Otimização da reação de polimerase em cadeia para detecção de Toxoplasma gondii em sangue venoso e placenta de gestantes

Optimization of Toxoplasma gondii detection by PCR in pregnants blood and placenta

ARTIGO ORIGINAL

ORIGINAL PAPER

Otimização da reação de polimerase em cadeia para detecção de Toxoplasma gondii em sangue venoso e placenta de gestantes

Optimization of Toxoplasma gondii detection by PCR in pregnants blood and placenta

Silvia Maria Spalding¹

Maria Regina Reis Amendoeira²

Janice M.C. Coelho³

Sergio O. Angel⁴

Recebido em 04/07/01

Aceito para publicação em 28/02/02

unitermos

PCR

Toxoplasma gondii

Gestantes

resumo

A detecção de Toxoplasma gondii no sangue venoso e na placenta de gestantes pela reação de polimerase em cadeia pode facilitar o diagnóstico pré-natal da toxoplasmose congênita. Foram avaliadas gestantes IgM-reagentes e os seus filhos. Além das dosagens de IgG, IgM, IgA e reação de avidez de IgG (MEIA), foram realizadas a técnica de imunoperoxidase e a inoculação em camundongos. De cada amostra foi efetuada amplificação gênica com primers do gene B1 e novos primers do gene TGR (chamados ABGTg7 C1 e N1). É preciso observar que o tratamento poderia ser responsável por uma diminuição da infecção. Desta forma, o diagnóstico negativo confirmaria a eficiência do tratamento preventivo na replicação parasitária no útero. A reação de polimerase em cadeia mostrou-se sensível e específica; evidenciou a presença de um a dez taquizoítas; pode ser utilizada com segurança e confiabilidade, além de tornar rápido o diagnóstico da toxoplasmose congênita, sendo, assim, ferramenta importante na avaliação pré-natal.

abstract

The Toxoplasma gondii detection in venous blood and placenta of pregnants by polymerase chain reaction may facilitate the diagnosis of congenital toxoplasmosis. We evaluated pregnants with reagent immunoglobulin M (IgM) and their children. Beyond serological toxoplasma-specific immunoglobulins G (IgG), M (IgM), A (IgA) and IgG avidity (MEIA), we did immunoperoxidasis and mice inoculation. Genomic amplification with gene B1 primers and new TgR primers (called ABGTg7 C1 and N1) was conducted for each sample. It's necessary to observe that treatment probably is responsible for the infection decrease, that manner, negative results would confirm uteri therapeutic efficiency. PCR was sensitive and specific, it identified one to ten tachyzoites. Besides being a fast form of congenital toxoplasmosis diagnosis, it may be used safely and trustly, as an important tool for congenital evaluation.

key words

PCR

Toxoplasma gondii

Pregnants

Introdução

A toxoplasmose congênita pode ocorrer quando a mulher adquire a infecção, fase aguda, durante a gestação e a transmite ao feto (16, 19). Segundo Wong & Remington (21), 90% destes casos são assintomáticos ou oligossintomáticos. Nos casos subclínicos, o ideal seria a demonstração da parasitemia no neonato, o que pode ser realizado por meio de isolamento do parasita em animais e/ou PCR de sangue venoso. O isolamento do protozoário, a histologia e a histoquímica da placenta são também de grande valor para o diagnóstico (10). Atualmente, também tem sido utilizada a reação de polimerase em cadeia (PCR), técnica que tem mostrado maior sensibilidade (92%-97,4%) e especificidade (100%) do que os outros métodos de diagnóstico já citados (6, 11, 14). Com a introdução de diagnóstico sensível e precoce para a avaliação de gestantes, é possível iniciar terapêutica específica que previne a transmissão desta protozoose ou minimiza o desenvolvimento de lesões no feto.

O objetivo deste trabalho foi o estabelecimento de um diagnóstico de PCR in house, através de diferentes primers, avaliando a sensibilidade e a especificidade em material de sangue total e placenta.

Material e métodos

Pacientes e controles

Foram estabelecidos dois grupos. O primeiro grupo, o controle, era constituído por 31 mulheres soronegativas (IgG e IgM não-reagentes) durante toda a gestação e pelos 31 recém-nascidos respectivos. Foram efetuadas dosagens de IgG (Elisa), de IgG (IFI) e de IgA (MEIA). Nesta mesma data, foi coletado sangue com EDTA para tentar evidenciar o parasito por inoculação em camundongos e PCR. No momento do parto, coletaram-se as placentas de cinco mulherespara realizar a técnica de imunoperoxidase, a inoculação em camundongos e a PCR.

No primeiro contato com as crianças, após o parto, foi coletado sangue com EDTA para a inoculação em animais e PCR e sangue sem EDTA para a realização de dosagens sorológicas através das mesmas metodologias já referidas.

O outro grupo era formado por 50 gestantes soropositivas (IgG e IgM positivas) e seus 51 recém-nascidos (um parto gemelar). No momento do parto, coletaram-se as placentas de 18 mulheres para realizar a técnica de imunoperoxidase, a inoculação em camundongos e a PCR. Efetuaram-se também as mesmas metodologias em quatro cordões umbilicais. Neste grupo, além dos métodos de diagnóstico já citados no grupo-controle, foi realizada a reação de avidez de IgG (MEIA).

Todas as mães e seus filhos foram acompanhados clínica e sorologicamente até, no mínimo, o final do primeiro ano de vida da criança.

Metodologia

A metodologia de extração do DNA do T. gondii foi realizada conforme Angel et al. (1), e a de amplificação gênica, conforme Ho-Yen et al. (15), com modificações.

Teste de sensibilidade

A suspensão de taquizoítas de T. gondii foi retirada do líquido peritoneal de camundongos previamente infectados, e foram preparados tubos com as concentrações que variaram de 1 a 10⁷ taquizoítas. Foram efetuados os procedimentos de extração e quantificação do DNA. Para a execução da reação de amplificação foram utilizados 100ng.

Teste de especificidade

Para o teste de especificidade foram amplificadas amostras de DNA: humano, Trypanosoma cruzi, Leishmania amazonensis, Trichuris trichiura, Cryptosporidium spp., Plasmodium falciparum, Echinococus granulosus, Mycobacterium tuberculosis e Neisseria meningitidis.

Oligonucleotídeos

Foram utilizados dois pares de primers do gene B1 correspondentes aos nucleotídeos 694-714, 887-868, 757-776 e 853-831. Para a realização da PCR simples, os primers Toxo-N1 (5'– GGAACTGCATCCGTTCATGAG – 3') e Toxo-C1 (5' – TCTTTAAAGCGTTCGTGGTC – 3'). Para a realização da PCR nested fez-se uso dos primers Toxo-N2 (5' – TGCATAGGTTGCAGTCACTG – 3') e Toxo-C2 (5' – GGCGACCAATCTGCGAATACACC – 3').

Também foi utilizada a seqüência do elemento repetitivo em tandem TGR (4) através do par de primers ABGTg C1 (5' – TCTTTAAAGCGTTCGTGGTC-3') e N1 (5' – GGAACTGCATCCGTTCATGAG-3') em amplificação simples. Estes primers foram desenhados a partir do alinhamento de seqüências obtidas dos elementos TGR 1E, 1 A, 2 e 4 (Cristina et al., 1991) e dos elementos ABGTg7 e ABGTg8 (18).

Processamento das amostras

Foram colocados 500ml da amostra de sangue total e, para as amostras de placenta, cortados fragmentos (de 1cm³) de, aproximadamente, 200g de placenta, os quais foram triturados em gral com TE. A mistura obtida foi filtrada e foram realizadas três lavagens com TE (Tris-HCl [10mM], EDTA [1mM], pH 8). O sedimento foi ressuspenso em 300ml de TE, sendo-lhe adicionados 5ml de proteinase K 20mg/ml. Após, o material foi incubado a 56ºC durante duas horas. Depois desta incubação, foi iniciada a extração do DNA pela adição de 300ml de fenol tamponado. A fase aquosa foi retirada e adicionaram-se 300ml de fenol: clorofórmio/álcool isoamílico (1:1) e, após, com 300ml de clorofórmio/álcool isoamílico. Foi adicionado etanol a 100%. Em paralelo, foi realizado o controle da extração de DNA. A quantificação do DNA foi realizada em gel de agarose a 1%.

Detecção da PCR

Foi preparada a mistura de reação nas seguintes concentrações: tampão 10ml x 5ml; MgCl (50mM) 1,5ml; primer Toxo-N1 (50pmol/ml) 1ml; primer Toxo-C1 (50pmol/ml) 1ml; DNTPs (10mM) 1ml; Taq polimerase 0,5ml; água Mili-Q q.s.p. 50ml; óleo mineral 30ml. Foram acrescentados em cada bateria de testes três controles positivos, um controle negativo de extração e um de reação.

Foi utilizada a seguinte programação 95ºC por 4min para desnaturação, 35 ciclos: numa temperatura de 95ºC durante 1min para desnaturação, 55ºC por 45s para anelamento, 72ºC por 1min para extensão e, finalizando, uma incubação adicional a 72ºC durante 10min. O amplicon resultante foi checado em gel de agarose a 2%, colocado em cuba de eletroforese durante um hora a 100V. A visualização foi efetuada através de luz ultravioleta (UV).

PCR nested e TGR-PCR

Todas as amostras negativas e controles foram submetidos a PCR nested. Para tanto, foi retirado 1ml do produto de PCR simples e adicionado à mistura de reação [tampão 10ml x 5ml; MgCl (50mM) 1,5ml; primer Toxo-N2 (50pmol/ml) 1ml; primer Toxo-C2 (50pmol/ml) 1ml; DNTPs (10mM) 1ml; Taq polimerase 0,5ml; água Mili-Q q.s.p. 50ml; óleo mineral 30ml].

Repetiu-se o processo nas mesmas condições anteriormente citadas.

A metodologia de PCR simples foi repetida utilizando-se o par de primers ABGTg C1 e N1 da seqüência do elemento repetitivo TGR, nas mesmas condições de reação, e posterior checagem do material.

Imunoperoxidase

O estudo imunoistoquímico foi realizado pelo método de avidina-biotina-peroxidase (ABP), utilizando-se anticorpo policlonal anti-T. gondii (Dako), pré-diluído, e, como revelador, a diaminobenzidina (DAB), marca Dako. As amostras foram previamente emblocadas e identificadas. Foram analisados tecidos placentários, representados por decídua, vilosidades córion e cordão umbilical. Foram realizados cortes histológicos de 3mm cada, colocados em lâminas previamente revestidas com silano (Sigma). Posteriormente, os cortes foram desparafinizados em estufa a 57ºC e submetidos a banhos de imersão sucessivos em xilol, álcool e água corrente. Foi realizada a inibição da peroxidase endógena com solução de peróxido de hidrogênio e metanol durante 10min. Após, foi feita a incubação com anticorpo primário anti-T. gondii, por um período de 12 horas overnight, empregando-se o método de imunoperoxidase (ABP), com posterior revelação com DAB. Os cortes foram contracorados com hematoxilina de Mayer e montados com bálsamo sintético. Foram utilizados casos-controles positivos, previamente analisados e contendo elementos parasitários teciduais de T. gondii.

Resultados

A PCR apresenta elevada sensibilidade (de um a dez parasitas), especificidade de 100% com os DNAs testados, além de rapidez na liberação do resultado do teste. Como vários autores já relataram, maior sensibilidade (92,9%) e total especificidade, com o resultado em 24 horas, são obtidas pela PCR, principalmente no diagnóstico da infecção fetal (3, 11, 14).

No trabalho executado, para dar confiabilidade à metodologia implantada, foi testada a especificidade utilizando-se amostras de DNA de várias origens, não ocorrendo reações cruzadas (Figura 1).

Para testar a sensibilidade da PCR simples com os primers B1 foi utilizada curva de taquizoítas de T. gondii, observando-se o aparecimento de uma banda de 194pb, com dez taquizoítas; fazendo-se o nested, observou-se uma banda de 97pb, com um taquizoíta (Figuras 2 e 3). Através da PCR simples, com dois pares de primers ABGTg, observou-se o aparecimento de uma banda específica de 145pb com um taquizoíta (Figura 4).

Uma vez estabelecidas as condições ótimas de amplificação com os primers B1 e ABGTg, realizou-se o ensaio de PCR no DNA obtido das amostras dos pacientes, sendo que todas foram negativas no ensaio de amplificação.

Discussão

Apesar de a metodologia estar bem estabelecida e observando-se todos os resultados negativos das amostras, há a possibilidade da presença de resultados falso-negativos. Várias poderiam ser as causas disso: haver a presença de inibidores da Taq polimerase, o período entre a infecção e a coleta da amostra ser muito longo, a parasitemia ser fugaz e as pacientes terem iniciado seu tratamento antes de efetuar a coleta. Estes fatos, mais a sensibilidade, também poderiam explicar o isolamento parasitário negativo obtido pela inoculação em animais. É preciso observar que o tratamento poderia ser responsável por uma diminuição da infecção, em crianças, da ordem de 40% a 60%. Desta forma, o diagnóstico negativo confirmaria a eficiência do tratamento preventivo da pirimetamina e sulfadiazina na replicação parasitária no útero. Deve-se salientar também que, nas avaliações dos resultados pela PCR das placentas, a espiramicina age reduzindo a carga parasitária neste local (2, 17, 20). Como o tratamento pode induzir a liberação do DNA do parasita, a PCR pode manter-se positiva por alguns dias (quatro a, no máximo, 12 dias) após o início da terapia (5). Diante do exposto, sugere-se que as coletas sejam feitas antes do início do tratamento, o que, por razões éticas, não foi possível executar neste trabalho.

Por razões práticas, é impossível a avaliação de toda a placenta, e a extração do DNA de tecidos é mais difícil que de líquidos. Porém, mesmo que a placenta seja um material biológico de fácil obtenção, ela não é o mais indicado para a identificação do genoma parasitário pela baixa sensibilidade (8, 9).

A PCR de amostras de sangue é mais sensível que a inoculação em camundongos. Quando se faz uso de inoculação, junto com as células utilizadas podem estar presentes fatores inibitórios. Da mesma forma, frações do genoma do parasita são identificadas por PCR, porém não são viáveis para a proliferação em camundongos (5, 13).

A obtenção de sangue em gestantes é um método menos invasivo e não requer um especialista, porém apresenta baixa sensibilidade (1). A PCR em líquido amniótico apresenta alta sensibilidade e confirma que o parasita está invadindo o feto, porém sua obtenção requer um especialista e, como qualquer técnica invasiva, apresenta riscos à gestação.

Em trabalho executado por Guy & Johnson (12) para identificação de infecção ativa por T. gondii no sangue periférico utilizando PCR nested, foram obtidos resultados negativos em pacientes com infecção crônica, o que recomenda o uso deste material para o diagnóstico de infecção aguda e sugere que a detecção de DNA parasitário pode ser rara no sangue periférico durante a fase crônica da infecção. É importante salientar, porém, que uma PCR negativa não exclui a infecção recente.

O diagnóstico da toxoplasmose é geralmente baseado em argumentos indiretos (sorológicos); todavia, em casos de imaturidade ou depressão imunológicas, a evidência do parasita deve ser obtida.

A reação de polimerase em cadeia mostrou-se sensível quando foram utilizados dois jogos de primers do gene B1 e um novo jogo de primers da seqüência TGR (ABGTg C1 e N1), sendo específica com amostras de DNA humano e de diferentes agentes infecciosos com os quais não apresentou reação cruzada. Salientamos que os primers TGR foram mais sensíveis, portanto poderiam ser excelentes candidatos como alternativa à utilização dos primers B1. Desta forma, esta metodologia pode ser utilizada com segurança e confiabilidade, além de tornar rápido o diagnóstico da toxoplasmose congênita, servindo de ferramenta importante na avaliação pré-natal. Todavia é necessário que seja otimizada a coleta das amostras. Para tanto sugerimos que seja efetuada uma coleta de sangue com EDTA antes do início da terapêutica específica e, quando possível, em dois, quatro, oito e 12 dias do tratamento.

Endereço para correspondência

Universidade Federal do Rio Grande do Sul

Av. Ipiranga 2753

CEP 9610-000 – Porto Alegre-RS

e-mail: [e-mail]

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1. Técnico em Saúde e Ecologia Humana; doutor em Biologia Parasitária pela Fundação Oswaldo Cruz (Fiocruz); Laboratório de Parasitologia; Laboratório Central do Estado (Lacen/RS); Fundação Estadual de Produção e Pesquisa em Saúde (FEPPS); Secretaria da Saúde do Estado do Rio Grande do Sul (SS); professor adjunto da disciplina de Análises Parasitológicas, departamento de Análises, Faculdade de Farmácia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS).

. Técnico em Saúde e Ecologia Humana; doutor em Biologia Parasitária pela Fundação Oswaldo Cruz (Fiocruz); Laboratório de Parasitologia; Laboratório Central do Estado (Lacen/RS); Fundação Estadual de Produção e Pesquisa em Saúde (FEPPS); Secretaria da Saúde do Estado do Rio Grande do Sul (SS); professor adjunto da disciplina de Análises Parasitológicas, departamento de Análises, Faculdade de Farmácia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS). 2. Pesquisadora titular do departamento de Protozoologia; doutora em Ciências Biológicas pela Universidade Federal do Rio de Janeiro; Instituto Oswaldo Cruz (IOC), Fiocruz. 3. Centro de Pesquisa do Hospital Evandro Chagas; Fiocruz. 4. Doutor em Ciências Biológicas pela Universidade de Buenos Aires; investigador Conicet; Departamento de Parasitologia Anlis – Dr. Carlos G Malbran.

Este trabalho faz parte da tese de doutorado em Biologia Parasitária Acompanhamento de Gestantes com Risco de Transmissão de Infecção Congênita por Toxoplasma gondii Nicolle & Manceaux, 1909 na Região do Alto Uruguai, RS, Brasil – Diagnóstico e Aspectos Epidemiológicos, apresentada em 19 de setembro de 2000, na Fundação Oswaldo Cruz.

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  07 Ago 2002
• Data do Fascículo
  2002

Histórico

• Aceito
  28 Fev 2002
• Recebido
  04 Jul 2001