INTRODUÇÃO

O leite é um alimento essencial para a população, estando a sua qualidade relacionada aos cuidados higiênico-sanitários durante a produção, quando pode ser contaminado por micro-organismos indesejáveis, como Yersinia enterocolitica, que é uma bactéria patogênica transmitida ao homem por meio do consumo de alimentos contaminados (^{Franco e Landgraf, 2003})

Apesar de a legislação brasileira não exigir a pesquisa de Y. enterocolitica em água e alimentos, diferentes autores têm relatado a ocorrência dessa bactéria em leite e derivados (^{Yucel e Ulusoy, 2006}; ^{Hanifian e Kani, 2012}; ^{Najdenski et al., 2012}), sendo frequentemente a colonização bacteriana do trato intestinal dos bovinos a origem da contaminação (^{Ruegg, 2003}). A água também é uma importante fonte de contaminação e disseminação dessa bactéria. Cepas de Y. enterocolitica com potencial patogênico já foram isoladas de água sem tratamento (^{Iwata et al., 2005}) e também de água potável (^{Pandove et al., 2012}), ratificando a sua importância como fonte de transmissão da bactéria.

A doença causada por Y. enterocolitica, caracterizada por gastroenterite, é considerada a terceira zoonose mais notificada na Europa (^{European..., 2012}). É estimado que 116.716 pessoas sejam infectadas anualmente por Y. enterocolitica nos EUA (^{Scallan et al., 2011}), demonstrando ser essa bactéria uma importante causa de doenças transmitidas por alimentos (DTA). Em países em desenvolvimento, é rara a existência de vigilância epidemiológica de casos de yersiniose, já que muitas vezes o diagnóstico não revela o causador da gastroenterite.

Surtos relacionados à ingestão de leite e derivados inadequadamente pasteurizados demonstram o perigo potencial que o leite pode representar como fonte de contaminação de Y. enterocolitica para os humanos (^{Longenberger et al., 2014}). Essa bactéria tem capacidade de sobreviver a baixas temperaturas (^{Hanna et al., 1977}), tornando o risco ainda maior, já que a refrigeração é muito utilizada como método de conservação de produtos lácteos e é considerada muitas vezes segura. Fatores relacionados à higiene dos equipamentos de ordenha, do ambiente e dos manipuladores podem levar à contaminação do leite, elevando o risco de ocorrência de DTA. Consequentemente, a manutenção da segurança dos alimentos deve ser garantida durante todo o processo de produção, em que a obtenção do leite deve ser um ponto gerador de contaminação a ser considerado (^{Ruegg, 2003}).

Considerando a hipótese de que a água utilizada para limpeza de equipamentos, as mãos dos ordenhadores, o balde utilizado para recolhimento do leite ordenhado e os insufladores das teteiras possam ser fontes de contaminação de Y. enterocolitica para o leite, o presente trabalho teve como objetivo determinar as possíveis fontes de contaminação de Y. enterocolitica durante a obtenção do leite em propriedades rurais.

MATERIAL E METODOS

Foram realizadas coletas em oito propriedades, localizadas na região de Pelotas, Rio Grande do Sul, com sistema de ordenha sem canalização e com tanques resfriadores próprios. Foram obtidas amostras de três pontos do fluxograma de ordenha, balde, insuflador de teteira e mão de ordenhador, bem como da água utilizada durante o processo e de leite de conjunto obtido logo após o término da ordenha.

Durante um ano, foram feitas quatro coletas de três em três meses (setembro e dezembro de 2013 e março e junho de 2014) em cada propriedade, gerando um total de 160 amostras analisadas.

As amostras de água foram coletadas com cuidados de assepsia, impedindo o contato do frasco coletor estéril com a torneira, diretamente destas, localizadas no interior do estabelecimento, após escoamento durante três minutos, em volume de aproximadamente 400mL (, 2001).

As amostras representativas das mãos dos manipuladores, dos equipamentos e dos utensílios foram coletadas com o auxílio de zaragatoas estéreis. As amostras de superfície dos baldes foram coletadas mediante a fricção da zaragatoa em uma área de 100cm² delimitada por meio de gabarito de aço inoxidável (^{Apha, 2001}). Os insufladores foram coletados antes do início da ordenha, friccionando-se as zaragatoas em movimentos circulares na porção final de cada um (^{McDonald et al., 1993}). No caso das amostras de mão dos ordenhadores, a zaragatoa foi friccionada em movimentos giratórios da parte inferior da palma direita, até a extremidade dos dedos, repetindo-se esse procedimento três vezes na direção de cada dedo ; já nas bordas, foi passada a zaragatoa em movimentos de vaivém, avançando em um dos lados da mão onde a linha do punho se inicia, passando entre os dedos e, ao final, do outro lado da mão até o punho (^{Apha, 2001}). Após a obtenção das amostras, as zaragatoas foram mergulhadas em quatro mililitros de água peptonada a 0,1%. As amostras de leite cru, em volume de 200mL, foram coletadas com o auxílio de uma concha estéril diretamente do balde que recebe o leite ordenhado e acondicionadas em frasco estéril (^{Brito et al., 1998}).

Logo após as coletas, as amostras foram transportadas ao laboratório em caixa isotérmica contendo gelo reciclável.

Para a obtenção dos isolados, o material das zaragatoas foi semeado diretamente por esgotamento em ágar MacConkey (Kasvi, Itália) e incubado a 30ºC por 24h.

As amostras de água foram processadas segundo as recomendações da U.S. Food and Drug Administration - FDA (^{Weagant e Feng, 2007}) para obtenção de colônias isoladas, conforme descrito a seguir. As amostras foram filtradas em membrana de éster de celulose de 47mm de diâmetro e poros 0,45µ (^{Compendium..., 2001}), as quais foram depositadas em frascos tipo Erlenmeyer contendo 100mL de caldo tripticase de soja (TSB,Acumedia, EUA) e incubadas a 30°C durante 24h. Após o enriquecimento, foi feita semeadura em ágar MacConkey e incubação a 30°C durante 24h.

Quanto às amostras leite, 25mL foram adicionados a 225mL de água peptonada tamponada (APT, Isofar, Brasil) para pré-enriquecimento por 30 dias a 4ºC. Após, 1mL do pré-enriquecimento foi adicionado em 100mL de caldo peptona sacarose Tris azida de sódio ampicilina (PSTA), composto por 1g de peptona A (Acumedia), 1g de sacarose (Synth, Brasil), 3g de Tris hidroximetil aminometano (Ludwig Biotec, Brasil), 0,0125g de verde brilhante (Synth), 0,192g de azida de sódio (Synth) e água destilada qsp 1L, suplementado com ampicilina (Sigma Aldrich, EUA) na concentração de 5mg/L e incubado a 28°C durante 48h (^{Vidon e Delmas, 1981}). Após o enriquecimento, foi feita semeadura em ágar MacConkey e incubação a 30°C durante 24h.

Três colônias lactose negativas de cada amostra obtidas por meio da semeadura em MacConkey foram semeadas em infusão de cérebro e coração (BHI, Acumedia) e, após incubação a 30ºC por 24h, foram misturadas com 20% de glicerol, para manutenção de estoque a -70ºC.

O DNA dos isolados suspeitos de Y. enterocolitica foi extraído conforme ^{Sambrook e Russel (2001}). Resumidamente, o pellet obtido por centrifugação de 1mL de cultura em caldo BHI foi ressuspendido em 100µL de tampão STES [Tris-HCl 0,2M, NaCl 0,5M, SDS 0,1% (m/v), EDTA 0,01M, pH 7,6]. Foram adicionados 50µL de pérolas de vidro e 100µL de fenol/clorofórmio. Após homogeneização por 1min, a mistura foi centrifugada a 13.000g por 5min. O sobrenadante foi coletado e precipitado em dois volumes de etanol absoluto e 0,1 volume de NaCl 5M a -70ºC por 30min. Uma nova centrifugação foi realizada a 13.000g por 20min, o sobrenadante foi descartado e o pellet lavado com etanol a 70%. Após eluição em 40µL de tampão de eluição (Tris-HCl 10mM, EDTA 1mM, pH 7,4), foi adicionado 1µL de RNAse (10µg/µL). O DNA extraído foi estocado a -70ºC.

Foi realizada a técnica de reação em cadeia da polimerase para identificação de Y. enterocolitica, conforme ^{Neubauer et al. (2000}), usando-se os primers Y1 (AATACCGCATAACGTCTTC) e Y2 (CTTCTTCTGCGAGTAACGTC). Cada 25µL da mistura de reação continha os primers específicos para o gene rRNA 16S na concentração de 10ng; 2,5µL mix dNTP 10x; 0,5U de Taq DNA polimerase; 5x de tampão; 0,5µL de DNA. A amplificação foi realizada em termociclador TC-3000 (Techne, Staffordshire, UK) a 94°C durante 10min, seguida por 30 ciclos de 94°C durante 1min, 68°C por 25s e 72°C por 30s. Uma extensão final foi realizada a 72°C durante 10min. Os produtos de PCR, corados com GelRed(tm) (Uniscience, São Paulo, Brasil), foram visualizados em gel de agarose 1,5% (Panreac Química SA, Barcelona, Espanha), utilizando-se L-PIX 112 EX (Loccus biotecnologia, Cotia, São Paulo, Brasil). Como controle positivo, foi utilizada Y. enterocolitica ATCC 9610.

Os isolados de Y. enterocolitica foram agrupados por meio da técnica de reação em cadeia da polimerase com elemento repetitivo palindrômico (rep-PCR), fazendo uso do primer (GTG)₅ (^{Versalovic et al., 1991}). As condições da rep-PCR foram as seguintes: 2,5µL de DNA, 2μL do oligonucleotídeo 5´-GTGGTGGTGGTGGTG-3´, 12,5μL de Master Mix (Qiagen, Alemanha) e 8µL de água para completar o volume da reação. Para a amplificação, foram realizados 1 ciclo de 94°C por 5min, 30 ciclos subsequentes de 95°C por 30s, 45°C por 1min e 60°C por 5min, e finalmente 1 ciclo de 60°C por 16 min. Para a visualização dos padrões de banda das diferentes regiões amplificadas, os produtos da rep-PCR foram corados com GelRed e a eletroforese foi realizada em gel de agarose 2%.

Os perfis de bandas obtidos foram analisados segundo ^{Tenover et al. (1995}), cuja classificação se dá em quatro formas: indistinguíveis (nenhuma banda diferente), intimamente relacionadas (2-3 bandas distintas), possivelmente relacionadas (4-6 bandas distintas) e diferentes (mais de 7 bandas distintas).

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Y. enterocolitica foi isolada da água utilizada no estábulo leiteiro, das mãos dos ordenhadores e de leite cru imediatamente após a ordenha (Tab. 1).

Das amostras de leite analisadas, 9,37% (3/32) foram positivas para Y. enterocolitica. Esse resultado é semelhante ao encontrado em um estudo realizado no Irã (^{Hanifian e Kani, 2012}), no qual foi revelada a presença da espécie em 7,62% (27/354) das amostras de leite cru, e menor que o encontrado por ^{Yucel e Ulusoy (2006}), em um estudo na Turquia, no qual foi identificada a presença de Y. enterocolitica em 25% (25/100) das amostras. Nesses dois países, bem como no Brasil, é comum o consumo de leite cru nas propriedades rurais e a produção de derivados de forma artesanal (^{Yucel e Ulusoy, 2006}; ^{Hanifian e Kani, 2012}). Embora no Brasil a comercialização de leite cru diretamente ao consumidor seja proibida pelo Decreto-Lei nº 923, de 10 de outubro de 1969 (^{Brasil, 1969}), esse alimento, em muitos casos, é vendido clandestinamente, expondo o consumidor ao risco de contrair patógenos que tal produto possa estar veiculando (^{Abrahão et al., 2005}).

No Brasil, anteriormente, já houve relato de isolamento de Y. enterocolitica em leite cru no estado do Rio de Janeiro (^{Tibana et al., 1987}). Na ocasião, a frequência de isolamento foi de 32,4%, nível considerado alto em comparação com outro trabalho realizado no estado de São Paulo (^{Tassinari et al., 1994}), no qual a frequência de isolamento de Y. enterocolitica em leite cru foi de 19,4%, valor elevado em relação ao encontrado nesta pesquisa. Entre os anos de 1980 e 1990, o Centro Nacional de Referência em Y. enterocolitica fez 468 isolamentos do gênero Yersinia em alimentos, 46 amostras continham Y. enterocolitica, sendo 12 de leite cru (^{Falcão, 1991}). Os resultados do presente estudo mostram que o problema ainda persiste, chamando a atenção para o risco a que está exposto o consumir desse produto sem tratamento térmico. O fato de ter sido isolada Y. enterocolitica em três das oito (37,5%) propriedades rurais que fizeram parte do estudo é um dado ainda mais preocupante, pois mostra que leite contaminado com Y. enterocolitica é produzido em um percentual elevado de estabelecimentos. Por outro lado, essa contaminação parece não ser persistente dentro da propriedade, uma vez que não houve isolamento do leite em mais de uma coleta na mesma propriedade.

A água é considerada uma das principais fontes de contaminação e disseminação de patógenos, principalmente quando não é submetida a tratamento adequado. Neste trabalho, foi possível isolar Y. enterocolitica de 6,25% (2/32) das amostras de água de 25% (2/8) das propriedades. Entretanto, não foi encontrada Y. enterocolitica no leite desses estabelecimentos, parecendo não haver uma relação entre a contaminação da água e do leite. Por outro lado, a presença de Y. enterocolitica na água das propriedades estudadas é preocupante, já que essa água é utilizada pelos ordenhadores para limpeza de equipamentos e também para higiene pessoal. Como agravante, foi observado durante a pesquisa que nenhuma das propriedades fazia algum tipo de tratamento da água, como recomenda a Instrução Normativa 51 do Ministério da Agricultura, de 18 de setembro de 2002 (Brasil, 2002), que estabelece que a água destinada à produção de leite deve estar dentro de padrões de qualidade adequados.

Também foi possível isolar a bactéria de 12,5% (4/32) das amostras das mãos dos ordenhadores. Apesar de os ordenhadores não manipularem diretamente o leite, eles são a principal ligação entre equipamentos, utensílios, animais e o leite, podendo concorrer para a transferência de contaminação entre esses. Embora outros micro-organismos já tenham sido pesquisados em mãos de ordenhadores, além do presente trabalho, não existem estudos na região envolvendo a bactéria em questão e esse possível ponto de contaminação.

Já foram pesquisadas outras espécies bacterianas durante a ordenha e os autores consideraram que o manipulador pode ser o responsável pela disseminação de patógenos para outras etapas do processamento e, consequentemente, para o leite (^{Kagkli et al., 2007}; ^{Olivindo et al., 2009}). Portanto, é de suma importância que seja realizada a antissepsia adequada das mãos, antes e durante a ordenha, especialmente nas propriedades leiteiras da região, de característica familiar, onde foi observado que a mesma pessoa manipula os animais e os equipamentos.

Embora Y. enterocolitica não tenha sido isolada de amostras de balde e teteiras, a correta higienização dos equipamentos com produtos adequados e água de qualidade segue sendo imprescindível para a obtenção de um leite seguro.

Não houve reincidência no isolamento da bactéria nas coletas seguintes nos mesmos pontos, parecendo que a contaminação é bastante variável ou que é facilmente eliminada. Nas propriedades A e F, foi possível isolar Y. enterocolitica de amostras diferentes durante a mesma coleta (1YAA1, 1YAM1 e 4YFA1, 4YFL2, 4YFL4), no entanto a rep-PCR não revelou similaridade entre os isolados (Fig. 1), o que sugere que as fontes de contaminação podem ser constituídas por pontos diversos e que várias formas de disseminação da bactéria podem estar envolvidas.

Figura 1 Eletroforese em gel de agarose dos produtos da rep-PCR. As inscrições nas extremidades superiores das colunas correspondem aos isolados. 1YAA1: 1ª coleta, propriedade A, amostra de água; 1YAM3: 1ª coleta, propriedade A, amostra de mão; 1YDL1: 1ª coleta, propriedade D, amostra de leite; 3YEM2 e 3YEM3: 3ª coleta, propriedade E, amostras de mão; 4YFA1: 4ª coleta, propriedade F, amostra de água; 4YFL2 e 4YFL4: 4ª coleta, propriedade F, amostras de leite; 4YGL1: 4ª coleta, propriedade G, amostra de leite. 

A variedade de perfis moleculares observados na rep-PCR representa a diversidade de cepas existentes nas amostras analisadas. Corroborando esse fato, uma amostra de mão de ordenhador (propriedade E) e uma amostra de leite (propriedade F) apresentaram, cada uma, dois isolados com perfis de bandas diferentes entre si (3YEM2 e 3YEM3; 4YFL2 e 4YFL4), demostrando a ocorrência de cepas distintas, simultaneamente, na mesma amostra.

A presença de Y. enterocolitica no leite revela que há falhas no processo de obtenção do produto e, embora a origem da contaminação do leite não tenha sido determinada pela rep-PCR, a bactéria foi isolada da água utilizada na ordenha e das mãos dos ordenhadores, dois pontos fundamentais para o controle higiênico-sanitário. Cuidados especiais devem ser dirigidos à qualidade da água utilizada no estábulo leiteiro, pois ela entra em contato com os equipamentos que recebem o leite podendo contaminá-lo, e à higiene das mãos dos ordenhadores, que é quem tem contato com todas as etapas do processo nesse tipo de atividade, podendo ser disseminador de patógenos para o leite cru.

CONCLUSÃO

Y. enterocolitica foi isolada de leite cru, indicando que o leite produzido no Sul do Brasil pode estar contaminado por essa bactéria. Embora ocorra de forma esporádica, um percentual preocupante de propriedades ocasionalmente produz leite cru contaminado pela bactéria, o que indica negligência em relação aos cuidados relativos ao controle de Y. enterocolitica nos estabelecimentos leiteiros. Y. enterocolitica também foi isolada da água utilizada na ordenha e das mãos de ordenhadores, podendo estes servir como fontes de contaminação para o leite.