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Obtenção de cristais de licopeno a partir de descarte de tomate

Production of lycopene crystals from tomato waste

Resumos

As pesquisas com licopeno têm sido intensificadas uma vez que o consumo de alimentos ricos neste caroteno, como tomate e seus produtos, tem sido associado com o menor risco de desenvolvimento de câncer de próstata. Os objetivos deste trabalho foram (1) desenvolver e otimizar um método para extração de licopeno a partir de descarte de tomate, (2) utilizar este método na obtenção de licopeno a partir de diferentes coletas de tomate, (3) obter cristais de licopeno puro e (4) acompanhar o processo de purificação de licopeno por cromatografia líquida de alta eficiência em coluna C30. O método desenvolvido e otimizado através de planejamento experimental fatorial para a obtenção de licopeno consistiu de uma etapa preliminar para retirada de água do tomate, com 4 extrações de 30 minutos, cada uma com 30mL de etanol, seguido por 4 extrações de 120 minutos com acetato de etila e relação massa/volume de 1:0,7. O teor de carotenóides médio (calculado como licopeno) obtido de 6 lotes de tomate foi de 59,2 ± 21,8µg/g. Através de duas cristalizações sucessivas obteve-se licopeno com 98% de pureza. A análise por CLAE mostrou a presença de traços dos isômeros 5-cis, 5-cis, 5'-cis- e 13-cis-licopeno no cristal de licopeno.

licopeno; descarte de tomate; extração; cristalização; microscopia; cromatografia líquida de alta eficiência


Over the past few years, research regarding lycopene has intensified since the consumption of lycopene rich foods such as tomato and tomato products has been associated with reduced risks of developing prostrate cancer. Thus the objectives of this research were (1) develop and optimise methodology for the extraction of lycopene from tomato waste, (2) use the methodology to obtain lycopene from different tomato batches, (3) produce high purity lycopene crystals and (4) follow the purification process of lycopene using high performance liquid chromatography on a C30 column. The method developed to obtain lycopene from tomato residue, and optimised using a factorial experimental design, consisted of a preliminary water removal step with four 30-minute extractions, each with 30mL ethanol, followed by four 120-minute extractions with ethyl acetate, each extraction with a mass/volume ratio of 1:0.7. The mean carotenoid content (calculated as lycopene), obtained from 6 tomato pickings, was 59.2 ± 21.8µg/g. Lycopene with 98% purity was obtained from two successive crystallisation processes. HPLC analysis showed the presence of traces of the 5-cis-, 5-cis,5'-cis- and 13-cis-lycopene isomers in the lycopene crystal.

lycopene; tomato waste; extraction; microscopy; high performance liquid chromatography


Obtenção de cristais de licopeno a partir de descarte de tomate

Production of lycopene crystals from tomato waste

Itaciara L. Nunes; Adriana Z. Mercadante* * A quem a correspondência deve ser enviada. Parte da tese de Doutorado da 1ª autora, junto ao curso de Pós-graduação em Ciência de Alimentos da FEA/UNICAMP.

Departamento de Ciência de Alimentos – Faculdade de Engenharia de Alimentos, UNICAMP. Cx. Postal 6121, CEP: 13083-970, Campinas-SP. E-mail: azm@fea.unicamp.br

RESUMO

As pesquisas com licopeno têm sido intensificadas uma vez que o consumo de alimentos ricos neste caroteno, como tomate e seus produtos, tem sido associado com o menor risco de desenvolvimento de câncer de próstata. Os objetivos deste trabalho foram (1) desenvolver e otimizar um método para extração de licopeno a partir de descarte de tomate, (2) utilizar este método na obtenção de licopeno a partir de diferentes coletas de tomate, (3) obter cristais de licopeno puro e (4) acompanhar o processo de purificação de licopeno por cromatografia líquida de alta eficiência em coluna C30. O método desenvolvido e otimizado através de planejamento experimental fatorial para a obtenção de licopeno consistiu de uma etapa preliminar para retirada de água do tomate, com 4 extrações de 30 minutos, cada uma com 30mL de etanol, seguido por 4 extrações de 120 minutos com acetato de etila e relação massa/volume de 1:0,7. O teor de carotenóides médio (calculado como licopeno) obtido de 6 lotes de tomate foi de 59,2 ± 21,8µg/g. Através de duas cristalizações sucessivas obteve-se licopeno com 98% de pureza. A análise por CLAE mostrou a presença de traços dos isômeros 5-cis, 5-cis, 5'-cis- e 13-cis-licopeno no cristal de licopeno.

Palavras-chave: licopeno; descarte de tomate; extração; cristalização; microscopia; cromatografia líquida de alta eficiência.

SUMMARY

Over the past few years, research regarding lycopene has intensified since the consumption of lycopene rich foods such as tomato and tomato products has been associated with reduced risks of developing prostrate cancer. Thus the objectives of this research were (1) develop and optimise methodology for the extraction of lycopene from tomato waste, (2) use the methodology to obtain lycopene from different tomato batches, (3) produce high purity lycopene crystals and (4) follow the purification process of lycopene using high performance liquid chromatography on a C30 column. The method developed to obtain lycopene from tomato residue, and optimised using a factorial experimental design, consisted of a preliminary water removal step with four 30-minute extractions, each with 30mL ethanol, followed by four 120-minute extractions with ethyl acetate, each extraction with a mass/volume ratio of 1:0.7. The mean carotenoid content (calculated as lycopene), obtained from 6 tomato pickings, was 59.2 ± 21.8µg/g. Lycopene with 98% purity was obtained from two successive crystallisation processes. HPLC analysis showed the presence of traces of the 5-cis-, 5-cis,5'-cis- and 13-cis-lycopene isomers in the lycopene crystal.

Keywords: lycopene; tomato waste; extraction; microscopy; high performance liquid chromatography.

1 – INTRODUÇÃO

Os carotenóides são pigmentos naturais, com coloração variando do amarelo ao vermelho, que têm sido largamente utilizados como corantes em alimentos, bebidas, cosméticos e rações animais. Além disso, estes pigmentos possuem comprovada atividade de vitamina A e existem evidências de outras propriedades biológicas, terapêuticas e preventivas de vários tipos de distúrbios e enfermidades em humanos [20, 33]. Nos últimos anos, o interesse por licopeno tem aumentado, uma vez que o consumo de alimentos ricos neste caroteno, como tomate e seus produtos, bem como altas concentrações de licopeno no sangue foram associadas ao menor risco de desenvolvimento de câncer de próstata [12, 14, 15, 24].

As principais fontes industriais de carotenóides são a síntese química e a extração a partir de plantas, como urucum (Bixa orellana), e da microalga Dunaliella salina. Várias empresas comercializam alguns padrões de carotenóides para fins analíticos. Entretanto, estes padrões possuem um alto custo e vida-útil reduzida, uma vez que após abertura da embalagem ocorre formação de isômeros e produtos de oxidação devido ao longo sistema de ligações duplas conjugadas presente nos carotenóides [6].

Os trabalhos encontrados na literatura, em sua maioria, enfocam a extração e análise quantitativa de carotenóides, geralmente realizada em equipamentos de pequeno porte, como liqüidificador, homogeneizador e agitador para ruptura mecânica, utilizando pequena quantidade de amostra e acetona como solvente para extração de licopeno [17, 18, 28, 29].

CEREZAL & PIÑERA [8] relataram diferentes métodos de obtenção de carotenóides a partir de resíduos de frutas cítricas, utilizando solventes orgânicos (acetona ou hexano) ou d-limoneno, seguida ou não de saponificação, neutralização com fosfato ácido de potássio e precipitação com iso-propanol ou cromatografia de coluna aberta de permeação em gel. Dependendo do resíduo utilizado, o rendimento variou de 23 a 100%.

Extração seletiva em duas etapas, a 50ºC em "shaker", de carotenóides e compostos de pungência (capsaicinóides) a partir de pimenta seca moída foi avaliada por SANTAMARÍA et al. [26]. Na primeira etapa, com 30% de etanol aquoso, foram extraídos 62% de capsaicinóides e houve pequena remoção de carotenóides (1,4%). Na extração subseqüente com etanol comercial foram recuperados 26% de capsaicinóides e 70% de carotenóides. Quando foi realizado um pré-tratamento com enzimas celulolíticas e pectinolíticas houve um aumento para 83% na recuperação de carotenóides.

Extração de licopeno com óleo de girassol a partir de resíduos do processamento de pasta e de suco de tomate previamente submetidos a tratamento térmico (100-125ºC) e saponificação com hidróxido de potássio etanólico, foi descrita em uma patente russa [13].

Diante dos fatos expostos acima e considerando que o descarte de vegetais e frutas na CEASA – Campinas (Centrais de Abastecimento de Campinas S/A) atinge em média 7,8 mil toneladas/ano, este trabalho teve como objetivos (1) desenvolver e otimizar um método simples para extração de licopeno a partir de descarte de tomate, (2) utilizar este método na obtenção de licopeno a partir de diferentes coletas de tomate, (3) obter cristais de licopeno com alto grau de pureza através de procedimento de baixo custo e (4) acompanhar o processo de purificação de licopeno por cromatografia líquida de alta eficiência (CLAE) em coluna C30.

2 – MATERIAL E MÉTODOS

2.1 – Amostras

As amostras de descarte de tomate (@5 Kg) foram coletadas na CEASA-Campinas, Brasil, após uma pré-separação manual de jornais, caixas, outros materiais recicláveis e orgânicos, durante o período de junho de 2002 a março de 2003, totalizando 6 lotes.

2.2 – Medidas físico-químicas

Após a esterilização dos tomates (121ºC/15min) a amostra foi homogeneizada, colocada em cubeta (2cm) e realizada avaliação de cor em colorímetro Hunter (modelo ColorQuest II) com calibração RSIN (Reflectância Especular Incluída), iluminante D65 e ângulo de observação de 10º, utilizando-se a escala CIELAB. Foram realizadas seis leituras de cor de cada amostra e calculada a média e o desvio padrão dos parâmetros luminosidade (L*), índice de saturação vermelho (a*) e índice de saturação amarelo (b*). Os valores de Chroma e hue foram calculados segundo ARIAS et al. [2].

As medidas de pH foram realizadas em pHmêtro Tecnal (modelo Tec-2); os valores de ºBrix foram obtidos em refratômetro Atago (modelo 8572) e corrigidos utilizando-se a tabela de correção de temperatura para 20°C. Todas as análises foram realizadas em triplicata, de acordo com a AOAC [1].

2.3 – Obtenção do extrato rico em licopeno

2.3.1 – Retirada de água

Testes preliminares mostraram a necessidade de um pré-tratamento para retirada da água presente no tomate antes da extração dos carotenóides. Através de um planejamento fatorial completo 24, com pontos centrais, testou-se tipo de solvente (metanol e etanol), volume de solvente (30 e 60mL), bem como tempo (30 e 60min) e número de extrações (2 e 4) para que o extrato final ficasse livre de água. Esta etapa foi realizada em mesa agitadora (Tecnal, TE-140) à temperatura ambiente, utilizando 30g de amostra. O álcool contendo água foi descartado.

A retirada de água foi seguida de extração com acetato de etila e concentração em evaporador rotatório (T < 35ºC), verificando-se a presença ou não de água residual no extrato. A resposta, percentual de água no extrato, foi determinada por diferença de peso, antes e após secagem do extrato (110ºC em estufa até peso constante).

Todos os experimentos foram conduzidos em duplicata.

2.3.2 – Extração de licopeno

Após testes preliminares, verificou-se que os solventes com maior potencial de extração de licopeno foram diclorometano, acetona e acetato de etila. Porém, para verificar as variáveis significativas na extração de licopeno foram utilizados como solventes o acetato de etila e etanol comercial, tendo em vista que o diclorometano é um solvente clorado, e, assim como a acetona, controlado pela Polícia Federal no Brasil. Na época do desenvolvimento deste trabalho, o acetato de etila não era controlado. A escolha do etanol se deve ao seu baixo custo no Brasil.

Foram realizados dois planejamentos fatoriais fracionários 24-1, um utilizando acetato de etila como solvente de extração e outro etanol, para verificar os efeitos de alguns fatores na concentração do extrato rico em licopeno (Tabela 1). Todos os experimentos foram conduzidos em duplicata em mesa agitadora (150rpm) à temperatura ambiente.

Para otimização das condições de extração foi, posteriormente, realizado um planejamento 22 completo com pontos centrais e axiais somente com os fatores significativos.

A quantificação dos extratos foi realizada em espectrofotômetro Beckman (modelo DU-70) através da leitura no comprimento de onda de máximo de absorção em éter de petróleo e a concentração de licopeno foi calculada utilizando absortividade de 3450 [9].

2.4 – Purificação do extrato rico em licopeno

Devido ao alto custo das fases estacionárias para cromatografia, escolheu-se a cristalização como método para purificação de licopeno.

O extrato foi dissolvido em diclorometano/etanol (1:4) a temperatura de 50-60ºC, colocado em banho de gelo para abaixamento gradual da temperatura e em seguida levado ao freezer por uma noite para a formação dos cristais. Os cristais foram filtrados em papel Whatman Chr 3mm, lavados com etanol gelado, e secos em estufa a vácuo à temperatura ambiente. O procedimento de cristalização foi novamente realizado para obtenção de cristais com maior teor de pureza.

2.5 – Análise de carotenóides por CLAE

Foi utilizado um cromatógrafo líquido de alta eficiência com sistema quaternário de bombeamento de solventes (Waters, modelo controller 600), detector de arranjo de diodos (Waters, modelo 996), injetor "Rheodyne" com alça de amostra de 20µL, forno externo com controle de temperatura, desgaseificador "on line" e sistema de aquisição e processamento de dados Millenium (Waters, versão 3.05.01). Os espectros foram adquiridos entre 250 e 600nm e os cromatogramas processados no comprimento de onda máximo (lmax) de cada carotenóide.

Os carotenóides foram separados em coluna C30 polimérica da marca YMC (3µm, 250 x 4,6mm) com MeOH (0,1% trietilamina (TEA))/éter t-metil butílico (TBME) (50:50) em modo isocrático a 1mL/min como fase móvel e temperatura da coluna mantida a 33ºC.

Todos os solventes utilizados foram grau cromatográfico e previamente filtrados em sistema Millipore de filtração a vácuo, com membrana para solvente orgânico de 0,45µm. Todas as amostras foram filtradas em membrana de polietileno com 0,22µm de poro.

A caracterização dos carotenóides foi baseada nos seguintes parâmetros: (1) ordem de eluição na coluna C30, (2) comparação das características dos espectros no UV-visível (lmax, grau de estrutura fina (%III/II) e intensidade do pico cis (%AB/AII)) com dados da literatura [7, 19, 23] e (3) comparação com padrões de all-trans-g-caroteno, all-trans-b-caroteno, 5-cis-, 9-cis-, 13-cis- e all-trans-licopeno cedidos pela Roche Vitamins (Suíça).

2.6 – Análises microscópicas

2.6.1 – Microscopia óptica

Amostras de cristais de licopeno natural e licopeno sintético (Roche Vitamins) foram montadas individualmente sobre lâminas, em óleo de silicone, óleo de imersão ou a seco e cobertas com lamínula e observadas ao microscópio óptico (Carlzeiss, modelo Jenaval), sob luz normal ou polarizada.

As imagens geradas no microscópio óptico foram capturadas por câmera utilizando-se o Software Global Lab Image 3.0.

2.6.2 – Microscopia eletrônica de varredura

As amostras mencionadas acima foram aspergidas sobre fita metálica adesiva de dupla face, colocadas sobre suportes metálicos e recobertas com ouro (240s/40mA) em metalizador a vácuo (Balzers). As micrografias foram obtidas no microscópio Jeol, modelo T-300, sob aceleração de 15KV através de captura de imagem.

2.7 – Análise estatística

Os planejamentos experimentais foram analisados pelo programa Statistica 5.0 [31].

3 – RESULTADOS E DISCUSSÃO

3.1 – Condições otimizadas para obtenção do extrato rico em licopeno

Os resultados do planejamento experimental fatorial, apresentados na Tabela 2, mostraram uma eficiência de 1 a 75% na retirada de água do tomate.

Dos fatores avaliados, o volume de solvente e tempo de extração não tiveram efeito significativo na resposta (Tabela 3), e conseqüentemente foram fixados nos seus níveis inferiores. Por outro lado, o efeito do tipo de solvente e número de extrações foi significativo, sendo o etanol e 4 extrações as melhores condições para retirada de água, como pode ser verificado nos ensaios 6, 8 e 14 (Tabela 2).

Portanto, nos níveis estudados, as melhores condições de retirada de água do tomate foram obtidas quando foram realizadas 4 extrações de 30 minutos cada, utilizando 30mL de etanol por extração.

HAKALA & HEINONEN [17] adicionaram Na2SO4 como dessecante junto com os solventes testados, éter de petróleo e acetona, para extrair licopeno de purê de tomate. Entretanto, os autores não mencionaram a quantidade de dessecante acrescentada.

Quanto à extração de licopeno, através dos resultados obtidos a partir dos planejamentos experimentais fracionários 24-1 (Tabela 4), foi possível verificar que a concentração de licopeno variou de 30,4 a 114,4µg/g, quando acetato de etila foi utilizado como solvente e de 2,6 a 14,6µg/g com etanol, mostrando que a extração com acetato de etila foi significativamente mais eficiente.

Quando etanol foi utilizado para a extração, todos os fatores no nível superior acarretaram aumento significativo na concentração de licopeno (Tabela 5), como mostram os ensaios 2, 6 e 8 da Tabela 4.

Para a extração com acetato de etila, o tempo e o número de extrações foram também significativos (Tabela 5) levando a um aumento na concentração de licopeno quando em seu nível superior (ensaios 2 e 8 da Tabela 4). A relação massa/volume não apresentou efeito significativo.

O uso de esterilização também teve um efeito significativo implicando em maior extração de licopeno, tanto com acetato de etila como com etanol (Tabela 5). Este fato já era esperado uma vez que o processamento térmico pode ocasionar a ruptura da parede celular e conseqüente redução das forças de interação entre o licopeno e a matriz tecidual, tornando o pigmento mais acessível à extração [30].

A extração foi otimizada através de um novo planejamento fatorial completo 22 aumentando o número de extrações e o tempo de cada extração (Tabela 6), sendo fixados os fatores não significativos em seus níveis inferiores (relação massa/volume de 1:0,7 e uso de esterilização) e acetato de etila como solvente de extração.

Na curva de nível, apresentada na Figura 1, pode-se verificar três pontos na região ótima de extração de licopeno. Estes pontos ótimos apresentam diferentes condições: 4 extrações de 120 minutos, 7 extrações de 120 minutos e 6 extrações de 180 minutos, obtendo-se cerca de 100µg de licopeno/g de tomate esterilizado. Conseqüentemente, foi escolhido, como a melhor condição, o uso de 4 extrações de 120 minutos, tendo em vista o menor tempo total de análise e o menor gasto de solvente.


Não foi possível comparar a eficiência do método desenvolvido no presente estudo com a literatura, pois nenhum dos métodos disponíveis para obtenção de licopeno foi desenvolvido através de planejamentos fatoriais. Cabe esclarecer que o objetivo deste trabalho foi obter maior quantidade de licopeno com o menor gasto de solvente. Deste modo, em nenhum momento foi feita extração exaustiva de carotenóides, e a maior parte das xantofilas foi descartada com o etanol na etapa de retirada de água.

3.2 – Cristais de licopeno

As Figuras 2 e 3 apresentam, respectivamente, os cromatogramas do extrato rico em licopeno e dos cristais obtidos após a 1ª e 2ª cristalização. A Tabela 7 mostra a identidade dos picos presentes nestas figuras.



Os isômeros 15-cis- (pico 14), 13-cis- (pico 16), 9-cis- (pico 17) e 5-cis-licopeno (pico 20) foram identificados por comparação da ordem de eluição em coluna C30 com a literatura [10, 21, 25], e dos lmax e forma do espectro com dados previamente relatados [19, 23, 27]. A identidade destes isômeros foi confirmada com padrões.

Comparando as informações do espectro de absorção com a literatura [27] e considerando que a intensidade do pico cis é menor para os isômeros em posição próxima dos grupos terminais, o pico 18 foi tentativamente identificado como 5-cis,5'-cis-licopeno. À medida que a intensidade do pico cis vai aumentando (Tabela 7), a isomeria está provavelmente localizada mais ao centro da cadeia poliênica, como nos isômeros 9-cis- (pico 17), 13-cis- (pico 16) e 15-cis-licopeno (pico 14).

O all-trans-b-caroteno (pico 11) e all-trans-g-caroteno (pico 15) apresentaram características espectrais similares às relatadas na literatura [7, 23] e às dos padrões autênticos, inclusive o mesmo tempo de retenção. As propriedades dos espectros do all-trans-d-caroteno (pico 12) e do all-trans-fitoflueno (pico 7) foram similares às encontradas por BRITTON [7]. Como esperado para carotenóides com 5 ligações duplas conjugadas, o cis-fitoflueno (pico 6) apresentou lmax igual ao isômero trans e menor grau de estrutura fina.

Utilizando coluna C30, de 4 a 10 isômeros cis de licopeno foram separados em vários trabalhos [4, 5, 11], entretanto, com exceção do all-trans-licopeno [4, 5, 11] e do prolicopeno [11], os demais isômeros não foram identificados nestes estudos.

No extrato rico em licopeno obtido no presente estudo, o all-trans-licopeno perfez 71% da área dos carotenóides. Após a 1ª cristalização, a porcentagem de pureza ficou em torno de 96% e com a 2ª cristalização atingiu 98% de pureza, semelhante à pureza do padrão de licopeno sintético (Roche Vitamins) que foi de 99%.

HAKALA & HEINONEN [17], utilizando Sep-pak de sílica e CLAE com coluna C18 como método de purificação de licopeno, atingiram 97% de pureza somente após a terceira cromatografia semi-preparativa.

Como alternativa à extração com solventes e purificação, GÓMEZ-PRIETO et al. [16] utilizaram CO2 com fluxo de 4mL/min a 40ºC sem modificador, obtendo um extrato com 88% de all-trans-licopeno e 12% de cis-licopeno a partir de tomate liofilizado.

Tanto os cristais de licopeno natural obtidos neste trabalho, como os sintéticos, apresentaram formas cristalinas irregulares, predominando as formas prismáticas alongadas. Os cristais sintéticos atingiram cerca de 3,25µm (Figuras 4b e 4d) e os naturais chegaram a medir 1,75µm (Figura 4c), mas nestes predominaram cristais com tamanho abaixo de 1µm (Figura 4a).



3.3 – Teores de licopeno em descarte de tomate

Nas amostras de descarte de tomate cru os valores médios de pH variaram de 4,41 a 4,61 e entre 4,32 e 4,50 para as amostras esterilizadas. Os valores de ºBrix ficaram entre 3,8 e 4,0 para ambas as amostras. Estes valores se encontram dentro da faixa de pH (4,4 a 4,6) e ºBrix (3,8 a 4,6) reportada para tomate cru [32].

Através dos valores apresentados na Tabela 8 pode-se verificar uma variação de 28,4 a 93,5µg/g na concentração de carotenóides totais (calculado como licopeno) entre os 6 lotes de amostras coletados no período de 10 meses. O teor muito menor de licopeno da amostra coletada em março pode estar relacionado à alta precipitação pluviométrica ocorrida nos 3 meses anteriores (CEPAGRI, comunicação pessoal). Embora seja comprovado que a concentração de carotenóides varia em função da variedade/cultivar, época do ano e localização geográfica [3, 18, 22], não é possível fazer esta relação no presente estudo uma vez que foi utilizado descarte de tomate onde não há qualquer controle destas variáveis.

O teor médio de carotenóides, obtido no presente estudo, 59,2 ± 21,8µg/g, foi maior do que o encontrado em tomate (41,4 ± 20,1µg/g) cultivar Santa Cruz comercializado em Campinas, Brasil [32]. YANG et al. [34] encontraram teor de 26,1µg/g em tomate vermelho. A concentração de licopeno em tomate analisado na Finlândia variou de 38 a 66µg/g no período de verão, enquanto no período de outubro a março (outono) os teores encontrados foram de 26 a 31µg/g [18]. Cabe lembrar que nestes três trabalhos a extração foi quantitativa, enquanto que em nosso estudo a extração não foi exaustiva.

Os valores de parâmetros de cor dos tomates esterilizados estão apresentados na Tabela 8. No presente estudo, o parâmetro a* foi o que apresentou as mais altas correlações com a concentração de licopeno (0,84), quando utilizada regressão linear e 0,86, quando utilizada regressão exponencial. A correlação entre teor de licopeno e os valores dos demais parâmetros foi menor que 0,80, tanto para regressão linear como exponencial.

Em estudos com tomate in natura, foi obtida uma alta correlação (0,92) entre os valores de cor razão a/b e conteúdo de licopeno em tomate [34]. Correlações semelhantes foram encontradas para L* (0,93), a* (0,96), a*/b* (0,96) e conteúdo de licopeno (medido por CLAE), utilizando regressão exponencial, em tomate hidropônico [2].

4 – CONCLUSÕES

No presente estudo, um método simples foi desenvolvido e otimizado através de planejamento experimental fatorial para extração de licopeno a partir de tomate, consistindo de uma etapa prévia para retirada de água com 4 extrações de 30 minutos cada com 30mL de etanol, seguido por 4 extrações com acetato de etila de 120 minutos cada e relação massa/volume de 1:0,7. O teor médio de carotenóides (calculado como licopeno) obtido foi de 59,2 ± 21,8µg/g de descarte tomate. Dos parâmetros de cor, o índice de saturação vermelho (a*) foi o que mostrou melhor correlação com a concentração de licopeno.

Utilizando etapa de baixo custo, foi obtido padrão de licopeno com pureza de 98% através de cristalização e os cristais formados apresentaram formas irregulares alongadas e prismáticas. A análise por CLAE mostrou a presença de traços dos isômeros 5-cis-, 5-cis,5'-cis- e 13-cis-licopeno no cristal.

5 – REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

6 – AGRADECIMENTOS

Os autores agradecem à FAPESP pela bolsa da primeira autora e auxílio financeiro, e à Roche Vitamins (Basel, Suiça) pela doação dos padrões.

Recebido para publicação em 06/08/2003. Aceito para publicação em 21/06/2004 (001185).

  • [1] ASSOCIATION OF OFFICIAL ANALYTICAL CHEMISTS (AOAC). Official methods of analysis. 15 ed. Whashington, 1990. p 915-988.
  • [2] ARIAS, R.; LEE, T. C.; LOGENDRA, L.; JANES, H. Correlation of lycopene measured by HPLC with the L*, a*, b* color readings of a hydroponic tomato and the relationship or maturity with color and lycopene content. J. Agric. Food Chem., v. 48, n. 5, p. 1697-1702. 2000.
  • [3] ASSUNÇÃO, R. B.; MERCADANTE A. Z. Carotenoids and ascorbic acid from cashew apple (Anacardium occidentale L.): variety and geographic effects. Food Chem., v. 81, n. 4, p. 495-502. 2003.
  • [4] BÖHM, V. Use of column temperature to optimize carotenoid isomer separation by C30 high performance liquid chromatography. J. Sep. Sci., v. 24, n. 12, p. 955-959. 2001.
  • [5] BÖHM, V; PUSPITASARI-NIENABER, N. L.; FERRUZZI, M. G.; SCHWARTZ, S. J. Trolox equivalent antioxidant capacity of different geometrical isomers of a-carotene, b-carotene, lycopene, and zeaxanthin. J. Agric. Food Chem., v. 50, n. 1, p. 221-226. 2002.
  • [6] BRITTON, G.; LIAAEN-JENSEN, S.; PFANDER, H. Carotenoids today and challenges for the future. In.: BRITTON G., LIAAEN-JENSEN S., PFANDER H. (Ed) Carotenoids: Isolation and Analysis. Basel: Birkhäuser, 1995. V. 1A. Cap. 2, p. 13-26.
  • [7] BRITTON, G. UV/visible Spectroscopy. In.: BRITTON G., LIAAEN-JENSEN S., PFANDER H. (Ed) Carotenoids: Spectroscopy Basel: Birkhäuser, 1995. V. 1B, Cap. 2, p. 13-62.
  • [8] CEREZAL, P.; PIÑERA, R. M. Carotenoides en las frutas citricas. Generalidades, obtención a partir de desechos del processamento e aplicaciones. Alimentaria, v. 33, n. 277, p. 19-32. 1996.
  • [9] DAVIES, B. H. Carotenoids. In: Goodwin T. W. (Ed.) Chemistry and Biochemistry of Plant Pigments. London: Academic Press, 1976. V. 2. Cap. 19. p. 38-165.
  • [10] EMENHISER, C.; SANDER, L. C.; SCHWARTZ, S. J. Capability of a polymeric C30 stationary phase to resolve cis-trans carotenoids isomers in reverse-phase liquid chromatography. J. Chromatogr. A, v. 707, n. 2, p. 205-216. 1995.
  • [11] FERRUZZI, M. G.; NGUYEN, M. L.; SANDER, L. C.; ROCK, C. L.; SCHWARTZ, S. J. Analysis of lycopene geometrical isomers in biological microsamples by liquid chromatography with coulometric array detection. J. Chromatogr. B, v. 760, n. 2, p. 289-299. 2001.
  • [12] GANN, P. H.; GIOVANNUCCI, E.; WILLET, W.; SACKS, F. M.; HENNEKENS, C. H.; STAMPFER, M. J. Lower prostate cancer risk in men with elevated plasma lycopene levels: results of a prospective analysis. Cancer Res., v. 59, n. 6, p. 1225-1230. 1999.
  • [13] GAZIEV, A. I. Method of lycopene preparation. Russ Pat. RU 2172608 C1. 2000.
  • [14] GIOVANNUCCI, E.; ASCHERIO, A.; RIMM, E. B.; STAMPFER, M. J.; COLDITZ, G. A.; WILLET, W. C. Intake of carotenoids and retinal in relation to prostate cancer risk. J. Natl. Cancer Inst., v. 87, n. 23, p. 1767-1776. 1995.
  • [15] GIOVANNUCCI, E. Tomatoes, tomato-based products, lycopene, and cancer: review of the epidemiologic literature. J. Natl. Cancer Inst., v. 91, n. 4, p. 317-331. 1999.
  • [16] GÓMEZ-PRIETO, M. S.; CAJA, M. M.; HERRAIZ, M. E.; SANTA-MARIA, G. Supercritical fluid extration of all-trans-lycopene from tomato. J. Agric. Food Chem., v. 51, n. 1, p. 3-7. 2003.
  • [17] HAKALA, S. H.; HEINONEN, I. M. Chromatographic purification of natural lycopene. J. Agric. Food Chem., v. 42, n. 6, p. 1314-1316. 1994.
  • [18] HEINONEN, M. I.; OLLILAINEN, V.; LINKOLA, E. K.; VARO, P. T.; KOIVISTOINEN, P. E. Carotenoids in Finnish foods: vegetables, fruits, and berries. J. Agric. Food Chem., v. 37, n. 3, p. 655-659. 1989.
  • [19] HENGARTNER, U.; BERNHARD, K.; MEYER, K.; ENGLERT, G.; GLINZ, E. Synthesis, isolation, and NMR-Spectroscopic characterization of fourteen (Z)-isomers of lycopene and of some acetylenic didehydro- and tetradehydrolycopenes. Helv. Chim. Acta, v.75, n. 6, p. 1849-1865. 1992.
  • [20] KRINSKY, N. I. The biological properties of carotenoids. Pure Appl. Chem., v. 66, n. 5, p. 1003 -1010. 1994.
  • [21] LEE, M.T.; CHEN, B.H. Separation of lycopene and its cis isomers by liquid chromatography. Chromatographia, v. 54, n. 9/10, p. 613-617. 2001.
  • [22] MERCADANTE, A. Z.; RODRIGUEZ-AMAYA, D. B. Carotenoid composition of a leafy vegetable in relation to some agricultural variables. J. Agric. Food Chem., v. 39, n. 6, p. 1094-1097. 1991.
  • [23] MERCADANTE, A. Z.; STECK. A.; PFANDER, H. Carotenoids from guava (Psidium guajava L.): isolation and structure elucidation. J. Agric. Food Chem., v. 47, n. 1, p. 145-151. 1999.
  • [24] MILLER, E. C.; HADLEY, C. W.; SCHWARTZ, S. J.; ERDMAN, J. W.; BOILEAU, T. W. M.; CLINTON, S. K. Lycopene, tomato products, and prostate cancer prevention. Have we established causality? Pure Appl. Chem., v. 74, n. 8, p. 1435 -1441. 2002.
  • [25] RE, R.; FRASER, P. D.; LONG, M.; BRAMLEY, P. M.; RICE-EVANS, C. Isomarization of lycopene in the gastric milieu. Biochem. Biophys. Res. Commun., v. 281, n. 2, p. 576-581. 2001.
  • [26] SANTAMARIA, R. I.; REYES-DUARTE, M. D.; BÁRZANA, E.; FERNANDO, D.; GAMA, F. M.; MOTA, M.; LÓPEZ-MUNGUÍA, A. Selective enzyme-mediated extraction of capsaicinoids and carotenoids from chili guajillo puya (Capsicum annum L.) using ethanol as solvent. J. Agric. Food Chem., v. 48, n. 7, p. 3063-3067. 2000.
  • [27] SCHIERLE, J.; BRETZEL, W.; BUHLER, I.; FACCIN, N.; HESS, H.; STEINER, K.; SCHUEP, W. Content and isomeric ratio of lycopene in food and human blood plasma. Food Chem., v. 59, n. 3, p. 459-465. 1997.
  • [28] SHARMA, S. K.; MAGUER, M. L. Kinetics of lycopene degradation in tomato pulp solids under different processing and storage conditions. Food Res. Int., v. 29, n. 3/4, p. 309-315. 1996.
  • [29] SHI, J.; MAGUER, M. L.; KAKUDA, Y.; LIPTAY, A.; NIEKAMP, F. Lycopene degradation and isomerization in tomato dehydration. Food Res. Int., v. 32, n. 1, p. 15-21. 1999.
  • [30] SHI, J.; MAGUER, M. L. Lycopene in tomatoes: chemical and physical properties affected by food processing. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., v. 40, n. 1, p. 1-42. 2000.
  • [31] Statsoft Inc. STATISTICA for Windows [Computer program manual]. Statsoft, Inc.: Tulsa, USA. 1995.
  • [32] TAVARES, C. A.; RODRIGUEZ-AMAYA, D. B. Carotenoid composition of Brazilian tomatoes and tomato products. Lebensm-Wiss u-Technol., v. 27, n. 3, p. 219-224. 1994.
  • [33] VAN DEN BERG, H.; FAULKS, R.; GRANADO, H. F.; HIRSCHBERG, J.; OLMEDILLA, B.; SANDMANN, G.; SOUTHON, S.; STAHL, W. The potential for the improvement of carotenoid levels in foods and the likely systemic effects. J. Sci. Food Agric., v. 80, n.7, p. 880-912. 2000.
  • [34] YANG, C. C.; BRENNAN, P.; CHINNAN, M. S.; SHEWFELT, R. L. Characterization of tomato ripening process as influenced by individual seal-packaging and temperature. J. Food Quality, v.10, n. 1, p. 21-23. 1987.
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    A quem a correspondência deve ser enviada.
    Parte da tese de Doutorado da 1ª autora, junto ao curso de Pós-graduação em Ciência de Alimentos da FEA/UNICAMP.
  • Datas de Publicação

    • Publicação nesta coleção
      30 Nov 2005
    • Data do Fascículo
      Set 2004

    Histórico

    • Aceito
      21 Jun 2004
    • Recebido
      06 Ago 2003
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