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Caracterização molecular de populações de Euseius citrifolius Denmark & Muma e Euseius concordis (Chant) (Acari: Phytoseiidae) utilizando o seqüenciamento das regiões ITS1 e ITS2

Molecular characterization of mite populations of Euseius citrifolius Denmark & Muma and Euseius concordis (Chant) (Acari: Phytoseiidae) using sequences of the ITS1 and ITS2 regions

Resumos

A identificação dos ácaros geralmente é feita com base nas características morfológicas. Entretanto, as evidências morfológicas nem sempre são suficientes para a distinção de espécies muito próximas, levando o taxonomista a considerar aspectos ecológicos, biológicos e, mais recentemente, as características moleculares. A caracterização molecular de populações de Euseius citrifolius Denmark & Muma e E. concordis (Chant) foi realizada com o seqüenciamento da região dos espaçadores internos transcritos ITS1 e ITS2 utilizando-se os primers P1 (5'-AGAGGAAGTAAAAGTCGTAACAAG-3)' e P2 (5'-ATATGCTTAAATTCAGGGGG-3'), localizados nas regiões 18S e 28S do DNA ribossomal, respectivamente. Foram caracterizadas as seguintes populações: E. citrifolius: Arroio do Meio-RS, Campinas-SP e Petrolina-PE; E. concordis: Arroio do Meio, Jaguariúna-SP, Pontes e Lacerda-MT, Petrolina e Viçosa-MG. O seqüenciamento dos ITS1 e ITS2 permitiu separar os grupos de populações de E. citrifolius e de E. concordis. A similaridade entre as seqüências das duas espécies foi superior a 94%. Maior variação entre as populações foi observada no espaçador ITS1 que no espaçador ITS2. O seqüenciamento da região ITS auxilia na identificação de fitoseídeos especialmente em casos de populações que apresentam incompatibilidade citoplasmática e que requeiram informações adicionais.

Controle biológico; DNA; fitoseídeo; predador


Mites have usually been identified by their morphological characteristics. However, morphological evidences are not always sufficient to distinguish between closely related species, leading taxonomists to consider additional ecological, biological and, more recently, molecular characteristics in this process. The molecular characterization of populations of Euseius citrifolius Denmark & Muma and Euseius concordis (Chant) was done by sequencing the internal transcribed spacers ITS1 and ITS2 using the P1 (5'-AGAGGAAGTAAAAGTCGTAACAAG-3)' and P2 (5'-ATATGCTTAAATTCAGGGGG-3') primers, located in 18S and 28S regions of the ribosomal DNA. The following populations were characterizate: E. citrifolius: Arroio do Meio-RS, Campinas-SP and Petrolina-PE; E. concordis: Arroio do Meio, Jaguariúna-SP, Pontes e Lacerda-MT, Petrolina and Viçosa-MG. The sequencing of ITS1 and ITS2 allowed the discrimination between the group of populations of E. citrifolius from E. concordis. The similarity between the sequences was more than 94%. Most of the variation between populations was observed more in ITS1 than in ITS2. The sequencing of ITS region helps the identification of phytoseiid species when the populations show citoplasmatic incompatibility and need additional information.

Biological control; DNA; phytoseiid; predator


SYSTEMATICS, MORPHOLOGY AND PHYSIOLOGY

Caracterização molecular de populações de Euseius citrifolius Denmark & Muma e Euseius concordis (Chant) (Acari: Phytoseiidae) utilizando o seqüenciamento das regiões ITS1 e ITS2

Molecular characterization of mite populations of Euseius citrifolius Denmark & Muma and Euseius concordis (Chant) (Acari: Phytoseiidae) using sequences of the ITS1 and ITS2 regions

Aloyséia C.S. NoronhaI; Adilson MotaII; Gilberto J. MoraesIII; Luiz L. CoutinhoIV

IEmbrapa Mandioca e Fruticultura, C. postal 007, 44380-000, Cruz das Almas, BA

IIEmbrapa Gado de Leite, Rua Eugênio do Nascimento, 610, 36038-330, Juiz de Fora, MG

IIIPesquisador do CNPq, Depto. Entomol., Fitopatol. Zool. Agrícola

IVDepto. Produção Animal. ESALQ/USP, C. postal 9, 13418-900, Piracicaba, SP

RESUMO

A identificação dos ácaros geralmente é feita com base nas características morfológicas. Entretanto, as evidências morfológicas nem sempre são suficientes para a distinção de espécies muito próximas, levando o taxonomista a considerar aspectos ecológicos, biológicos e, mais recentemente, as características moleculares. A caracterização molecular de populações de Euseius citrifolius Denmark & Muma e E. concordis (Chant) foi realizada com o seqüenciamento da região dos espaçadores internos transcritos ITS1 e ITS2 utilizando-se os primers P1 (5'-AGAGGAAGTAAAAGTCGTAACAAG-3)' e P2 (5'-ATATGCTTAAATTCAGGGGG-3'), localizados nas regiões 18S e 28S do DNA ribossomal, respectivamente. Foram caracterizadas as seguintes populações: E. citrifolius: Arroio do Meio-RS, Campinas-SP e Petrolina-PE; E. concordis: Arroio do Meio, Jaguariúna-SP, Pontes e Lacerda-MT, Petrolina e Viçosa-MG. O seqüenciamento dos ITS1 e ITS2 permitiu separar os grupos de populações de E. citrifolius e de E. concordis. A similaridade entre as seqüências das duas espécies foi superior a 94%. Maior variação entre as populações foi observada no espaçador ITS1 que no espaçador ITS2. O seqüenciamento da região ITS auxilia na identificação de fitoseídeos especialmente em casos de populações que apresentam incompatibilidade citoplasmática e que requeiram informações adicionais.

Palavras-chave: Controle biológico, DNA, fitoseídeo, predador

ABSTRACT

Mites have usually been identified by their morphological characteristics. However, morphological evidences are not always sufficient to distinguish between closely related species, leading taxonomists to consider additional ecological, biological and, more recently, molecular characteristics in this process. The molecular characterization of populations of Euseius citrifolius Denmark & Muma and Euseius concordis (Chant) was done by sequencing the internal transcribed spacers ITS1 and ITS2 using the P1 (5'-AGAGGAAGTAAAAGTCGTAACAAG-3)' and P2 (5'-ATATGCTTAAATTCAGGGGG-3') primers, located in 18S and 28S regions of the ribosomal DNA. The following populations were characterizate: E. citrifolius: Arroio do Meio-RS, Campinas-SP and Petrolina-PE; E. concordis: Arroio do Meio, Jaguariúna-SP, Pontes e Lacerda-MT, Petrolina and Viçosa-MG. The sequencing of ITS1 and ITS2 allowed the discrimination between the group of populations of E. citrifolius from E. concordis. The similarity between the sequences was more than 94%. Most of the variation between populations was observed more in ITS1 than in ITS2. The sequencing of ITS region helps the identification of phytoseiid species when the populations show citoplasmatic incompatibility and need additional information.

Key words: Biological control, DNA, phytoseiid, predator

Ácaros da família Phytoseiidae são eficientes inimigos naturais de ácaros fitófagos e vêm sendo utilizados em condições de campo e de casa de vegetação, no controle de ácaros-praga (Rasmy & Ellaithy 1988, McMurtry 1992, Bellotti et al. 1999). Moraes (1987) citou que a taxonomia é o ponto de partida para a introdução, conservação e incremento de agentes de controle biológico. A identificação de fitoseídeos é usualmente feita com base em características morfológicas, entretanto, muitas vezes somente essas evidências não são suficientes para a distinção segura entre espécies semelhantes. Para o esclarecimento de possíveis dúvidas, aspectos ecológicos, biológicos e, mais recentemente, a caracterização molecular vêm sendo usados em complemento aos aspectos morfológicos para diferentes grupos de organismos. Alguns trabalhos na área da caracterização molecular vêm sendo realizados com ácaros (Navajas et al. 1992, 1994, 1997).

Um trabalho preliminar com fitoseídeos foi realizado por Navajas et al. (1999), para verificar o nível de variação nas seqüências da região dos espaçadores internos transcritos ITS1 e ITS2 (do inglês, ''Internal Transcribed Spacer'') do DNA ribossomal. As espécies estudadas foram Neoseiulus californicus (McGregor), Neoseiulus fallacis (Garman), Euseius concordis (Chant), Galendromus occidentalis (Nesbitt), Typhlodromus pyri Scheuten e Phytoseiulus persimilis Athias-Henriot. Os autores verificaram que a região do espaçador ITS1 apresentou maior comprimento (303-404 pares de bases) e maior variação na seqüência de nucleotídeos que o espaçador ITS2 (80-89 pares de bases), sugerindo que a seqüência do espaçador ITS1 pode ser usada para identificação de espécies. Regiões espaçadoras evoluem rapidamente e de forma diferenciada entre populações, e podem ser usadas para diferenciar espécies ou populações de uma mesma espécie. Essas regiões vêm sendo seqüenciadas em diversos organismos (Torres et al. 1990; Hoy 1994; Navajas et al. 1994, 1997; Ciociola Junior et al. 2001).

Apesar das variações encontradas por Noronha & Moraes (2002a), não foi possível estabelecer uma diferenciação morfológica segura entre três populações de Euseius citrifolius Denmark & Muma e cinco populações de E. concordis. Entretanto, permitiu a diferenciação das populações de E. citrifolius de Petrolina e de E. concordis de Jaguariúna das demais populações estudadas correspondentes. Resultados de testes de cruzamentos realizados Noronha (2002) e Noronha & Moraes (2002b) mostraram certo grau de incompatibilidade reprodutiva entre populações de E. citrifolius, e a ocorrência de incompatibilidade reprodutiva parcial ou total entre algumas populações de E. concordis. Para uma conclusão nesse aspecto, um estudo em nível molecular pode fornecer importantes subsídios para o conhecimento das variações moleculares nestas populações.

Neste trabalho o conhecimento das variações moleculares em populações de E. citrifolius e E. concordis foi realizado envolvendo a amplificação e o seqüenciamento dos espaçadores internos transcritos (ITS1 e ITS2) do DNA ribossomal.

Material e Métodos

Foram estudadas duas espécies de fitoseídeoscom espécimes procedentes das seguintes populações: E. citrifolius coletados em Arroio do Meio-RS, Campinas-SP e Petrolina-PE; E. concordis coletados em Arroio do Meio, Jaguariúna-SP, Pontes e Lacerda-MT, Petrolina e Viçosa-MG.

Fêmeas de cada população foram individualizadas em tubos de microcentífuga (0,5 ml) e conservadas a -80ªC. A extração de DNA foi realizada seguindo o protocolo descrito por Navajas et al. (1999), com pequenas modificações. Fêmeas individualizadas no interior de tubos de microcentífuga (1,5 ml) foram maceradas a seco. Cada tubo recebeu 200 ml do tampão de extração (2% CTAB, 1,4 M NaCl, 0,2% 2-b mercaptoetanol, 20 mM EDTA, 100 mM Tris-HCl pH 8,0) e foi mantido em banho-maria a 60oC por 20 min. Em cada amostra, foram adicionados 200 ml da mistura clorofórmio e álcool isoamílico (24:1), sendo o material centrifugado por 15 min. a 11.000 g à temperatura ambiente. O sobrenadante foi transferido para novo tubo, com o DNA precipitado pela adição de igual volume de isopropanol gelado e incubado a 20oC por 1h. Em seguida, o material foi centrifugado por 10 min. a 11.000 g e o sobrenadante descartado. O precipitado foi lavado com 500 ml de etanol 75%, centrifugado por 15 min. a 11.000 g, seco ao ar e ressuspenso em 20 ml de água Milli Q.

Na reação para amplificação das regiões ITS1 e ITS2 foram usados os primers citados por Navajas et al. (1999), P1 (5'-AGAGGAAGTAAAAGTCGTAACAAG-3)' e P2 (5'-ATATGCTTAAATTCAGGGGG-3'), localizados nas regiões 18S e 28S do DNAr, respectivamente. Cada reação foi feita num volume total de 50 ml , com 5 ml de amostra de DNA e 45 ml da mistura [5 ml do tampão de PCR 10X, 1 ml de dNTP (10 mM), 5 ml de cada ''primer'' (5 mM), 5 ml de MgCl2 (2,5 mM), 0,5 ml de Taq polimerase (5U/ml) e 23,5 ml de água Milli Q autoclavada]. As amplificações foram realizadas em termociclador PCT-100 (M. J. Research), com programação consistindo de um ciclo de 1 min. a 94oC, 30 ciclos de 1 min. a 93oC, 1 min. a 50oC e 1 min. de 72oC, com um ciclo final de 5 min. a 72oC. Foram realizadas quatro reações de amplificação para cada amostra de DNA, constituída de 20 ml. O produto de cada reação de PCR foi analisado por eletroforese em gel de agarose a 1% corado com brometo de etídeo (10 mg/ml), e os géis visualizados sob luz UV.

Os produtos de PCR foram purificados utilizando o ''WizardÒ PCR Preps DNA Purification System''. No preparo das amostras para a purificação, foram usados cerca de 190 ml do produto de PCR de cada amostra de DNA, correspondentes às quatro reações de amplificação.

Os produtos de PCR purificados foram seqüenciados com o ''DYEnamicTM ET Terminator Cycle Sequencing Kit'' usando os mesmos primers utilizados nas reações de amplificação. Foram seqüenciadas três amostras de cada população para cada ''primer''. Cada reação de seqüenciamento foi feita num volume total de 10 ml, correspondente a 4 ml do produto de PCR purificado (400 ng de DNA), 2 ml da mistura de reagentes do kit, 1,0 ml do ''primer'' e 3 ml de água Milli Q autoclavada. A reação foi conduzida em termociclador PCT-100, com a programação consistindo de 30 ciclos de 20 s a 95oC, 15 s a 50oC e 1 min. a 60oC, e um ciclo final de 5 min. a 4oC.

Após a reação, o DNA foi precipitado pela adição de 1 ml do tampão acetato de sódio/EDTA (acetato de sódio 1,5M, pH > 8, 250 mM EDTA) e 40 ml de etanol 95%. O material foi homogeneizado e centrifugado a 12.000 g por 15 min. Após a retirada do álcool foram adicionados 250 ml de etanol 70%, centrifugando-se a amostra a 12.000 g por 5 min. e retirando-se posteriormente o álcool. O precipitado foi ressuspenso em 4 ml de tampão de formamida. As amostras foram submetidas à eletroforese em gel de acrilamida 5% por 10h no seqüenciador automático de DNA ABI 377 (Applied Biosystems).

No alinhamento de todas as seqüências obtidas para cada ''primer'', foram utilizados os programas Phred/Phrap/Consed (University of Washington). As seqüências obtidas para cada população foram comparadas com seqüências de fitoseídeos disponíveis no banco de dados do ''National Center for Biotechnology Information NCBI'' (GenBank) (www.ncbi.nlm.nih.gov) através do programa BLAST (Basic Local Alignment Search Tool).

Resultados

Com o alinhamento das seqüências obtidas para cada reação de seqüenciamento, verificou-se a formação de dois conjuntos de alinhamentos distintos, um conjunto formado pelas seqüências dos indivíduos das populações de E. citrifolius e outro formado pelas populações de E. concordis. A similaridade entre as seqüências das duas espécies foi superior a 94%. A região do espaçador ITS1 apresentou maior comprimento (282 a 305 pares de bases) na seqüência de nucleotídeos que o espaçador ITS2 (83 pares de bases). As diferenças mais marcantes foram encontradas no espaçador ITS1. Comparando-se as seqüências do ITS1 das populações de E. citrifolius de Arroio do Meio e Campinas, e de E. concordis de Arroio do Meio, Jaguariúna, Pontes e Lacerda e Viçosa foram encontrados 11 polimorfismos. Maior variação no ITS1 foi verificada comparando-se as sequências de E. citrifolius de Arroio do Meio e Campinas e E. concordis de Petrolina, com 14 polimorfismos. Como esperado, as seqüências do gene 5,8S apresentaram 100% de similaridade entre todas as populações das duas espécies. Poucas variações entre as seqüências das duas espécies foram encontradas no espaçador ITS2, com um polimorfismo e similaridade de 98% entre as seqüências. Os polimorfismos foram detectados em seqüências que não apresentaram diferenças nas reações de seqüenciamento, com bases de alta qualidade tratando-se provavelmente de variações dentro de uma mesma espécie.

Comparando-se as seqüências das populações de E. citrifolius, verifica-se que a população de Petrolina apresenta a ocorrência de quatro variações no espaçador ITS1 e uma variação no espaçador ITS2 em relação às demais populações (Fig. 1).


Comparando-se as seqüências das populações de E. concordis, verifica-se que a região espaçadora ITS apresenta baixo nível de polimorfismo (Fig. 2). Foram encontradas três variações na população de Petrolina em relação às outras populações, duas constituídas por substituições de nucleotídeos localizadas na região do espaçador ITS1 e uma pela introdução também nessa região de um espaço. Encontrou-se uma variação na região do espaçador ITS2 da população de Jaguariúna em relação às demais populações, correspondente à introdução de um espaço na seqüência daquela população. Essas constatações concordam com os resultados de caracterização morfológica verificados por Noronha & Moraes (2002a), que mostram uma distinção das populações de Petrolina e, especialmente de Jaguariúna em relação às outras populações quando apenas as médias das medições de diferentes estruturas são consideradas. Estas constatações são também compatíveis com os resultados obtidos por Noronha (2002) em testes de cruzamentos, que mostram níveis maiores de incompatibilidade reprodutiva da população de Petrolina em relação às outras populações (ausência de progênie ou progênie constituída somente de machos) e de Jaguariúna, em relação a Pontes e Lacerda e Viçosa (progênie somente de machos em alguns cruzamentos).


Os polimorfismos e espaço verificados na seqüência de bases dos espaçadores ITS1 e ITS2 da população de Petrolina estudada neste trabalho também são encontrados na seqüência depositada por Navajas et al. (1999) e a similaridade entre essas duas seqüências foi de 97% (Fig. 2). A similaridade entre a seqüência depositada por Navajas et al. (1999) e as seqüências das populações de E. concordis relatadas neste trabalho foi superior a 95%. As seqüências do espaçador ITS1 obtidas neste trabalho e a seqüência de E. concordis depositada por Navajas et al. (1999) apresentaram similaridade superior a 94%. Já o espaçador ITS2 apresentou similaridade superior a 96% com aquela seqüência.

Discussão

A formação de dois conjuntos de alinhamentos distintos separando E. citrifolius de E. concordis através das seqüências dos espaçadores ITS corroboram as sugestões de diferentes autores de que os espaçadores internos ITS1 e ITS2 são apropriados para discriminar espécies relacionadas ou até mesmo variações dentro da mesma espécie (Gotoh et al. 1998, Navajas et al. 1999, Silva et al. 1999).

Os resultados dos seqüenciamentos realizados não permitem a identificação das espécies, considerando-se o reduzido número de seqüências disponíveis no GenBank para ácaros fitoseídeos. Entretanto, este estudo forneceu informações para um melhor entendimento sobre as incompatibilidades e o isolamento reprodutivo verificados em alguns cruzamentos (Noronha 2002, Noronha & Moraes 2002b).

Outros estudos devem ser conduzidos para o entendimento dessas variações, envolvendo inclusive a região do gene Citocromo Oxidase subunidade I (COI) do DNA mitocondrial (DNAmt). Esta região vem sendo utilizada no estudo de relações filogenéticas, no estudo de diversidade e na identificação de espécies de ácaros tetraniquídeos (Navajas et al. 1994, 1996, 1997, 1998).

Em E. concordis, os dois polimorfismos simples de nucleotídeos verificados na população de Petrolina, confirmam os resultados obtidos por Navajas et al. (1999) para indivíduos procedentes dessa localidade em relação aos indivíduos de Jaguariúna. A inserção/deleção verificada na população de Petrolina, foi também citada por Navajas et al. (1999).

Navajas et al. (1999) verificaram completa homologia nos espaçadores ITS1 e ITS2 em espécimes de N. californicus de áreas geográficas distantes entre si. Entretanto, baixo nível de polimorfismo nestas regiões foi verificado pelos mesmos autores em espécimes de E. concordis e de E. fallacis, com a substituição de dois nucleotídeos. Navajas et al. (1994) verificaram a incompatibilidade reprodutiva parcial entre populações de Mononychellus progressivus Doreste do Brasil e do Congo. Estas mesmas populações apresentaram também diferenças nas seqüências do espaçador ITS2 e do gene COI. No alinhamento das seqüências do espaçador ITS2, os autores verificaram um espaço (inserção/deleção) de quatro pares de bases e duas mutações simples, enquanto sete mutações foram encontradas no gene COI da população do Brasil em relação à população do Congo. A combinação desses resultados levou os autores a sugerir que a incompatibilidade reprodutiva observada pudesse estar ligada às diferenças genéticas entre aquelas populações.

Conclui-se que a caracterização molecular, particularmente o seqüenciamento da região do espaçador ITS, auxilia na identificação de ácaros especialmente em casos de populações que apresentam incompatibilidade citoplasmática e que requeiram informações adicionais.

Agradecimentos

Ao PRONEX pelo suporte financeiro e ao Departamento de Produção Animal, ESALQ/USP, onde o trabalho foi conduzido.

Literatura Citada

Received 25/11/02

Accepted 23/09/03

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Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    09 Mar 2004
  • Data do Fascículo
    Dez 2003

Histórico

  • Recebido
    25 Nov 2002
  • Aceito
    23 Set 2003
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