Desenvolvimento de Chrysoperla externa alimentada na fase larval com ovos de Bonagota cranaodes

Development of Chrysoperla externa fed in the larval stage with eggs of Bonagota cranaodes

ARTIGOS CIENTÍFICOS

BIOLOGIA

Desenvolvimento de Chrysoperla externa alimentada na fase larval com ovos de Bonagota cranaodes

Development of Chrysoperla externa fed in the larval stage with eggs of Bonagota cranaodes

Ana Lúcia de Paula Ribeiro^I,1; Alessandro Dal'Col Lúcio^II; Ervandil Corrêa Costa^III; Andreza Ribeiro Bolzan^IV; Rosmari Jovanowichs^V; Cinei Terezinha Riffel^VI

^IUniversidade de Cruz Alta (UNICRUZ), 98020-290, Cruz Alta, RS, Brasil. E-mail: [e-mail]

^IIDepartamento de Fitotecnia, Centro de Ciências Rurais (CCR), Universidade Federal de Santa Maria (UFSM), Santa Maria, RS, Brasil

^IIIDepartamento de Defesa Fitossanitária, CCR, UFSM, Santa Maria, RS, Brasil

^IVDepartamento de Biologia, Centro de Ciências Naturais e Exatas (CCNE), UFSM, Santa Maria, RS, Brasil

^VCooperativa Agropecuária de Júlio de Castilhos (COTRIJUC), Júlio de Castilhos, RS, Brasil ^VISociedade Educacional Três de Maio (SETREM), Três de Maio, RS, Brasil

RESUMO

Este trabalho teve por finalidade realizar estudos biológicos da espécie de crisopídeo de maior ocorrência nos agroecossistemas brasileiros, Chrysoperla externa, a fim de viabilizar a criação desta em condições de laboratório. O trabalho foi desenvolvido no Laboratório de Entomologia da Universidade Federal de Santa Maria, onde foi estudada a biologia das fases imatura e adulta de C. externa, alimentando suas larvas com ovos de Bonagota cranaodes e os adultos com dieta artificial a base de lêvedo de cerveja e mel na proporção de 1:1. O período embrionário foi determinado utilizando cápsulas de gelatina e tubos de vidro de 2,5x8,5cm e os insetos adultos foram criados em gaiolas de tubo de PVC com 10,0 cm de diâmetro e 23,0cm de comprimento em temperatura de 25±2°C e 70±10% de umidade relativa e fotofase de 14 horas. De acordo com os resultados obtidos, o período embrionário foi de 4,0 dias, com viabilidade de 89,2%. Para a fase larval, foi determinada uma duração de 13,1 dias, sendo a duração média para o 1°, 2° e 3° ínstares de 3,7; 4,9; e 4,5 dias, respectivamente. O período médio de pré-pupa e pupa foi de 1,4 e 9,3 dias, respectivamente, perfazendo um ciclo de desenvolvimento médio de 27,8 dias. As medidas da largura da cápsula cefálica mostraram que a regra de Dyar aplica-se nesse caso. Larvas de Chrysoperla externa podem ser criadas em ovos de Bonagota cranaodes em condições de laboratório.

Palavras-chave: controle biológico, crisopídeos, lagarta-enroladeira.

ABSTRACT

The paper aimed to conduct biological studies of the chrysopidae species most frequent in the Brazilian agroecosystems, Chrysoperla externa, in order to raise this species under laboratory conditions. The research was developed at the Entomology Laboratory of the Federal University of Santa Maria, where biological studies of immature and adult stages of C. externa were performed, feeding its larva with eggs of Bonagota cranaotes and adults with an artificial diet based on beer yeast and honey, in the 1:1 proportion. The embryonic period was determined using gel capsules and 2.5x8.5cm glass tubes. The adult insects were raised in PVC tubes of 10.0cm diameter and 23.0cm length, at the temperature of 25°C±2°C and 70±10% relative humidity and 14 hour photophase. According to the results obtained, the embryonic period was of 4.0 days, with 89.2% of viability, the mean larval period for the 1^st, 2^nd and 3^rd instars was of 3.7, 4.9 and 4.5 days, respectively. The mean period for pre-pupa and pupa was of 1.4 and 9.3 days, respectively, amounting to a mean developing cycle of 27.8 days. The width measures of the cephalic capsule showed that the Dyar's rule can applied to this case. Larva of Chrysoperla externa may be raised in eggs of Bonagota cranaodes under laboratory conditions.

Key words: biological control, chysopidae, leaf-roller.

INTRODUÇÃO

Uma das técnicas do manejo integrado de pragas (MIP) consiste na preservação dos agentes de controle biológico. CANARD & PRINCIPI (1984) e FREITAS &ADAMS (1994) citam os crisopídeos como um dos mais eficientes predadores, cujas larvas alimentam-se vorazmente de pulgões, moscas brancas, ovos e pequenas lagartas de lepidópteros, de diversas cochonilhas e de ácaros.

A família Chrysopidae possui cerca de 1.200 espécies descritas, destacando-se como um dos grupos mais diversos. No Brasil, a fauna de crisopídeos conhecida totaliza aproximadamente 148 espécies, envolvendo representantes de todas as subfamílias e tribos de Chrysopidae, com exceção da tribo Ankylopterygini (ADAMS & PENNY, 1987; PENNY, 1977; FREITAS & PENNY, 2001; CARDOSO et al., 2003).

Muitas espécies de Chrysopidae são criadas em condições de laboratório, contornando alguns problemas como o canibalismo durante a fase de larva e produção de dietas inadequadas. Atualmente, o uso de ovos de Anagasta kuehniella (RIBEIRO, 1991), Sitotroga cerealella (ALBUQUERQUE et al., 1994; BIAGIONI & FREITAS, 2001) Alabama argillacea (SILVA et al., 2002) e algumas espécies de pulgões (FONSECA et al., 2001; MAIA et al., 2000) permitem a criação deste predador.

Dados de literatura demonstram o potencial dos crisopídeos como agentes de controle biológico de pragas, em várias culturas de interesse econômico. NUÑEZ (1988) afirma que os crisopídeos são inimigos naturais promissores no MIP de culturas como milho, batata, algodão, citrus e maçã. FERREIRA et al. (2006) destaca a importância do uso dos crisopídeos no controle biológico da lagarta-enroladeira, Bonagota cranaodes, praga importante na cultura da macieira em pomares comerciais no sul do Brasil.

É possível a manipulação e o aumento de população de inimigos naturais já existentes na natureza via produção de agentes de controle biológico, por meio de criações em laboratório, seguido de liberações e colonizações no campo (FREITAS, 2002). Para isso, é necessário a produção em grande escala de insetos em laboratório, assim como o conhecimento sobre a bioecologia, hábitos alimentares e requisitos nutricionais dos inimigos naturais.

Dessa forma, o trabalho teve por objetivo estudar a biologia de Chrysoperla externa considerada a espécie de crisopídeo de maior ocorrência em cultivos de alface hidropônica, a fim de viabilizar a sua criação em condições de laboratório quando alimentadas com ovos de Bonagota cranaodes.

MATERIAL E MÉTODOS

Os ovos, as larvas, as pupas e os adultos de crisopídeos foram coletados na área experimental do Departamento de Fitotecnia da Universidade Federal de Santa Maria - UFSM, com coordenadas geográficas: 53°48'42''(latitude oeste) e 29° 41' 25" (latitude sul) e 95m de altitude. A alface foi cultivada em sistema hidropônico utilizando a cultivar 'Vera'.

A criação de crisopídeos foi realizada no laboratório de Entomologia do Departamento de Defesa Fitossanitária da UFSM, com início no mesmo período do cultivo da alface. As larvas foram alimentadas em todas as etapas do estudo com ovos de Bonagota cranaodes, tendo como base a metodologia desenvolvida por PARRA et al. (1995), e enviadas para o Laboratório de Entomologia da Universidade Estadual Norte Fluminense em Campos Goytacazes, para identificação.

Para obtenção da geração F1, adotou-se a técnica desenvolvida por FREITAS (2001) de criação dos adultos de crisopídeos em laboratório, onde os insetos adultos foram alimentados com lêvedo de cerveja e mel na proporção de 1:1. Após a eclosão, as larvas foram individualizadas em tubos de vidro de 2,5cm de diâmetro por 8,5cm de altura e tamponados com filme de PVC, mantidos em câmaras climatizadas tipo BOD com temperatura de 25±2°C e 70±10% de umidade relativa e fotofase de 14 horas.

Os adultos recém-emergidos foram separados, formando-se dez casais, sendo que cada casal foi colocado em gaiola individual de tubo de PVC com 10,0cm de diâmetro e 23,0cm de comprimento, acondicionado em câmara BOD com temperatura de 25±2°C e 70±10% de umidade relativa e fotofase de 14 horas para os estudos biológicos e a manutenção da criação. Os tubos foram devidamente identificados por números, geração correspondente (F₂), data da montagem, dados referentes à fêmea e ao macho e a data do início de oviposição. Foram individualizados 900 ovos da geração F2, os quais foram acondicionados em cápsulas de gelatina até o momento da eclosão, sendo as larvas transferidas para tubos de vidro e alimentadas com ovos de B. cranaodes.

O estudo da biologia das fases imaturas foi conduzido com avaliações diárias desde a postura até a emergência dos adultos. As variáveis avaliadas foram a duração e a viabilidade das fases de desenvolvimento e do ciclo biológico (ovo-adulto). Para a estimativa da duração da fase de pré-pupa, foi considerado o intervalo entre o início da construção do casulo e a última ecdise larval. Por meio de uma ocular graduada, acoplada a um microscópio estereoscópico, mediu-se a largura da cápsula cefálica de 42 larvas, em cada um dos instares, adotando-se o método de distribuição de frequências, proposto por PARRA & HADDAD (1989).

Para a fase adulta de Chrysoperla externa, os estudos foram realizados observando-se dez casais da geração F3, provenientes das larvas utilizadas nos estudos da biologia das fases imaturas. Os casais foram formados com um intervalo máximo de 24h de diferença entre a emergência de machos e fêmeas. As avaliações foram realizadas durante 50 dias (período máximo de sobrevivência dos adultos em laboratório), sendo avaliado o período de pré-oviposição, a fecundidade diária e total, o período de oviposição, o número mínimo e máximo de ovos por dia e a longevidade de fêmeas e machos. Para avaliar o consumo de C. externa em ovos de B. cranaodes, foram individualizadas 20 larvas de C. externa em tubos de vidro, disponibilizando ovos diariamente.

No estudo da tabela de vida de fertilidade de C. externa, foram utilizados 20 casais colocados nos tubos de PVC, acondicionados em câmaras climatizadas nas mesmas condições da criação de manutenção. Foi avaliada a razão sexual (rs=n° fêmeas/n° machos +n° fêmeas), a mortalidade diária de machos e fêmeas, a duração dos períodos de pré-oviposição e oviposição, o número médio de ovos em cada data de oviposição e a viabilidade de ovo a adulto.

A partir dos dados de sobrevivência e oviposição de cada fêmea, foi elaborada a tabela de vida de fertilidade. Estimou-se o número médio de ovos por fêmea (mx) em cada data de oviposição (x), considerando o total de fêmeas, o índice de sobrevivência acumulado de fêmeas (lx) durante o período de oviposição e o número de descendentes que atingiram a idade x na geração seguinte (lx.mx), seguindo a metodologia de SILVEIRA NETO et al. (1976). A partir destes resultados, definiu-se a tabela de vida e estimaram-se a duração média de gerações (T), a taxa líquida de reprodução (Ro), a taxa intrínseca de crescimento (r_m) e a taxa finita de crescimento (l).

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Foram identificadas duas espécies de crisopídeos. Uma apresentava abdome com pequenas cerdas e foi identificada como Chrysoperla externa, enquanto que a outra, com cerdas longas no abdome que permitem reter restos de exúvia, foi identificada como Ceraeochrysa sp. Como o maior número de indivíduos que compuseram a coleta de crisopídeos foi C. externa (85% do total), esta foi selecionada para o estudo da biologia a fim de viabilizar a sua criação em condições de laboratório, quando alimentada com B. cranaodes.

O período embrionário de C. externa, durante a geração F2, foi de 4,0 dias e a viabilidade de 89% (Tabela 1). Este resultado corrobora os obtidos em trabalhos realizados no Brasil por MAIA et al. (2000) e AUAD et al. (2005) sobre a mesma espécie, evidenciando que C. externa possui um comportamento homogêneo dentro de um ambiente controlado, apesar da procedência dos indivíduos coletados serem diferentes.

A duração média do 1° ínstar foi de 3,7 dias e a viabilidade de 96,7% (Tabela 1). Esta viabilidade ficou próxima ao valor de 97% obtido por CARVALHO et al. (1998) para larvas de C. externa alimentadas com ovos de Alabama argillacea, mantidas a 24°C. De acordo com CANARD & PRINCIPI (1984), a viabilidade, nesse estádio, é normalmente alta se o inseto receber alimentação adequada. O 2°ínstar apresentou uma duração de 4,9 dias (Tabela 1). A viabilidade foi de 100%, confirmando os resultados obtidos por CARVALHO et al. (1998) com C. externa mantida à temperatura de 24°C e alimentada com ovos de A. argillacea. As larvas de 3o ínstar necessitaram de 4,5 dias (Tabela 1) para chegarem à fase de pré-pupa, com viabilidade de 100%. Este resultado foi semelhante aos obtidos por CARVALHO et al. (1998), de quatro dias e 100% de viabilidade.

A duração da fase de pré-pupa foi de 1,4 dias (Tabela 1), sendo próxima à observada por NUÑEZ (1988) para C. cincta, espécie pertencente a outro gênero, para a qual a duração média da fase pré-pupal foi de um dia quando alimentadas com Sitotroga cerealella. ALBUQUERQUE et al. (1994) encontraram para C. externa duração do período de pré-pupa de 3,3 dias, quando criadas a 23,9°C. As diferenças nos resultados obtidos nos diversos estudos estão relacionadas à temperatura e à dieta oferecida às larvas de C. externa.

A viabilidade de 86,7% (Tabela 1), observada para a fase de pré-pupa, foi inferior àquelas observadas por VENZON & CARVALHO (1993) e CARVALHO et al. (1998), também para C. externa, que obtiveram 100%, utilizando ovos de A. argillacea na dieta.

A duração da fase pupal foi de 9,3 dias (Tabela 1), com 83,1% de viabilidade, resultado inferior ao obtido por CARVALHO et al. (1998) para C. externa alimentada com ovos de A. argillacea e próximo dos resultados encontrados por MURATA & DE BORTOLI (2009) para C. externa alimentada com o pulgão Brevicoryne brassicae, cujo valor foi de 85%.

A fase larval teve uma duração média de 13,1 dias. Os resultados obtidos por CARVALHO et al. (1998) para C. externa alimentada com ovos de Anagasta kuehniella foi, em média, 11 dias. Para a mesma espécie, DE BORTOLI et al. (2006) observaram desenvolvimento larval de 9,51, 9.37 e 9,02 dias, respectivamente, quando as larvas de C. externa receberam como alimentação ovos de Diatraea saccharalis, S. cerealella e A. kuehniella com viabilidade larval de 73,33, 83,33 e 83,33, respectivamente.

A viabilidade larval do 1°, 2° e 3° instar foi de 96,7%, 100% e 100%, respectivamente (Tabela 1). Verificou-se que, das 777 larvas que atingiram o estágio larval, 13,3% morreram, não confeccionando o casulo. Já a duração do ciclo biológico foi em média de 27,8 dias. Este período foi próximo a 26,93 dias, obtidos por AWADALLAH et al. (1975) para C. carnea, quando alimentada com Thrips tabaci.

O período de oviposição foi de 33,6 dias (Tabela 1), com fecundidade média diária de 11,3 ovos. Os resultados referentes à fecundidade diária foram inferiores aos observados por RIBEIRO & CARVALHO (1991), que verificaram que C. externa apresentaram uma fecundidade média de 15,86 ovos por dia, quando alimentadas com ovos de A. kuehniella. Algumas fêmeas produziram, no máximo, 444 ovos (Tabela 1) em 50 dias, enquanto que os resultados obtidos por BARBOSA et al. (2000), também com C. externa, foram de, no máximo, 350 ovos, concluindo que fêmeas permanentemente mantidas com os machos produziram um maior número de ovos. MACEDO et al. (2003) observaram que o reacasalamento estimula a oviposição, evitando o esgotamento das reservas espermáticas de fêmeas de C. externa.

A longevidade de machos e fêmeas foi próxima. Foi observado, no mínimo, 17 dias para machos e fêmeas e 54 e 53 dias, no máximo, para fêmeas e machos, respectivamente (Tabela 1). Estes resultados de longevidade podem ter ocorrido em virtude da manipulação dos adultos, já que a literatura menciona até 120 dias de vida para insetos adultos (CANARD & PRINCIPI, 1984).

Para o primeiro ínstar larval, a média do diâmetro da cápsula cefálica foi de 0,48mm, para o segundo ínstar 0,56mm e, para o terceiro ínstar, 0,81mm de diâmetro. A razão de crescimento foi de 1,44, podendo assim aplicar a Regra de Dyar. O número de ínstares foi bem evidenciado pelo elevado valor de coeficiente de determinação (R² próximos a um) e o valor de razão de crescimento (K) que se encontra dentro dos limites propostos por Dyar (1,1 a 1,9).

O consumo de ovos está relacionado ao estádio larval. De acordo com os valores obtidos, mais de 80% do alimento fornecido (ovos) foi consumido durante o 3° ínstar larval, sendo seguido pelas larvas de 2° e 1° ínstar, apresentando consumo médio de 429, 75 e 17 ovos, respectivamente. O consumo médio total da fase larval foi de 520 ovos para que o inseto completasse o ciclo de desenvolvimento, com amplitudes entre 550 e 488 ovos consumidos.

Determinou-se, por meio da tabela de vida e fertilidade, um período médio de geração (T) de 32,69 dias (Tabela 2). Esse valor representa o período compreendido do nascimento dos pais ao nascimento dos descendentes, ou seja, a duração média de uma geração. Para a população de C. externa a taxa máxima de aumento ocorreu no 29° dia, resultado evidenciado nos valores da taxa de sobrevivência (lx) e da fertilidade específica (mx) (Figura 1).

A taxa líquida de reprodução (Ro) foi de 51,26 vezes (Tabela 2), que indica a estimativa do número médio de fêmeas gerado por fêmea por dia, ao longo do período de oviposição e que chegarão na geração seguinte. O valor da taxa intrínseca de crescimento (r_m) foi de 0, 12044, indicando a velocidade de crescimento da população de C. externa. A razão finita de aumento (λ) foi de 1, 12799, que representa o número de indivíduos adicionados à população por fêmea por um dia.

CONCLUSÃO

Ovos de Bonagota cranaodes permitem o desenvolvimento das fases imaturas e adulta de Chrysoperla externa e podem ser utilizados para a criação de C. externa, entretanto a sua utilização para criação massal se torna inviável pela baixa fecundidade.

AGRADECIMENTOS

Ao Doutor Gilberto Soares Albuquerque, da Universidade Estadual do Norte Fluminense, pela contribuição na identificação das espécies de crisopídeos.

Recebido para publicação 11.02.11

Aprovado em 09.07.11

Devolvido pelo autor 11.08.11

CR-4774

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Autor para correspondência.

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  11 Nov 2011
• Data do Fascículo
  Set 2011

Histórico

• Aceito
  09 Jul 2011
• Recebido
  11 Fev 2011