Acessibilidade / Reportar erro

Tratamento de rizóforos-semente de inhame infectados por Scutellonema bradys e Pratylenchus coffeae com manipueira

Treatment of yam seed tubers infected by Scutellonema bradys and Pratylenchus coffeae with cassava wastewater

RESUMO

Sob condições de casa de vegetação foram avaliadas as concentrações de manipueira 25, 50 e 100% e dois períodos de imersão de 9 e 12 h, além da testemunha, no tratamento de rizóforos-semente de inhame naturalmente infectados por Scutellonema bradys e Pratylenchus coffeae. O percentual de brotação dos rizóforos observado aos três meses após o plantio foi de 100% em todos os tratamentos. Aos cinco meses, as concentrações de manipueira nos dois períodos de imersão (25% - 9 horas; 25% e 50% - 12 horas), apresentaram os melhores resultados em relação à testemunha, para as populações finais dos nematoides/g de casca de rizóforos.

Palavras-chave
Casca-preta-do-inhame; Dioscorea spp.; manejo

ABSTRACT

Under greenhouse conditions, cassava wastewater (manipueira) concentrations of 25, 50 and 100%, as well as two immersion periods (9 and 12 h), besides a control, were evaluated for the treatment of yam seed tubers naturally infected by Scutellonema bradys and Pratylenchus coffeae. Tuber sprouting percentage at three months after planting was 100% for all treatments. At five months, manipueira concentrations in both immersion periods (25% - 9 hours; 25% and 50% -12 hours) led to the best results, compared to control, for the final populations of nematodes/g tuber peel.

Keywords
Dry rot of yam; Dioscorea spp.; management

No Brasil, a casca-preta do inhame (Dioscorea spp.) causada por Scutellonema bradys (Steiner & LeHew) Andrássy, Pratylenchus coffeae (Zimmermann) Filipjev & Schuurmans Steckhoven e P. brachyurus (Godfrey) Filipjev & Schuurmans Stekhoven representa o problema fitossanitário mais importante da cultura (99 Moura, R.M. Doenças do inhame-da-Costa. In: Amorim, L.; Rezende, J.A.M.; Bergamin Filho, A.; Camargo, L.E.A. (ed.). Manual de fitopatologia: doenças das plantas cultivadas. 5.ed. Ouro Fino: Agronômica Ceres, 2016. v.2, cap.49, p.477-483.). No Ministério da Agricultura não existem nematicidas registrados para a cultura do inhame. Assim, produtos alternativos tais como a manipueira, resíduo líquido da industrialização da mandioca (Manihot esculenta Crantz), vem sendo testada no País. O objetivo deste trabalho foi avaliar o potencial de manipueira no tratamento de rizóforos-semente de inhame naturalmente infectados por nematoides causadores da casca-preta.

Para determinação da população inicial (Pi) dos nematoides, foram processadas 1g da casca de cada rizóforo-semente (44 Coolen, W.A.; D´Herde, C.J. A method for the quantitative extraction of nematodes from plant tissue. Ghent: State Agricultural Research Centre, 1972. 77p.). A seguir, realizou-se a identificação (66 Gonzaga, V.; Santos, J.M.; Mendonça, R.S.; Santos, M.A. Gênero Pratylenchus. In: Oliveira, C.M.G.; Santos, M.A.; Castro, L.H.S. (org.). Diagnose de fitonematoides. Campinas: Millennium Editora, 2016. p.71-98., 88 Mai, W.F.; Mullin, P.G. Plant-parasitic nematodes: a pictorial key to genera. 5th ed. New York: Cornell University, 1996. 277p.) e a quantificação. A manipueira foi obtida da cultivar Sergipana com teor de cianeto estimado pelo teste colorimétrico Quantofix® em 3 mg L-1. Os rizóforos foram imersos nas concentrações de 25, 50 e 100% por períodos de 9 e 12 h, além da testemunha (sem imersão) e cultivados em vasos de 8 L de capacidade contendo solo esterilizado. O delineamento foi inteiramente casualizado em esquema fatorial com cinco repetições, sendo cada uma, representada por um rizóforo. Após três meses, avaliou-se o percentual de brotação (PB), e no quinto mês, a Massa Fresca da Casca dos Rizóforos (MFCR) e Massa Fresca do Sistema Radicular (MFSR). A população final dos nematoides foi estimada em 100 cm3 de solo (77 Jenkins, W.R. A rapid centrifugal-flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Reporter, St. Paul, v.48, n.9, p.692, 1964.) e nas raízes e casca dos rizóforos (44 Coolen, W.A.; D´Herde, C.J. A method for the quantitative extraction of nematodes from plant tissue. Ghent: State Agricultural Research Centre, 1972. 77p.).

Os dados foram submetidos ao teste de Kruskal-Wallis por meio do uso da função kruskal.test ( ) do programa estatístico R, versão 3.2.4 (1111 R Development Core Team. R: A language and environment for statistical computing. Vienna R Foundation for Statistical Computing, 2016. Disponível em: <http://www.R-project.org>. Acesso em: 2 mar. 2017.
http://www.R-project.org...
). Como teste post hoc foi realizado o teste de Kruskal-Wallis para comparações múltiplas, utilizando a função kruskal ( ), do pacote agricolae para o R, a α = 0,05 de significância e ajustamento para testes múltiplos dos p-valores por meio do método de Bonferroni (11 Bonferroni, C.E. Teoria statistica delle classi e calcolo delle probabilità. 8.ed. Firenze: Pubblicazioni del R Istituto Superiore di Scienze Economiche e Commerciali di Firenze, 1936.). Foram considerados estatisticamente significativos valores de p < 0,05.

A avaliação da Pi mostrou a ocorrência simultânea de S. bradys e P. coffeae (44 a 384 indivíduos/g da casca de rizóforos). A análise estatística não foi significativa (p≤0,05), demonstrando a uniformidade das populações dos nematoides nos rizóforos. O PB dos rizóforos foi de 100%. Os tratamentos com os tempos de imersão de 9 h, nas concentrações de manipueira de 25 e 50% proporcionaram os maiores valores de MFSR, comparado à concentração de 100% (Figura 1A). Para a MFCR não ocorreu diferença significativa entre os tratamentos. Dados representativos foram observados nas menores concentrações de manipueira nos dois períodos de imersão (25% - 9 h; 25% e 50% - 12 h), para as populações finais dos nematoides/g de casca de rizóforos, comparado à testemunha (Figura 1B). Segundo Coyne & Affokpon (55 Coyne, D.; Affokpon, A. Nematodes parasites of tropical root and tuber crops (excluding potatoes). In: Sikora, R.A.; Coyne, D.; Hallmann, J.; Timper, P. (ed.). Plant parasitic nematodes in subtropical and tropical agriculture. 3.ed. Boston, MA: CABI, 2018, cap.8, p.252-289.) o nível populacional de S. bradys de 20 espécimes/g de casca de rizóforos é suficiente para provocar prejuízos. Não foram verificadas diferenças significativas para número de nematoides/g de raiz e solo.

Figura 1
Massa fresca do sistema radicular (A) e número de nematoides/g de casca de rizóforo (B) após o tratamento do material de propagação com diferentes concentrações de manipueira e tempos de imersão. Tratamentos: A = testemunha, B = 25% + 9 horas, C = 25% + 12 horas, D = 50% + 9 horas, E = 50% + 12 horas, F = 100% + 9 horas, G = 100% + 12 horas. Médias seguidas de mesma letra não diferem entre si pelo teste de Kruskal-Wallis (α = 0,05 de significância).

A eficácia da manipueira no controle de espécies de Meloidogyne por meio da aplicação de cianeto nas concentrações de 25 a 40 mg L-1 via solo tem sido relatada (33 Carvalho, P.H. Controle biológico e alternativo de Meloidogyne incognita e M. javanica em tomateiro. 2017. 98f. Dissertação (Mestrado em Fitopatologia) - Instituto de Ciências Biológicas, Universidade de Brasília, Brasília, DF., 1010 Nasu, E.G.C.; Formentini, H.M.; Furlanetto, C. Effect of manipueira on tomato plants infected by the nematode Meloidogyne incognita. Crop Protection, Guildford, v.78, p.193-197, 2015.). No presente trabalho o teor de cianeto foi de 3 mg L-1, mas informações sobre a dose letal a fitonematoides é carente na literatura científica. Os resultados obtidos neste estudo concordam parcialmente com o trabalho de Carmo (22 Carmo, D.O. Gama de plantas hospedeiras e controle do nematoide do inhame, Scutellonema bradys, com manipueira. 2009. 53f. Dissertação (Mestrado em Fitotecnia) - Centro de Ciências Agrárias, Ambientais e Biológicas, Universidade Federal do Recôncavo da Bahia, Cruz das Almas.), que verificou uma redução de S. bradys em raízes de plantas de inhame, após a imersão por 6 a 15 h de rizóforos-semente infectados em manipueira a 100%. A aplicação de manipueira via tratamento do material de propagação poderá evitar a introdução e a disseminação dos nematoides causadores da casca-preta.

AGRADECIMENTOS

O presente trabalho foi realizado com apoio da CAPES - Código de Financiamento 001. Ao CNPq, pelo apoio financeiro (Processo 446760/2014-5).

REFERÊNCIAS

  • 1
    Bonferroni, C.E. Teoria statistica delle classi e calcolo delle probabilità 8.ed. Firenze: Pubblicazioni del R Istituto Superiore di Scienze Economiche e Commerciali di Firenze, 1936.
  • 2
    Carmo, D.O. Gama de plantas hospedeiras e controle do nematoide do inhame, Scutellonema bradys, com manipueira 2009. 53f. Dissertação (Mestrado em Fitotecnia) - Centro de Ciências Agrárias, Ambientais e Biológicas, Universidade Federal do Recôncavo da Bahia, Cruz das Almas.
  • 3
    Carvalho, P.H. Controle biológico e alternativo de Meloidogyne incognita e M. javanica em tomateiro 2017. 98f. Dissertação (Mestrado em Fitopatologia) - Instituto de Ciências Biológicas, Universidade de Brasília, Brasília, DF.
  • 4
    Coolen, W.A.; D´Herde, C.J. A method for the quantitative extraction of nematodes from plant tissue Ghent: State Agricultural Research Centre, 1972. 77p.
  • 5
    Coyne, D.; Affokpon, A. Nematodes parasites of tropical root and tuber crops (excluding potatoes). In: Sikora, R.A.; Coyne, D.; Hallmann, J.; Timper, P. (ed.). Plant parasitic nematodes in subtropical and tropical agriculture 3.ed. Boston, MA: CABI, 2018, cap.8, p.252-289.
  • 6
    Gonzaga, V.; Santos, J.M.; Mendonça, R.S.; Santos, M.A. Gênero Pratylenchus In: Oliveira, C.M.G.; Santos, M.A.; Castro, L.H.S. (org.). Diagnose de fitonematoides Campinas: Millennium Editora, 2016. p.71-98.
  • 7
    Jenkins, W.R. A rapid centrifugal-flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Reporter, St. Paul, v.48, n.9, p.692, 1964.
  • 8
    Mai, W.F.; Mullin, P.G. Plant-parasitic nematodes: a pictorial key to genera. 5th ed. New York: Cornell University, 1996. 277p.
  • 9
    Moura, R.M. Doenças do inhame-da-Costa. In: Amorim, L.; Rezende, J.A.M.; Bergamin Filho, A.; Camargo, L.E.A. (ed.). Manual de fitopatologia: doenças das plantas cultivadas. 5.ed. Ouro Fino: Agronômica Ceres, 2016. v.2, cap.49, p.477-483.
  • 10
    Nasu, E.G.C.; Formentini, H.M.; Furlanetto, C. Effect of manipueira on tomato plants infected by the nematode Meloidogyne incognita Crop Protection, Guildford, v.78, p.193-197, 2015.
  • 11
    R Development Core Team. R: A language and environment for statistical computing. Vienna R Foundation for Statistical Computing, 2016. Disponível em: <http://www.R-project.org>. Acesso em: 2 mar. 2017.
    » http://www.R-project.org

Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    08 Maio 2020
  • Data do Fascículo
    Jan-Apr 2020

Histórico

  • Recebido
    07 Mar 2017
  • Aceito
    28 Nov 2019
Grupo Paulista de Fitopatologia FCA/UNESP - Depto. De Produção Vegetal, Caixa Postal 237, 18603-970 - Botucatu, SP Brasil, Tel.: (55 14) 3811 7262, Fax: (55 14) 3811 7206 - Botucatu - SP - Brazil
E-mail: summa.phyto@gmail.com