Resistência cruzada aos fungicidas IQo azoxistrobina e piraclostrobina no patógeno da brusone do trigo Pyricularia oryzae no Brasil

Cross-resistance to QoI fungicides azoxystrobin and pyraclostrobin in the wheat blast pathogen Pyricularia oryzae in Brazil

Resumo

As estrobilurinas estão entre os fungicidas mais comumente utilizados no controle das doenças do trigo, isoladamente ou em misturas com fungicidas inibidores da enzima succinato desidrogenase (IDHS). As estrobilurinas são conhecidas como fungicidas inibidores da quinona oxidase ou fungicidas IQo. Por ter como alvo um único sítio de ação nas células fúngicas, o gene mitocondrial cyt b, o emprego contínuo das estrobilurinas pode representar alto risco de emergência de resistência a estes fungicidas em populações de fitopatógenos. O presente trabalho teve como objetivo testar a hipótese de que a resistência a azoxistrobina no fungo Pyricularia oryzae dotrigo resultou em resistência cruzada a piraclostrobina, outro fungicida IQo. Para testar esta hipótese, foi comparado o nível de resistência à piraclostrobina apresentado por dois grupos de isolados do fungo P. oryzae do trigo: a) sensíveis à azoxistrobina e portadores do gene cyt b não mutante (haplotipo H9) e b) resistentes à azoxistrobina e portadores da mutação G143A no gene cyt b(haplotipo H1). Fungicidas pertencentes a um mesmo grupo químico apresentam resistência cruzada. Todos os isolados de P. oryzaedo trigo sensíveis à azoxistrobina foram também sensíveis à piraclostrobina. Os isolados resistentes a azoxistrobina foram, também, resistentes à piraclostrobina, indicando que há resistência cruzada para os dois fungicidas. Entre os isolados resistentes, distinguiram-se dois grupos fenotípicos: (A) altamente resistentes e (B) resistentes. Isolados de P. oryzaecom a presença da mutação G143A no gene cyt b foram 42 vezes mais resistentes à piraclostrobina. Esses altos níveis de resistência à fungicidas IQo podem ser o resultado de elevada pressão de seleção exercida pelos anos consecutivos de aplicações de estrobilurinas para o manejo de doenças do trigo no Brasil.

Palavras-chave :
estrobilurina; citocromo b; inibidores de quinona oxidase; EC₅₀; Triticum aestivum

ABSTRACT

Strobilurins are among the fungicides that are most commonly used in the control of wheat diseases, separately or in mixtures with fungicides that inhibit the enzyme succinate dehydrogenase (SDH). Strobilurins are known as quinone oxidoreductase inhibitors or QoI fungicides. As in fungal cells they have one single site of action as target, the mitochondrial cyt b gene, the continued use of strobilurins may represent a high risk of emergence of resistance to these fungicides for plant pathogens populations. This study aimed to test the hypothesis that resistance to azoxystrobin in the wheat blast fungus Pyricularia oryzae resulted in cross-resistance to pyraclostrobin, another QoI fungicide. To test this hypothesis, we compared the level of pyraclostrobin resistance presented by two groups of P. oryzae isolates from wheat: a) sensitive to azoxystrobin and carrier of the non-mutant cyt b gene (haplotype H9), and b) resistant to azoxystrobin and carrier of the G143A mutation in the cyt b gene (H1 haplotype). Fungicides belonging to the same chemical group show cross-resistance. All P. oryzae isolates sensitive to azoxystrobin were also sensitive to pyraclostrobin. Isolates that were resistant to azoxystrobin were also resistant to pyraclostrobin, indicating cross-resistance to both fungicides. Two phenotypic groups were distinguished among the resistant isolates: (A) highly resistant and (B) resistant. P. oryzae isolates with the presence of G143A mutation in the cyt b gene were 42 times more resistant to pyraclostrobin. These high levels of resistance to QoI fungicides may be the result of high selection pressure exerted by consecutive years of strobilurin application for the management of wheat diseases in Brazil.

Additional keywords:
strobilurin; cytochrome b; quinone oxidoreductase inhibitors; EC₅₀; Triticum aestivum

Pyricularia oryzae Cavara tem distribuição mundial, sendo considerado um dos patógenos mais destrutivos do arroz. Mais de 50 gramíneas são atacadas por esse patógeno, embora a cultura do arroz seja considerada seu hospedeiro mais importante (22). No último século, esse fungo emergiu como patógeno importante adaptado ao trigo no sul do Brasil, causando a doença brusone (11).

Nos últimos 30 anos, devido à inexistência de cultivares de trigos resistentes a brusone e fungicidas eficazes para controlar o fungo (14, 17, 21, 23), o patógeno alcançou ampla distribuição espalhando-se rapidamente pela maioria das áreas produtoras de trigo no Brasil (1).

A busca por resistência à brusone tem sido intensa desde o primeiro relato da doença no final da década de 80, porém os resultados têm sido considerados erráticos e inconsistentes (3, 8, 9, 16), pelo fato dos genótipos de trigo aparentemente resistentes se comportarem como suscetíveis em outras regiões do país (28). Maciel et al. (18) baseando-se na reação diferencial de um grupo de sete cultivares de trigo, analisaram uma população de 157 isolados do patógeno amostrada em 2005 e descreveram a ocorrência de oito grupos de virulência do patógeno (ou raças virulentas; 18), com distribuição distinta em diferentes regiões do Centro-Sul do Brasil. Essa descoberta possivelmente explica a variação do comportamento das cultivares de trigo cultivadas no país.

Sob o ponto de vista de manejo da brusone do trigo, a ineficácia de fungicidas é atribuída ao desconhecimento de aspectos importantes da biologia do patógeno, se a fonte de inóculo primário restringe-se às sementes, aos restos de cultura ou qual a importância de plantas invasoras como fonte de inóculo e às dificuldades de proteção da espiga, aparentemente o único órgão da planta sujeito à infecção (9, 14, 17, 21, 23, 28). Entre diversos grupos de fungicidas utilizados no controle das doenças do trigo, as estrobilurinas tem recebido destaque.

As estrobilurinas são compostos químicos extraídos, a princípio, do fungo Strobilurus tenacellus (Pers.) Singer, e amplamente usados como fungicidas na agricultura. Comercializadas desde o final do século XX, as estrobilurinas passaram a ser conhecidas como fungicidas inibidores de quinona oxidase ou fungicidas IQo, por terem como único modo bioquímico de ação a inibição da respiração mitocondrial, atuando no sítio Qo (24). A toxicidade das estrobilurinas é proveniente da inibição da cadeia respiratória ao nível do Complexo III, impedindo a cadeia bioquímica de transferência de elétrons no sitio da mitocôndria, interferindo na respiração do patógeno (6).

A interferência das estrobilurinas na respiração mitocondrial ocorre pelo bloqueio da transferência de elétrons no citocromo b (codificada pelo gene cyt b). Porque os fungicidas IQo foram amplamente utilizados no manejo doenças do trigo nos últimos 15 anos (17), deve ter havido forte pressão de seleção sobre populações de patógenos de trigo, incluindo P. oryzae, por mutações que conferem resistência a IQo. Na maioria dos patógenos, incluindo P. oryzae, a resistência à estrobilurina no cyt b, resulta em alteração de um aminoácido no códon 143 de glicina para alanina (G143A) (7).

Fungicidas pertencentes a um mesmo grupo químico apresentam resistência cruzada. Resistência cruzada ocorre quando populações de patógenos que desenvolvem resistência a um fungicida tornam-se, simultaneamente, resistentes a outros fungicidas que são afetados pela mesma mutação gênica e pelo mesmo mecanismo de resistência (5). Para as estrobilurinas, a resistência cruzada pode ocorrer para a azoxistrobina, trifloxistrobina e piraclostrobina (6).

Dois mecanismos de resistência para o fungicida IQo tem sido relatado. O primeiro envolve mutação do gene citocromo b, resultando em alterações na sequência de nucleotídeos que impedem a ligação com o fungicida. Essa mutação resulta em resistência completa do patógeno ao fungicida. Um segundo mecanismo de resistência, porém menos comum, ocorre "in vitro" e foi identificado em vários fungos patogênicos, incluindo P. oryzae. Esse mecanismo envolve a atividade de uma enzima oxidase alternativa (OA), a qual oxida a ubiquinona, enquanto reduz oxigênio a água. Isso evita o bloqueio induzido pelos fungicidas IQo na cadeia de transporte de elétrons (13). Em P. oryzae, o gene OA é expresso "in vitro", em resposta ao estresse oxidativo, contudo, a transcrição do gene OA é reprimida "in planta", permitindo que fungicidas IQo sejam utilizados para controlar a doença causada por P. oryzae e outros fungos fitopatogênicos (13).

A resistência aos fungicidas à base de estrobilurina é, atualmente, considerada fenômeno comum, inclusive para P. oryzae (5). Nos Estados Unidos, desde o início do século XXI, já há relatos de resistência a fungicidas IQo em populações de P. oryzae patogênico a Lollium perene L. ou azevém (13). A resistência de fitopatógenos a fungicidas IQo tem sido observada na Europa e na Ásia em diversas culturas, incluindo, cevada, banana, videira e macieira (13).

A resistência a fungicidas IQo em populações do fungo Mycosphaerella graminicola do trigo foi recentemente relatada por Torriani et al. (27). A mutação G143A no gene citocromo bc1 causando resistência a fungicidas IQo foi detectada em todas as populações do fungo na Europa (Reino Unido, Dinamarca, Irlanda, França e Alemanha), indicando que a mutação para resistência a fungicidas IQo ocorre de forma recorrente e independente em genótipos distintos do patógeno e em regiões geográficas diferentes.

No Brasil, em 2014, o presente grupo de pesquisa constatou uma distribuição generalizada de resistência em populações de P. oryzae a fungicida IQo azoxistrobina, em cultura de trigo e de outros hospedeiros da família Poaceae por todo o Centro - Sul do Brasil. A frequência da mutação G143A, no gene cyt bpara resistência à estrobilurinas, aumentou de 36% em 2005 para 90% em 2012. A presença da mutação G143A resultou em isolados de P. oryzae 200 vezes mais resistentes à azoxistrobina que os isolados selvagens sensíveis ao fungicida IQo. Essa descoberta indica necessidade urgente de reexaminar o uso de estrobilurinas para o manejo das doenças fúngicas do trigo no Brasil (2).

Este trabalho teve como objetivo testar a hipótese de que a resistência do fungo P. oryzae do trigo a azoxistrobina resultou em resistência cruzada a piraclostrobina, outro fungicida IQo. Para testar esta hipótese, foi comparado o nível de resistência à piraclostrobina apresentado por dois grupos de isolados do fungo P. oryzae do trigo: a) sensíveis à azoxistrobina e portadores do gene cyt b não mutante (haplotipo H9) e b) resistentes à azoxistrobina e portadores da mutação G143A no gene cyt b (haplotipo H1) (2).

MATERIAL E MÉTODOS

Origem dos isolados

Para o estudo da resistência cruzada de populações de P. oryzaedo trigo à piraclostrobina, foram utilizados 16 isolados provenientes de amostragens populacionais realizadas em lavouras de trigo em Goiás, Minas Gerais e Mato Grosso do Sul no Brasil, no ano de 2012. Os isolados de P. oryzae foram previamente genotipados para o gene cyt b (Tabela 1) (2). O experimento foi conduzido no Laboratório de Fitopatologia da UNESP (Universidade Estadual Paulista), Campus de Ilha Solteira.

Tabela 1
Origem e caracterização genética e fenotípica dos isolados de Pyricularia oryzae do trigo quanto a resistência e sensibilidade aos fungicidas inibidores da quinona oxidase (IQo).

Isolados de Pyricularia oryzae	Origema	Haplotipos cyt b-Rb	Haplotipos cyt b-Sb	Mutaçãoc
MO 12.1.237	Amambai, MS	-	H9	Gly (GGT)
MO 12.1.239	Amambai, MS	-	H9	Gly (GGT)
MO 12.1.240	Amambai, MS	-	H9	Gly (GGT)
MO 12.1.129	Amambai, MS	-	H9	Gly (GGT)
MO 12.1.130	Amambai, MS	-	H9	Gly (GGT)
MO 12.1.150	Amambai, MS	-	H9	Gly (GGT)
MO 12.1 132	Amambai, MS	-	H9	Gly (GGT)
MO 12.1.280	Amambai, MS	-	H9	Gly (GGT)
MO 12.1.146	Amambai, MS	H1	-	Ala (GCT)
MO 12.1.127	Amambai, MS	H1	-	Ala (GCT)
MO 12.1.068	Rio Verde, GO	H1	-	Ala (GCT)
MO 12.1.028	Rio Verde, GO	H1	-	Ala (GCT)
MO 12.1.030	Rio Verde, GO	H1	-	Ala (GCT)
MO 12.1.040	Patrocínio, MG	H1	-	Ala (GCT)
MO 12.1.096	Patrocínio, MG	H1	-	Ala (GCT)
MO 12.1.023	Patrocínio, MG	H1	-	Ala (GCT)

• ^a
  Origem dos isolados de P. oryzae: Mato Grosso do Sul (MS), Goiás (GO) e Minas Gerais (MG).
• ^b
  cyt b-R indicam haplotipos do gene cyt b resistentes a azoxistrobina e cyt b-S indicam haplotipos sensívseis (2).
• ^c
  Mutação que ocorre no codon 143 de glicina (G) para alanina (A) conferindo resistência a fungicidas IQo em isolados de P. oryzae.

Resistência cruzada a piraclostrobina

O nível de resistência à piraclostrobina foi determinado com base na EC₅₀, concentração eficaz para causar 50% de inibição do crescimento micelial, dos isolados de P. oryzae. Os valores de EC₅₀ foram determinados para dois grupos de isolados: a) oito isolados sensíveis à azoxistrobina - IQo-S (MO12.1.129, MO12.1.132, MO12.1.130, MO12.1.150, MO12.1.237, MO12.1.239, MO12.1.240 e MO12.1.280) e b) oito isolados resistentes - IQo-R (MO12.1.023, MO12.1.028, MO12.1.030, MO12.1.040, MO12.1.068, MO12.1.127, MO12.1.146 e MO12.1.096).

Para a produção de inóculo, os isolados foram cultivados em batata dextrose-ágar (BDA, Himedia) com adição de 50 µg/mL de cloranfenicol e 50 µg/mL de estreptomicina e incubados a 25°C com fotoperíodo de 12 horas de luz e 12 horas de escuro por sete dias. O fungicida Comet® (piraclostrobina 250 g/L, BASF) foi diluído 1:1000 em água deionizada para produzir uma solução estoque. O meio de cultura BDA foi autoclavado e resfriado a 55°C e, em seguida, acrescido de 80 µg/mL de ácido salicilhidroxâmico (SHAM), necessário para suprimir a via alternativa da oxidase seguindo os procedimentos relatados por Ma et al. (15) com modificações e da suspenção estoque do fungicida piraclostrobina para atingir as concentrações finais de 0; 0,6250; 0,0195; 0,0098; 0,0049 e 0,0025 µg/mL de ingrediente ativo.

O inóculo constituiu-se de discos de 5 mm de diâmetro de micélio cortados da borda de colônias de sete dias de idade. Os discos de inóculo, com o lado coberto pelo micélio virado para baixo, foram transferidos para as placas de meio BDA com diferentes doses de piraclostrobina. Cada unidade experimental constituiu-se de uma placa de meio de cultura contendo quatro isolados distintos de P. oryzae e o procedimento repetido quatro vezes.

Foi medido o crescimento diametral, em centímetros, das colônias desenvolvidas a 25°C por cinco dias, subtraindo-se o diâmetro do disco micelial original (5mm). O crescimento micelial de P. oryzae nas diferentes doses testadas foi convertido em crescimento relativo (RG): 100 x (diâmetro médio da colônia em meio com fungicida) / (diâmetro médio da colônia em meio sem fungicida). As concentrações do fungicida foram transformadas em logaritmo natural. Para o cálculo dos valores de EC₅₀ de cada isolado, utilizou-se o programa ED50plus v1.0 (29). O delineamento experimental foi o inteiramente casualizado, o experimento foi conduzido duas vezes e os dados foram analisados conjuntamente, uma vez que a magnitude dos erros experimentais foi semelhante confirmando a consistência das observações. A análise de variância e o teste de Scott-Knott a 5% de probabilidade para a comparação de médias de EC₅₀ de isolados foram efetuados utilizando-se o programa SISVAR (4).

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Todos os isolados de P. oryzae do trigo sensíveis à azoxistrobina (IQo-S) foram também sensíveis à piraclostrobina. Os valores de EC₅₀ de oito isolados sensíveis ao fungicida IQo azoxistrobina variaram de 0,0048 a 0,0132 µg/mL de i.a. do fungicida piraclostrobina, enquanto que os valores de EC₅₀ para os oito isolados resistentes a IQo - azoxistrobina variaram de 0,1587 a 0,5070 µg/mL de i.a. do fungicida. A maior EC₅₀ à piraclostrobina detectada para os isolados resistentes a IQo - azoxistrobina se aproximou da dose mais elevada testada, que foi de 0,6250 µg/mL (Tabela 2).

Tabela 2
Valores médios de EC₅₀ à piraclostrobina detectados para isolados sensíveis (IQo-S) e para isolados resistentes (IQo-R) ao fungicida inibidor da quinona oxidase de Pyricularia oryzae do trigo.

Isolados de Pyricularia oryzae	Haplotipos cyt B1	EC50 (µg/mL de piraclostrobina)2, 3
Isolados IQo-S
MO 12.1.237	H9	0,0068	C4
MO 12.1.239	H9	0,0059	C
MO 12.1.240	H9	0,0080	C
MO 12.1.129	H9	0,0072	C
MO 12.1.130	H9	0,0132	C
MO 12.1.150	H9	0,0085	C
MO 12.1.132	H9	0,0048	C
MO 12.1.280	H9	0,0074	C
Média de isolados sensíveis		0,0077
Desvio padrão da média		± 0,0023
Isolados IQo-R
MO 12.1.146	H1	0,2217	B
MO 12.1.030	H1	0,2168	B
MO 12.1.096	H1	0,1587	B
MO 12.1.023	H1	0,2478	B
MO 12.1.127	H1	0,2019	B
MO 12.1.028	H1	0,5065	A
MO 12.1.040	H1	0,5070	A
MO 12.1.068	H1	0,5040	A
Média de isolados resistentes		0,3205
Desvio padrão da média		± 0,1454

• ¹
  Dados obtidos a partir da análise de sequencias do gene cyt b (2).
• ²
  Média de oito repetições (combinação de dois experimentos independentes com quatro repetições cada).
• ³
  A análise de variância combinada das duas réplicas do experimento indicou _isolados = 13,94 (P ≤ 0,01).
• ⁴
  Médias seguidas de letras distintas nas colunas diferem entre si pelo teste Scott-Knott (P ≤ 0,05).

Por sua vez, não houve diferença significativa entre os isolados sensíveis (IQo-S) quanto à EC₅₀ para piraclostrobina (grupo C, pelo teste de Scott-Knott, Tabela 2). Os isolados resistentes a azoxistrobina (IQo-R) foram também resistentes à piraclostrobina (Figuras 1 e 2, Tabela 2), confirmando a hipótese inicial de resistência cruzada para os dois fungicidas. Entretanto, foi possível observar variação quantitativa da resistência a piraclostrobina. O teste Scott-Knott discriminou os isolados de P. oryzae resistentes a piraclostrobina em dois grupos fenotípicos diferentes: (A) altamente resistentes e (B) resistentes (Tabela 2). A média de valores de EC₅₀ para o grupo dos isolados sensíveis, que corresponde a oito isolados, foi de 0,0077 (± 0,0023) µg/mL de piraclostrobina. Para o grupo B de isolados resistentes (cinco isolados), a média de EC₅₀ foi de 0,2094 (± 0,0293) µg/mL de piraclostrobina. O grupo de isolados altamente resistentes (A), composto de três isolados, apresentou média de EC₅₀ de 0,5059 (± 0,0013) µg/mL de piraclostrobina.

Figura 1
Sensibilidade in vitro dos isolados de Pyricularia oryzae do trigo sensíveis (IQo-S) e resistentes (IQo-R) ao fungicida inibidor da quinona oxidase (IQo) piraclostrobina, nas concentrações 0; 0,0025; 0,0049; 0,0098; 0,0195 e 0,06250 µg/mL com 80 µg/mL de ácido salicilhidroxâmico.

Figura 2
Crescimento micelial relativo médio de oito isolados sensíveis (IQo-S) e de oito isolados resistentes (IQo-R) de Pyricularia oryzae do trigo, ao fungicida inibidor da quinona oxidase (IQo) em diferentes doses do fungicida piraclostrobina, nas concentrações de 0; 0,0025; 0,0049; 0,0098; 0,0195 e 0,6250 µg/mL com 80 µg/mL de ácido salicilhidroxâmico. Média de oito repetições (combinação de dois experimentos independentes com quatro repetições cada).

A média da EC₅₀ para a combinação de todos os oito isolados resistentes foi de 0,3205 (± 0,1454) µg/mL de piraclostrobina. Portanto, a presença da mutação G143A no gene cyt b possibilitou, em média, que os isolados de P. oryzae fossem 42 vezes mais resistentes à piraclostrobina. Para efeito de comparação com outro fungicida IQo, a EC₅₀ média para azoxistrobina detectada em isolados IQo-R de P. oryzae foi 200 vezes maior que em isolados IQo-S (2). Apesar da diferença em magnitude entre a resistência de P. oryzae à piraclostrobina e à azoxistrobina, cerca de cinco vezes menor, os níveis de resistência observados são consideravelmente altos. Esse fato pode ser o resultado de elevada pressão de seleção exercida pelos anos consecutivos de aplicações de estrobilurinas para o manejo de doenças do trigo no Brasil, que está em curso a, pelo menos, 15 anos (17, 18).

Casos de resistência cruzada entre fungicidas estrobilurinas foram verificados para vários patossistemas em que a resistência havia sido detectada. Em isolados de campo de Mycosphaerella fijiensis M. Morelet, causando a Sigatoka negra da banana, a resistência cruzada foi observada entre todos os inibidores da Q_O, incluindo trifloxistrobina, azoxistrobina, famoxadona, estrobilurinas B e myxothiazol (25). Em Microdochium nivale e M. majus, que atacam cereais, foi observada resistência cruzada positiva entre todas as estrobilurinas testadas: azoxistrobina, trifloxistrobina, crezoximetila, picoxistrobina e famoxadona (30). Em áreas de pepino no Japão, Ishii et al. (12) verificaram resistência cruzada entre azoxistrobina e crezoximetila para oídio [Podosphaera fusca (Fr.) U Braun & N Shishkoff ] e míldio [Pseudoperonospora cubensis (Berkeley & M. A. Curtis) Rostovzev].

Apesar do alto risco de resistência atribuído aos fungicidas IQo (5), argumentos, certamente questionáveis, indicavam dificuldade em prever o período de tempo para o desenvolvimento de resistência a estrobilurinas, pois este dependeria de inúmeros fatores associados à complexidade de cada patossistema em particular. Os seguintes fatores foram citados: a) a capacidade inerente das populações de fungos fitopatogênicos em desenvolver resistência (variabilidade genética); b) a biologia do patógeno (especialmente sua taxa de reprodução); c) a magnitude da pressão de seleção (diretamente relacionada ao número de aplicações de fungicidas na cultura); d) a frequência da adoção de estratégias anti-resistência a fungicidas, como o uso de misturas e alternâncias de fungicidas em relação ao uso de princípios ativos isoladamente; e) a qualidade da cobertura da cultura na aplicação do fungicida e f) a velocidade de degradação do fungicida, que é dependente das variações climáticas locais (15). Entretanto, apesar da imprevisibilidade alegada, foram inúmeros os relatos de resistência às estrobilurinas na última década (13). Em situações extremas, por exemplo, para o oídio do trigo, constatou-se desenvolvimento de resistência dentro de dois anos de uso comercial (26). No caso específico de P. oryzae do trigo, os presentes resultados indicaram que já em 2005, alguns anos após a introdução de estrobilurinas no mercado brasileiro, 36% da população do patógeno apresentava resistência a azoxistrobina, e que em 2012, sete anos após, este percentual saltou para 90% da população do patógeno amostrada (2).

Evidências indicam a necessidade urgente de reavaliar o uso de estrobilurinas para o manejo da brusone, bem como de outras principais doenças do trigo no Brasil, pois, provavelmente, a resistência aos fungicidas IQo é o principal fator atribuído à baixa eficácia desses fungicidas (14, 17, 21, 23). De forma surpreendente, não há no Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento (MAPA) registro específico de estrobilurinas para o manejo do patógeno da brusone (P. oryzae) embora haja registro para os demais patógenos foliares do trigo (19).

Sob o ponto de vista do manejo da resistência a fungicidas, Mikaberidze et al. (20) propuseram que o custo adaptativo da resistência à fungicidas para as populações de fitopatógenos é um parâmetro crucial para determinar o resultado da competição entre as estirpes sensíveis e resistentes do patógeno e para avaliar a utilidade da mistura de fungicidas. Se não houver custo adaptativo, mesmo a utilização do fungicida de alto risco em mistura pode selecionar o fitopatógeno para resistência e, eventualmente, o fungicida de alto risco se torna não funcional. Se existir um custo adaptativo para a resistência, uma proporção ideal do fungicida na mistura pode ser utilizada, onde se espera que a seleção para as linhagens resistentes desapareçam e o nível de controle da doença seja otimizado.

A ação mais adequada para o manejo dos elevados níveis de resistência a fungicidas IQo e da resistência cruzada detectada, seria a remoção da pressão de seleção sobre as populações do patógeno da brusone do trigo (7). No caso de um elevado custo adaptativo associado com a aquisição de resistência IQo, com a remoção da pressão da seleção de fungicidas IQo, previa-se que as populações de P. oryzae poderiam retornar aos seus níveis originais de sensibilidade ao fungicida (10). Entretanto, as mutações para resistência relatadas para P. oryzae que infecta outras poáceas foram consideradas estáveis e sem custo adaptativo para o patógeno, indicando um cenário irreversível (13).

AGRADECIMENTOS

Este trabalho foi financiado por auxílio à pesquisa concedido pela FAPESP (Fundação de Pesquisa São Paulo, Brasil) a P.C. Ceresini (2013/10655-4), por auxílio à pesquisa concedido pela EMBRAPA/Monsanto (Macroprograma II) a J.L.N. Maciel, por bolsas de pesquisa (Pq-2 308394/2009-7 e 307361/2012-8) e auxílios (504073/2011-7 e 454543/2013-1) concedidos pelo CNPq (Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico) a P.C. Ceresini. Apoio a S.C. de Oliveira com uma bolsa de mestrado da FAPESP (2013/03116-0) e a V.L. Castroagudin com uma bolsa de pós-doutorado do CNPq (PDJ 150490/2013-5).

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  Oct-Dec 2015

Histórico

• Recebido
  21 Jan 2015
• Aceito
  18 Jun 2015