ser realizados para estimar a exposição aos pesticidas organofosforados e carbamatos. Estes pesticidas inibem a atividade das colinesterases, principalmente da AChE, aumentando o nível da acetilcolina nas sinapses químicas. O acúmulo de acetilcolina promove a toxicidade colinérgica, que pode ocasionar sintomas muscarínicos, nicotínicos e neurológicos.^8485868788 Os organofosforados e outros agentes inibidores da colinesterase, como os carbamatos, têm sido associados a transtornos psiquiátricos e comportamentos suicidas.⁶⁷,⁸⁹

MÉTODOS ANALÍTICOS EMPREGADOS NA DETERMINAÇÃO DE PESTICIDAS EM ÁGUA, EM ALIMENTOS E EM MATRIZES BIOLÓGICAS

A determinação dos pesticidas na água, nos alimentos e em matrizes biológicas geralmente envolve uma etapa de pré-tratamento da amostra, seguida por um processo de extração e limpeza e, finalmente, um método de separação e detecção.⁹⁰⁹¹⁹² Na Figura 4 são apresentados os principais métodos analíticos empregados na avaliação de pesticidas na água, nos alimentos e em matrizes biológicas.

Figura 4
Principais técnicas analíticas empregadas no preparo de amostras e na separação e detecção de pesticidas em água, nos alimentos e em matrizes biológicas

ÁGUA

A maioria dos pesticidas estão presentes no ambiente aquático em concentrações na ordem de picograma a nanograma por litro e, portanto, para sua determinação são necessários métodos analíticos com baixos limites de detecção.⁹²,⁹³ As técnicas mais empregadas na extração, purificação e pré-concentração dos pesticidas na água são a extração líquido-líquido (LLE, do inglês liquid-liquid extraction),⁹⁴,⁹⁵ microextração líquido-líquido (LLME, do inglês liquid-liquid microextraction),⁹⁶⁹⁷⁹⁸ extração em fase sólida (SPE, do inglês solid-phase extraction) nas configurações offline^99100101 e online^102103104 e microextração em fase sólida (SPME, do inglês solid-phase microextraction).⁹³,¹⁰⁵,¹⁰⁶ Na separação e determinação dos pesticidas em matrizes aquáticas as técnicas mais empregadas são a cromatografia gasosa (GC, do inglês gas chromatography) ou líquida (LC, do inglês liquid chromatography) acoplada à espectrometria de massas (MS, do inglês mass spectrometry). A técnica de GC-MS é mais utilizada na determinação de compostos apolares, voláteis e termicamente estáveis e a LC-MS/MS tem sido mais empregada na análise de compostos orgânicos polares e semipolares.⁹³,¹⁰⁷,¹⁰⁸ A Tabela 1 apresenta algumas técnicas e parâmetros analíticos empregados na determinação de pesticidas em amostras de água.

Tabela 1
Metodologias analíticas para determinação de pesticidas em água de abastecimento público

Pesticidas	Preparo de amostra	Análise instrumental	LD	LQ	Referência
Difenoconazol, epoxiconazol, tebuconazol, atrazina, azoxistrobina, piraclostrobina, picoxistrobina, trifloxistrobina, profenofós, fipronil	SPE	LC-MS/MS	1-50 ng L-1	1-180 ng L-1	101
2,4-D, diazinon, malation, pirimifós-metil, fenepropimorfo	LLE	LC-MS/MS	0,3-15,0 ng L-1	1,0-50,0 ng L-1	94
Atrazina, desetil-atrazina	SPE online	UHPLC-MS/MS	2-6 ng L-1		102
Endosulfan, hexaclorohexano	DLLE	GC-MS	1,0-2,4 μg L-1		111
Atrazina	SPE	LC-MS/MS	1 ng L-1	2 ng L-1	100
Clorpirifós, diclorvos, triclorfom, trifluralina, propanil, diuron, endosulfan alpha, endosulfan beta, endosulfan sulfato, lindane	DLLME	GC-MS/MS	1,2-55 μg L-1	3,1-77 μg L-1	112
α-HCH, β-HCH, γ-HCH, δ-HCH, p,p’-DDE, p,p’-DDD, o,p’-DDT, p,p’-DDT	SPE	GC-MS	1,95-9,38 ng L-1		113
Tiametoxame, atrazina, deisopropil-atrazina, desetil-atrazina, clotianidina, imidacloprido, acetamiprido, tiaclopride, simazina, ametrina, isoproturon, diuron, prometrina, terbutrina, propazina, metiocarbe, terbutilazina, cybutryne, clorfenvinfos, clorpirifós, pentaclorofenol, metaflumizona	SPE online	LC-MS/MS	0,15-10,0 ng L-1		114
Isoprocarbe, fenobucarbe, pirimicarbe, carbofurano, tiabendazol, carbendazim, metalaxil, imidacloprido, acetamiprido, boscalida, metolacloro, tiametoxame, dimetoato, isocarbofos, diniconazol, miclobutanil, epoxicolazol, triadimentol, propiconazole, hexaconazol, tebuconazol, paclobutrazol, buprofezina, ametrina, azoxistrobina, dimetomorfo, pirimetanil, isoprotiolano	SPE	UPLC-MS/MS	0,01-2,00 ng L-1	0,02-5,00 ng L-1	115
Alaclor, aldrin, atrazina, carbofurano, clordano, clorpirifós, dieldrin, endrin, 4,4'-DDD, 4,4'-DDE, a-endosulfan, β-endosulfan, endosulfan sulfato, lindane, metolacloro, molinate, paration metil, pendimetalina, permetrina, profenofos, tebuconazol, terbufos, trifluralina	SPME	GC-ECD GC-MS	0,006-5,454 μg L-1	0,02-18,00 μg L-1	116
Azoxistrobina, buprofezina, clorantraniliprol, difenoconazol, fipronil, imidacloprida, isoprotiolano, propiconazol, pimetrozina, triciclazol, trifloxistrobina, pretilacloro, tebuconazol	SPE	UHPLC-MS/MS	0,2-5,0 ng L1>	1-25 ng L1	117
Acetocloro, alacloro, amitrole, atrazina, carbendazim, triadimefon, penconazol, propiconazol, carbaril, carbofurano	SPE	UHPLC-MS/MS	0,01-0,64 ng L-1	0,03-2,13 ng L-1	118
Ametrina, atrazina, azoxistrobina, carbendazim, diuron, hexazinona, imazaquin, imazetapir, imidacloprida, propiconazol, tebuconazol, tebutiuron	SPE	LC-MS/MS	0,003-0,010 μg L-1	0,01-0,10 μg L-1	119
Carbendazim, simazina, carbofurano, atrazina, diuron, 2,4-D, 2,4,5-T, tebuconazol, paration-metil, metolacloro, 4,4’-DDD, 4,4’-DDE	DPX	HPLC-DAD	0,04-0,69 μg L-1	0,14-2,30 μg L-1	120
Ametrina, atrazina, azoxistrobina, carbendazim, carbofurano, clomazona, clorpirifós, diuron, hexazinona, imidacloprida, malation, simazina, tebuconazol, tebutiuron	SPE	LC-MS/MS	1-33 ng L-1	4-99 ng L-1	109
3- hidroxicarbofurano, azinfos-metil, chorpirifós	SPE	LC-MS/MS	0,005-0,200 μg L-1	0,01-0,5 μg L-1	121
Atrazina, azoxistrobina, bentazone, carbendazim, carbofurano, ciproconazol, clomazona, diuron, difenoconazol, epoxiconazol, fipronil, imazapic, imazetapir, iprodiona, irgarol, pirazosulfuron-etil, propanil, quinclorac, simazina, tebuconazol, trifloxistrobina	SPE	LC-MS/MS		0,8-80 ng L-1	110
Difenoconazol, epoxiconazol, tebuconazol, atrazina, azoxistrobina, picoxistrobina, piraclostrobina, trifloxistrobina, chlorpirifós, profenofós, fipronil, carbendazim	SPE	LC-MS/MS		0,2-18,0 ng L-1	122
Lindane, DDT, metoxicloro, acefato, diazinon, fenitrotion, simazina, atrazina, alfa-cipermetrina, deltametrina	SPE	GC-ECD	0,01-2,00 μg L-1		123
Ametrina, asulam, atrazina, carbofuran, clorpirifós, clopiralide, DEET, DEA, DIA, diazinon, diclorvos, diuron, flumeturon, hexazinona, imazetapir, imidacloprida, metolacloro, metribuzin, picloram, metsulfurom-metil, prometrina, propiconazol, propoxur, simazina, tebutiuron, terbutilazina, terbutilazina- desetil, bromoxinil, mecoprop	Injeção direta SPE	LC-MS/MS		0,1-1,0 μg L-1	124
Metiocarbe, oxadiazon, imidacloprida, tiacloprido, tiametoxame, clotianidina, acetamiprido, triallate	SPE	LC-MS/MS	0,1-1,4 ng L-1	0,3-4,8 ng L-1	125
Clopiralide, diuron, florasulam, CGA 282149, CGA 322704, CGA 353968, CGA 355190, NOA 404617, NOA 407475, 2,4-D, 2,4,5-T, 2,6- ácido difluorobenzoico, bentazone, dicamba, diclorprop, dimetomorfo, flumetsulame, imidacloprida, linuron, MCPA, mecoprop, penconazol, tiametoxame	SPE online	LC-MS/MS	1,2-18,0 ng L-1		126
ametrina, atrazina, cianazina, prometrina, propazina, simazina, simetrin, terbutilazina, terbutrina	SPE	HPLC-DAD	0,010-0,023 μg L-1		127

• LD: limite de detecção; LQ: limite de quantificação; SPE: extração em fase sólida (do inglês, solid-phase extraction); LLE: líquido-líquido (do inglês, liquid-liquid extraction); DLLE: microextraçao líquido-líquido dispersiva (do inglês, dispersive liquid-liquid microextraction); SPME: microextração em fase sólida (do inglês, solid-phase microextraction); DPX: extração em ponteiras descartáveis (do inglês, disposable pipette extraction); GC: cromatografia gasosa (do inglês, gas chromatography); LC: cromatografia líquida (do inglês, liquid chromatography); UHPLC: cromatografia líquida de ultra eficiência (do inglês, ultra high performance liquid chromatography); HPLC: cromatografia líquida de alta eficiência (do inglês, ultra high performance liquid chromatography); MS: espectrometria de massas (do inglês, mass spectrometry); MS/MS: espectrometria de massas sequencial (do inglês, tandem mass spectrometry); DAD: detector de arranjo de diodos (do inglês; diode array detector); ECD: detector de captura de elétrons (do inglês, electron capture detector)

Resíduos de pesticidas têm sido detectados em mananciais e água de abastecimento público em todo o mundo, incluindo no Brasil. Montagner e colaboradores¹⁰¹ desenvolveram um método para avaliar a ocorrência de 12 pesticidas (atrazina, carbendazim, clorpirifós, profenofós, difenoconazol, epoxiconazol, tebuconazol, azoxistrobina, picoxistrobina, piraclostrobina, trifloxistrobina e fipronil) em águas superficiais e de abastecimento público do estado de São Paulo, Brasil. Os analitos foram extraídos por SPE com os cartuchos Oasis HLB, Strata SAX, C18 Envi-18 e Envi Carb. O sorvente Oasis HLB com os solventes de eluição metanol seguido de acetonitrila proporcionaram uma melhor recuperação da maioria dos pesticidas (> 70%). Os limites de detecção (LD) e quantificação (LQ) do método foram 1-50 e 2-150 ng L^-1, respectivamente. Nas amostras de água superficial foram detectados 9 pesticidas (atrazina, carbendazim, difenoconazol, epoxiconazol, tebuconazol, azoxistrobina, picoxistrobina, piraclostrobina e trifloxistrobina) em concentrações entre 3 e 293 ng L^-1. Na água tratada, o tebuconazol, atrazina e carbendazim foram quantificados em concentrações de 4-87 ng L^-1. Machado e colaboradores¹⁰⁰ avaliaram a presença de contaminantes emergentes, entre os quais, o pesticida atrazina, em amostras de água potável de 22 capitais brasileiras. No método analítico foi utilizado SPE seguida da análise por LC-MS/MS. A recuperação da atrazina foi de 83% e o LD e LQ foi igual a 1,0 e 2,0 ng L^-1, respectivamente. A atrazina foi detectada em 75% das amostras de água potável em concentrações na faixa de 2,0 a 6,0 ng L^-1.

De Souza e colaboradores¹⁰⁹ avaliaram a presença de 14 pesticidas (ametrina, atrazina, azoxistrobina, carbendazim, carbofurano, clomazona, clorpirifós, diuron, hexazinona, imidacloprido, malation, simazina, tebuconazol e tebutiuron) em água superficial e água de abastecimento público em Londrina, no estado do Paraná, Brasil. Os pesticidas foram extraídos por SPE e avaliados por LC-MS/MS. A recuperação dos analitos foi de 60-115% e LD e LQ foi de 1-33 e 4-99 ng L^-1, respectivamente. Os pesticidas quantificados nas amostras de água superficial e de abastecimento público foram o carbendazim, imidacloprido, atrazina, diuron e azoxistrobina em concentrações que variaram entre 7,1-265 ng L^-1. Na água de abastecimento público a frequência de detecção foi de 95% para o imidacloprido, 58% para o azoxistrobina, 79% para o atrazina, 83% para o diuron e 8% para o carbendazim. No estado do Rio Grande do Sul, Brasil, foi avaliada a presença de 22 pesticidas e 8 compostos, entre produtos farmacêuticos e de higiene pessoal, em águas superficiais e de abastecimento público. Os pesticidas foram extraídos por SPE e analisados por LC-MS/MS com recuperação entre 49-132% e LQ entre 0,8-80 ng L^-1. A concentração dos pesticidas na água superficial foi de 4-1000 ng L^-1 e na água potável foi de 4-490 ng L^-1. A atrazina foi o pesticida mais frequentemente detectado e foi quantificada em concentrações entre 5 e 49 ng L^-1.¹¹⁰

ALIMENTOS

De maneira geral, a determinação de pesticidas em amostras alimentícias envolve as etapas de homogeneização, extração e clean-up, como preparo de amostra, e separação, detecção e análise dos resultados.⁹⁰ As principais técnicas de preparo de amostras empregadas são a LLE,^128129130131 SPE^132133134135 e QuEChERS.^{136137138139140141} Além dessas, a SPME,^142143144 microextração em gota única (SDME, do inglês single drop microextraction),¹⁴⁵,¹⁴⁶ microextração em fluxo contínuo (CFME, do inglês continuous flow microextraction)¹⁴⁷ e extração sólido-líquido (SLE, do inglês solid-liquid extraction).¹⁴⁸ A complexidade das matrizes adicionam um desafio maior na escolha da melhor técnica de preparo de amostras, no entanto, o analista devem considerar as características das mesmas, bem como as propriedades físico químicas dos pesticidas de interesse e a técnica que será empregada na quantificação, o que impossibilita a elaboração de um protocolo único para todas as amostras e todos os pesticidas. Além disso, para fins de monitoramento e avaliação do risco, é importante que os métodos analíticos apresentem limites de detecção e quantificação inferiores aos LMR ou IDA. Para a separação e detecção dos analitos nas amostras, as técnicas mais empregadas para compostos voláteis são GC, podendo ser acoplada a detectores por captura de elétrons (ECD, do inglês eléctron capture detector),¹⁴⁶,^149150151 detectores de nitrogênio-fósforo (NPD, do inglês nitrogen phosphorus detector),¹⁴⁵,^152153154 detectores MS¹⁴⁷,¹⁵¹,^155156157158 e MS/MS.¹³⁶,¹⁵⁹,¹⁶⁰ Para compostos não voláteis, a principal técnica de separação utilizada é a LC, podendo ser acoplada a detectores de arranjo de diodos (DAD, do inglês diode array detector)^161162163 e MS/MS.¹³⁷,¹⁵⁷,^{164165166167168} A Tabela 2 sintetiza algumas técnicas e parâmetros analíticos utilizados para quantificar resíduos de pesticidas em amostras de alimentos.

Tabela 2
Técnicas analíticas para determinação de resíduos de pesticidas em amostras de alimentos

Matriz	Analitos	Preparo de amostra	Análise instrumental	LD	LQ	Referência
Frutas e suco de frutas	Diazinon, malation, imidacloprida, triadimefon	LLE	LC-MS/MS	0,3-30 μg L-1		128
Maça, uva e suco de cereja	Diazinon, clorpirifós, fosalona, ametreina, propazine, simazina, penconazol, hexazonazol, diniconazol, difenoconazol, tebuconazol	LLE	GC-FID GC-MS	0,34-5 μg L-1	1-16 μg L-1	130
Suco de laranja	Acefato, carbendazim, acetamiprido, imidacloprida, metrifonato, ametrina, bromacila, carbofuran, tiofanato-metílico, diuron, pirimifos-metila, tebuconazol, diflubenzuron, malation, diazion, difenoconazole, clorpirifós, abamectina	LLE	LC-ESI-MS/MS	0,003-0,33 mg L-1	0,01-1,11 mg L-1	129
Óleo de soja	95 pesticidas	LLE	GC-MS		0,004-0,05 mg kg-1	131
Alface, brócolis, mostarda, espinafre, couve-flor, salsão e repolho	α-HCH, β-HCH, γ-HCH, clorpirifós, DDD, DDE, diazinon, dimetoato, DDT, endosulfan, fenvelerato, malation, paration metil, permetrina, paration etil	SPE	GC-ECD	0,02-4,5 ng g-1	0,2-45 ng g-1	132
Suco de pera	α-HCH, β-HCH, γ-HCH, δ-HCH, p,p’-DDE, p,p’-DDD, o,p’-DDT, p,p’-DDT	SPE	GC-MS/MS	0,39-0,7 ng L-1	1,45-2 ng L-1	133
Repolho, couve-flor, goiaba, quiabo, berinjela, cebola, maçã, banana, uva, laranja, romã	60 pesticidas	SPE	UHPLC-TOF/MS	0,3-3,8 μg kg-1	0,8-11,8 μg kg-1	134
Tomate	Metolcarb, carbofurano, isoprocarbe, metiocarbe	SPE	HPLC-DAD	0,58-2,06 ng g-1		135
Ervas medicinais	135 pesticidas	SPE QuEChERS	LC-MS/MS		1-5 ng g-1	140
Folhas de alcachofra	98 pesticidas	QuEChERS	GC-MS LC-MS/MS	0,003-0,025 mg kg-1		136
Alface	Acefato, carbaril, carbendazim, metamidofós, metomil, procloraz, tebuconazol, azoxistrobina, clotianidina, difenoconazol, fenamidone, imidaclopida, iprodiona, malation, tiaclopride, tiametoxame	QuEChERS	LC-MS/MS		5-3200 μg kg-1	137
Tomate	57 pesticidas	QuEChERS	LC-ESI-MS/MS	0,0005-0,02 mg kg-1	0,002-0,07 mg kg -1	138
Alho-poró, alface	70 pesticidas	QuEChERS	LC-MS/MS	0,1-2,4 μg kg-1	0,3-7,9 μg kg-1	139
Pepino, pera, repolho	Bifentrin, fenpropatrina, cialotrina, permetrina, ciflutrina, flucitrinato, fenvalerato, deltametrina	SPME	GC-μECD	0,1-0,5 ng g-1	0,3-1,7 ng g-1	142
Pera, uva e berinjela	Diazinon, paration, fentiona, clorpirifós	SPME	GC-IMS	0,05-0,3 μg Kg-1		143
Suco de fruta	Clorpirifós, penconazol, procimidona, bromopropilato, lambda-cialotrina	SPME	GC-ECD	0,002-0,667 ng mL-1		144
Chá	Forato, diazinon, tolclofos-metil, malation, fentiona, quinalfós, fenamifós	SDME	GC-MS	0,4-1,7 μg Kg-1	1,1-5,6 μg Kg-1	145
Mel	HCB, diazinon, lindane, clorpirifós-metil, clorpirifós-etil, procimidona, captan, a-endosulfan, β-endosunfan, endosunfan sulfato, bromopropilato, fosalona, fenarimol, coumafós	SDME	GC-MS	0,01-3,75 μg Kg-1		146
Vegetais	Demeton-s-metil, forato, diazinon, tolclofos-metil, malation, fentiona, quinalfós, fenamifós	CFME	GC-MS	0,59-1,57 μg Kg-1	1,96-5,23 μg Kg-1	147
Alface	Procimidona, iprodiona	SLE	GC-ECD	0,4-37 μg Kg-1		148

• LD: limite de detecção; LQ: limite de quantificação; SPE: extração em fase sólida (do inglês, solid-phase extraction); LLE: líquido-líquido (do inglês, liquid-liquid extraction); SLE: extração sólido-líquido (do inglês, solid-liquid extraction); SPME: microextração em fase sólida (do inglês, solid-phase microextraction); SDME: microextração em gota única (do inglês, single drop microextraction); CFME: microextração em fluxo contínuo (do inglês, continuous flow microextraction); GC: cromatografia gasosa (do inglês, gas chromatography); LC: cromatografia líquida (do inglês, liquid chromatography); UHPLC: cromatografia líquida de ultra eficiência (do inglês, ultra high performance liquid chromatography); HPLC: cromatografia líquida de alta eficiência (do inglês, ultra high performance liquid chromatography); MS: espectrometria de massas (do inglês, mass spectrometry); MS/MS: espectrometria de massas sequencial (do inglês, tandem mass spectrometry); TOF: tempo de voo (do inglês, time of flight); DAD: detector de arranjo de diodos (do inglês; diode array detector); ECD: detector de captura de elétrons (do inglês, electron capture detector); FID: detector por ionização de chama (do inglês, flame ionization detector); IMS: espectrometria de mobilidade iônica (do inglês, ion mobility spectrometry)

Silva e Faria,¹⁶⁴ por exemplo, desenvolveram e validaram um método analítico para quantificar resíduos de 7 pesticidas em amostras de méis produzidos na região do Triângulo Mineiro (Brasil). Utilizaram QuEChERS como preparo de amostra e UHPLC-MS/MS para determinar e quantificar os compostos. O LD do método variou entre 0,6 e 4 µg L^-1, valores esses inferiores ao LMR estabelecidos para os compostos estudados. A recuperação variou entre 89 e 107% e precisão reportada com RSD <14%. O método foi aplicado em 7 amostras de mel, sendo possível quantificar metomil e imidacloprido em todas as amostras analisadas. Segundo os pesquisadores, esses resultados mostram como as colmeias próximas as plantações de grãos e cana-de-açúcar estão sendo afetadas pela aplicação de pesticidas na região de estudo.

MATRIZES BIOLÓGICAS

Diversos estudos são dedicados à avaliação da exposição externa aos pesticidas, por meio do levantamento da sua ocorrência em diferentes matrizes, como por exemplo, nos alimentos e na água. Porém, além dessa abordagem convencional há um interesse crescente em avaliar a exposição de contaminantes ambientais usando dados de biomonitoramento, ou seja, da dose interna.¹⁶⁹ O biomonitoramento é definido como uma medição direta da exposição humana aos contaminantes por meio da substância química e/ou dos seus metabólitos presentes em amostras biológicas.¹⁷⁰,¹⁷¹

A seleção da amostra biológica para o biomonitoramento humano é determinada pelas propriedades químicas e da farmacocinética da substância que está sendo monitorada. O sangue e a urina são considerados matrizes convencionais no biomonitoramento, porém, nos últimos anos tem aumentado o interesse por matrizes alternativas, tais como cabelo, mecônio, leite materno, entre outras.⁹¹,¹⁷²,¹⁷³ O sangue é a matriz ideal para a determinação da maioria dos produtos químicos devido ao contato do plasma sanguíneo com todo o organismo e ao seu equilíbrio com órgãos e tecidos onde os compostos são armazenados. A principal desvantagem do uso do sangue no biomonitoramento humano é por ele ser uma matriz invasiva e, portanto, poder haver uma resistência maior na resposta dos participantes em estudos epidemiológicos voluntários, além disso, sua disponibilidade geralmente é limitada e a coleta necessita de pessoal qualificado. Em geral, o sangue e seus componentes (soro e plasma) são preferidos na determinação de pesticidas persistentes, como os organoclorados, que têm um tempo de meia-vida mais longo nessas matrizes.⁹,⁹¹,¹⁷⁴

A urina é uma matriz representativa da exposição recente, pois pesticidas que não são persistentes, como piretróides e organofosforados, são rapidamente metabolizados e eliminados em poucos dias. Além disso, a urina é uma matriz não invasiva, abundante e fácil de coletar. As amostras de urina podem ser pontuais ou de 24 horas. A coleta de amostras pontuais é mais fácil e por isso é realizada com mais frequência, porém, para a compensação de variações no volume e na concentração dos analitos, que ocorrem nesse tipo de amostra, é necessário realizar um ajuste, sendo o ajuste da concentração da creatinina o mais empregado.⁹¹,¹⁷²,¹⁷³,¹⁷⁵,¹⁷⁶ Como vários metabólitos dos organofosforados, piretróides ou neonicotinóides são, em parte, excretados na urina como conjugados de glicuronídeo e sulfato, geralmente é realizado um pré-tratamento nas amostras por meio da desconjugação por hidrólise enzimática ou ácida com β-glucoronidase/sulfatase.⁹¹,¹⁷⁷,¹⁷⁸

O cabelo humano é uma matriz estável que apresenta diversas vantagens, tais como, fácil coleta, transporte e armazenamento, além de fornecer informações sobre as exposições a curto e longo prazo. No entanto, existem algumas dificuldades na diferenciação da deposição endógena (dose interna por difusão de capilares sanguíneos) e exógena (ambiente externo) dos contaminantes. Para a remoção da gordura, suor e das substâncias exógenas presentes na superfície do cabelo é realizada uma etapa de descontaminação com água e solventes orgânicos, como a acetonitrila, ou soluções de surfactantes, como o dodecil sulfato de sódio. Para aumentar a extração dos analitos, de modo geral, é realizado um pré-tratamento por meio da incubação ou decomposição enzimática, alcalina ou ácida do cabelo. Os inseticidas organoclorados, piretróides e organofosforados foram investigados no cabelo, principalmente por meio da análise dos seus compostos originais.⁹¹,¹⁷³,¹⁷⁹,¹⁸⁰

O leite materno é comumente empregado no monitoramento dos níveis de exposição da mãe e do bebê por meio da amamentação, sendo mais utilizado no monitoramento de pesticidas lipofílicos devido aos seus elevados teores de gordura. Para comparar os níveis de pesticidas, um ajuste de lipídios é necessário, uma vez que a concentração de lipídios no leite humano não é constante.⁹¹,¹⁸¹ Pesticidas organoclorados, como DDT e HCH, foram detectados em amostras de leite materno.¹⁸² O mecônio é apropriado para medir a exposição pré-natal aos pesticidas, pois eles se acumulam a partir do terceiro mês de gestação até o nascimento. As principais vantagens dessa matriz são a sua fácil coleta, a quantidade de amostra que pode ser coletada e as informações sobre a exposição de longo prazo do feto.¹⁷³,¹⁸³ Ostrea e colaboradores¹⁸⁴ analisaram a presença de diversos pesticidas organoclorados no mecônio e pela comparação desta matriz com o cabelo infantil e cordão umbilical, eles concluíram que o mecônio era a melhor matriz para avaliação da exposição fetal a pesticidas. A Figura 5 mostra os tempos de vida dos pesticidas persistentes e não persistentes no sangue humano, urina e mecônio fetal.

Figura 5
Esquema do tempo de vida e do destino característico dos pesticidas persistentes e não persistentes no sangue humano, urina e mecônio fetal (Adaptado de Barr e Needham)⁹

As técnicas mais empregadas na extração de pesticidas de amostras biológicas são a SLE,⁴⁵,¹⁷⁹,¹⁸³,^185186187 LLE,^{188189190191192} SPE nas configurações off-line¹⁶⁹,¹⁷⁷,¹⁸⁷,^193194195196 e on-line,^{197198199200201} SPME¹⁸⁸,^{202203204205206} e QuEChERS.¹⁹⁵,^{207208209210211} Para a avaliação dos biomarcadores de pesticidas as técnicas mais empregadas são a cromatografia gasosa ou líquida acopladas à espectrometria de massas. Nas análises realizadas por LC, o sistema mais utilizado é o LC acoplado à espectrometria de massas em tandem (MS/MS).⁹¹ A Tabela 3 apresenta algumas técnicas e os principais parâmetros analíticos empregados na determinação de pesticidas em amostras biológicas humanas.

Tabela 3
Metodologias para determinação de pesticidas em amostras biológicas humanas

Matriz	Pesticidas	Preparo de amostra	Análise instrumental	LD	LQ	Referência
Urina	Glifosato e AMPA	SPE com ponta de pipeta	LC-HRMS	1-3 μg L-1	2,5-6 μg L-1	193
Urina	Imidacloprida e ácido 6-cloronicotínico	SPE	LC-MS/MS	0,009-0,011 μg L-1	0,029-0,038 μg L-1	177
Urina	Metabólitos de organofosforados (TCPY, IMPY, PNP, CMHC, DEAMPY) e de piretróides (3-PBA, 4-F-3-PBA, cis/trans-DCCA)	Cromatografia de fluxo turbulento	LC- HRMS		1-10 μg L-1	198
Urina	Metabólitos de organofosforados (DAPs, TCPY, PNP, MDA, CMHC, IMPY, DEAMPY) e de piretróides (3-PBA, 4-F-3-PBA)	SPE	UHPLC-MS/MS	14-69 μg L-1		196
Urina	Glifosato	SPE	LC-MS/MS		0,5 μg L-1	175
Sangue	Carbofurano, terbufos, carbaril, metiocarbe, pirimicarb	SPE dispersiva	PTV-LVI-GC/MS		0,02-0,03 mg L-1	214
Sangue	α-HCH, β-HCH, γ-HCH, DDE	SPE online	LVI-GC-HRMS		0,007-0,017 μg L-1	200
Sangue	Amitraz e seus metabolitos (DMPF, DMF, DMA)	SPE	LC-MS/MS	0,5 μg L-1	2 μg L-1	215
Sangue do cordão umbilical	Cipermetrina e clorpirifós	SPE online	LC-MS/MS	0,01-0,05 μg L-1		197
Sérum	α-HCH, β-HCH, γ-HCH, δ-HCH, 4,4’-DDD, DDE, DDT, aldrin, heptacloro, heptacloro epóxido, α-endosulfan, β-endosulfan, sulfato endosulfan, HCB, atrazina	SPME	GC-MS	0,22-5,41 μg L-1	1,57-10,09 μg L-1	204
Plasma	HCB, trans-clordano, cis-clordano, trans- nonacloro, p,p'-DDE	SPE	GC-HRMS	5,9-89,1 μg L-1		216
Cabelo	Acetoclor, α-clordano, γ-clordano, nonacloro, oxiclordano, clorpirifós-etil, clorpirifós-metil, λ-cialotrina, α-cipermetrina, β-cipermetrina, deltametrina, diazinon, dieldrin, α-endosulfan, heptacloro epóxido A, heptacloro epóxido B, metoxicloro, p,p'-DDE, p,p'-DDT, o,p'-DDT, p,p'-DDD, acetamiprido, atrazina, DIA, DEA, carbofurano, imidacloprida, linuron	QuEChERS	GC-MS UHPLC-MS/MS	0,18-86,6 μg g-1	0,6-288,5 μg g-1	207
Cabelo	Dimetomorfo, penconazol, ciazofamida, fenamidona, quinoxifena, clorpirifós, ciprodinil, metrafenona, boscalid, pirimetanil, tebuconazol, azoxistrobina, fenhexamida, imidacloprida, carbendazim, imazalil, tiabendazol, piraclostrobina, difenoconazol, metolaclor, tiaclopride, dimetenamida, fluopirame, procloraz, cialotrina (lambda), propamocarb, cloridazon	SLE	LC-MS/MS	0,5-15 μg g-1		45
Cabelo	Aldrin, cis-clordano, trans-clordano, p,p'- DDD, o,p'-DDD, p,p'- DDE, o,p'-DDE, p,p'- DDT, o,p'-DDT, dieldrin, endosulfan I, endosulfan II, endrin, heptacloro, heptacloro epóxido A, heptacloro epóxido B, hexaclorobenzeno, α-HCH, β-HCH, γ-HCH, δ-HCH, metoxicloro, isodrin, oxiclordano, mirex	SLE	GC-MS		0,7-33 pg g-1	217
Cabelo	Penconazol e tebuconazol	SLE	LC-MS/MS		1 μg g-1	218
Urina e cabelo	Metabólitos de organofosforados (DMP, DEP, DETP, DEDTP)	SPE SLE	UHPLC-MS/MS GC-MS	0,5-1 μg L-1 3-6 pg g-1		187
Mecônio	Malation, diazinon, clorpirifós, cipermetrina, ciflutrina, deltametrina, propoxur, mancozeb, isoproturon, MCPA e os metabólitos DMP, DMTP, DMDTP, DMDTP, DEP, DETP, DCCA, EU, ETU, desmetil isoproturon	SLE	LC-MS/MS	0,07-66,7 ng g-1	0,2-200 ng g-1	186
Mecônio	Clordano, clorpirifós, DDT, diazinon, lindane, malation, paration, pentaclorofenol	SLE	GC-MS	0,186-6,616 mg L-1		219
Mecônio	Clorpirifós, DETP, diazinon, DEP, malation, DMP, propoxur, ETU, isoproturon, desmetil isoproturon, MCPA	SLE	LC-MS/MS	0,1-1 ng g-1		220
Leite materno	o,p'-DDE, p,p'-DDE, o,p'-DDD, p,p'-DDD, o,p'-DDT, p,p'-DDT, α-HCH, β-HCH, γ-HCH, δ-HCH, oxiclordano, trans-clordano, trans-nonaclordano, cis-nonaclordano, HCB, heptacloro, heptacloro epóxido, mirex	SPE	GC-HRMS	0,0004-0,0010 ng g-1	0,10-0.25 ng g-1	221
Leite materno	α-HCH, β-HCH, γ-HCH, δ-HCH, ε-HCH, 4,4’-DDT, 2,4’-DDT, 4,4’-DDD, 2,4’-DDD, 4,4’-DDE, 2,4’-DDE, trans-clordano, cis-clordano, oxy-clordano, heptacloro, cis- heptaclorepóxido, trans- heptaclorepóxido, aldrin, dieldrin, endrin, endosulfan-I, endosulfan-II, metoxicloro, mirex, pentaclorobenzeno, hexaclorobenzeno, pentacloroanisol, octacloroestireno	LLE	GC-HRMS	1-31 pg g-1		190
Leite materno	α-HCH, β-HCH, γ-HCH, δ-HCH, heptacloro, α-clordano, γ-clordano, 4,4’-DDT, 4,4’-DDE, 4,4’-DDD	LLE	GC-ECD	8 ng g-1	17 ng g-1	222

• LD: limite de detecção; LQ: limite de quantificação; SPE: extração em fase sólida (do inglês, solid-phase extraction); LLE: líquido-líquido (do inglês, liquid-liquid extraction); SLE: extração sólido-líquido (do inglês, solid-liquid extraction); SPME: microextração em fase sólida (do inglês, solid-phase microextraction); PTV: temperatura programável de vaporização (do inglês, programmed temperature vaporization); LVI: injeção de grande volume (do inglês, large volume injection); GC: cromatografia gasosa (do inglês, gas chromatography); LC: cromatografia líquida (do inglês, liquid chromatography); UHPLC: cromatografia líquida de ultra eficiência (do inglês, ultra high performance liquid chromatography); MS: espectrometria de massas (do inglês, mass spectrometry); MS/MS: espectrometria de massas sequencial (do inglês, tandem mass spectrometry); HRMS: espectrometria de massas de alta resolução (do inglês, high resolution mass spectrometry); ECD: detector de captura de elétrons (do inglês, electron capture detector).

Tao e colaboradores¹⁷⁷ otimizaram um método para o monitoramento biológico do imidacloprido e seu principal metabólito, o ácido 6-cloronicotínico (6-CNA), em amostras de urina de aplicadores de pesticidas. A extração dos analitos foi avaliada por LLE, QuEChERS e SPE com os cartuchos Polar Enhanced Polymer (PEP), Polymer Cation eXchange (PCX) e PolymerWeak Cation eXchange (PWCX) e a análise foi realizada por LC-MS/MS. A SPE com o cartucho PEP obteve a melhor extração dos analitos, com recuperações médias entre 78,3-109,8% e os limites de detecção e quantificação foram de 0,009-0,011 µg L^-1 e 0,029-0,038 µg L^-1, respectivamente. Nas amostras de urina, a concentração de imidacloprido e 6-CNA antes da aplicação do pesticida foi de 0,57-8,91 µg L^-1 e 0,21-2,92 µg L^-1, respectivamente, e após a aplicação foi de 0,38-24,58 µg L^-1 e 0,11-6,88 µg L^-1, respectivamente. Lehman e colaboradores²⁰⁷ desenvolveram um método QuEChERS modificado para análise multirresíduo de 37 pesticidas em cabelo humano por GC-MS e UPLC-MS/MS. O sorvente Supel™ QuE Z-Sep+ obteve uma recuperação entre 40-150% para 28 pesticidas. Os limites de detecção variaram de 0,2 a 86,6 pg mg^-1 e de 0,5 a 6,3 pg mg^-1 para substâncias sensíveis a GC e UPLC, respectivamente. O método foi avaliado em amostras de cabelo de voluntários (~300 mg) que viviam em uma área de produção de vegetais em Burkina Faso. A presença de 8 pesticidas foram detectadas nas amostras, sendo estes, acetamiprido, gamma-trans-chlordane, clorpirifós, λ-cyhalothrin, deltametrina, dieldrin, imidacloprido e p,p’-DDE, em concentrações entre 2,2 e 369,4 pg mg^-1.

Du e colaboradores¹⁸² utilizaram QuEChERS e GC-MS/MS para avaliar a presença de 88 pesticidas no leite materno. O método obteve uma excelente recuperação (70-120%) e limites de detecção entre 0,2-2,0 µg L^-1. Nas amostras de leite foram detectados os pesticidas organoclorados p,p’-DDE, p,p’-DDT e β-HCH em concentrações médias de 52,25±49,88 ng g^-1 de gordura, 27,67±20,96 ng g^-1 de gordura e 48,00±22,46 ng g^-1 de gordura, respectivamente. Flores-Ramírez e colaboradores²⁰⁴ desenvolveram um método utilizando SPME para a determinação de Poluentes Orgânicos Persistentes (POPs) em soro humano por GC-MS. Os POPs avaliados foram 14 bifenila policloradas (PCBs), 14 pesticidas organoclorados e a atrazina. A extração dos analitos foi realizada com Headspace-SPME e a fibra de PDMS apresentou a melhor recuperação para os analitos (70-120%). Os LD e LQ variaram de 0,24-5,41 µg L^-1 e 2,38-10,09 µg L^-1, respectivamente. O método foi aplicado em amostras de soro humano de crianças e os pesticidas detectados foram HCB (2,61-3,4 µg L^-1), γ-HCH (1,53-2,18 µg L^-1), δ-HCH (19,9-77,5 µg L^-1), DDD (0,2 µg L^-1), DDE (2,0-52,2 µg L^-1) e β-endosulfan (2,8-7,5 µg L^-1), endosulfan sulfate (4,4-9,42 µg L^-1).

Estudos vem sendo realizados para a determinação de pesticidas em amostras biológicas de pessoas intoxicadas por pesticidas. Luzardo e colaboradores²¹² desenvolveram um método utilizando LLE para a avaliação simultânea de 109 pesticidas no sangue humano por GC-MS/MS e LC-MS/MS. A recuperação dos analitos foi entre 68-105% e os LDs foram de 0,003-0,050 mg L^-1. O método foi avaliado em amostras de sangue de 2 casos, um envolvendo uma fatalidade de auto-envenenamento e outro na tentativa de homicídio não fatal. No caso do auto-envenenamento, o inseticida organofosforado diazinon foi encontrado na concentração de 6,48 mg L^-1 e na tentativa de homicídio o inseticida carbamato aldicarbe foi detectado em uma concentração de 2,32 mg L^-1. Mee-Jung e colaboradores²¹³ avaliaram as concentrações no sangue pós-morte dos pesticidas organofosforados clorpirifós, diazinon, malation e paration com SPE offline e GC-MS. A recuperação foi acima de 70% para todos os compostos e os LQ foram entre 0,01-0,05 mg L^-1 e 0,003-0,050 mg L^-1 por LC e GC, respectivamente. As concentrações médias do clorpirifós, diazinon, malation e paration nas amostras de sangue foram 0,72; 1,03; 0,82 e 2,90 mg L^-1, respectivamente.

CONCLUSÃO

A avaliação do impacto dos pesticidas na saúde humana ainda é um desafio, pois a correlação entre seu uso e os efeitos na saúde é muito complexa. A maioria dos estudos que relacionam os efeitos dos pesticidas na saúde humana são realizados no ambiente ocupacional, uma vez que as pessoas que manipulam e/ou aplicam pesticidas são expostas a uma quantidade maior destes contaminantes e, portanto, a avaliação do impacto nesses ambientes é mais facilmente evidenciada.

A química trouxe importantes avanços nas técnicas analíticas para a identificação e quantificação dos pesticidas nas matrizes ambientais, biológicas e alimentícias.

No entanto, estudos que abordam a exposição ambiental aos pesticidas, a qual a maioria da população está submetida, para inferir os riscos à saúde humana empregando análises de amostras como água, alimentos, etc. enfrentam a complexidade da associação direta entre dose e efeito.

Diversos órgãos governamentais discordam sobre a toxicidade dos pesticidas em seres humanos, todavia não se pode ignorar seus possíveis efeitos e, por isso, os estudos observacionais, in vivo e in vitro, são muito importantes para fazer essas associações.

A determinação da exposição interna dos seres humanos (biomonitoramento) e externa (exposição ambiental e alimentícia) são importantes ferramentas, já que os dados obtidos nesses estudos podem ser usados, em conjunto com os estudos observacionais, in vivo e in vitro, na avaliação e gestão de risco para subsidiar políticas públicas voltadas para ele, que é um nicho importante do ponto de vista socioeconômico em todo o mundo.

AGRADECIMENTOS

Os autores agradecem ao Instituto Nacional de Ciências e Tecnologias Analíticas Avançadas - INCTAA (FAPESP Proc. 2014/50951-4 e CNPq Proc. 465768/2014-8) pelo auxílio financeiro, ao Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico pela bolsa de doutorado (Proc. 142467/2018-9) e à Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior pela bolsa de doutorado (Proc. 88887.169503/2018-00).

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  Connolly, A.; Jones, K.; Basinas, I.; Galea, K. S.; Kenny, L.; McGowan, P.; Coggins, M. A.; Int. J. Hyg. Environ. Health 2019, 222, 205.
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  Du, J.; Gridneva, Z.; Gay, M. C. L.; Lai, C. T.; Trengove, R. D.; Hartmann, P. E.; Geddes, D. T.; Sci. Rep. 2016, 6, 1.
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• ¹⁸⁵
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• ¹⁸⁶
  Berton, T.; Mayhoub, F.; Chardon, K.; Duca, R. C.; Lestremau, F.; Bach, V.; Tack, K.; Environ. Res. 2014, 132, 311.
• ¹⁸⁷
  Hernández, A. F.; Lozano-Paniagua, D.; González-Alzaga, B.; Kavvalakis, M. P.; Tzatzarakis, M. N.; López-Flores, I.; Aguilar-Garduño, C.; Caparros-Gonzalez, R. A.; Tsatsakis, A. M.; Lacasaña, M.; Environ. Int. 2019, 131, 104997.
• ¹⁸⁸
  Hardy, E. M.; Duca, R. C.; Salquebre, G.; Appenzeller, B. M. R.; Forensic Sci. Int. 2015, 249, 6.
• ¹⁸⁹
  Batterman, S.; Chernyak, S.; Sci. Total Environ. 2014, 494-495, 252.
• ¹⁹⁰
  Çok, I.; Mazmanci, B.; Mazmanci, M. A.; Turgut, C.; Henkelmann, B.; Schramm, K. W.; Environ. Int. 2012, 40, 63.
• ¹⁹¹
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• ¹⁹²
  Meyer-Monath, M.; Chatellier, C.; Cabooter, D.; Rouget, F.; Morel, I.; Lestremau, F.; Talanta 2015, 138, 231.
• ¹⁹³
  Chen, D.; Miao, H.; Zhao, Y.; Wu, Y.; J. Chromatogr. A 2019, 1587, 73.
• ¹⁹⁴
  Cazorla-Reyes, R.; Fernández-Moreno, J. L.; Romero-González, R.; Frenich, A. G.; Vidal, J. L. M.; Talanta 2011, 85, 183.
• ¹⁹⁵
  Sweeney, C.; Park, Y.; Kim, J. S.; J. Chromatogr. A 2019, 1603, 83.
• ¹⁹⁶
  Garí, M.; González-Quinteiro, Y.; Bravo, N.; Grimalt, J. O.; Sci. Total Environ. 2018, 622-623, 526.
• ¹⁹⁷
  Liao, H. T.; Hsieh, C. J.; Chiang, S. Y.; Lin, M. H.; Chen, P. C.; Wu, K. Y.; J. Chromatogr. B 2011, 879, 1961.
• ¹⁹⁸
  López-García, M.; Romero-González, R.; Garrido Frenich, A.; J. Pharm. Biomed. Anal. 2019, 173, 31.
• ¹⁹⁹
  López-García, M.; Romero-González, R.; Lacasaña, M.; Garrido Frenich, A.; J. Pharm. Biomed. Anal. 2017, 146, 378.
• ²⁰⁰
  Wittsiepe, J.; Nestola, M.; Kohne, M.; Zinn, P.; Wilhelm, M.; J. Chromatogr. B 2014, 945-946, 217.
• ²⁰¹
  Koivunen, M. E.; Dettmer, K.; Vermeulen, R.; Bakke, B.; Gee, S. J.; Hammock, B. D.; Anal. Chim. Acta 2006, 572, 180.
• ²⁰²
  Salquèbre, G.; Schummer, C.; Millet, M.; Briand, O.; Appenzeller, B. M. R.; Anal. Chim. Acta 2012, 710, 65.
• ²⁰³
  Peng, F. J.; Hardy, E. M.; Mezzache, S.; Bourokba, N.; Palazzi, P.; Stojiljkovic, N.; Bastien, P.; Li, J.; Soeur, J.; Appenzeller, B. M. R.; Environ. Int. 2020, 138, 105633.
• ²⁰⁴
  Flores-Ramírez, R.; Ortiz-Pérez, M. D.; Batres-Esquivel, L.; Castillo, C. G.; Ilizaliturri-Hernández, C. A.; Díaz-Barriga, F.; Talanta 2014, 123, 169.
• ²⁰⁵
  Kim, M.; Song, N. R.; Hong, J.; Lee, J.; Pyo, H.; Chemosphere 2013, 92, 279.
• ²⁰⁶
  Béranger, R.; Hardy, E. M.; Dexet, C.; Guldner, L.; Zaros, C.; Nougadère, A.; Metten, M. A.; Chevrier, C.; Appenzeller, B. M. R.; Environ. Int. 2018, 120, 43.
• ²⁰⁷
  Lehmann, E.; Oltramare, C.; de Alencastro, L. F.; Anal. Chim. Acta 2018, 999, 87.
• ²⁰⁸
  Iqbal, S.; Iqbal, M. M.; Javed, M.; Bahadur, A.; Yasien, S.; Najam-ud-din; Hurr, A.; Ahmad, N.; Raheel, M.; Liu, G.; J. Chromatogr. B 2020, 1152, 122227.
• ²⁰⁹
  Lehmann, E.; Oltramare, C.; Nfon Dibié, J. J.; Konaté, Y.; de Alencastro, L. F.; Environ. Int. 2018, 111, 317.
• ²¹⁰
  Roca, M.; Leon, N.; Pastor, A.; Yusà, V.; J. Chromatogr. A 2014, 1374, 66.
• ²¹¹
  Luzardo, O. P.; Ruiz-Suárez, N.; Almeida-González, M.; Henríquez-Hernández, L. A.; Zumbado, M.; Boada, L. D.; Anal. Bioanal. Chem. 2013, 405, 9523.
• ²¹²
  Luzardo, O. P.; Almeida-González, M.; Ruiz-Suárez, N.; Zumbado, M.; Henríquez-Hernández, L. A.; Meilán, M. J.; Camacho, M.; Boada, L. D.; Sci. Justice 2015, 55, 307.
• ²¹³
  Park, M. J.; In, S. W.; Lee, S. K.; Choi, W. K.; Park, Y. S.; Chung, H. S.; Forensic Sci. Int. 2009, 184, 28.
• ²¹⁴
  Ferrari Júnior, E.; Caldas, E. D.; Forensic Sci. Int. 2018, 290, 318.
• ²¹⁵
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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  26 Jul 2021
• Data do Fascículo
  Maio 2021

Histórico

• Recebido
  28 Set 2020
• Aceito
  24 Nov 2020
• Publicado
  20 Jan 2021