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Fatores de patogenicidade de Vibrio spp. de importância em doenças transmitidas por alimentos

Vibrio spp. pathogenicity factors of importance in foodborne diseases

RESUMO:

As bactérias do gênero Vibrio habitam ambiente tipicamente marinho e estuarino, sendo comumente isoladas de pescados. As principais espécies de Vibrio reportadas como agentes de infecções em humanos são V. vulnificus , V. parahaemolyticus , V. cholerae e V. mimicus . V. vulnificus é considerado o mais perigoso, podendo causar septicemia e levar à morte. V. parahaemolyticus é um patógeno importante nas regiões costeiras de clima temperado e tropical em todo o mundo e tem sido responsável por casos de gastroenterites associadas ao consumo de peixes, moluscos e crustáceos marinhos. V. cholerae causa surtos, epidemias e pandemias relacionados com ambientes estuarinos. V. mimicus pode causar episódios esporádicos de gastroenterite aguda e infecções de ouvido. A patogenicidade das bactérias está ligada à habilidade do micro-organismo em iniciar uma doença (incluindo entrada, colonização e multiplicação no corpo humano). Para que isso ocorra, os micro-organismos fazem uso de diversos fatores. O objetivo desta revisão foi sintetizar o conhecimento disponível na literatura sobre os fatores de patogenicidade de V. vulnificus , V. parahaemolyticus , V. cholerae e V. mimicus .

PALAVRAS-CHAVE:
patogenicidade; pescado; Vibrio vulnificus; Vibrio mimicus; Vibrio parahaemolitycus; Vibrio cholerae

ABSTRACT:

Bacteria of the genus Vibrio typically habitat marine and estuarine environment and are commonly isolated from fish. The main Vibrio species reported as agents of infections in humans are V. vulnificus , V. parahaemolyticus , V. cholerae and V. mimicus . V. vulnificus is considered the most dangerous, may cause sepsis and lead to death. V. parahaemolyticus is an important pathogen in coastal regions of temperate and tropical climates around the world and has been responsible for cases of gastroenteritis associated with consumption of fish, shellfish and marine crustaceans. V. cholerae causes outbreaks, epidemics and pandemics related to estuarine environments. V. mimicus can cause sporadic episodes of acute gastroenteritis and infections. The pathogenicity of the bacteria is linked to the ability of the micro-organism to initiate a disease (including entry, colonization and multiplication in the human body). For this to occur, the micro-organisms make use of several factors. The objective of this review is to summarize the knowledge available in the literature on the factors of pathogenicity of V. vulnificus , V. parahaemolyticus , V. cholerae and V. mimicus .

KEYWORDS:
pathogenicity; fish; Vibrio vulnificus; Vibrio mimicus; Vibrio parahaemolyticus; Vibrio cholerae

INTRODUÇÃO

As bactérias do gênero Vibrio habitam ambiente tipicamente marinho e estuarino, necessitando de cloreto de sódio para o seu crescimento. São comumente isoladas de peixes e crustáceos, sendo capazes também de se multiplicar sem hospedeiro em águas marinhas (Tall et al., 2013TALL, A.; HERVIO-HEATH, D.; TEILLON, A.; BOISSET-HELBERT, C.; DELESMONT, R.; BODILIS, J.; TOURON-BODILI, A. Diversity of Vibrio spp. isolated at ambient environmental temperature in the Eastern English Channel as determined by pyrH sequencing. Journal of applied microbiology , v. 114, n. 6, p. 1713-1724, 2013.; Messelhäusser et al., 2010MESSELHÄUSSER, U.; COLDITZ, J.; THÄRIGEN, D.; KLEIH, W.; HÖLLER, C.; BUSCH, U. Detection and differentiation of Vibrio spp. in seafood and fish samples with cultural and molecular methods. International Journal of Food Microbiology , v. 149, n. 3, p. 360-364, 2010.). As espécies parahaemolyticus , vulnificus , cholerae , furnissi i, metschnikovii , mimicus , alginolyticus e fluvialis são as principais causadoras de enfermidades em humanos (Penduka, 2011PENDUKA, D. In-vitro anti-vibrio activities of crude extracts of Garciniakola seeds . 2002. 117f. Dissertação (Mestrado em Ciência Microbiológica). Faculty of Science and Agriculture, University of Fort Hare, Alice, 2011.).

V. vulnificus (Hollis et al., 1976HOLLIS, D.G.; WEAVER, R.E.; BAKER, C.N.; THORNSBERRY, C. Halophilic Vibrio species isolated from blood cultures. Journal of Clinical Microbiology , v. 3, n. 4, p. 425-431, 1976.) é considerado o mais perigoso por alguns pesquisadores, devido à sua capacidade de causar septicemia com taxas de mortalidade superiores a 50% em indivíduos portadores de doenças crônico-degenerativas (Nascimento et al., 2001NASCIMENTO, S.M.M.; VIEIRA, R.H.S.F.; THEOPHILO, G.N.D. Vibrio vulnificus as a health hazard for shrimp consumers. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo , v. 43, n. 5, p. 263-266, 2001.; Ulusarac; Carter, 2004ULUSARAC, O.; CARTER, E. Varied clinical presentations of Vibrio vulnificus infections: a Report of Four Unusual Cases and Review of the Literature. Southern Medical Journal , v. 97, n. 2, p. 163-168, 2004.).

V. parahaemolyticus é considerado um patógeno importante nas regiões costeiras de clima temperado e tropical em todo o mundo (Martinez-Urtaza et al., 2004MARTINEZ-URTAZA, J.; LOZANO-LEON, A.; DEPAOLA, A.; ISHIBASHI, M.; SHIMADA, K.; NISHIBUCHI, M.; LIEBANA, E. Characterization of pathogenic Vibrio parahaemolyticus isolates from clinical sources in Spain and comparison with Asian and North American pandemic isolates. Journal of Clinical Microbiology , v. 42, n. 10, p. 4672-4678, 2004.). Esse micro-organismo tem sido responsável por casos de gastroenterites associadas ao consumo de peixes, moluscos e crustáceos do mar, crus ou mal cozidos (Heitmann et al., 2005HEITMANN, I.G.; JOFRE, L.M.; HORMAZABAL, O.J.C.; OLEA, A.; VALLEBUONA, C.; VALDES, C. Review and guidelines for treatment of diarrhea caused by Vibrio parahaemolyticus Revista Chilena de Infectología , v. 22, n. 2, p. 131-140, 2005.). Quando infectado, o indivíduo pode apresentar diversos sintomas, como diarreia, dores abdominais, vômito, febre e calafrios. Em casos mais avançados, pode causar disenteria com fezes mucoides e sanguinolentas (Kodama, 1968KODAMA, T. Vibrio parahaemolyticus and the Kanagawa Phenomenon. Clinical Nutrition , v. 33, p. 137-141, 1968.). No Brasil, V. parahaemolyticus tem sido isolado de água e animais marinhos (Costa et al., 2010COSTA, R.A.; SILVA, G.C.; PEIXOTO, J.R.O.; VIEIRA, G.H.F.; VIEIRA, R.H.S.F. Quantification and distribution of Vibrio species in water from an estuary in Ceará-Brazil impacted by shrimp farming. Brazilian Journal of Oceanography , v. 58, n. 3, p. 1982-436, 2010.; Sousa et al., 2004SOUSA, O.V.; VIEIRA, R.H.S.; MENEZES, F.G.R.; REIS, C.M.F.; HOFER, E. Detection of Vibrio parahaemolyticus and Vibrio cholerae in oyster, Crassostrea rhizophorae , collected from a natural nursery in the Cocó river estuary, Fortaleza, Ceará, Brazil. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo , v. 46, n. 2, p. 36-4665, 2004.). Por possuir ocorrência sazonal, é encontrado principalmente em estações mais quentes (Fuenzalida et al., 2006FUENZALIDA, L.; ARMIJO, L.; ZABALA, B.; HERNÁNDEZ, C.; RIOSECO, M.L.; RIQUELME, C.; ESPEJO, R.T. Vibrio parahaemolyticus strains isolated during investigation of the summer 2006 seafood related diarrhea outbreaks in two regions of Chile. International Journal of Food Microbiology , v. 117, n. 3, p. 279-275, 2006.).

V. cholerae é uma espécie causadora de surtos, epidemias e pandemias relacionados com ambientes estuarinos (Kaysner; Depaola Junior, 2004KAYSNER, C.A.; DEPAOLA JUNIOR, A. Vibrio . U.S. Food and Drug Administration, Bacteriological analytical manual , Chapter 9. 2004. Disponível em: <Disponível em: http://www.fda.gov/Food/FoodScienceResearch/LaboratoryMethods/ucm070830.htm >. Acesso em: 29 nov. 2013.
http://www.fda.gov/Food/FoodScienceResea...
), sendo a infecção decorrente da ingestão de água e alimentos contaminados. Essa espécie produz a toxina colérica, responsável pelos sintomas clínicos da doença no hospedeiro. Novas variantes patogênicas do V. cholerae surgiram e se espalharam pela Ásia e por muitos países africanos, onde o saneamento é precário (Safa et al., 2010SAFA, A.; NAIR, G.B.; KONG, R.Y.C. Evolution of new variants of Vibrio cholerae O1. Trends in microbiology , v. 18, n. 1, p. 46-54, 2010.).

A patogenicidade das bactérias está ligada à habilidade do micro-organismo em iniciar uma doença (incluindo entrada, colonização e multiplicação no corpo humano). Para que isso ocorra, os micro-organismos fazem uso de diversos fatores que estabelecem a sua patogenicidade, como secreção de polissacarídeos (cápsula), produção de enzimas extracelulares, síntese de proteínas que contribuem para a aderência nos tecidos humanos e a capacidade de adquirir ferro a partir da transferrina (Vieira, 2009VIEIRA, M.A.M. Ilhas de patogenicidade. O Mundo da Saúde , v. 33, n. 4, p. 406-414, 2009.).

O objetivo desta revisão foi sintetizar o conhecimento disponível na literatura sobre os fatores de patogenicidade das principais espécies de Vibrio reportadas como agentes de infecções em humanos: V. vulnificus , V. parahaemolyticus , V. cholerae e V. mimicus .

Vibrio vulnificus

Não existe informação adequada que permita distinguir entre estirpes virulentas e não virulentas de V. vulnificus . Devido a isso, todas as cepas de V. vulnificus são consideradas igualmente patogênicas (Amaro et al., 1994AMARO, C.; BIOSCA, E.G.; FOUZ, B.; TORANZO, A.E.; GARAY, E. Role of iron, capsule, and toxins in the pathogenicity of Vibrio vulnificus biotype 2 for mice. Infection and Immunity , v. 62, p. 759-763, 1994.; Stelma Junior et al., 1992STELMA JUNIOR, G.N.; REYES, A.L.; PEELER, J.T.; JOHNSON, C.H.; SPAULDING, P.L. Virulence characteristics of clinical and environmental isolates of Vibrio vulnificus . Applied and Environmental Microbiology , v. 58, p. 2776-2782, 1992.).

A cápsula polissacarídica (PSC) é considerada o principal fator de patogenicidade de V. vulnificus . É uma estrutura de polímeros que cobre a superfície da bactéria constituída principalmente por polissacarídeos, mas também possui proteínas e uma grande variedade de carboidratos ricos em aminoaçúcares. Sua pricipal função é a proteção da bactéria, conferindo resistência à fagocitose pelos macrófagos e à ação bactericida (Wright et al., 1981WRIGHT, A.C.; SIMPSON, L.M.; OLIVER, J.D. Role of iron in the pathogenesis of Vibrio vulnificus infections. Infection and Immunity , v. 34, n. 2, p. 503-507, 1981.; Litwin et al., 1996LITWIN, C.M.; RAYBACK, T.W.; SKINNER, J. Role of catechol siderophore synthesis in Vibrio vulnificus virulence. Infection and Immunity , v. 64, n. 7, p. 2834-2838, 1996.). De acordo com a presença e a quantidade de PSCs produzidas por uma determinada cepa de V. vulnificus , não é possível identificar o nível de patogenicidade expressado por essa cepa (Wright et al., 1990WRIGHT, A.C.; SIMPSON, L.M.; OLIVER, J.D.; MORRIS, J.G. Phenotypic evaluation of acapsular transposon mutants of Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 58, p. 1769-1773, 1990.). Estudos com isolados de cepas virulentas e avirulentas demonstraram que, apesar de não haver correlação entre a patogenicidade dos isolados clínicos e ambientais, existe correlação entre a patogenicidade e a opacidade de colônias. Todas as cepas virulentas possuem colônias opacas e são encapsuladas, ao passo que aquelas não encapsuladas e translúcidas são avirulentas (Simpson et al., 1987SIMPSON, L.M.; WHITE, V.K.; ZANE, S.F.; OLIVER, J.D. Correlation between virulence and colony morphology in Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 55, n. 1, p. 269-272, 1987.). Já foram descritos quatro genes responsáveis pela síntese da PSC (Smith; Siebeling, 2003SMITH, A.B.; SIEBELING, R.J. Identification of genetic loci required for capsular expression in Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 71, p. 1091-1097, 2003.), são eles cap10 , cap59 , cap60 e cap64 . Esses genes são necessários para a patogenicidade em modelos de infecção em camundongos (Janbon, 2004JANBON, G. Cryptococcus neoformans capsule biosynthesis and regulation. FEMS Yeast Research , v. 4, n. 8, p. 765-771, 2004.).

O V. vulnificus possui também estruturas proteicas presentes na sua superfície que são chamadas de fimbrias ou pili, são curtas, finas e rígidas. Essas estruturas servem para a bactéria se aderir firmemente às paredes dos tecidos do hospedeiro (Gander; Larocco, 1989GANDER, R.M.; LAROCCO, M.T. Detection of piluslike structures on clinical and environmental isolates of Vibrio vulnificus . Journal of Clinical Microbiology , v. 27, p. 1015-1021, 1989.).

O V. vulnificus produz uma citotoxina extracelular e uma série de enzimas hidrolíticas responsáveis pela rápida degradação do tecido muscular durante a infecção. Já foram identificados três diferentes biotipos de V. vulnificus . Aproximadamente 85% das cepas isoladas de amostras clínicas pertencem ao biotipo 1, o biotipo 2 provoca infecções em enguias e o biotipo 3 foi identificado recentemente e está associado a bacteremia veiculada por alimentos de origem marinha (Huss et al., 2004HUSS, H.H.; ABABOUCH, L.; GRAM, L. Assessment and management of seafood safety and quality. Fisheries technical paper. Food and Agriculture Organization of the United Nation (FAO) , v. 444, p. 31-34, 2004.).

O biotipo 1 foi dividido em cinco grupos, de acordo com o perfil de lipopolissacarídeo (LPS) determinado por meio de reações com anticorpos monoclononais (Martin; Siebeling, 1991MARTIN, S.J.; SIEBELING, R.J. Identification of Vibrio vulnificus O serovars with antilipopolysaccharide monoclonal antibody. Journal of Clinical Microbiology , v. 29, n. 8, p. 1684-1688, 1991.). Porém, esses anticorpos foram utilizados para examinar cepas de origem ambiental, clínica e de frutos do mar comercializados. Grande parte dessas cepas não foi tipável, demonstrando, assim, que o LPS é muito heterogêneo antigenicamente (Gulig, 2005GULIG, P.A.; BOURDAGE, K.L.; STARKS, A.M. Molecular Pathogenesis of Vibrio vulnificus . Journal of Microbiology , v. 43, p. 118-131, 2005.). O biotipo 2 possui um único tipo de LPS, do sorogrupo E (Biosca et al., 1996BIOSCA, E.G.; OLIVER, J.D.; AMARO, C. Phenotypic characterization of Vibrio vulnificus biotype 2, a lipopolysaccharide-based homogeneous O serogroup within Vibrio vulnificus . Applied and Environmental Microbiology , v. 62, n. 3, p. 918-927, 1996.). O biotipo 3 está associado com bacteremia veiculada a alimentos de origem marinha. Esses biotipos foram separados de acordo com características bioquímicas, como produção de indol, descarboxilação da ornitina e crescimento a 42°C (Amaro et al., 1994AMARO, C.; BIOSCA, E.G.; FOUZ, B.; TORANZO, A.E.; GARAY, E. Role of iron, capsule, and toxins in the pathogenicity of Vibrio vulnificus biotype 2 for mice. Infection and Immunity , v. 62, p. 759-763, 1994.; Cerdà-Cuéllar et al., 2001CERDÀ-CUÉLLAR, M.; PERMIN, L.; LARSEN, J.L.; BLANCH, A.R. Comparison of selective media for the detection of Vibrio vulnificus in environmental samples. Journal of Applied Microbiology , v. 91, n. 2, p. 322-327, 2001.).

V. vulnificus produz pelo menos dois tipos de hemolisinas. A primeira, chamada de citolisina, é termolábil, lisa os eritrócitos de coelho em ágar sangue produzindo uma zona de β-hemólise e é citotóxica a uma variedade de linhagens celulares (Gray; Kreger, 1985GRAY, L.D.; KREGER, A.S. Purification and characterization of an extracellular cytolysin produced by Vibrio vulnificus . Infection and Immunology , v. 48, p. 62-72, 1985.). A outra hemolisina foi detectada pela primeira vez por Chang et al. (1997CHANG, T.M.; CHUANG, Y.C.; SU, J.H.; CHANG, M.C. Cloning and sequence analysis of a novel hemolysin gene (vIIY) from Vibrio vulnificus . Applied and Environmental Microbiology , v. 63, n. 10, p. 3851-3857, 1997.) e sua ação pode ser observada em placas de ágar sangue contendo eritrócitos de carneiro, sendo o micro-organismo capaz de provocar uma mudança na cor do meio, de vermelha para marrom, formando colônias de cor esverdeada (α-hemólise).

V. vulnificus possui o sistema de toxRS, uma proteína transmembrana, ativadora de transcrição, que regula a expressão do gene da hemolisina, chamado vvhA (Lee et al., 2000LEE, S.E.; SHIN, S.H.; KIM, S.Y.; KIM, Y.R.; SHIN, D.H; CHUNG, S.S.; LEE, Z.H.; LEE, J.Y.; JOENG, K.C.; CHOI, S.H.; RHEE, J.H. Vibrio vulnificus has the transmembrane transcription activator ToxRS stimulating the expression of the hemolysin gene vvhA. Journal of Bacteriology , v. 182, n. 12, p. 3405-3415, 2000.). O sistema toxRS desempenha importante papel na regulação da expressão de genes de patogenicidade em infecções em ratos, no entanto sua ação na expressão de genes ainda necessita de mais estudos (Lee et al., 1999LEE, S.H.; HAVA, D.L.; WALDOR, M.K.; CAMILLI, A. Regulation and temporal expression patterns of Vibrio cholerae virulence genes during infection. Cell press , v. 99, n. 6, p. 625-634, 1999.).

Existem outras enzimas produzidas por V. vulnificus , como proteases, fosfolipases, lecitinases e quitinases, que são auxiliares à sobrevivência do V. vulnificus na água do mar e responsáveis por sua colonização e multiplicação nos tecidos de moluscos bivalves e no homem, constituindo fatores de patogenicidade em potencial. As proteases que já foram identificadas possuem atividade caseinolítica, elastolítica e colagenolítica e são produzidas tanto por cepas não virulentas como por virulentas (Moreno; Landgraf, 1998MORENO, M.L.G.; LANDGRAF, M. Virulence factors and pathogenicity of Vibrio vulnificus strains isolated from seafood. Journal of Applied Microbiology , v. 84, p. 747-751, 1998.). As lipases são enzimas que quebram lipídios e, apesar de a sua produção por cepas de V. Vulnificus já ter sido observada, sua função na patogenicidade ainda não foi determinada (Testa et al., 1984TESTA, J.; DANIEL, L.W.; KREGER, A.S. Extracellular phospholipase A2 and lysophospholipase produced by Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 45, n. 2, p. 458-463, 1984.).

Recentemente, uma toxina de grande tamanho, chamada RTX, presente em V. vulnificus , tem sido implicada na patogenicidade da bactéria em camundongos. Estudos indicam que o conjunto de genes rtx é consistente com rtxCA e operons rtxBDE de V. cholerae , que é uma espécie estreitamente relacionada com V. vulnificus , os quais são responsáveis pela ativação e secreção de RTX-A, um membro da família rtx , que promove a despolimerização da actina celular (Fullner; Mekalanos, 2000FULLNER, K.J.; MEKALANOS, J.J. In vivo covalent cross-linking of cellular actin by the Vibrio cholerae RTX toxin. The EMBO Journal , v. 19, n. 20, p. 5315-5323, 2000.; Lin et al., 1999LIN, W.; FULLNER, K.J.; CLAYTON, R.; SEXTON, J.A.; ROGERS, M.B.; CALIA, K.E.; CALDERWOOD, S.B.; FRASER, C.; MEKALANOS, J. Identification of a Vibrio cholerae RTX toxin gene cluster that is tightly linked to the cholera toxin prophage. Proceedings of the National Academy of Sciences , v. 96, n. 3, p. 1071-1076, 1999.).

A aquisição de ferro é necessária para a patogenicidade do V. vulnificus . Algumas cepas conseguem burlar os mecanismos sequestrantes de ferro do hospedeiro humano. A infecção bem-sucedida parece necessitar de um aumento na saturação de transferrina. V. vulnificus produz simultaneamente fenolato e sideróforos de hidroxamato, os quais permitem que as cepas virulentas adquiram ferro a partir da transferrina altamente saturada (Morris et al., 1987MORRIS JUNIOR, J.G.; WRIGHT, A.C.; SIMPSON, L.M.; WOOD, P.K.; JOHNSON, D.E.; OLIVER, J.D. Virulence of Vibrio vulnificus: association with utilization of transferrin-bound iron, and lack of correlation with levels of cytotoxin or protease production. FEMS Microbiological Letter , v. 40, n. 1, p. 55-59, 1987.; Litwin et al., 1996LITWIN, C.M.; RAYBACK, T.W.; SKINNER, J. Role of catechol siderophore synthesis in Vibrio vulnificus virulence. Infection and Immunity , v. 64, n. 7, p. 2834-2838, 1996.). Ação semelhante foi observada em relação a outras proteínas que se ligam ao ferro, tais como a lactoferrina e ferritina (Simpson et al., 1987SIMPSON, L.M.; WHITE, V.K.; ZANE, S.F.; OLIVER, J.D. Correlation between virulence and colony morphology in Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 55, n. 1, p. 269-272, 1987.). Aparentemente, a clivagem das proteínas é causada por uma exoprotease, liberando, desse modo, ferro para os sideróforos (Litwin et al.,1996LITWIN, C.M.; RAYBACK, T.W.; SKINNER, J. Role of catechol siderophore synthesis in Vibrio vulnificus virulence. Infection and Immunity , v. 64, n. 7, p. 2834-2838, 1996.).

Vibrio parahaemolyticus

A patogenicidade dessa bactéria está associada à produção de hemolisina termoestável direta (TDH), hemolisina termoestável relacionada com Tdh (TRH) (West et al., 2013WEST, C.K.G.; KLEIN, S.L.; LOVELL, C.R. High Frequency of Virulence Factor Genes tdh , trh , and tlh in Vibrio parahaemolyticus Strains Isolated from a Pristine Estuary. Applied and Environmental Microbiology , v. 79, n. 7, p. 2247-2252, 2013.) e/ou urease (ureR ) (Paranjpye et al., 2012PARANJPYE, R.; HAMEL, O.S.; STOJANOVSKI, A.; LIERMANN, M. Genetic Diversity of Clinical and Environmental Vibrio parahaemolyticus Strains from the Pacific Northwest. Applied and Environmental Microbiology , v. 78, n. 24, p. 8631-8638, 2012.).

A TDH possui capacidade de hemólise, atuando diretamente nos eritrócitos de diversas espécies (Zhao et al., 2011ZHAO, Y.; TANG, X.; ZHAN, W. Cloning, expressing, and hemolysis of tdh , trh and tlh genes of Vibrio parahaemolyticus Journal of Ocean University of China, v. 10, n. 3, p. 275-279, 2011.). É uma enterotoxina citotóxica que atua dentro e fora da célula hospedeira, levando à morte por formação de poros na membrana e, consequentemente, à apoptose (Naim et al., 2001NAIM, R.; YANAGIHARA, T.I.; HONDA, T. Vibrio parahaemolyticus thermostable direct hemolysin can induce an apoptotic cell death in Rat-1 cells from inside and outside of the cells. FEMS Microbiology Letters , v. 195, n. 2, p. 237-244, 2001.).

O gene trh é imunologicamente igual ao tdh, no entanto ambas as hemolisinas possuem diferenças químicas significantes e atividade de lise de eritrócitos diferente (Honda et al., 1988HONDA, T.; NI, Y.; MIWATANI, T. Purification and characterization of a hemolysin produced by a clinical isolate of Kanagawa phenomenon-negative Vibrio parahaemolyticus and related to the thermostable direct hemolysin. Infection and Immunity , v. 56, n. 4, p. 961-965, 1988.). A presença desse gene está correlacionada com a produção de urease (gene ure ), sendo estes geneticamente interligados (Kelly; Stroh, 1989KELLY, M.T.; STROH, E.M. Urease-positive, Kanagawa-negative Vibrio parahaemolyticus from patients and the environment in the Pacific Northwest. Journal of Clinical Microbiology , v. 27, n. 12, p. 2820-2822, 1989.). A urease inibe a síntese de muco na parede intestinal, facilitando a colonização de bactérias e provável formação de úlceras (Sidebotham; Baron, 1990SIDEBOTHAM, R.L.; BARON, J.H. Hypothesis, Helicobacter pylori , urease, mucus and gastric ulcer. Lancet , v. 335, n. 8683, p. 193-195, 1990.).

Seis cepas de V. parahaemolyticus isoladas da Ásia e do Peru, de pré-pandemias e pandemias, foram estudadas a fim de analisar a evolução do V. Parahaemolyticus , especificamente as diferenças genéticas que contribuem para patogenicidade. Após os estudos, os perfis genéticos que codificam toxinas (Tdh e Trh) revelaram que as cepas trh + e tdh + tinham diferentes tipos de ilhas de patogenicidade e elementos móveis, bem como diferenças estruturais entre as ilhas de patogenicidade do tdh das cepas que resultaram em pré-pandemia e pandemia. A conclusão foi de que as cepas pandêmicas estão intimamente relacionadas e que os surtos recentes da América do Sul causados por V. parahaemolyticus estão intimamente ligados a surtos na Índia (Chen et al., 2011CHEN, Y; STINE, O.C.; BADGER, J.H.; GIL, A.I.; NAIR, G.B.; NISHIBUCHI, M.; FOUTS, D.E. Comparative genomic analysis of Vibrio parahaemolyticus: serotype conversion and virulence. BMC genomics , v. 12, n. 294, p. 12-294, 2011.).

Algumas cepas de V. parahaemolyticus utilizam o sistema de secreção tipo III, que está implicado na sobrevivência da bactéria no meio ambiente. Esse sistema contém fatores de patogenicidade que causam a lise da célula hospedeira infectada para permitir a libertação de nutrientes (Burdette et al., 2008BURDETTE, D.L.; YARBROUGH, M.L.; ORVEDAHL, A.; GILPIN, C.J.; ORTH, K. Vibrio parahaemolyticus orchestrates a multifaceted host cell infection by induction of autophagy, cell rounding, and then cell lysis. Proceedings of the national academy of sciences of the United States of America , v. 105, n. 34, p. 12497-12502, 2008.). Desde a sua descoberta, na década de 1950, V. parahaemolyticus tem sido considerado patógeno extracelular. No entanto, um estudo recente mostrou que o sistema media a invasão bacteriana em células hospedeiras, e, portanto, a patogenia de V. parahaemolyticus está sendo revista (Zhang et al., 2012ZHANG, L.; KRACHLER, A.M.; BROBERG, C.A.; LI, Y.; MIRZAEI, H.; GILIP, C.J.; ORTH, K. Type III effector VopC mediates invasion for Vibrio species. Cell Reports , v. 1, n. 5, p. 453-460, 2012.).

V. parahaemolyticus é capaz de produzir a adesina MAM7, que facilita a fixação bacteriana nas células hospedeiras por meio da interação com fibronectina, ácido fosfatídico e fosfolipídios da membrana celular, resultando em um complexo tripartido sobre a superfície da célula afetada (Krachler et al., 2011KRACHLER, A.M.; HAM, H.; ORTH, K. Outer membrane adhesion factor multivalent adhesion molecule 7 initiates host cell binding during infection by Gram-negative pathogens. Proceedings of the national academy of sciences of the United States of America , v. 108, n. 28, p. 11614-11619, 2011.).

Outros importantes fatores de patogenicidade associados a V. parahaemolyticus são regulados por AphA. A proteína AphA reguladora de V. parahaemolyticus tem 85% de identidade com a de V. cholerae . Segundo Wang et al. (2013WANG, L.; LING, Y.; JIANG, H.; QIU, Y.; QIU. J.; CHEN, H.; YANG, R.; ZHOU, D. AphA is required for biofilm formation, motility, and virulence in pandemic Vibrio parahaemolyticus International Journal of Food Microbiology , v. 160, n. 3, p. 245-251, 2013.), AphA é necessária para a formação de biofilme em V. parahaemolyticus . Essa proteína também é necessária para a melhor movimentação de V. parahaemolyticus , por influenciar na expressão do flagelo. A deleção aphA não tem efeito sobre enterotoxicidade.

Vibrio cholerae

Após ser ingerido, V. cholerae tem mecanismos para percepção de mudanças nas condições ambientais e responde por meio da ativação de uma série de genes cujos produtos são essenciais para a colonização e o estabelecimento da doença no hospedeiro, incluindo os genes que codificam a toxina da cólera e a toxina correguladora pili, entre outros. A ativação desses genes de patogenicidade é dependente de dois fatores de transcrição (toxR e TCPP ) localizados no interior da membrana. Ambos possuem domínios capazes de captar sinais ambientais, e, quando as condições são favoráveis ao micro-organismo, toxR e TCPP ativam o promotor toxT e este então ativa os genes de patogenicidade diretamente (Morgan et al., 2011MORGAN, S.J.; FELEK, S.; GADWAL, S.; KOROPATKIN, N.M.; PERRY, J.W.; BRYSON, A.B.; KRUKONIS, E.S. The two faces of ToxR: activator of ompU, co-regulator of toxT in Vibrio cholera Molecular Microbiology , v. 81, n. 1, p. 113-128, 2011.).

Antes de se estabelecer a infecção propriamente dita é necessária a colonização que, no caso do V. cholerae , se dá por intermédio de uma pili tipo IV (T4P), que é codificada por um complexo gênico tcxP. T4P são organelas adesivas que se ligam especificamente a receptores da célula hospedeira para facilitar a fixação das bactérias, além de ser capaz de formar microcolônias que protegem a bactéria das defesas do hospedeiro e concentram as toxinas secretadas (Lim et al., 2010LIM, M.S.; DIXON, N.; ZUSHENG, Z.; ANDREW, S.A.; RONALD, K.T.; JOHN, A.T.; LISA, C. Vibrio cholerae El Tor TcpA crystal structure and mechanism for pilus-mediated microcolony formation. Molecular Microbiology , v. 77, n. 3, p. 755-770, 2010.).

Dois genes com potencial patogênico importantes são ctxA e ctxB , responsáveis por codificar a subunidade grande (A) e a subunidade enzimática de ligação (B), respectivamente, da toxina colérica. Esses genes são encontrados nos sorogrupos O1 e O139, que são os principais causadores de epidemias de cólera (Raychoudhuri et al., 2010RAYCHOUDHURI, A.; MUKHERJEE, P.; RAMAMURTHY, T.; NANDY, R.K.; TAKEDA, Y.; NAIR, G.B.; MUKHOPADHYAY, A.K. Genetic analysis of CTX prophages with special reference to ctxB and rstR alleles of Vibrio cholerae O139 strains isolated from Kolkata over a decade. FEMS Microbiology Letters , v. 303, n. 2, p. 107-115, 2010.). A toxina colérica é capaz de causar diarreia aquosa profusa pela alteração no fluxo de íons ao longo da mucosa intestinal. A subunidade B da toxina colérica se liga a receptores de gangliosídios GM1 nas células epiteliais do intestino. A subunidade A é internalizada e ativa a adenilatociclase na célula do hospedeiro, que passa a produzir a proteína G, que ativa a denilato ciclase. Como consequência, o ATP se transforma em AMPcíclico, dando lugar à liberação ativa de água, cloro, bicarbonato e potássio e à inibição da absorção de sódio pelas células do lúmen intestinal, resultando em uma hipersecreção de água e eletrólitos (Mekalanos, 2011MEKALANOS, J.J. The Evolution of Vibrio cholerae as a Pathogen. Epidemiological and Molecular Aspects on Cholera Infectious Disease , p. 97-114, 2011. Disponível em: <Disponível em: http://link.springer.com/chapter/10.1007/978-1-60327-265-0_6#page-1 >. Acesso em: 07 out. 2013.
http://link.springer.com/chapter/10.1007...
).

Vibrio cholerae produz a enzima neuraminidase, que desempenha um papel significativo na patogênese da cólera, removendo o ácido siálico de gangliósidos para expor o receptor da toxina colérica, GM1 (Moustafa et al., 2004MOUSTAFA, I.; CONNARIS, H.; TAYLOR, M.; ZAITSEV, V.; WILSON, J. C.; KIEFEL, M.J.; ITZSTEIN, M.V.; TAYLOR, G. Sialic Acid Recognition by Vibrio cholerae Neuraminidase. The Journal of Biological Chemistry , v. 279, n. 39, p. 40819-40826, 2004.), potencializando a ação da toxina pelo aumento do número de receptores. Assim, permite a atuação da fração A, que modifica a fisiologia do mecanismo secretor da membrana citoplasmática das células do intestino delgado, intensificando a reação inflamatória.

O subgrupo O1 de V. cholerae é capaz de produzir e secretar uma hemaglutinina solúvel que, em virtude de sua atividade proteolítica, é chamada de Ha/protease (Ha/P). Essa subunidade é responsável pela diarreia, que varia de branda a moderada. Isso se deve ao fato de que Ha/P estimula a produção de interleucina-8 e a degradação da zônula ocludente na mucosa intestinal, levando a inflamação do tecido e consequente diarreia alternada. Ha/P é um membro de uma família de metaloproteases de zinco que pode clivar e ativar a subunidade da toxina da cólera e a hemolisina produzida por V. cholerae. Essa estrutura tem sido considerada em estudos visando a mediar o desprendimento de Vibrio da superfície das células hospedeiras. Ha/P também pode causar efeitos patológicos in vitro que afetam a morfologia e a função das células epiteliais (Jobling; Holmes, 1997JOBLING, M.G.; HOLMES, R.K. Characterization of hapR, a positive regulator of the Vibrio cholera HA/protease gene hap, and its identification as a functional homologue of the Vibrio harveyi luxR gene. Molecular Microbiology , v. 26, n. 5, p. 1023-1034, 1997.).

A presença de flagelo em V. cholerae dá mobilidade à bactéria e contribui para a sua patogenicidade. Cepas vacinais vivas atenuadas imóveis são significativamente menos reatogênicas em voluntários humanos, mas a contribuição exata da motilidade à patogenicidade parece ser multifatorial. Motilidade também contribui para a formação de biofilme, o que facilita a persistência no meio ambiente. Assim, o flagelo desempenha um papel fundamental no ciclo de vida de V. cholerae , tanto no hospedeiro quanto no ambiente. O flagelo de V. cholerae é uma estrutura complexa constituída por várias subunidades estruturais. Uma série de genes é responsável por regular não só a expressão dos genes que codificam para o flagelo, mas também influenciam a expressão de outros genes com funções relacionadas à quimiotaxia. A função quimiotática, que indiretamente potencializa a patogenicidade flagelar, está ligada ao deslocamento do micro-organismo pelo lúmen do intestino delgado para o seu nicho intestinal preferencial (Syed; Klose, 2011SYED, K.A.; KLOSE, K.E. Vibrio cholerae flagellar synthesis and virulence. In: GOWDER, S. Cholera . InTech, 2011. Disponível em: <Disponível em: http://cdn.intechopen.com/pdfs/34051/InTech-vibrio_cholerae_flagellar_synthesis_and_virulence.pdf >. Acesso em: 27 nov. 2013.
http://cdn.intechopen.com/pdfs/34051/InT...
; Butler; Camilli, 2004BUTLER, S.M.; CAMILLI, A. Both chemotaxis and net motility greatly influence the infectivity of Vibrio cholerae Proceedings of the national academy of sciences of the United States of America, v. 101, n. 14, p. 5018-5023, 2004.).

Segundo Rutherford et al. (2011RUTHERFORD, S.T.; VAN KESSEL, J.C.; SHAO, Y.; BASSLER, B.L. AphA and LuxR/HapR reciprocally control quorum sensing in vibrios. Genes e Development , v. 25, p. 397-408, 2011.), os gradientes dos fatores de transcrição AphA e HapR estabelecem os padrões de expressão gênica em relação à população bacteriana, sendo AphA o principal regulador de quorum sensing em baixa densidade celular e HapR o principal regulador que opera em alta densidade populacional. V. cholerae produz ainda a RTX, toxina que causa despolimerização das fibras de actina e ligações covalentes destas em dímeros, trímeros e multímeros maiores (Fullner; Mekalanos, 2000FULLNER, K.J.; MEKALANOS, J.J. In vivo covalent cross-linking of cellular actin by the Vibrio cholerae RTX toxin. The EMBO Journal , v. 19, n. 20, p. 5315-5323, 2000.).

Vibrio mimicus

V. mimicus foi considerado, até 1981, como Vibrio cholerae não-O1 sacarose negativa (Davis et al., 1981DAVIS, B.R.; FANNING, G.R.; MADDEN, J.M. Characterization of biochemically atypical Vibrio cholerae strains and designation of a new pathogenic species, Vibrio mimicus . Journal of Clinical Microbiology , v. 14, n. 6, p. 631-639, 1981. ). Fenotipicamente, as funções do V. mimicus são, em sua maioria, idênticas ou semelhantes às encontradas em Vibrio cholerae e por isso inicialmente foi nomeado Vibrio cholerae não-O1 sacarose negativa, devido a essa semelhança (Desmarchelier; Reicheli, 1984DESMARCHELIER, P.M.; REICHELI, J.L. A phenotypic and genetic study of sucrose nonfermenting strains of Vibrio mimicus and Vibrio cholerae . Current Microbiology , v. 10, n. 1, p. 41-48, 1984.). É uma bactéria não halofílica que pode causar episódios esporádicos de gastroenterite aguda e infecções de ouvido.

V. mimicus produz uma hemolisina termolábil chamada enterotoxina VMH (Shinoda et al., 2004SHINODA, S.; NACAGAWA, T.; BI, K. Distribution of virulence associated genes in Vibrio mimicus isolates fron clinical and enviromental origins. Microbiology and Inmunity , v. 48, n. 7, p. 547-551, 2004.) capaz de levar à formação de poros de 2,8 a 3,5 nm de diâmetro na superfície da célula hospedeira e induzir a produção de AMP cíclico em enterócitos. Dessa forma, ativa canais de íons cloro, provocando desequilíbrio de eletrólitos e gerando diarreia (Bi et al., 2001BI, K.S.; MIYOSHI, K.; TOMOCHIKA, S.; SHINODA, S. Detection of Virulence Associated Genes in Clinical Strains of Vibrio mimicus . Microbiology and Immunology , v. 45, n. 8, p. 613-616, 2001.; Li et al., 2005LI, Y.; OKAMOTO, K.; TAKAHASHI, E. A Hemolysin of Vibrio mimicus (VMH) Stimulates Cells to Produce ATP and Cyclic AMP Which Appear to Be Secretory Mediators. Microbiology and Inmunology , v. 49, n. 1, p. 73-78, 2005.). Produz também uma hemolisina termoestável, Vm -TDH, relacionada com o TDH do V. parahaemolyticus , que possui a capacidade de produzir diarreia tipo disenteria. O V. mimicus obtém esse gene por transferência horizontal de DNA, já que o gene do TDH se encontra em um transposon (Terai et al., 1991TERAI, A.; BABA, K.; SHIRAI, H. Evidence for insertion secuence mediated spread of the thermostable direct hemolysin gene among Vibrio species. Journal of Bacteriology , v. 173, n. 16, p. 5036-5046, 1991.).

V. mimicus também produz proteases, sendo uma delas conhecida como VMP, que é capaz de mudar a permeabilidade dos vasos sanguíneos e gerar edema (Chowdhury et al., 1989CHOWDHURY, M.A.R.; YAMANACA, H.; MIYOSHI, S. Ecology of Vibrio mimicus in aquatic Environments. Applied and Environmental Microbiology , v. 55, n. 8, p. 2073-2078, 1989.).

CONCLUSÃO

Vibrio spp. possuem ampla distribuição em ambientes aquáticos naturais e podem se tornar fatores de risco para o homem, como agentes de doenças transmitidas por alimentos. No entanto, ainda é escasso o conhecimento sobre o impacto desse gênero para a saúde pública, sendo necessários novos estudos com vistas ao melhor entendimento da patogenia de cada espécie.

REFERÊNCIAS

  • AMARO, C.; BIOSCA, E.G.; FOUZ, B.; TORANZO, A.E.; GARAY, E. Role of iron, capsule, and toxins in the pathogenicity of Vibrio vulnificus biotype 2 for mice. Infection and Immunity , v. 62, p. 759-763, 1994.
  • BI, K.S.; MIYOSHI, K.; TOMOCHIKA, S.; SHINODA, S. Detection of Virulence Associated Genes in Clinical Strains of Vibrio mimicus . Microbiology and Immunology , v. 45, n. 8, p. 613-616, 2001.
  • BIOSCA, E.G.; OLIVER, J.D.; AMARO, C. Phenotypic characterization of Vibrio vulnificus biotype 2, a lipopolysaccharide-based homogeneous O serogroup within Vibrio vulnificus . Applied and Environmental Microbiology , v. 62, n. 3, p. 918-927, 1996.
  • BURDETTE, D.L.; YARBROUGH, M.L.; ORVEDAHL, A.; GILPIN, C.J.; ORTH, K. Vibrio parahaemolyticus orchestrates a multifaceted host cell infection by induction of autophagy, cell rounding, and then cell lysis. Proceedings of the national academy of sciences of the United States of America , v. 105, n. 34, p. 12497-12502, 2008.
  • BUTLER, S.M.; CAMILLI, A. Both chemotaxis and net motility greatly influence the infectivity of Vibrio cholerae Proceedings of the national academy of sciences of the United States of America, v. 101, n. 14, p. 5018-5023, 2004.
  • CERDÀ-CUÉLLAR, M.; PERMIN, L.; LARSEN, J.L.; BLANCH, A.R. Comparison of selective media for the detection of Vibrio vulnificus in environmental samples. Journal of Applied Microbiology , v. 91, n. 2, p. 322-327, 2001.
  • CHANG, T.M.; CHUANG, Y.C.; SU, J.H.; CHANG, M.C. Cloning and sequence analysis of a novel hemolysin gene (vIIY) from Vibrio vulnificus . Applied and Environmental Microbiology , v. 63, n. 10, p. 3851-3857, 1997.
  • CHEN, Y; STINE, O.C.; BADGER, J.H.; GIL, A.I.; NAIR, G.B.; NISHIBUCHI, M.; FOUTS, D.E. Comparative genomic analysis of Vibrio parahaemolyticus: serotype conversion and virulence. BMC genomics , v. 12, n. 294, p. 12-294, 2011.
  • CHOWDHURY, M.A.R.; YAMANACA, H.; MIYOSHI, S. Ecology of Vibrio mimicus in aquatic Environments. Applied and Environmental Microbiology , v. 55, n. 8, p. 2073-2078, 1989.
  • COSTA, R.A.; SILVA, G.C.; PEIXOTO, J.R.O.; VIEIRA, G.H.F.; VIEIRA, R.H.S.F. Quantification and distribution of Vibrio species in water from an estuary in Ceará-Brazil impacted by shrimp farming. Brazilian Journal of Oceanography , v. 58, n. 3, p. 1982-436, 2010.
  • DAVIS, B.R.; FANNING, G.R.; MADDEN, J.M. Characterization of biochemically atypical Vibrio cholerae strains and designation of a new pathogenic species, Vibrio mimicus . Journal of Clinical Microbiology , v. 14, n. 6, p. 631-639, 1981.
  • DESMARCHELIER, P.M.; REICHELI, J.L. A phenotypic and genetic study of sucrose nonfermenting strains of Vibrio mimicus and Vibrio cholerae . Current Microbiology , v. 10, n. 1, p. 41-48, 1984.
  • FUENZALIDA, L.; ARMIJO, L.; ZABALA, B.; HERNÁNDEZ, C.; RIOSECO, M.L.; RIQUELME, C.; ESPEJO, R.T. Vibrio parahaemolyticus strains isolated during investigation of the summer 2006 seafood related diarrhea outbreaks in two regions of Chile. International Journal of Food Microbiology , v. 117, n. 3, p. 279-275, 2006.
  • FULLNER, K.J.; MEKALANOS, J.J. In vivo covalent cross-linking of cellular actin by the Vibrio cholerae RTX toxin. The EMBO Journal , v. 19, n. 20, p. 5315-5323, 2000.
  • GANDER, R.M.; LAROCCO, M.T. Detection of piluslike structures on clinical and environmental isolates of Vibrio vulnificus . Journal of Clinical Microbiology , v. 27, p. 1015-1021, 1989.
  • GRAY, L.D.; KREGER, A.S. Purification and characterization of an extracellular cytolysin produced by Vibrio vulnificus . Infection and Immunology , v. 48, p. 62-72, 1985.
  • GULIG, P.A.; BOURDAGE, K.L.; STARKS, A.M. Molecular Pathogenesis of Vibrio vulnificus . Journal of Microbiology , v. 43, p. 118-131, 2005.
  • HEITMANN, I.G.; JOFRE, L.M.; HORMAZABAL, O.J.C.; OLEA, A.; VALLEBUONA, C.; VALDES, C. Review and guidelines for treatment of diarrhea caused by Vibrio parahaemolyticus Revista Chilena de Infectología , v. 22, n. 2, p. 131-140, 2005.
  • HOLLIS, D.G.; WEAVER, R.E.; BAKER, C.N.; THORNSBERRY, C. Halophilic Vibrio species isolated from blood cultures. Journal of Clinical Microbiology , v. 3, n. 4, p. 425-431, 1976.
  • HONDA, T.; NI, Y.; MIWATANI, T. Purification and characterization of a hemolysin produced by a clinical isolate of Kanagawa phenomenon-negative Vibrio parahaemolyticus and related to the thermostable direct hemolysin. Infection and Immunity , v. 56, n. 4, p. 961-965, 1988.
  • HUSS, H.H.; ABABOUCH, L.; GRAM, L. Assessment and management of seafood safety and quality. Fisheries technical paper. Food and Agriculture Organization of the United Nation (FAO) , v. 444, p. 31-34, 2004.
  • JANBON, G. Cryptococcus neoformans capsule biosynthesis and regulation. FEMS Yeast Research , v. 4, n. 8, p. 765-771, 2004.
  • JOBLING, M.G.; HOLMES, R.K. Characterization of hapR, a positive regulator of the Vibrio cholera HA/protease gene hap, and its identification as a functional homologue of the Vibrio harveyi luxR gene. Molecular Microbiology , v. 26, n. 5, p. 1023-1034, 1997.
  • KAYSNER, C.A.; DEPAOLA JUNIOR, A. Vibrio . U.S. Food and Drug Administration, Bacteriological analytical manual , Chapter 9. 2004. Disponível em: <Disponível em: http://www.fda.gov/Food/FoodScienceResearch/LaboratoryMethods/ucm070830.htm >. Acesso em: 29 nov. 2013.
    » http://www.fda.gov/Food/FoodScienceResearch/LaboratoryMethods/ucm070830.htm
  • KELLY, M.T.; STROH, E.M. Urease-positive, Kanagawa-negative Vibrio parahaemolyticus from patients and the environment in the Pacific Northwest. Journal of Clinical Microbiology , v. 27, n. 12, p. 2820-2822, 1989.
  • KODAMA, T. Vibrio parahaemolyticus and the Kanagawa Phenomenon. Clinical Nutrition , v. 33, p. 137-141, 1968.
  • KRACHLER, A.M.; HAM, H.; ORTH, K. Outer membrane adhesion factor multivalent adhesion molecule 7 initiates host cell binding during infection by Gram-negative pathogens. Proceedings of the national academy of sciences of the United States of America , v. 108, n. 28, p. 11614-11619, 2011.
  • LEE, S.H.; HAVA, D.L.; WALDOR, M.K.; CAMILLI, A. Regulation and temporal expression patterns of Vibrio cholerae virulence genes during infection. Cell press , v. 99, n. 6, p. 625-634, 1999.
  • LEE, S.E.; SHIN, S.H.; KIM, S.Y.; KIM, Y.R.; SHIN, D.H; CHUNG, S.S.; LEE, Z.H.; LEE, J.Y.; JOENG, K.C.; CHOI, S.H.; RHEE, J.H. Vibrio vulnificus has the transmembrane transcription activator ToxRS stimulating the expression of the hemolysin gene vvhA. Journal of Bacteriology , v. 182, n. 12, p. 3405-3415, 2000.
  • LI, Y.; OKAMOTO, K.; TAKAHASHI, E. A Hemolysin of Vibrio mimicus (VMH) Stimulates Cells to Produce ATP and Cyclic AMP Which Appear to Be Secretory Mediators. Microbiology and Inmunology , v. 49, n. 1, p. 73-78, 2005.
  • LIM, M.S.; DIXON, N.; ZUSHENG, Z.; ANDREW, S.A.; RONALD, K.T.; JOHN, A.T.; LISA, C. Vibrio cholerae El Tor TcpA crystal structure and mechanism for pilus-mediated microcolony formation. Molecular Microbiology , v. 77, n. 3, p. 755-770, 2010.
  • LIN, W.; FULLNER, K.J.; CLAYTON, R.; SEXTON, J.A.; ROGERS, M.B.; CALIA, K.E.; CALDERWOOD, S.B.; FRASER, C.; MEKALANOS, J. Identification of a Vibrio cholerae RTX toxin gene cluster that is tightly linked to the cholera toxin prophage. Proceedings of the National Academy of Sciences , v. 96, n. 3, p. 1071-1076, 1999.
  • LITWIN, C.M.; RAYBACK, T.W.; SKINNER, J. Role of catechol siderophore synthesis in Vibrio vulnificus virulence. Infection and Immunity , v. 64, n. 7, p. 2834-2838, 1996.
  • MARTIN, S.J.; SIEBELING, R.J. Identification of Vibrio vulnificus O serovars with antilipopolysaccharide monoclonal antibody. Journal of Clinical Microbiology , v. 29, n. 8, p. 1684-1688, 1991.
  • MARTINEZ-URTAZA, J.; LOZANO-LEON, A.; DEPAOLA, A.; ISHIBASHI, M.; SHIMADA, K.; NISHIBUCHI, M.; LIEBANA, E. Characterization of pathogenic Vibrio parahaemolyticus isolates from clinical sources in Spain and comparison with Asian and North American pandemic isolates. Journal of Clinical Microbiology , v. 42, n. 10, p. 4672-4678, 2004.
  • MEKALANOS, J.J. The Evolution of Vibrio cholerae as a Pathogen. Epidemiological and Molecular Aspects on Cholera Infectious Disease , p. 97-114, 2011. Disponível em: <Disponível em: http://link.springer.com/chapter/10.1007/978-1-60327-265-0_6#page-1 >. Acesso em: 07 out. 2013.
    » http://link.springer.com/chapter/10.1007/978-1-60327-265-0_6#page-1
  • MESSELHÄUSSER, U.; COLDITZ, J.; THÄRIGEN, D.; KLEIH, W.; HÖLLER, C.; BUSCH, U. Detection and differentiation of Vibrio spp. in seafood and fish samples with cultural and molecular methods. International Journal of Food Microbiology , v. 149, n. 3, p. 360-364, 2010.
  • MORENO, M.L.G.; LANDGRAF, M. Virulence factors and pathogenicity of Vibrio vulnificus strains isolated from seafood. Journal of Applied Microbiology , v. 84, p. 747-751, 1998.
  • MORGAN, S.J.; FELEK, S.; GADWAL, S.; KOROPATKIN, N.M.; PERRY, J.W.; BRYSON, A.B.; KRUKONIS, E.S. The two faces of ToxR: activator of ompU, co-regulator of toxT in Vibrio cholera Molecular Microbiology , v. 81, n. 1, p. 113-128, 2011.
  • MORRIS JUNIOR, J.G.; WRIGHT, A.C.; SIMPSON, L.M.; WOOD, P.K.; JOHNSON, D.E.; OLIVER, J.D. Virulence of Vibrio vulnificus: association with utilization of transferrin-bound iron, and lack of correlation with levels of cytotoxin or protease production. FEMS Microbiological Letter , v. 40, n. 1, p. 55-59, 1987.
  • MOUSTAFA, I.; CONNARIS, H.; TAYLOR, M.; ZAITSEV, V.; WILSON, J. C.; KIEFEL, M.J.; ITZSTEIN, M.V.; TAYLOR, G. Sialic Acid Recognition by Vibrio cholerae Neuraminidase. The Journal of Biological Chemistry , v. 279, n. 39, p. 40819-40826, 2004.
  • NAIM, R.; YANAGIHARA, T.I.; HONDA, T. Vibrio parahaemolyticus thermostable direct hemolysin can induce an apoptotic cell death in Rat-1 cells from inside and outside of the cells. FEMS Microbiology Letters , v. 195, n. 2, p. 237-244, 2001.
  • NASCIMENTO, S.M.M.; VIEIRA, R.H.S.F.; THEOPHILO, G.N.D. Vibrio vulnificus as a health hazard for shrimp consumers. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo , v. 43, n. 5, p. 263-266, 2001.
  • PARANJPYE, R.; HAMEL, O.S.; STOJANOVSKI, A.; LIERMANN, M. Genetic Diversity of Clinical and Environmental Vibrio parahaemolyticus Strains from the Pacific Northwest. Applied and Environmental Microbiology , v. 78, n. 24, p. 8631-8638, 2012.
  • PENDUKA, D. In-vitro anti-vibrio activities of crude extracts of Garciniakola seeds . 2002. 117f. Dissertação (Mestrado em Ciência Microbiológica). Faculty of Science and Agriculture, University of Fort Hare, Alice, 2011.
  • RAYCHOUDHURI, A.; MUKHERJEE, P.; RAMAMURTHY, T.; NANDY, R.K.; TAKEDA, Y.; NAIR, G.B.; MUKHOPADHYAY, A.K. Genetic analysis of CTX prophages with special reference to ctxB and rstR alleles of Vibrio cholerae O139 strains isolated from Kolkata over a decade. FEMS Microbiology Letters , v. 303, n. 2, p. 107-115, 2010.
  • RUTHERFORD, S.T.; VAN KESSEL, J.C.; SHAO, Y.; BASSLER, B.L. AphA and LuxR/HapR reciprocally control quorum sensing in vibrios. Genes e Development , v. 25, p. 397-408, 2011.
  • SAFA, A.; NAIR, G.B.; KONG, R.Y.C. Evolution of new variants of Vibrio cholerae O1. Trends in microbiology , v. 18, n. 1, p. 46-54, 2010.
  • SHINODA, S.; NACAGAWA, T.; BI, K. Distribution of virulence associated genes in Vibrio mimicus isolates fron clinical and enviromental origins. Microbiology and Inmunity , v. 48, n. 7, p. 547-551, 2004.
  • SIDEBOTHAM, R.L.; BARON, J.H. Hypothesis, Helicobacter pylori , urease, mucus and gastric ulcer. Lancet , v. 335, n. 8683, p. 193-195, 1990.
  • SIMPSON, L.M.; WHITE, V.K.; ZANE, S.F.; OLIVER, J.D. Correlation between virulence and colony morphology in Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 55, n. 1, p. 269-272, 1987.
  • SMITH, A.B.; SIEBELING, R.J. Identification of genetic loci required for capsular expression in Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 71, p. 1091-1097, 2003.
  • SOUSA, O.V.; VIEIRA, R.H.S.; MENEZES, F.G.R.; REIS, C.M.F.; HOFER, E. Detection of Vibrio parahaemolyticus and Vibrio cholerae in oyster, Crassostrea rhizophorae , collected from a natural nursery in the Cocó river estuary, Fortaleza, Ceará, Brazil. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo , v. 46, n. 2, p. 36-4665, 2004.
  • STELMA JUNIOR, G.N.; REYES, A.L.; PEELER, J.T.; JOHNSON, C.H.; SPAULDING, P.L. Virulence characteristics of clinical and environmental isolates of Vibrio vulnificus . Applied and Environmental Microbiology , v. 58, p. 2776-2782, 1992.
  • SYED, K.A.; KLOSE, K.E. Vibrio cholerae flagellar synthesis and virulence. In: GOWDER, S. Cholera . InTech, 2011. Disponível em: <Disponível em: http://cdn.intechopen.com/pdfs/34051/InTech-vibrio_cholerae_flagellar_synthesis_and_virulence.pdf >. Acesso em: 27 nov. 2013.
    » http://cdn.intechopen.com/pdfs/34051/InTech-vibrio_cholerae_flagellar_synthesis_and_virulence.pdf
  • TALL, A.; HERVIO-HEATH, D.; TEILLON, A.; BOISSET-HELBERT, C.; DELESMONT, R.; BODILIS, J.; TOURON-BODILI, A. Diversity of Vibrio spp. isolated at ambient environmental temperature in the Eastern English Channel as determined by pyrH sequencing. Journal of applied microbiology , v. 114, n. 6, p. 1713-1724, 2013.
  • TERAI, A.; BABA, K.; SHIRAI, H. Evidence for insertion secuence mediated spread of the thermostable direct hemolysin gene among Vibrio species. Journal of Bacteriology , v. 173, n. 16, p. 5036-5046, 1991.
  • TESTA, J.; DANIEL, L.W.; KREGER, A.S. Extracellular phospholipase A2 and lysophospholipase produced by Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 45, n. 2, p. 458-463, 1984.
  • ULUSARAC, O.; CARTER, E. Varied clinical presentations of Vibrio vulnificus infections: a Report of Four Unusual Cases and Review of the Literature. Southern Medical Journal , v. 97, n. 2, p. 163-168, 2004.
  • VIEIRA, M.A.M. Ilhas de patogenicidade. O Mundo da Saúde , v. 33, n. 4, p. 406-414, 2009.
  • WANG, L.; LING, Y.; JIANG, H.; QIU, Y.; QIU. J.; CHEN, H.; YANG, R.; ZHOU, D. AphA is required for biofilm formation, motility, and virulence in pandemic Vibrio parahaemolyticus International Journal of Food Microbiology , v. 160, n. 3, p. 245-251, 2013.
  • WEST, C.K.G.; KLEIN, S.L.; LOVELL, C.R. High Frequency of Virulence Factor Genes tdh , trh , and tlh in Vibrio parahaemolyticus Strains Isolated from a Pristine Estuary. Applied and Environmental Microbiology , v. 79, n. 7, p. 2247-2252, 2013.
  • WRIGHT, A.C.; SIMPSON, L.M.; OLIVER, J.D.; MORRIS, J.G. Phenotypic evaluation of acapsular transposon mutants of Vibrio vulnificus . Infection and Immunity , v. 58, p. 1769-1773, 1990.
  • WRIGHT, A.C.; SIMPSON, L.M.; OLIVER, J.D. Role of iron in the pathogenesis of Vibrio vulnificus infections. Infection and Immunity , v. 34, n. 2, p. 503-507, 1981.
  • ZHANG, L.; KRACHLER, A.M.; BROBERG, C.A.; LI, Y.; MIRZAEI, H.; GILIP, C.J.; ORTH, K. Type III effector VopC mediates invasion for Vibrio species. Cell Reports , v. 1, n. 5, p. 453-460, 2012.
  • ZHAO, Y.; TANG, X.; ZHAN, W. Cloning, expressing, and hemolysis of tdh , trh and tlh genes of Vibrio parahaemolyticus Journal of Ocean University of China, v. 10, n. 3, p. 275-279, 2011.

Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    2016

Histórico

  • Recebido
    20 Dez 2013
  • Aceito
    12 Fev 2016
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