Caracterização e hidrólise in vitro da globulina principal de grão-de-bico (Cicer arietinum L.), var. IAC-Marrocos

Characterization and in vitro tryptic hydrolysis of the major globulin from chickpea (Cicer arietinum L.)

Caracterização e hidrólise in vitro da globulina principal de grão–de–bico (Cicer arietinum L.), var. IAC–Marrocos

Characterization and in vitro tryptic hydrolysis of the major globulin from chickpea (Cicer arietinum L.)

Valdir A. NevesI, ^*; Maraiza A. da Silva^I; Euclides J. Lourenço^II

^IDepartamento de Alimentos e Nutrição. Faculdade de Ciências Farmacêuticas — Universidade Paulista "Julio de Mesquita Filho"–UNESP. Rodovia Araraquara–Jaú Km 1. CEP 14801–902 — Araraquara — S.P. Email: [e-mail]

^IIFaculdade de Ciências, Fundação Educacional de Barretos, Barretos, São Paulo — Brasil

RESUMO

No presente estudo procedeu–se ao isolamento e caracterização da fração globulina majoritária (11 S) de grão–de–bico, var. IAC–Marrocos. A globulina majoritária extraída foi isolada por cromatografia de filtração em gel e de troca–iônica mostrando apenas uma banda de proteína na eletroforese em gel de poliacrilamida. A globulina majoritária, após passagem em coluna de Sephadex, revelou duas bandas protéicas de 55 e 52,5kDa e três bandas menores em gel de poliacrilamida dodecilsulfato de sódio. Na presença de 2–mercaptoetanol 6 polipeptídios na faixa de 18 a 42kDa foram revelados na eletroforese. A globulina isolada foi submetida à ação da tripsina e quimotripsina onde a forma nativa mostrou–se resistente à ação enzimática enquanto o aquecimento (96 e 121°C/15min) não foi suficiente para aumentar a susceptibilidade à hidrólise, significativamente. Adição de NaCl 0,3M levou a um aumento da estabilidade estrutural com menor susceptibilidade à digestão proteolítica, fato em parte perdido com o aquecimento. As hidrólises foram acompanhadas por eletroforese em gel de poliacrilamida dodecilsulfato de sódio.

Palavras–chave: grão–de–bico; Cicer arietinum L.; globulina majoritária; caracterização; hidrólise in vitro.

SUMMARY

The isolation and characterization of the major globulin fraction (11 S) from Chickpea, vc IAC–Marrocos, were evaluated. The major globulin was extracted, isolated by gel filtration and ion–exchange chromatography showing only one protein band on PAGE. The globulin, after Sephadex elution, revealed two protein bands of 55 and 52.5kDa and three minor bands on SDS–PAGE. In the presence of 2–mercaptoethanol six polypeptides were revealed on SDS–PAGE in the range of 18 to 42kDa. The isolated native globulin shown to be resistant to trypsin and chymotrypsin however heating at 96 and 121ºC/15min was not sufficient to increase the hydrolysis significantly. The proteolytic susceptibility of the enzymes was reduced by 0.3M NaCl addition at the assay. The salt concentration was sufficient to stabilize the native protein structure that was lost after heating as demonstrated on SDS–PAGE.

Keywords: chickpea; Cicer arietinum L.; major globulin; characterization; in vitro hydrolysis.

1 — INTRODUÇÃO

As sementes de leguminosas caracterizam–se por apresentarem alto teor protéico, 12 a 35%, com algumas variedades de soja alcançando 40 e até 50% de proteína na semente [9, 13, 26]. Globulinas e albuminas correspondem a 80% da proteína total sendo que as diferentes proporções dessas entre espécies e variedades de leguminosas, de certa forma, explicam as distintas propriedades funcionais e também refletindo na qualidade nutricional.

O predomínio da fração globulina tem despertado crescente interesse pelo isolamento e caracterização dessa fração em diferentes gêneros e espécies, destacando–se Vicia faba [40], Pisum sativum [19], Glycine max [21] e Phaseolus [8, 38], entre outros [13]. Características distintas de solubilidade em sal, coeficiente de sedimentação em ultracentrífuga e peso molecular tem revelado a presença de duas frações globulínicas majoritárias, onde na grande maioria dos gêneros parece predominar a fração 11S (tipo legumina), enquanto no Phaseolus a 7S (tipo vicilina) é a fração principal [13].

A baixa digestibilidade da proteína de leguminosas parece resultar de diversas causas, porém, sem uma única explicação definitiva, e tem sido associada a interações proteína–tanino da semente [28], complexos proteína–fitato [10], proteína–fibra [26], inibição de enzimas digestivas [15], constrangimentos estruturais [14, 32] e estrutura compacta de sua fração majoritária [1, 29], as globulinas; presença de açúcares ligados à estrutura das globulinas e albuminas e possíveis impedimentos estéricos à ação das enzimas [30], além de interações proteína–proteína e proteína–carboidratos no tratamento térmico e interações proteína–outros constituintes no aquecimento. A digestibilidade in vitro da proteína total de grão–de–bico, em diferentes genótipos, mostra uma variação entre 60,4 e 74,4% [2, 11], e aumento variável de 68,6 a 77,5% foi observado em diferentes cultivares após descorticação e/ou cozimento [4, 7, 20]. Essa digestibilidade protéica tem sido melhorada em função de tratamentos, tais como: germinação, fermentação, aquecimento, descorticação, entre outros [9, 27]. A germinação e fermentação de grão–de–bico provocaram aumento da digestibilidade in vitro em grau superior ao observado pós autoclavagem [10]. Por outro lado, o grão–de–bico apresenta baixos níveis de compostos polifenólicos [9, 36], enquanto os inibidores de proteases são facilmente destruídos pelos procedimentos normais de cozimento [9], e em alguns casos, tem se verificado correlação negativa entre atividade de inibidor de tripsina e a digestibilidade in vitro, pós–aquecimento [34]. Enquanto a estrutura compacta da fração globulina majoritária de certas espécies, tais como o feijão (7S) e soja (11S), têm sido associada a sua menor susceptibilidade à proteólise in vitro, com reflexos na digestibilidade, não há registros na literatura sobre o papel das diferentes frações globulínicas do grão–de–bico na reduzida digestibilidade de sua proteína [9, 11, 36]. Nesse sentido, estudos de isolamento, caracterização e hidrólise proteolítica destas frações em diferentes espécies se faz necessário para fundamentação dos estudos básicos e aplicados sobre proteínas de sementes. O intuito de contribuir para reduzir esta lacuna é um dos objetivos das propostas desse trabalho, quer seja: isolar, purificar a fração globulina principal do grão–de–bico e determinar o efeito da ação de enzimas proteolíticas na estabilidade de sua estrutura através da proteólise in vitro.

2 — MATERIAL E MÉTODOS

2.1 — Material

Globulina principal do grão–de–bico (Cicer arietinum L.), cultivar IAC–Marrocos, isolada e purificada em coluna de Sepharose CL–6B, conforme procedimento descrito por KUMAR & VENKATARAMAN [23] e SILVA, NEVES & LOURENÇO [35].

2.2 — Métodos

2.2.1 — Cromatografia de filtração em gel

Alíquotas da fração globulina principal foram dissolvidas em tampão fosfato de potássio 10mM, pH 7.5, contendo NaCl 0,5M e aplicadas em coluna de Sepharose CL–6B (2,5x100cm) previamente equilibrada com o mesmo sistema solvente. As proteínas foram eluídas com o mesmo tampão, coletadas frações de 5mL cada e feita leitura a 280nm para traçar o perfil.

2.2.2 — Determinação de proteínas

Proteínas foram determinadas pelo método de LOWRY et al. [25] e por medida de absorvância a 280nm na eluição cromatográfica e por determinação de nitrogênio [3].

2.2.3 — Estudo de solubilidade

Os ensaios de solubilidade da globulina purificada e liofilizada foram feitos em função de pH, concentração de NaCl, pH e NaCl, tanto na forma nativa quanto após aquecimento a 121ºC/15min.

2.2.4 — Eletroforese em gel de poliacrilamida/ poliacrilamida–dodecilsulfato de sódio

A eletroforese das proteínas nativas e purificadas em condições não–dissociantes foi realizada de acordo com o método descrito por DAVIS [12]. A determinação de número e pesos moleculares das subunidades protéicas foram determinados pelo procedimento descrito por LAEMMLI [24].

2.2.5 — Determinação de carboidratos

Os carboidratos das frações protéicas, após precipitação das proteínas com ácido tricloroacético 10%, foram determinados pelo método fenol–ácido sulfúrico de DUBOIS et al. [16], usando glicose como padrão.

2.2.6 — Hidrólise enzimática in vitro

A globulina principal isolada, seguido de separação cromatográfica em gel de Sepharose CL–6B, foi submetida à hidrólise enzimática in vitro com as enzimas tripsina e quimotripsina, separadamente. As soluções de proteínas foram preparadas em tampão fosfato de potássio 20mM, pH 7,8, em concentrações de 1–3mg/mL. Alíquotas foram tomadas, contendo 0,5–1,0mg de proteína, e adicionado volumes de solução de enzima e estabelecida uma proporção enzima:substrato de 1:10. Para cada ensaio foram preparadas, em triplicata, soluções de enzima–substrato, substrato sem enzima e solução de enzima (controle), em tampão fosfato de potássio 20mM pH 7,8, seguido de incubação em banho–maria a 37^oC em tubos individuais selados com parafilme. Esse procedimento foi seguido para diferentes tempos de incubação (15s a 2h), e a cada tempo os tubos selados eram retirados do banho, diluídos dez vezes seu volume com tampão, seguido de armazenamento em banho–de–gelo e imediata determinação da extensão de hidrólise. Para efeito de comparação solução de caseína, nas mesmas condições citadas para as amostras, foram utilizadas como padrão de referência no cálculo da extensão de hidrólise. A hidrólise (grau/extensão) foi acompanhada pelo doseamento do a–amino nitrogênio com ácido trinitrobenzenosulfonico (TNBS) de acordo com o método de FIELDS [17], conforme modificação realizada por SPADARO et al. [37]. As absorvâncias registradas (420nm) com as amostras de enzima e substrato no tempo zero de incubação (início) foram subtraídas dos valores obtidos para as amostras nos diferentes tempos de incubação. Para o cálculo da percentagem de hidrólise foi utilizado o coeficiente de absortividade molar de 16500 para os e–trinitrofenil–derivados, e 113g/Mol como peso molecular médio dos resíduos de aminoácidos nas proteínas. Os cálculos foram expressos para o tempo de 120 minutos de hidrólise.

2.2.7 — Efeito da temperatura e NaCl na hidrólise enzimática da globulina principal

A globulina isolada–liofilizada foi dissolvida em tampão fosfato de potássio 20mM, pH 7,8 (4,0mg/mL), e tampão fosfato de potássio 10mM, pH 7,8, contendo 0,3M de NaCl (4,0mg/mL), e feita incubação à temperatura de 4^oC por 15min. Após incubação, a concentração de proteína foi ajustada para a hidrólise com a tripsina e quimotripsina (pH 7,8) conforme descrito acima na ausência de NaCl. Para determinação do efeito de temperatura, soluções de proteína foram preparadas, conforme descrito, aquecidas as temperaturas de 96 e 121,1^oC/15min, separadamente, seguido de resfriamento, ajuste de concentração de proteína para as hidrólises com as enzimas. Para todos ensaios de hidrólise foi utilizada a relação enzima:substrato de 1:10.

3 — RESULTADOS E DISCUSSÃO

O teor de proteína no grão–de–bico varia entre 12,6 e 30,5% [9]. A cultivar IAC–Marrocos apresentou teor protéico de 23,99%, lipídIos 8,6%, fibra bruta 1,05% e cinzas 2,73% situando–se próximo aos valores registrados para variedades cultivadas em diferentes localidades [5, 9, 20]. A globulina principal representou 20,93% da proteína total da farinha correspondendo a 50% da globulina total. Quando submetida à eletroforese em gel de poliacrilamida apenas uma banda protéica foi revelada [35]. A eluição da globulina em coluna (1,7x100cm) contendo Sephadex G–200 permitiu estimar um peso molecular de 325kDa e teor de carboidratos de 0,90% [35]. O peso molecular da fração legumina em diferentes leguminosas situa–se neste intervalo: 350kDa para Vicia faba, 360kDa para Pisum sativum, 340kDa para Phaseolus vulgaris, 330kDa para Phaseolus aureus [13] e 375kDa para Lens culinaris [28, 29].

3.1 — Caracterização das subunidades

A eletroforese em gel de poliacrilamida contendo dodecilsulfato de sódio (SDS) na ausência de agente redutor mostra a presença de cinco subunidades principais (Figura 1), cujos pesos moleculares situam–se entre 55kDa e 35,3kDa. Baseado na intensidade de coloração, as bandas com pesos moleculares de 55 e 52,5kDa parecem ser as principais, seguidas daquelas de média intensidade, com 40,2, 38,5 e 35,3kDa. Essas subunidades quando submetidas ao tratamento com 2–mercaptoetanol tiveram sua ligação dissulfeto reduzida dando origem a quatro bandas protéicas de pesos moleculares na faixa entre 41,2 e 18kDa. As bandas correspondentes aos peptídios de pesos moleculares 41,2, 37,5 e 19,2kDa, apresentaram maior intensidade de coloração e foram seguidas daquelas de 35,3, 20 e 18kDa. Como se observa na Figura 1 as subunidades de pesos moleculares de 55 e 52,5kDa, encontradas somente na ausência do redutor, são constituídas de dois ou mais peptídios unidos por meio de ligações de dissulfeto.

KUMAR & VENKATARAMAN [23] constataram em gel de poliacrilamida contendo dodecilsulfato de sódio a presença de cinco bandas para a globulina principal, 10,3S do grão–de–bico, com pesos moleculares entre 23 a 98kDa. Segundo os autores as subunidades com pesos moleculares de 52 e 98kDa podem aparecer como artefatos produzidos pela formação de ligações de dissulfeto entre grupos sulfidrilas pareados, resultante da exposição ao agente dissociante. Os autores verificaram que a globulina 10,3S apresenta no mínimo três ligações de dissulfeto, o que explica parcialmente a estrutura não compacta dessa proteína.

VAIRINHOS & MURRAY [39], no estudo de Cicer arietinum, C. reticulatum e C. echinospermun, verificaram que a globulina da espécie C. arietinum é constituída de seis polipeptídios, os quais são unidos por ligações de dissulfeto compostos por subunidades de 41, 39, 36, 31, 22, 21 e 14kDa.

3.2 — Solubilidade da globulina principal

A Figura 2 mostra o perfil de solubilidade da globulina principal após cromatografia em Sepharose CL–6B. A solubilização iniciou–se entre 0,05 e 0,1M de NaCl e alcançou 80% de solubilidade a partir de 0,8M. Observa–se, na Figura 3, uma curva típica de solubilidade de globulinas com valores máximos a pHs 2,0 e acima de 8,0. A adição de sais neutros em quantidades crescentes tende a modificar a interação eletrostática das moléculas em solução e a diferentes valores de pHs. Adição de NaCl 0,2M levou a um aumento de solubilidade na faixa dos pHs 4,5 a 6,0. Na concentração de 0,5 e 1,0M praticamente não foi afetada a solubilidade da proteína acima do pH 4,5, entretanto, reduziu–se nos pHs inferiores a 4. NEVES [28] verificou que a fração G1 de Lens esculenta apresenta–se insolúvel na faixa de pH 4,0 a 5,5, alcançando o máximo no pH 10. Adição de sal a 0,5 e 1,0M acentuou a redução de solubilidade nos pHs inferiores a pH 4,0.

3.3 — Hidrólise enzimática in vitro: efeito de aquecimento e NaCl

Na relação enzima:substrato de 1:10, a globulina nativa apresentou grau de hidrólise inferior à caseína e o aquecimento a 96^oC e 121,1^oC/15min. não foram suficientes para hidrólise total, por ambas enzimas (Tabela 1). É importante ressaltar que as proteínas encontram–se em tampão fosfato de potássio 20mM, pH 7,8 e na ausência de sal. A redução na hidrólise da globulina principal pela presença de NaCl 0,3M foi substancial, alcançando 48,7% e 52,8% da caseína (100%) para tripsina e quimotripsina, respectivamente. O aquecimento na presença do sal reduziu sua susceptibilidade à ação enzimática, embora em menor grau (Tabela 1).

O progresso da hidrólise tríptica com o tempo pode ser observado em eletroforese em gel de poliacrilamida–dodecilsulfato de sódio nas Figuras 4 e 5. Na presença de 2–mercaptoetanol observa–se maior resistência dos polipeptídeos na faixa de 21,5 a 35kDa, especialmente na faixa inferior, até 60 minutos de hidrólise.

Na ausência de redutor, confirma–se o aumento de intensidade de uma banda correspondente a um novo polipeptídio (32kDa), concomitante à rápida redução daquele de 55kDa, indicando a possibilidade de resultar de um produto modificado de sua hidrólise ou mesmo da redução do componente mais resistente de 52,5kDa. No entanto, parece provável que o polipeptídio de 55kDa produza, por redução, cadeias próximas a 30kDa, seguido de degradação rápida a componentes menores entre 20 e 30kDa bem como entre 12 e 20kDa.

A Figura 5 mostra o efeito de NaCl 0,3M na hidrólise pela tripsina, confirmando o observado pela reação com o ácido trinitrobenzenosulfonico (TNBS). As figuras demonstram que a globulina apresentou–se resistente mesmo após 24 horas de hidrólise, e que na presença de sal ainda permaneciam subunidades na faixa de 30kDa.

A globulina foi progressivamente hidrolisada, na ausência de NaCl, após 3 horas e até 24 horas de exposição à quimotripsina (Figura 6), no entanto o mesmo não ocorreu na presença do sal (Figura 7). Essas observações confirmam o mesmo efeito observado com a tripsina, no entanto possíveis reações de agregação entre produtos da hidrólise parecem ter ocorrido neste caso, observando–se o surgimento de frações com maior peso molecular, após uma hora de hidrólise, um fato não observado na ausência de sal.

Inúmeros estudos evidenciam o efeito da força iônica no processo de associação–dissociação das frações legumina (11S) e vicilina (7S) em leguminosas, e embora grande parte dos trabalhos tenham se concentrado na fração 7S de feijão, ervilha e soja, apontam dependência das características estruturais de cada proteína [6, 14, 15, 22, 30, 31]. Esse efeito de redução na susceptibilidade proteolítica da globulina de grão–de–bico em função de aumento da força iônica é resultado de provável estabilidade conformacional das cadeias, conferida pelo sal, conforme já observado para globulinas 7S [14, 30, 33] e 11S [18, 30, 32] de outras espécies.

KELLA, BARBEAU & KINSELLA [21] observaram diferentes susceptibilidades trípticas para a glicinina e seus polipeptídios ácidos e básicos, sendo os primeiros mais susceptíveis à enzima. Os autores verificaram que o rompimento de pontes dissulfeto facilitava a proteólise da glicinina e polipeptídios ácidos, reduzindo a dos básicos, o que sugere possíveis reações de agregação entre os últimos como responsáveis pela menor susceptibilidade as proteases. Esse comportamento mostra–se como uma característica das frações 11S, pois a resistência à tripsinólise da legumina–T de ervilha é explicada por PLUMB et al. [32] pela influência de interações hidrofóbicas favorecidas pelo aumento da concentração salina. Dessa forma, a homologia estrutural entre globulinas 11S de diferentes espécies parece influenciar o seu comportamento frente às proteases, pois os estudos indicam que a tripsina age sobre a região C–terminal da molécula com características ácidas e na sua superfície, contrário à região N–terminal sem a presença de grupos ácidos e situadas no seu interior [21,32].

4 — CONCLUSÕES

A globulina majoritária de grão–de–bico de peso molecular de 325kDa revelou ao menos 5 subunidades na faixa de 55 a 35kDa. A proteína isolada e purificada apresentou características de solubilidade típicas de proteína com estrutura compacta. Os resultados da hidrólise in vitro indicam que a globulina principal de grão–de–bico na forma nativa mostrou–se resistente à tripsina e quimotripsina, nas condições testadas, e os efeitos do aquecimento não foram suficientes para aumentar a hidrólise da proteína comparado ao obtido com a caseína. A presença de NaCl 0,3M alterou a estabilidade conformacional da proteína, acarretando em redução da susceptibilidade proteolítica da sua forma nativa, em maior, e das aquecidas, em menor grau.

5 — REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

6 — AGRADECIMENTOS

À FAPESP (Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de S. Paulo, processo 94/1100–6) e PADC–FCF–UNESP (Programa de Apoio ao Desenvolvimento Científico da Faculdade de Ciências Farmacêuticas da Universidade Estadual Paulista–UNESP).

Recebido para publicação em 05/05/2003

Aceito para publicação em 01/12/2003 (001122)

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A quem a correspondência deve ser enviada.

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  22 Jun 2004
• Data do Fascículo
  Mar 2004

Histórico

• Aceito
  01 Dez 2003
• Recebido
  05 Maio 2003