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Revista Brasileira de Plantas Medicinais

Print version ISSN 1516-0572On-line version ISSN 1983-084X

Rev. bras. plantas med. vol.17 no.3 Botucatu July/Sept. 2015

https://doi.org/10.1590/1983-084X/13_103 

REVISÃO

Las plantas medicinales en el control de nemátodos gastrointestinales en cabras: potencial de las plantas que crecen en la región de Coquimbo, Chile

Medicinal plants in the control of gastrointestinal nematodes in goats: the potential of the plants which grow at the Coquimbo region, Chile.

M.A. MOYA1 

V.G. ESCUDERO2  * 

1Grupo de Estudios y Servicios Ambientales del Norte. Calle Ricardo Bitrán N° 828, CP: 1700-000, La Serena, Chile., contacto@gesanor.cl;

2Universidad de La Serena, Facultad de Ciencias, Benavente 980, CP: 1700-000, La Serena, Chile.


RESUMO

O objetivo deste estudo foi determinar o potencial de plantas que crecem na região de Coquimbo, no controle de nematódeos gastrintestinais em caprinos. Nós usamos uma abordagem não-experimental para validar a eficácia potencial das plantas medicinais como anti-helmínticos. Esta validação foi realizada com base em uma revisão da extensa literatura consultada a respeito de plantas medicinais. Determinou-se o um potencial de eficácia das plantas, da consistência das informações sobre o uso tradicional, os compostos presentes e farmacologia. Analisamos também os dados dos potenciais efeitos adversos que impedem seu uso em animais. Antecedentes apoiam a um alto potencial da eficácia como anti-helmíntico para se três espécies de plantas que crescem na região de Coquimbo: Allium sativum L., Artemisia absinthium L. e Chenopodium ambrosioides L. Os possíveis efeitos secundários do consumo de plantas medicinais ou seus derivados devem ser avaliadas em testes de campo antes de serem utilizados nas em escala produtiva.

ABSTRACT

The aim of this study was to determine the potential of the plants which grow at the Coquimbo region in the control of gastrointestinal nematodes in goats. We used a non-experimental approach to evaluate the potential efficacy of medicinal plants as anthelmintics. This research was conducted with exhaustive bibliography referred to the medicinal use of plants in the international literature. We determined the potential of effectiveness of the plants, the consistency of the information about the traditional use, the present compounds and the pharmacology. We also performed an analysis about the potential adverse effects of the plants" application in animals. The collected data support the efficacy of these three species of plants growing at the Coquimbo region as efficient anthelmintic ones: the Allium sativum L., the Artemisia absinthium L. and the Chenopodium ambrosioides L. The possible side effects of the consumption of medicinal plants or their derivatives must be evaluated in field trials before they start being used in a productive scale.

Keywords Gastrointestinal parasites; anthelmintic; medicinal plants; goats

INTRODUCCIÓN

La región de Coquimbo presenta diversos climas como el estepárico costero o nuboso, de estepa cálido y templado frío de altura. Es una región de transición ya que se encuentra entre las zonas desértica y templada mediterránea. A lo largo de toda la costa se presenta el clima de tipo estepárico costero o nuboso, el cual su influencia llega hasta el interior hasta 40 kilómetros, por medio de los valles transversales y quebradas. Su mayor característica es la abundante nubosidad; humedad, temperaturas moderadas, con un promedio de precipitaciones de 130 mm anuales con un período seco de ocho a nueve meses. En la parte interior de la región, por sobre los 800 msnm, se sitúa el clima de estepa cálido que se caracteriza por ausencia de nubosidad y sequedad del aire. Sus temperaturas son mayores que en la costa, las precipitaciones no son tan abundantes y los períodos de sequía son característicos (SIIT, 2014). El 51% de la superficie de los 3,9 millones de ha de la región se declara con alguna utilidad agrícola, regándose solamente el 1,8%. De los 1,6 millones de ha de la IV Región, el 42% se considera con aptitud agrícola ganadera, principalmente caprina y ovina. La dotación caprina chilena, según el Censo Nacional Agropecuario de 2007, alcanza a 705.800 cabezas. El 42% de dichas existencias se concentran en la Región de Coquimbo, con 306.022 cabezas, siendo considerada la región de mayor importancia del país (INDAP, 2009). Según estudios realizados, la superficie capaz de soportar actividad caprina comercial en la región bordea el millón de ha, de las cuales algo menos de la mitad puede soportar una carga de 1 a 4 ha/cabra/año y la otra mitad, 4 a 6 ha/cabra/año (Mujica, 2005). Cabe destacar que una altísima proporción de las cabras chilenas, en especial las de la región de Coquimbo, pertenece a la Agricultura Familiar Campesina, estimativamente sobre el 90%, y es explotada en condiciones de baja eficiencia productiva, con sistemas de explotación tradicionales, de carácter extensivo, aprovechando recursos naturales de bajo costo. (Cofré, 2001; INDAP, 2009). Sin embargo, este sistema de producción genera condiciones propicias para el desarrollo de enfermedades. En este ámbito, destacan las enfermedades parasitarias, las que producen mayores pérdidas económicas que las afecciones bacterianas o virales, debido a su elevado índice de morbilidad, a la merma productiva y en ocasiones a su mortalidad.

Las endoparasitosis y en especial, los parásitos gastrointestinales son de gran importancia en los pequeños rumiantes como las cabras, debido a su particular forma de coger el alimento que tienen estas desde la pradera, lo que hace que puedan ingerir grandes cantidades de larvas infectantes, siendo los animales jóvenes menores de un año los más sensibles a este tipo de parasitosis. Los riesgos de enfermar aumentan con el sobrepastoreo, alta carga animal por hectárea y la mala nutrición; condiciones que son frecuentes de encontrar en una explotación caprina tradicional (Castillo, 2003).

Los efectos del parasitismo gastrointestinal sobre el hospedador son muy diversos, siendo uno de los efectos más frecuentes las úlceras, edema, congestión, necrosis del tracto gastrointestinal, baja en el crecimiento y productividad, y en los casos más severos, la muerte del individuo afectado (Molina, 2004; Gutiérrez, 2007). Esto genera incremento en los costos de producción, debido a la muerte de animales jóvenes y a los gastos inherente a la profilaxis para el tratamiento de animales sintomáticos, afectando la conversión alimenticia y provocando resultados negativos en la producción de leche y carne (Pelegrine, 2006).

Tradicionalmente, el control de los parásitos del tracto digestivo ha estado basado en tratamientos repetitivos con fármacos antihelmínticos (Moreno et al., 2010), pero muchas de las drogas antihelmínticas pueden generar efectos secundarios, como por ejemplo resistencia, toxicidad y reacciones adversas (González et al., 2010).

Un efecto indirecto generado por que el uso indiscriminado de antiparasitarios es la amenaza a la integridad ambiental. Existen antecedentes que confirman que el uso de antiparasitarios provoca cambios en los organismos colonizadores de la materia fecal de animales tratados con estos productos (Iglesias et al., 2005) y también puede generar presencia de residuos tóxicos en alimentos (Alvinerie et al., 1997).

Actualmente se han desarrollado mecanismos alternativos para el control del parasitismo gastrointestinal, como es el uso de plantas medicinales, que mantienen las poblaciones de parásitos bajo los umbrales de pérdidas económicamente aceptables y son menos agresivas con el ambiente. En Chile se conocen y utilizan tradicionalmente cientos de plantas con propiedades medicinales, tanto nativas como introducidas (Tapia, 1995; Avello & Cisternas, 2010) pero no existen datos en la bibliografía referidos al uso de plantas medicinales, presentes en la región o en el país, para el control de parásitos gastrointestinales en cabras.

En virdud de todos los antecedentes anteriormente señalados, y considerando que la flora nativa y naturalizada que habita en la IV Región de Coquimbo esta compuesta por 1.727 especies, de las cuales 1.478 son nativas de Chile (Marticorena et al., 2001), surgen inmediatamente algunas preguntas al respecto ¿existen plantas nativas o naturalizadas en la región de Coquimbo con propiedades antihelmínticas? ¿Pueden estas plantas ser usadas en cabras? ¿Presentaran efectos secundarios o tóxicos que impidan su uso?

El presente trabajo tiene por objetivo determinar el potencial de las plantas que crecen en la región de Coquimbo en el control de nemátodos gastrointestinales en cabras.

MATERIALES Y MÉTODOS

Se utilizó un método no experimental para evaluar la eficacia potencial como antihelmínticos de las plantas medicinales, para ello se realizó en revisión exhaustiva de material bibliográfico referido al uso medicinal de las plantas en la bibliografía, tanto el de publicaciones periódicas (a través de las bases de datos disponibles en EBSCO) como en libros; A partir de esta revisión se confeccionó un listado preliminar de los nombres científicos de las plantas citadas en la bibliografía nacional e internacional como vermífugas o antihelmínticas, ya sea de uso en humanos como en animales. Este listado fue contrastado con los registros de las plantas presentes en la región de Coquimbo (Marticorena et al., 2001), seleccionándose todas las especies que estaban presentes en ambos listados. Esto permitío elaborar un registro preliminar de plantas promisorias, las que fueron agrupadas según su potencial de eficacia presentado por cada especie. Para determinar este potencial de eficacia se utilizó una modificación a la propuesta de Lans et al. (2006), la cual consta de cuatro niveles:

Potencial mínimo: Sólo existe 1 registro de uso popular que apoye el uso buscado. La planta presenta información fitoquímica o farmacológica sobre otros usos.

Potencial aceptable: Existen al menos 2 registros del uso popular de la planta en el tratamiento de enfermedades similares, ya sea en seres humanos o animales.

Potencial medio: Existen más de 2 registros del uso popular de la planta y existe datos fitoquímicos o farmacológicos coherentes con el uso buscado. Registra pruebas in vitro con actividad positiva. La planta puede ejercer una acción fisiológica real

Potencial alto: Todos los antecedentes fitoquímicos y farmacológicos son coherentes con el uso tradicional de la planta. Registra pruebas in vivo con actividad positiva.

De las especies presentes en este registro preliminar promisorio, se seleccionaron aquellas especies vegetales que presentaron al menos un potencial aceptable de eficacia. Para todas las especies seleccionadas se registraron otros antecedentes botánicos (nombre común, familia, estado de conservación en la región y parte de la planta utilizada).

Para poder establecer potenciales más elevados de eficacia antihelmíntica, se consideraron sus propiedades fitoquímicas (principales compuestos), farmacológicas y su uso veterinario. Además se recopilaron datos que podrían limitar su uso en cabras (efectos secundarios, contraindicaciones y toxicidad).

RESULTADOS

Se encontraron 12 plantas con potencial antihelmintico creciendo en la región de Coquimbo que cumplen con el criterio de potencial aceptable. De ellas, Chenopodium ambrosioides L. Drimys winteri J. R. Forst et G. Forster, Flaveria bidentis (L.) O. Kuntze y Otholobium glandulosum (L.) J. W. Grimesson especies nativas, mientras que las especies Foeniculum vulgare Mill, Ruta chalepensis L. y Tanacetum parthenium (L.) Sch. Bip., son consideradas plantas adventicias en la región, siendo especies cultivadas Allium sativum L., Artemisia absinthium L., Juglans regia L., Punica granatum L.y Thymus vulgaris L. (Tabla 1).

TABLA 1 Espécies de plantas medicinales usadas tradicionalmente como antihelmínticos presentes en la región de Coquimbo (Potencial de Eficácia Aceptable). 

Nombre Científico Nombre Común Familia Origen1 Parte utilizada como vermífugo Referencias
Allium sativum L. Ajo Alliaceae Cultivada Bulbo Del Vitto et al. (1998); Fresquet et al. (2001); Giday (2001); Hall et al. (2002); De la Fuente (2004); Silva et al. (2004); García (2006); Keller & Romero (2006); Estrada et al. (2007); Hermoso (2007); Colombia. Ministerio de Protección Social (2008); Napoli (2008); Deeba et al. (2009);
Salazar et al. (2009); Scoles (2006); Scudeller et al. (2009); Gómez et al. (2011).
Artemisia absinthium L. Ajenjo Asteraceae Cultivada Hojas, inflorescencias Del Vitto et al. (1998); Cáceres & Machain (2001); Fresquet et al. (2001); Romo (2001); Scarpa (2002); Quezada et al. (2005); García (2006); Keller & Romero (2006); Bevillacua et al. (2007); Camaqui (2007); Consolini et al. (2007); Hermoso (2007); Terceros et al. (2007); Colombia. Ministerio de Protección Social (2008); Bussmann & Glenn (2010); Chile. Ministerio de Salud (2010); Grosso (2010); Guillot (2010); Rodríguez (2010); Muinio (2011).
Chenopodium ambrosioides L. Paico Chenopodiaceae Nativa Hojas y frutos Wilhelm (1992); Del Vitto et al. (1997); Cáceres & Machain (2001); Romo (2001); Carrizo et al. (2002); Hernández et al. (2002); Pérez (2002); Scarpa (2002); Yepes (2004); Carballo et al. (2005); Quezada et al. (2005); Keller & Romero (2006); Scoles (2006); Bevillacua et al. (2007); Camaqui (2007); Consolini et al. (2007); Estrada et al. (2007); Gadano et al. (2007); Terceros et al. (2007); Chaves & Rodríguez (2008); Gómez (2008); Arias et al. (2009); Scudeller et al. (2009); Albertasse et al. (2010); Bussmann et al. (2010); Chile. Ministerio de Salud (2010); Luziatelli et al. (2010); Martínez & Barbosa (2010); Rodríguez (2010); Araujo et al. (2011); Gómez et al. (2011); Huamantupa et al. (2011); IIAP (2011).
Drimys winteri J. R. Forst et G. Forster Canelo Winteraceae Nativa Hojas y corteza Wilhelm (1992); Montenegro et al. (1994); Massardo & Rozzi (1996); Campos (1998); Ibaca (2001); Romo (2001); Madaleno (2007); Colombia. Ministerio de Protección Social (2008); Chile. Ministerio de Salud (2010).
Flaveria bidentis (L.) O. Kuntze Contrayerba Asteraceae Nativa Hojas, flores y tallos Wilhelm (1992); Del Vitto et al. (1997); Pastor & Zelada (2006); Dadé et al. (2009); Bussmann et al. (2010); Chile. Ministerio de Salud (2010).
Foeniculum vulgare Mill Hinojo Apiaceae Adventicia Semillas, frutos, hojas y raíz Mendocilla & Villar (2001); Chile. Ministerio de Salud (2010); Kumar et al. (2012).
Juglans regia L. Nogal Juglandaceae Cultivada Hojas Del Vitto et al. (1998); García (2006); Hermoso (2007); Sánchez et al. (2008) Chile. Ministerio de Salud (2010).
Otholobium glandulosum (L.) J. W.Grimes Culén Fabaceae Nativa Toda la planta, en especial las hojas Wilhelm (1992); Montenegro et al. (1994); Erazo et al. (1997); Hammond et al. (1998); Ibaca (2001); Romo (2001); Bussmann et al. (2010); Chile. Ministerio de Salud (2010);
Punica granatum L. Granado Punicaceae Cultivada Corteza Del Vitto et al. (1998); Lansky et al. (2000); Cáceres & Machain (2001); Fresquet et al. (2001); Yepes (2004); Iqbal et al. (2005); Duarte (2006); Keller & Romero (2006); Estrada et al. (2007); Godinez & Volpato (2008); Scudeller et al. (2009); Chile. Ministerio de Salud (2010); Tomás (2010); Araujo et al. (2011); Fuenmayor et al. (2011); Muinio (2011).
Ruta chalepensis L. Ruda Rutaceae Adventicia Hojas, flores y tallos Del Vitto et al. (1998); Giday (2001); Keller & Romero (2006); Gonzáles et al. (2007); Napoli (2008); Arias et al. (2009); Chile. Ministerio de Salud (2010); Rodríguez (2010); Muinio (2011).
Tanacetum parthenium (L) Sch.Bip Altamisa Asteraceae Adventicia Hojas, inflorescencias y tallos Del Vitto et al. (1998); Hammond et al. (1998); Keller & Romero (2006); Rateb et al. (2007); Chile. Ministerio de Salud (2010); Guillot (2010); IIAP (2011).
Thymus vulgaris L. Tomillo Labiatae Cultivada Hojas, flores y tallos Del Vitto et al. (1998); Cáceres & Machain (2001); Fresquet et al. (2001); Hall et al. (2002); Quezada et al. (2005); Duarte (2006); García (2006); Consolini et al. (2007); Chile. Ministerio de Salud (2010); Rodríguez (2010); Basartea (2011).

Las 12 especies selecionadas presentan entre sus componentes flavonoides, lactonas terpénicas o taninos (Tabla 2), sustancias reconocidas por su efecto antihelmíntico. Sin embargo, sólo seis especies, A. sativum, C. ambrosoides, F. vulgare, J. regia, P. granatumy R. chalepensis presentan coherencia entre el uso tradicional, datos fitoquímicos, actividad farmacológica (Tabla 2) y ensayos in vitro como antihelmíntico (Tabla 3), alcanzando un potencial de eficiencia medio.

TABLA 2 Principales compuestos y actividad farmacológica registrada de las especies de plantas medicinales usadas tradicionalmente como antihelmínticos presentes en la región de Coquimbo. 

Nombre Principales compuestos Actividad Farmacológica Referencias
Científico   Antihelmintica Registrada  
Allium sativum L. Aliina Extracto acuoso: Iqbal et al. (2001); Hall et al. (2002); Colombia. Ministerio de Protección Social (2008); Sousa (2008); Amin et al. (2009); Reichling et al. (2009).
Ajoeno - Actividad inhibitoria contra nemátodos gastrointestinales (100mg/ml).
Flavonoides: Apigenina, Quercetina, Miricetina
Saponinas
Aminoácidos Extracto metanolico:
  - Actividad inhibitoria de la motilidad y sobrevivencia de Haemonchus contortus
 
 
  Extracto etanólico:
  - Actividad inhibitoria de nemátodos gastrointestinales (25 y 50 mg/ml).
 
Artemisia. Flavonoides Extracto eter-etanol: Colombia. Ministerio de Protección Social (2008); Montesdeoca (2009); Yildiz et al. (2011).
absinthium L. Monoterpenos: α y β Tuyona, Cisocimeno, Canfeno, Pineno, - Actividad inhibitoria sobre Toxocara gati (600 mg/kg)
  Felandreno, Acetato de Crisantenilo, Acetato de Sabinilo, Tuyol, Linalol
  Lactonas Sesquiterpénicas: Absintina, Artabsina, Anabsina, Anabsinina,
  Anabsintina, Artibina, Matricida.
  Germacranólidos como Quetopelenólidos.
  Flavonoide: Artemisetina, Artemetina, Isoquercitrina, Rutina, Glucósidos
  de Patuletina, Isoramnetina, Quercitrina.
  Taninos
  Ácidos Fenólicos derivados del Ácido Cinámico.
  Ácidos Clorogénico, Paracumárico.
  Carotenos
  Vitamina C.
Chenopodium - β-Myrceno Aceite esencial: Toso & Boeris (2001); Ketzis et al. (2002); Chaves & Rodríguez (2008); Singh et al. (2008); Eguale & Giday (2009); Gómez (2011).
ambrosioides - α-Terpineno - Inhibición de la actividad de larvas helmintos.
L. - dl-Limoneno
  - β□-Phellandreno
  - cis- β -Ocimeno (Z) Extracto acuoso:
  - ψ-Terpineno - Actividad inhibitoria sobre la eclosión de huevos (ED 50: 0.09 mg/ml) - Inhibición de la actividad de larvas helmintos.
  - trans- β -Ocimeno
  - p-Cymeno
  - α -Terpinoleno
  - β -Caryophylleno
  - trans-p-Mentha-2,8-dien-1-ol Extracto hidroalcoholico:
  - 1-[2-Methyl-5-(1-methylethenyl) cyclopentyl]-(1 α, 2 α, 5 β)-ethanona - Inhibe la actividad de adultos de H. contortus
  - Citronellyl acetato
  - 3,4-Epoxy-p-menthan-2-ona
  - γ-Curcumeno
  - Oxido Piperitona
  - Cis-Ascaridol
  - Trans-p-Mentha-1(7),8-dien-2-ol
  - 3,7-Dimethyl-2,6-octadien-1-ol
  - Trans-Ascaridol
Drimys winteri Taninos Sin actividad antihelmíntica registrada Colombia. Ministerio de Protección Social (2008); Becerra et al. (2010).
J. R. Forst et Cíñelo  
G. Forster Ly B Pineno  
  Manitol  
  Eugenol  
  Poligodial  
  Linalool  
  B-Cariofileno  
  L-Humuleno  
  Farnesol  
  Flovonoides: Taxifolina y Astilbina  
  Vitamina C.  
  Benzocicloheptano  
  Shyobunona  
  Azuleno  
  Naftaleno  
  Kaureno  
  - Ciclohexadieno  
Flaveria - Eucoantocianidinas Sin actividad antihelmíntica registrada Pastor & Zelada (2006); Bussmann et al. (2010).
bidentis (L.) - Esteroides  
O. Kuntze - Triterpenoides  
  - -Metil-3-(Metiltio)-Benceno  
  - 3-Metilbencil Mercaptano  
  - Flavonoides: 3,7 -Bisulfato de Isoramnetina, 3,4'- Bisulfato de  
  Quercetina, 3,7,4'- Trisulfato de Quercetina, 3,7,3'- Trisulfato de  
  Quercetina, 3-Acetil-7,3',4',-Trisulfato de Quercetina, 3,7,3',4',  
  Tetrasulfato de Quercetina.  
  - Compuestos Acetilénicos: Tiofenos y Sulfonas no Epoxidadas.  
Foeniculum - a-Pineno Extracto etanolico y Extracto Mendocilla & Villar (2001); Lamberti et al. (2009); Kumar et al. (2012) Sánchez & Sánchez (2012).
vulgare Mill - Limoneno acuoso de frutos:
  - Fenchol Actividad antihelmíntica probada a diferentes concentraciones (25, 50, 100, 200mg/ml) sobre Pheritima posthuma.
  - Anetol
  - Anisaldehido
  - D-Fenchona,
  - 1,8-Cineol
  - Cumarinas y Furanocumarinas. Extractos hidroalcohólicos:
  - Flavonoides: Kenferol, Quercetol, Rutósido, Quercitrósido. Inhibición total de larvas III de Haemonchus spp. a distintas dosis (25 μl, 50 μl, 100 μl y 200 μl).
  - Principios Estrogénicos: Dianetol, Dianisoína.
  - B-Sitosterol
  - Estigmasterol.
  - Felandrene
  - Estragol
  - Metilchavicol
  - Foeniculina
  - Safrol
  - Ácido Anísico
  - Aldehído Anísico
  - Cetona Ácianísica
  - Enol-P-Propenilfenol.
  - Glucorónidos de Flavonoides
  - Miristicina
  - Feniona
  - Alcanfor
  - Ácido Clorogénico
  - Ácido Caféico.
  - Vitaminas A, B y C.
Juglans regia L. - Juglona Extracto: Sharma et al. (1971); Pereira et al. (2007).
- Ácidos Hidroxicinnamicos: Ácido 3-caffeoylquinico, Acido - Actividad inhibitoria de motilidad de larvas maduras de Haemonchus contortus
3-p-coumaroylquinico y
Ácido 4-p-coumaroylquinico.
- Flavonoides: Quercetin
3-Galactosido, Quercetin 3-Arabinosido, Quercetin 3-Xylosido,
Quercetin 3-Rhamnosido, Quercetin 3-Pentosido y Kaempferol
3-Pentosido.
Otholobium - Fenoles Sin actividad antihelmíntica registrada Niemeyer (1995); Erazo et al. (1997); Backhouse et al. (2001); Gutierrez & Alva (2006); Becerra et al. (2010); Bussmann et al. (2010).
glandulosum - Flavonoides
(L.) J. - Taninos
W.Grimes - Cariofileno
  - Naftaleno
  Ledol
  Fenol
  Fitol
  Eicosano
  - Octadecano
  - Bakuchiol
  - Angelicino
  - Psoraleno
Punica granatum L. Polifenoles: Antocianinas, Antocianidinas: Cianidina, Delfinidina, Extracto alcohólico: Iqbal et al. (2005); Amin et al. (2009); Melgarejo et al. (2010).
Pelargonidina. Luteolin, Quercetin y Kaempferol - Inhibe la transformación de huevos a larvas de Haemonchus contortus
Ácido Elágico
Ácido Gálico
Ácido Cafeico Extracto acuoso:
- Taninos hidrolizables: Elagitaninos, Punicalaginos, Galotaninos. - Actividad inhibitoria de nemátodos gastrointestinales (100mg/ml)
- Catequizas
- Esteroides: Estradiol, Estriol, Estrona, Testosterona y Ácido Ursólico.
- Epigalocatequina,
- Hierro
- Aminoácidos.
- Ácido punícico
Ruta chalepensis L. - Alcaloides Extracto hidroalcohólico: Al-Said et al. (1990); Gonzáles et al. (2007); Toso et al. (2007); Lamberti et al. (2009); Toribio et al. (2009); Vazquez et al. (2011)
- Flavonoides - Actividad inhibitoria de la motilidad de Larvas III de Haemonchus spp.
- Fenoles
- Aminoácidos
- Fucomarinas
- Saponinas
- Limoneno
- Pineno
- Ácido Anímico
Tanacetum Lactonas Sesquiterpenicas: Partenolido Sin actividad antihelmíntica registrada Rateb et al. (2007); Colombia. Ministerio de Protección Social (2008).
parthenium Flavonoides: Santina, Jaceidina, Centaureidina, Luteolina, Apigenina
(L.) Sch.Bip Guaianolidos
  Alcanfor
  Acetato de Crisantenilo
  L- Pineno
  Limoneno
  B-Cariofileno
  Eugenol
Thymus Timol Sin actividad antihelmíntica registrada Hall et al. (2002); Reichling et al. (2009); Bussmann et al. (2010).
vulgaris L. Cimene  
  Carvacrol  
  Gamma-terpineno  
  Borneol  
  Linalol  
  - Ácido rosmanirico  
  - Flavonoides: Luteolina, Apigenina, Emidictiol, Cirsilineol, Salvigenina,  
  Cirsimaritina, Limusina.  
  - Triterpenos: Ácido Ursolico  
  - Ácido Salicilico  
  - Geraniol  
  - Linalol  
  - Trans-Tuyanal-Terpineol  
  - Taninos  
  - Saponósidos.  

TABLA 3 Especies de plantas medicinales con antecedentes de uso veterinario como antihelmíntico 

Nombre Científico Enfermedad tratada en animales Hospedero Metodología Lugar Referencia
Allium sativum L. Endoparasitos Rumiantes Entrevista Columbia Británica Lans et al. (2007)
Parasitosis Intestinales (Oxyuriasis) No especifica Revisión bibliográfica Espana Ortiz (2010)
Parásitos intestinales Gallinas Entrevista Uttaranchal, India Pande et al. (2007)
Antihelmíntico No especifica Entrevista Italia Guarrera & Leporatti (2007)
Antihelmíntico Perros Entrevista Italia Guarrera et al. (2008)
Nemátodos gastrointestinales Cabras Ensayo in vitro Bangladesh, India Amin et al. (2009)
Parásitos Ganado Entrevista China Shen et al. (2010)
Parásitos intestinales No especifica Entrevista Sierras de Córdoba, Argentina Martínez & Lujan (2011)
Nematodiasis por Capillaria sp. y Spirocamallanus sp. Tilapia y Carpa. Revisión bibliográfica Cuba y México Prieto et al. (2005)
Pomphorhynchus laveis y Acantocephalus anguillae Tilapia Revisión bibliográfica Cuba y México Prieto et al. (2005)
Parásitos internos No especifica Entrevista Colombia Gómez et al. (2011)
Helmintos gastrointestinales Cabras Ensayo in vitro Brasil Sousa (2008)
Haemonchus contortus Ovejas Ensayo in vitro Pakistán Iqbal et al. (2001)
Artemisia absinthium L. Antihelmíntico, especialmente contra estróngilos intestinal Ovinos Entrevista y revisión bibliográfica Uruguay Grosso (2010)
Contra las tenias como Monezia spp. Rumiantes Entrevista y revisión bibliográfica Uruguay Grosso (2010)
Antiparasitario Peces Revisión bibliográfica Cuba y México Prieto et al. (2005)
Lombrices intestinales Aves de corral Entrevista y revisión bibliográfica Uruguay Grosso (2010)
Toxocara cati Gatos Ensayo in vivo Turquía Yildiz et al. (2011)
Chenopodium ambrosioides L. Prevención y control de helmintiasis Peces Revisión bibliográfica Cuba y México Prieto et al. (2005)
Antihelmintico Caballos Entrevista Trinidad y Columbia Británica (Canadá). Lans et al. (2006)
Huevos de H. contortus Ovejas Ensayo in vitro Etiopía Eguale & Giday (2009)
Larvas de Haemonchus contortus Cabras Ensayo in vitro USA Ketzis et al. (2002)
Parasitos internos Caballos Entrevista Chaco Argentina Scarpa (2000)
Parásitos Perros Entrevista Estelí, Nicaragua Rodríguez et al. (2005)
Parasitos internos Aves de corral Entrevista Columbia Británica (Canadá). Lans & Turner (2011)
Parásitos internos Terneros Entrevista Caldas, Colombia Jurado et al. (2007)
Haemonchus contortus Cabras Ensayo in vivo Brasil Vieira et al. (1999)
Parásitos internos No especifica Entrevista Costa Atlántica, Colombia Gómez et al. (2011)
Foeniculum vulgare Mill Inhibe la motilidad de larvas III de Haemonchus spp Ovinos Ensayo in vitro Argentina Lamberti et al. (2009)
Juglans regia L. Antiparasitario No especifica Entrevista Italia Guarrera et al. (2008)
Inhibe la motilidad de larvas maduras de Haemonchus contortus Cabras Ensayo in vitro India Sharma et al. (1971)
Punica granatumL. Nemátodos gastrointestinales Cabras Ensayo in vitro Bangladesh, India Amin et al. (2009)
Parásitos intestinales No especifica Entrevista Uttaranchal, India Pande et al. (2007)
Nemátodos gastrointestinales Ovejas Revisión Bibliográfica Pakistán Iqbal et al. (2005)
Ruta chalepensis L. Parásitos intestinales No especifica Entrevista Sierras de Córdoba, Argentina Martínez & Lujan (2011)
Motilidad de Larvas III de Haemonchus spp. Ovinos Ensayo in vitro La Pampa, Argentina Lamberti et al. (2009)
Parasiticida Gallinas Entrevista Cataluna, Espana Bonet & Valles (2007)

Tres especies presentan un alto potencial de eficiencia como antihelmíntico, con antecedentes de ensayos in vivo para A. sativum, A. absinthium y C. ambrosioides. (Tabla 3).

Se encontraron evidencias de efectos secundarios o de contraindicaciones de gran parte de las plantas seleccionadas por su eficiencia, a excepción J. regia. Los datos referentes a toxicidad indican que especies como A. sativum y P. granatum no presentan efectos toxicológicos importantes, en cambio en otras especies los estudios toxicológicos han demostrado efectos adversos importantes, como es el caso de A. absinthium, C. ambrosioides y R. chalepensis (Tabla 4).

TABLA 4 Efectos secundarios, contraindicaciones y toxicidad de las especies de plantas medicinales, con alto potencial de eficiencia como antihelmíntico, presentes en la región de Coquimbo. 

Nombre Científico Efectos secundarios Contraindicaciones y precauciones Toxicidad Referencias
Allium sativum L. Cefaleas, gastritis y diarrea por sobredosis Dermatitis de contacto Se debe evitar el uso concomitante con anticoagulantes y antiplaquetarios ya que puede aumentar el riesgo de sangrado. Estudios toxicológicos y clínicos no han demostrado efectos adversos considerables. Román (2000); Hall et al. (2002); Colombia. Ministerio de Protección Social (2008).
  La ingestión de bulbo de ajos, extracto de ajo o aceite de ajo podría causar nausea, vómito, y diarrea, siendo este último atribuido al contenido de adenosina como laxante secretomotor.
  Exposiciones repetidas a polvos pueden causar reacciones asmáticas.
  Altas concentraciones usadas externamente pueden causar necrosis y alergias.
Artemisia absinthium L. La sobredosis o el uso prolongado pueden generar síntomas de toxicidad por Tuyona. No consumir en caso de Epilepsia, embarazo e inflamaciones digestivas crónicas DL50 aguda Extracto fluido: 2499 mg/Kg Del Vitto et al. (1998); Colombia. Ministerio de Protección Social (2008); Bussmann et al. (2011).
  LC50 Extracto acuoso: 93 μg/ml
  LC50 Extracto etanólico: >10000 μg/ml
Chenopodium ambrosioides L. El aceite esencial (Ascaridol) es tóxico al interior. No consumir en caso de embarazo y lactancia. Evitar tratamientos prolongados LC50 Extracto acuoso: >1000 μg/ml Pérez (2002); Gadano et al. (2007); Waizel & Waizel (2009); Chile. Ministerio de Salud (2010); Bussmann et al. (2011).
  Nauseas, vómitos, dolor abdominal tipo cólico, diarrea LC50 Extracto etanólico: 159 μg/ml
  Tóxico por acumulación en pequenas dosis Extracto acuoso: citotóxico
Foeniculum vulgare Mill El anetol y la miristicina, presentes en el aceite esencial, en dosis mayores a 1 ml pueden provocar efectos convulsionantes y alucinaciones. El aceite esencial no debe emplearse en niños menores de 5 anos, puede provocar fotodermatitis y dermatitis por contacto. En ratas se observó buena tolerancia sin ningún efecto tóxico considerable a dosis de 2.000 mg/kg. Mendocilla & Villar (2001); Colombia. Ministerio de Protección Social (2008); Sánchez & Sánchez (2012).
Juglans regia L. Sin información Sin información Sin información  
Punica granatum L. La sobredosis puede provocar vértigo, disminución de la visión, debilidad, calambres y temblores convulsivos. No consumir en caso de Epilepsia, embarazo y en menores de 5 años. Sin información Chile. Ministerio de Salud (2010).
Ruta chalepensis L. En dosis concentradas o sobredosis pueden producir úlceras estomacales o intestinales, vómitos, diarreas, cefalea, temblores, hipotensión y colapso cardiocirculatorio. En estado fresco puede producir fotodermatitis por contacto. No consumir durante el embarazo Extracto acuoso liofilizado: Efectos embriotóxicos en ratones expuestos durante el período postimplantacional (malformaciones esqueléticas). Prada et al. (2003); Gonzáles et al. (2007); Chile. Ministerio de Salud (2010).

DISCUSIÓN

Son numerosas las plantas que de forma tradicional han sido empleadas como antiparasitarios en humanos y animales en Ámerica (Cáceres & Machain, 2001; Hall et al., 2002; Terceros, 2007; Satalaya et al., 2009) y en el resto del mundo (Akhtar et al., 2000; Fresquet, 2001; Giday, 2001; Urban et al., 2008). Sin embargo, es notorio el vacío en el conocimiento farmacológico empírico de estas plantas en Chile. La Flora presente en la región de Coquimbo es altamente diversa, sin embargo no se encontraron estudios específicos en relación a las características fitoquímicas o etnobotánicas de las plantas medicinales de esta zona, sólo referencias generales a la condición de "planta medicinal" o datos muy inespecíficos en algunos trabajos.

Una de las plantas con mayor número de estudios asociados es C. ambrosoides. Esta especie, originaria de América Central, está ampliamente distribuida y tiene un uso muy extendido a lo largo de toda América, Europa, África y Asia, lo que ha generado una gran cantidad de estudios de sus características y propiedades (Gómez, 2008).

Un elemento importante a considerar al momento de la utilización de una planta medicinal y de sus principios activos son los posibles efectos secundarios que puedan generar, los cuales en algunos casos pueden opacar los efectos terapéuticos. Por ejemplo, en un ensayo realizado en el que se aplicó extracto acuoso de R. chalepensis a ratones gestantes, se detectaron importantes malformaciones esqueléticas en los embriones (González et al., 2007). Por su parte, el Ascaridol, principal componente del aceite esencial de C. ambrosoides es citóxico y genotóxico, incluso en pequeñas dosis pues su efecto es acumulativo (Gadano et al., 2007; Bussman et al., 2011; Gómez et al., 2011). Torres et al (2003) mencionan que su uso en la medicina vernácula no está exento de riesgos, ya que la dosis efectiva está muy cercana a la dosis tóxica, por lo que se deben extremar las precauciones en sus aplicaciones.

Otro elemento a considerar es que la concentración de los principios activos de una planta puede variar dependiendo de factores como la parte de la planta utilizada, la estación del año en que la planta es recolectada o las condiciones del suelo en que crece. A manera de ejemplo mencionaremos las diferencias encontradas en el contenido en Ascaridol en el aceite esencial de C. ambrosioides, el cual es muy variable y depende de la zona en que es recolectada. Torres et al. (2003) mencionan que muestras provenientes de San Lorenzo (Corrientes) contenían 10% de Ascaridol, en La Paz (Córdoba) contenían 20% y 16%; en Río de Janeiro se dosó un 58 a 67,5%, y en aceites esenciales de plantas del Caribe y Centro América, un 42 al 90%. Por lo tanto, sería aconsejable la realización de estudios etnoveterinarios, fitoquímicos y farmacológicos que identifiquen y cuantifiquen con mayor precisión los principios activos y los efectos de las plantas medicinales que crecen en una determinada región o localidad.

La etnoveterinaria no presenta mayor desarrollo en Chile, por lo que no existen antecedentes respecto al uso de las plantas que crecen en el país como antihelmínticos en animales, a excepción de C. ambrosoides que está ampliamente estudiada en cabras y ovejas en otras regiones del mundo. En Etiopía, Eguale & Giday (2009) evaluaron el efecto de los extractos acuoso e hidroalcohólico de hojas de C. ambrosoides sobre huevos y adultos de Haemonchus contortus en ovejas, encontrando que a una concentración menor o igual a 2 mg / ml se inhibía el eclosión de los huevos pero con un efecto moderado sobre la supervivencia de los parásitos adultos. En los EE.UU., Ketzis et al. (2002), trabajando con aceite esencial de C. ambrosioides en cabras infectadas con Haemonchus contortus señalan que no se tienen efectos importantes en tratamientos a corto plazo (0,2 ml/kg por 5-10 días) pero si tuvieron una eficacia igual al Tiabendazol, sobre la viabilidad de las larvas.

Algunas especies vegetales muestran efectos antihelmínticos importantes in vitro pero no siempre se replican estos resultados en ensayos in vivo y difícilmente igualan a los antihelmínticos sintéticos disponibles (Githiori et al., 2006; Cuellar, 2007; Nery et al., 2009). Por ejemplo, Batatinha et al. (2004), considerando los buenos resultados que mencionaban los estudios in vitro sobre la actividad antihelmíntica del zumo de ajo en caprinos, evaluaron sus efectos sobre nematódos gastrointestinales de caprinos in vivo, encontrando porcentajes de redución del número de huevos y larvas de Strongyloidea inferiores al 95%, porcentaje logrado en el grupo control. Por su parte, Worku et al. (2009) reportaron que el concentrado de jugo de ajo no presentó un efecto antihelmíntico eficiente en cabras adultas Boer. Resultados igualmente negativos fueron obtenidos por Santos & Carvalho (2014) al utilizar tintura alcoholica de ajo en un experimento in vivo con ovejas, y por Amin et al. (2008) quienes estudiaron el efecto del extracto acuoso de ajo en cabras. Esta diferencia en los resultados obtenidos también se repite en otras especies medicinales, como es el caso de Artemisia absinthium (Burke et al., 2009). Santos & Carvalho (2014) señalan que esta variabilidad en los resultados obtenidos por diferentes investigadores para una misma especie vegetal pueden ser atribuídas a factores relacionados ya sea con la propia planta, con la metodología experimental utilizada o con los animales hospederos.

Estas diferencias en la eficacia de las plantas medicinales, en contraste con referencias sobre su uso tradicional o sobre su actividad in vitro, obliga a los futuros investigadores tanto a normalizar los procedimientos con respecto a la metodología de recolección de plantas, preparación de extractos, dilución, dosificación y modo de administración, como también a considerar elementos adicionales al ensayo per-se. En esta misma línea, Athanasiadou et al. (2007) señalan que la variabilidad estacional y ambiental de una planta también puede afectar las propiedades antiparasitarias y hacen notar la importancia de identificar los mecanismos de acción específicos de cada planta y de definir las especies de parásitos a las cuales está destinada. También mencionan que además de las propiedades antiparasitarias, las plantas medicinales pueden tener propiedades anti-nutricionales que pueden afectar el rendimiento del animal y su comportamiento, por lo los futuros estudios requerirán desarrollar un enfoque holístico al momento de evaluar el potencial de las plantas medicinales en el control de parásitos.

A modo de sumario, podemos señalar que los datos recopilados para las plantas que crecen en la región de Coquimbla indican que al menos 6 especies presentan potencial medio como antihelmíntico: A. sativum, C. ambrosoides, F. vulgare, J. regia, P. granatum y R. chalepensis. De ellas, A. sativum, A. absinthium y C. ambrosoides, presentan antecedentes, fitoquímicos y farmacológicos coherentes con el uso tradicional de la planta y además registran pruebas in vivo con actividad positiva, por lo que pueden ser consideras con un alto potencial como antihelmíntico. Sin embargo, la gran variabilidad en la eficacia reportada para A. sativum, A. absinthium y C. ambrosoides hace necesario nuevos estudios para lograr evidencias concretas y repetibles de su actividad antihelmíntica para su uso en ganado caprino, los que deben incluir tanto ensayos in vivo, con animales naturalmente infectados, observaciones de comportamiento en el animal tratado y pruebas de campo, como así también la caracterización y cuantificación de todos los compuestos específicos de la especie vegetal y la caracterización estacional y ambiental de cada planta para la región de estudio.

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Recibido: 30 de Septiembre de 2013; Aprobado: 21 de Julio de 2014

* Autor para correspondencia: vescudero@userena.cl

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