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Extratos de plantas de cobertura no desenvolvimento de Sclerotinia sclerotiorum

Plant extracts of cover crops in the development of Sclerotinia sclerotiorum

Resumos

Extratos vegetais podem interferir no ciclo de vida dos fitopatógenos por promover ou inibir o desenvolvimento. Com base nessa propriedade, este trabalho foi realizado com o objetivo de estudar o efeito dos extratos aquosos das plantas de cobertura crotalária (Crotalaria juncea), braquiária (Brachiaria ruziziensis), capim-mombaça (Panicum maximum cv. mombaça), milheto (Pennisetum glaucum), feijão-guandu-anão (Cajanus cajan) e estilosantes (Stylosanthes capitata x Stylosanthes macrocephala) sobre o crescimento micelial, germinação carpogênica e micelial dos escleródios e germinação dos ascósporos do fungo Sclerotinia sclerotiorum. As etapas do experimento foram desenvolvidas em casa de vegetação, câmaras de crescimento e laboratório. As concentrações dos extratos utilizadas foram de 1%, 5%, 10% e 25%. Para verificar a influência dos extratos sobre a germinação micelial e carpogênica dos escleródios, foi utilizada somente a concentração de 25%. Os resultados sobre o crescimento micelial mostraram que o extrato da planta de Stylosanthes sp. inibiu o desenvolvimento do patógeno apenas na concentração de 25%. Para a germinação micelial dos escleródios, verificou-se que os extratos induziram a germinação 12 horas após a instalação do experimento, exceto o Stylosanthes sp. Na germinação dos ascósporos, apenas o extrato de Stylosanthes sp. impediu a germinação.

Mofo branco; manejo cultural; ascósporos; escleródios; apotécios


Plant extracts may interfere with the life cycle of pathogens by promoting or inhibiting development. Based on this property, the present study aimed to evaluate the effect of aqueous extracts of the COVER plants crotalaria (Crotalaria juncea), brachiaria (Brachiaria ruziziensis), panicum maximum grass (Panicum maximum cv. mombaça), millet (Pennisetum glaucum), pigeon pea dwarf bean (Cajanus cajan.) and stylosanthes (Stylosanthes macrocephala x Stylosanthes capitata) on the mycelial growth, mycelial and carpogenic germination of sclerotia, and ascospore germination of Sclerotinia sclerotiorum. The stages of the experiment were carried out in a greenhouse, growth chambers and laboratory. The concentrations of the extracts used were 1%, 5%, 10% and 25%. To assess the influence of extracts on the mycelial and carpogenic germination of the sclerotia only the concentration of 25% was used. The results on the mycelial growth showed that the Stylosanthes sp. plant extract was effective for inhibiting the pathogen only at concentration of 25%. For mycelial germination of sclerotia, it was found that with the exception of Stylosanthes sp. the extracts induced germination 12 hours after the experiment. In regard to the germination of ascospores, only the extract from Stylosanthes sp. successfully prevented germination.

White mold; cultural management; ascospores; sclerotia; apothecium


  • ADAMS, P. B.; AYERS, W. A. Ecology of Sclerotinia species. Phytopatlology, v.69, n.8, p.896-899, 1979.
  • ASIRIFI, K.N.; MORGAN, W.C.; PARBERY, D.G. Supression of Sclerotinia soft rot of lettuce with organic soil amendments. Australian Journal of Experimental Agriculture, v.34, n.1, p.131-136, 1994.
  • BOLAND, G.J.; RALL, R. Index of plant hosts of Sclerotinia sclerotiorum Canadian Journal of Plant Pathology, v.16, n.2, p.93-108, 1994.
  • COSTA, J.G.C.; RAVA, C.A. Influência da braquiária no manejo de doenças do feijoeiro com origem no solo. In: KLUTHCOUSKI, J.; STONE, L. F.; AIDAR, H. Integração lavoura-pecuária Santo Antônio de Goiás: EMBRAPA Arroz e Feijão, 2003. p.523-533.
  • DUBEY, N.K.; KISHORE, N.; SRIVASTAVA, O.P.; DIKSHIT, A.; SINGH, S.K. Fungitoxicity of some higher plants against Rhizoctonia solani Plant and Soil, v.72, n.1, p.91-94, 1983.
  • EMBRAPA (Brasil). Pesquisa estuda manejo para controle do mofo branco. Brasília, 2010. Disponível em: <http://www.EMBRAPA.br/imprensa/noticias/2010/janeiro/2a-semana/EMBRAPA-estuda-manejo-para-controle-do-mofo-branco>. Acesso em: 20 jun. 2010.
  • FERNANDO, W.G.D.; RAMARATHNAM, R.; KRISHNAMOORTHY, A.S.; SAVCHUK, S.C. Identification and use of potential bacterial organic antifungal volatiles in biocontrol. Soil Biology & Biochemistry, v.37, p.955-964, 2005.
  • FERRAZ, L.C.L.; CAFÉ-FILHO, A.C.; NASSER, L.C.B.; AZEVEDO, J.A. Effects of soil moisture, organic matter and grass mulching on the carpogenic germination of sclerotia and infection of bean by Sclerotinia sclerotiorum Plant Pathology, v.48, p.77-82, 1999.
  • FERREIRA, D.F. Sisvar versão 4.2. Lavras: DEX/UFLA, 2003.
  • FRANZENER, G.; MARTINEZ-FRANZENER, A.S.; STANGARLIN, J.R.; CZEPAK, M.P.; SCHWAN-ESTRADA, K.R.F.; CRUZ, M.E.S. Atividades antibacteriana, antifúngica e indutora de fitoalexinas de hidrolatos de plantas medicinais. Semina: Ciências Agrárias, v.28, n.1, p.29-38, 2007.
  • GÖRGEN, C.A.; SILVEIRA NETO, A.N. da; CARNEIRO, L.C.; RAGAGNIN, V.A.; LOBO JUNIOR, M. Controle do mofo-branco com palhada e Trichoderma harzianum 1306 em soja. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.44, p.1583-1590, 2009.
  • GÖRGEN, C.A.; CIVARDI, E.A.; RAGAGNIN, V.A.; SILVEIRA NETO, A.N.; CARNEIRO, L.C.; LOBO JUNIOR, M. Redução do inóculo inicial de Sclerotinia sclerotiorum em soja cultivada após uso do sistema Santa Fé. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.45, n.10, p.1102-1108, 2010.
  • HAO, J.; SUBBARAO, K.V.; KOIKE, T. Effects of broccoli rotation on Lettuce drop caused by sclerotinia minor and on the population density of sclerotia in soil. Plant Disease, v.87, n.2, p.159-166, 2003.
  • HUANG, H.C. Factors affecting myceliogenic germination of sclerotia of Sclerotinia sclerotiorum Phytopathology, v.75, n.4, p.433-437, 1985.
  • KENNEDY, A.C. Bacterial diversity in agroecosystems. Agriculture Ecosystems and Environment, v.74, n.1/3, p.65-76, 1999.
  • KOHN, L. Delimitation of the economically important plant pathogenic Sclerotinia species. Phytopathology, v.69, p.881-886, 1979.
  • LEANDRO, L.F.S.; GLEASON, M.L.; NUTTER, F.W.; WEGULO, S.N.; DIXON, P.M. Strawberry plant extracts stimulate secondary conidiation by Colletotrichum acutatum on symptomless leaves. Phytopathology, v.93, n.10, p.1285-1291, 2003.
  • LOPES, E.B.; BRITO, C.H.; ALBUQUERQUE, I.C.; OLIVEIRA, A.R.R. Influência de fatores químicos do solo sobre a incidência do mal-do-Panamá na bananeira cv. Pacovan na Paraíba. Revista de Biologia e Ciências da Terra, v.8, n.1, p.100-109, 2008.
  • MARSCHNER, P.; YANG, C.H.; LIEBEREI, R. CROWLEY, D.E. Soil and plant specific effects on bacterial community composition in the rhizosphere. Soil Biology and Biochemistry, v.33, n.11, p.1437-1446, 2001.
  • MENEZES, M.; SILVA-HANLIN, D.M.W. Guia prático para fungos fitopatogênicos Recife: UFRPE, 1997. 106p.
  • MILEO, L.J.; BENTES, J.L.S.; SILVA, J.F.; CHRISTOFFOLETI, P.J. Plantas de cobertura de solo como hospedeiras alternativas de Colletotrichum guaranicola Planta Daninha, v. 24, n.4, p. 677-683, 2006.
  • 22
    OLIVEIRA, J. A. Efeito do tratamento fungicida em sementes no controle de tombamento de plântulas de pepino (Cucumis sativus L.) e pimentão (Capsicum annum L.). 1991. 111 p. Dissertação (Mestrado em Fitossanidade) - Universidade Federal de Lavras, Lavras, MG.
  • PEREIRA NETO, J.V.; BLUM, L.E.B. Adição de palha de milheto ao solo para redução da podridão do colo em feijoeiro. Pesquisa Agropecuária Tropical, v.4, n.3, p.354-361, 2010.
  • PHILLIPS, A.J.L. Carpogenic germination of sclerotia of Sclerotinia sclerotiorum: a review. Phytophylactica, v.19, p.279-283, 1987.
  • PINTO, C.M.F.; MAFFIA, L.A.; CASALI, V.W.D.; CARDOSO, A.A. In vitro effect of plant leaf extracts on mycelial growth and sclerotial germination of Sclerotiorum cepivorum Journal of Phytopathology, v.146, n.8/9, p.421-425, 1998.
  • PURDY, L.H. Sclerotinia sclerotiorum: history, diseases and symptomatology, host range, geographic distribution, and impact. Phytopathology, v.69, n.8, p.875-880, 1979.
  • QUEIROZ, S.C.N.; COLLINS, C.H.; JARDIM, I.C.S.F. Métodos de extração e/ou concentração de compostos encontrados em fluídos biológicos para posterior determinação cromatográfica. Química Nova, v.24, n.1, p.68-76, 2001.
  • ROCHA, F.S.; CAMPOS, V.P.; SOUZA, R.M. Efeito de exsudatos radiculares em endósporos de Pausteria penetrans e em juvenis do Segundo estádio de Meloidogyne incognita Fitopatologia Brasileira, v.29, n.6, p.644-650, 2004.
  • RODRIGUES, E.; SCHWAN-ESTRADA, K.R.F.; FIORI-TUTIDA, A.C.G.; STANGARLIN, J.R.; CRUZ, M.E.S. Fungitoxicidade, atividade elicitora de fitoalexinas e proteção de alface em sistema de cultivo orgânico contra Sclerotinia sclerotiorum pelo extrato de gengibre. Summa Phytopathologica, v.33, n.2, p.124-128, 2007.
  • SILVEIRA, P.M.; BRAZ, A.J.B.P.; KLIEMANN, H.J.; ZIMMERMANN, F.J.P. Acumulação de nutrientes no limbo foliar de guandu e estilosantes. Pesquisa Agropecuária Tropical, v.35, n.3, p.133-138, 2005.
  • SONAGLIO, D.; ORTEGA, G.G.; PETROVICK, P.R.; BASSANI, V.L. Desenvolvimento tecnológico e produção de fitoterápicos. In: SIMÕES, C.M.O.; SCHENKEL, E.P.; GOSMANN, G.; MELLO, J.C.P.; MENTZ, L.A.; PETROVICK, P.R. Farmacognosia: da planta ao medicamento. 5.ed. Porto Alegre: UFRGS; Florianópolis: UFSC, 2003. p.289-326.
  • VESPERMANN, A.; KAI, M.; PIECHULLA, B. Rhizobacterial volatiles affect the growth of fungi and Arabidopsis thaliana Applied and Environmental Microbiology, v.73, n.17, p.5639-5641, 2007.

Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    03 Jun 2013
  • Data do Fascículo
    Dez 2012

Histórico

  • Recebido
    08 Maio 2011
  • Aceito
    16 Out 2012
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