Adição de sucos de laranja, abacaxi e beterraba em diluidor para criopreservação de sêmen de carneiros

Resumo

Em busca de melhorias na criopreservação do sêmen, substâncias naturais são comumente estudadas com o objetivo de melhorar a qualidade do sêmen. O objetivo deste estudo foi avaliar o efeito da adição de sucos de laranja, abacaxi e beterraba em diferentes concentrações e combinações ao diluidor de criopreservação de sêmen ovino. Foram utilizados cinco ejaculados de cinco carneiros adultos. O pool de sêmen foi diluído em diluente à base de gema de ovo e misturado com os seguintes 15 tratamentos (na concentração final de 400x10⁶ sptz/ml): laranja 10% (O10) e 15% (O15); abacaxi 10% (P10) e 15% (P15); beterraba 10% (B10) e 15% (B15); abacaxi + laranja 10% (PO10) e 15% (PO15); abacaxi + beterraba 10% (PB10) e 15% (PB15); beterraba + laranja 10% (BO10) e 15% (BO15); abacaxi + beterraba + laranja 10% (PBO10) e 15% (PBO15); e o grupo controle (CON). Pós-descongelação em palhetas de 0,25 ml a análise da qualidade do sêmen criopreservado foi realizada pelo CASA e citometria de fluxo. A análise de variância foi realizada e as médias comparadas pelo teste SNK. O teste de correlação de Pearson também foi realizado. Nenhum efeito foi observado na adição de sucos ao diluidor de sêmen antes da criopreservação. Após o descongelamento, embora estatisticamente semelhante ao grupo controle, a motilidade total do grupo B10 atingiu padrões aceitáveis de motilidade total. Além disso, o grupo B10 apresentou os maiores valores (p<0,05) de motilidade progressiva que o grupo controle ou os outros tratamentos. A adição de 10% de suco de beterraba ao diluente de sêmen ovino pode melhorar a criopreservação da motilidade espermática.

Palavras-chave:
antioxidante; congelamento; sêmen; diluidor de sêmen

Abstract

Searching for improvements in semen cryopreservation, natural substances are commonly studied focusing to improve the sperm quality. The aim of this study were evaluated the effect of adding orange, pineapple, and beet juices in different concentrations and combinations to the ram semen cryopreservation extender. Five ejaculates from five adult rams were used. The semen pool was diluted in egg yolk-based extender and mixed with the following 15 treatments (at a final concentration of 400.10⁶ sptz/mL): orange 10% (O10) and 15% (O15); pineapple 10% (P10) and 15% (P15); beet 10% (B10) and 15% (B15); pineapple + orange 10% (PO10) and 15% (PO15); pineapple + beet 10% (PB10) and 15% (PB15); beet + orange 10% (BO10) and 15% (BO15); pineapple + beet + orange 10% (PBO10) and 15% (PBO15); and the control group (CON). Post-thaw in 0.25 mL straws semen quality analysis of cryopreserved semen was performed by CASA and flow cytometry. Analysis of variance (PROC GLM) was carried out and the averages were compared using the SNK test. Pearson's correlation test was also performed. No effect was noted in the addition of juices to the semen extender prior to cryopreservation. Post-thawed, although, statistically similar to the control group, the total motility of the B10 group reached acceptable standards of total motility. In addition, B10 group showed the highest values (p<0.05) of progressive motility than control group or other treatments. The addition of 10% beet juice to the ram semen extender can improve the cryopreservation of sperm motility.

Keywords:
antioxidant; freezing; sperm; semen extender

1. Introdução

O sêmen congelado na inseminação artificial permite a otimização dos reprodutores nas propriedades e melhor seleção genética do rebanho. Além disso, o uso desta biotécnica diminui os gastos com transporte e aquisição de reprodutores. No entanto, os processos de congelamento e descongelamento são prejudiciais às células espermáticas e afetam diretamente sua capacidade de fertilizar. A produção de espécies reativas de oxigênio (ERO) durante a criopreservação devido a mudanças de temperatura causa danos às membranas das células espermáticas(¹, ², ³, ⁴). Os espermatozoides de mamíferos são propensos a danos por EROs devido à maior concentração de ácidos graxos poliinsaturados em sua membrana citoplasmática(⁵). Além dessa predisposição estrutural, a falta de enzimas citoplasmáticas com função antioxidante em quantidade necessária para a neutralização do excesso de EROs, piora a resistência espermática e pode induzir à diminuição da motilidade espermática e até a morte(⁵). Em quantidades fisiológicas, as EROs atuam na aquisição da capacitação espermática, atuando na motilidade e hiperativação espermática, reação acrossomal e fusão com o oócito(⁶).

Atualmente, extratos de substâncias antioxidantes naturais de plantas, como compostos fenólicos que incluem favonóides, ácidos fenólicos e tocoferóis, estão sendo utilizados no processamento de alimentos e na medicina terapêutica preventiva(⁷). Estudos têm demonstrado um efeito significativo na melhoria da preservação espermática com a adição de extratos naturais de plantas no diluente de sêmen de várias espécies animais(⁸). Frutas e beterrabas também são ricas em açúcares usados para a respiração celular e podem fornecer equilíbrio osmótico e crioproteção aos espermatozoides(⁹). Sucos de frutas como laranja, toranja, maçã, abacaxi e sucos de vegetais possuem altos teores de vitamina C, carotenóides e compostos fenólicos que estão fortemente correlacionados com efeitos antioxidantes(¹⁰; ¹¹). De acordo com Vinson et al. (1998)(¹²) a beterraba apresentou maior concentração de compostos fenólicos em 23 vegetais comumente consumidos nos Estados Unidos. Em estudos com polpa de beterraba, Mohdaly et al. (2010)(¹³) encontraram altas concentrações de compostos fenólicos nas análises realizadas e a beterraba mostrou ser uma boa fonte natural de antioxidantes, sendo um excelente estabilizante principalmente para a indústria alimentícia.

O objetivo do presente trabalho foi analisar os efeitos da adição de diferentes concentrações e combinações de sucos de laranja, abacaxi e beterraba, em diluidor de sêmen ovino, na cinética espermática e nas características de membranas plasmática, acrossomal e mitocondrial após criopreservação.

2. Material e métodos

2.1. Local e animais

O estudo foi realizado no Instituto de Zootecnia (IZ/APTA/SAA) na cidade de Nova Odessa, São Paulo, Brasil. A cidade está localizada a 22º42’ de latitude sul e 47º18’ de longitude oeste. O clima é seco no inverno e quente e chuvoso no verão, com precipitação média anual em torno de 1.270 mm. O experimento foi avaliado pelo Comitê de Ética em Experimentação Animal do Instituto de Zootecnia, sendo aprovado e recebendo o parecer CEUA/IZ – no. 187.

Foram utilizados cinco carneiros machos adultos (entre 2 e 4 anos) de diferentes raças, sendo quatro Santa Inês e um Friesian Oriental. Os animais permaneceram em baias e consumiram dieta à base de silagem de milho mais concentrado de nutrientes diariamente, seguindo as recomendações do NRC, duas vezes ao dia, com água de boa qualidade disponível durante o período experimental(¹⁴).

2.2. Preparação dos sucos de frutas e beterraba

Os sucos de frutas e beterraba foram preparados de acordo com os procedimentos descritos por Adeyemo et al. (2007)(¹⁵) e Daramola et al. (2016)(¹⁶) utilizando abacaxi (Ananas comosus L. var. Pearl), laranja doce (Citrus sinensis L.) e beterraba (Beta vulgaris L). Os sucos foram utilizados individualmente e em diferentes combinações.

As laranjas, abacaxis e beterrabas foram previamente lavados em água destilada e depois descascados. As sementes das laranjas foram removidas. Todos foram cortados separadamente em cubos com 1 cm de lado e homogeneizados por cinco minutos, a fim de facilitar a extração do suco. As peças homogeneizadas foram transferidas para um filtro de malha de nylon e depois espremidas manualmente e acondicionadas em tubo plástico graduado.

Em seguida, 5 mL de cada suco, puro e suas combinações (laranja e abacaxi, laranja e beterraba, abacaxi e beterraba; e laranja, abacaxi e beterraba), foram centrifugados separadamente a 3000xg por 20 minutos. O pH do sobrenadante de cada suco foi medido, encontrando-se valores de 4,54, 4,1, 6,25, 4,2, 4,8, 4,8 e 4,6 para laranja, abacaxi, beterraba, laranja e abacaxi, laranja e beterraba, abacaxi e beterraba, e laranja, abacaxi e abacaxi. beterraba, respectivamente. Neste experimento o pH dos sucos não foi neutralizado antes da adição no diluente de sêmen para avaliar seu potencial natural como aditivo.

2.3. Coleta de sêmen e adição dos sucos

Cinco ejaculados foram coletados de cinco carneiros em dias alternados por 10 dias usando uma vagina artificial a uma temperatura de aproximadamente 38ºC. Para estimular a ejaculação, foi utilizado um manequim de ovelha sincronizado em estro dentro de um tronco de contenção.

No dia da coleta de sêmen, um ejaculado de cada carneiro (n = 5) foi avaliado quanto à motilidade total, motilidade progressiva e motilidade de massa imediatamente após a coleta. Em seguida, o sêmen foi diluído em duas partes do diluente BotuBov® para cada parte do ejaculado (1:2) e armazenado em tubo graduado em banho-maria a 37ºC, até que todos os carneiros fossem submetidos ao mesmo procedimento.

Os carneiros foram selecionados aleatoriamente em cada dia de coleta (lote), e para minimizar as diferenças entre os carneiros, raças e horários de coleta, foi formado um pool dos cinco ejaculados em um único tubo graduado, onde a concentração foi corrigida para 800x106 sptz/mL com a adição de mais extensor BotuBov®.

Em seguida, o pool foi separado em 15 alíquotas de 1 mL cada e armazenada em tubos de ensaio previamente preenchidos com 1 mL de diluente BotuBov ® a 37ºC, resultando em 2 mL por tubo de ensaio (tratamento) e concentração final de 400x10⁶ sptz/mL.

As amostras foram separadas em 15 tratamentos de acordo com os sucos e concentrações utilizadas: laranja a 10% (O10) e 15% (O15); abacaxi a 10% (P10) e 15% (P15); beterraba a 10% (B10) e 15% (B15); abacaxi + laranja a 10% (PO10) e 15% (PO15); abacaxi + beterraba a 10% (PB10) e 15% (PB15); beterraba + laranja a 10% (BO10) e 15% (BO15); abacaxi + beterraba + laranja a 10% (PBO10) e 15% (PBO15); e o grupo controle (CON). Posteriormente, as amostras foram homogeneizadas e avaliadas quanto à motilidade total e progressiva, e vigor espermático antes da criopreservação.

2.4. Criopreservação de sêmen

Após as amostras serem diluídas em solução de BotuBov ® e os sucos, e em seguida avaliadas para cada um dos respectivos tratamentos, foram acondicionadas em palhetas de 0,25 mL e submetidas à criopreservação. Oito palhetas de cada tratamento foram resfriadas de 32ºC a 5ºC a uma taxa de resfriamento de 0,25ºC/min e estabilizadas por 25 minutos. Posteriormente, as palhetas foram submetidas ao congelamento em vapor de nitrogênio por 20 minutos até -120ºC e foram submersas em nitrogênio líquido a -196ºC seguido de armazenamento em cilindros.

2.5. Análises pós criopreservação

Duas palhetas de cada tratamento e de mesma partida foram descongeladas (37ºC/30 segundos), homogeneizadas em microtubo e avaliadas quanto à motilidade espermática, membrana plasmática, acrossomal e mitocondrial, peroxidação lipídica e estresse oxidativo.

Para avaliar a motilidade espermática foi utilizada uma análise de esperma assistida por computador (CASA). Esta análise foi realizada utilizando o software analisador de classes de espermatozoides (SCA -Microptics Barcelona, Espanha), com ajuste prévio de setup para sêmen ovino. A amostra de sêmen diluído foi depositada em uma câmara Makler™, e a imagem foi obtida por meio de uma câmera acoplada ao microscópio equipada com contraste de fase (Nikon, Modelo Eclipse Ni-U 80i). As seguintes características foram analisadas: motilidade total (MT, %), motilidade progressiva (MP, %), velocidade de percurso (VAP, µm/s), velocidade progressiva (VSL, µm/s), velocidade curvilínea (VCL, µm/s), deslocamento lateral da cabeça (ALH, µM), frequência cruzada de batimentos (BCF, Hz), retilinearidade (STR, %) e linearidade (LIN, %).

Para avaliar a integridade da membrana plasmática e do potencial acrossômico e de membrana mitocondrial, as sondas fuorescentes utilizadas foram: iodeto de propídio (PI), aglutinina Pisum sativum conjugada com isotiocianato de fuoresceína (FITC-PSA) e 5,5',6,6'-tetracloro-1,1, iodeto de 3,3'-tetraetilbenzimidazolilcarbocianina (JC-1), respectivamente (adaptado Pavaneli et al., 2020)(¹⁷). Para a análise da peroxidação lipídica foram utilizados 4,4-Difluoro-5-(4-fenil-1,3-butadienil)-4-bora-3a, 4a-diaza-s-indaceno ácido-3-undecanoico (C11-BODIPY581 / 591)(¹⁸) e dihidroetídio (DHE)(¹⁹). Essas análises foram realizadas usando uma citometria de fluxo (BD Accuri™ C6). O esquema experimental do estudo é mostrado na Figura 1.

Figura 1
Desenho experimental do estudo. No qual: O10 = 10% laranja; O15 = 15% laranja; P10 = 10% abacaxi; P15 = 15% abacaxi; B10 = 10% beterraba; B15 = 15% beterraba; PO10 = 10% abacaxi + laranja; PO15 = 15% abacaxi + laranja; PB10 = 10% abacaxi + beterraba; PB15 = 15% abacaxi + beterraba; BO10 = 10% beterraba + laranja; BO15 = 15% beterraba + laranja e PBO10 = 10% abacaxi + beterraba + laranja; PBO15 = 15% abacaxi + beterraba + laranja.

2.6. Análise estatística

Durante o experimento, todos os dados foram registrados e tabulados para posterior análise estatística usando o software Statistical Analysis System (SAS 9.4). Foi realizada análise de variância (PROC GLM) dos tratamentos e seu respectivo lote, bem como dos parâmetros do respectivo lote. As médias foram comparadas pelo teste SNK a 5% de probabilidade. O teste de correlação de Pearson também foi realizado entre os parâmetros observados durante o experimento. Interações simples entre efeitos foram testadas, mas não apresentaram diferenças (p>0,05) e foram excluídas do modelo final de análise dos dados.

3. Resultados

A análise cinética subjetiva pré-congelamento do sêmen já dividido nos respectivos tratamentos foi semelhante (p>0,05) devido aos parâmetros observados (tabela 1). Não houve diferença estatística (p< 0,05) entre os parâmetros avaliados e os diferentes lotes realizados.

Tabela 1
Médias e desvio padrão de motilidade total (MT%) e progressiva (MP%) e turbilhonamento (MM, 1-5) do pool de sêmen de carneiro (n=5) antes da criopreservação.

Tratamentos	MT	MP	MM
Controle	80,0 ± 0,0	66,0 ± 5,5	3,8 ± 0,4
O10%	72,0 ± 4,5	60,0 ± 0,0	4,0 ± 0,0
O15%	78,0 ± 4,5	64,0 ± 5,5	4,0 ± 0,0
P10%	76,0 ± 5,5	64,0 ± 8,9	4,0 ± 0,0
P15%	76,0 ± 5,5	66,0 ± 5,5	4,0 ± 0,0
B10%	78,0 ± 4,5	68,0 ± 4,5	4,0 ± 0,0
B15%	78,0 ± 4,5	66,0 ± 5,5	4,0 ± 0,0
PO10%	78,0 ± 4,5	68,0 ± 4,5	4,0 ± 0,0
PO15%	76,0 ± 5,5	62,0 ± 4,5	4,0 ± 0,0
PB10%	78,0 ± 4,5	66,0 ± 5,5	4,0 ± 0,0
PB15%	80,0 ± 0,0	68,0 ± 4,5	4,0 ± 0,0
BO10%	78,0 ± 4,5	64,0 ± 8,9	4,0 ± 0,0
BO15%	74,0 ± 8,9	60,0 ± 7,1	4,0 ± 0,0
PBO10%	78,0 ± 4,5	66,0 ± 5,5	4,0 ± 0,0
PBO15%	76,0 ± 5,5	62,0 ± 4,5	4,0 ± 0,0

• No qual: O10 = 10% laranja; O15 = 15% laranja; P10 = 10% abacaxi; P15 = 15% abacaxi; B10 = 10% beterraba; B15 = 15% beterraba; PO10 = 10% abacaxi + laranja; PO15 = 15% abacaxi + laranja; PB10 = 10% abacaxi + beterraba; PB15 = 15% abacaxi + beterraba; BO10 = 10% beterraba + laranja; BO15 = 15% beterraba + laranja and PBO10 = 10% abacaxi + beterraba + laranja; PBO15 = 15% abacaxi + beterraba + laranja.

Foi observada diferença estatisticamente significante (p<0,05) entre os tratamentos e motilidade total e progressiva na análise da criopreservação do sêmen. O tratamento B - 10% apresentou maior porcentagem de motilidade progressiva, diferindo dos demais tratamentos e do grupo controle, mas foi semelhante ao grupo controle, B - 15% e B + O - 10% para motilidade total (tabela 2). Não houve diferença estatística (p>0,05) entre a motilidade média geral e as coletas de sêmen.

Tabela 2
Médias e desvio padrão da motilidade total (MT%) e progressiva (MP%) após a criopreservação avaliados pelo CASA.

Tratamentos	MT	MP
Controle	23,2 ± 6,1ᵃᵇ	7,6 ± 3,6ᵇ
O10%	13,4 ± 4,8ᵇc	3,2 ± 1,2ᵇ
O15%	10,3 ± 1,8c	1,8 ± 0,4ᵇ
P10%	10,3 ± 3,2c	3,1 ± 2,3ᵇ
P15%	6,8 ± 3,2c	1,6 ± 1,1ᵇ
B10%	31,5 ± 11,4ᵃ	12,7 ± 8,1ᵃ
B15%	22,4 ± 9,5ᵃᵇ	8,6 ± 5,6ᵇ
PO10%	13,4 ± 5,3ᵇc	2,7 ± 1,4ᵇ
PO15%	8,4 ± 2,8c	1,8 ± 1,0ᵇ
PB10%	13,8 ± 5,1ᵇᶜ	3,2 ± 1,4ᵇ
PB15%	12,2 ± 3,7ᵇc	4,1 ± 1,9ᵇ
BO10%	22,2 ± 8,1ᵃᵇ	6,6 ± 3,3ᵇ
BO15%	13,4 ± 4,6ᵇc	3,7 ± 1,9ᵇ
PBO10%	18,0 ± 6,3ᵇc	7,1 ± 3,1ᵇ
PBO15%	17,7 ± 4,7ᵇc	5,9 ± 3,2ᵇ

• No qual: O10 = 10% laranja; O15 = 15% laranja; P10 = 10% abacaxi; P15 = 15% abacaxi; B10 = 10% beterraba; B15 = 15% beterraba; PO10 = 10% abacaxi + laranja; PO15 = 15% abacaxi + laranja; PB10 = 10% abacaxi + beterraba; PB15 = 15% abacaxi + beterraba; BO10 = 10% beterraba + laranja; BO15 = 15% beterraba + laranja and PBO10 = 10% abacaxi + beterraba + laranja; PBO15 = 15% abacaxi + beterraba + laranja.

Não houve diferença estatística (p> 0,05) nas análises realizadas pelo CASA para velocidade curvilínea (VCL), velocidade em linha reta (VSL), velocidade média de percurso (VAP), linearidade (LIN), retidão (STR), amplitude de deslocamento lateral da cabeça (ALH) e frequência de batimento fagelar cruzado (BCF) entre os tratamentos, bem como entre as médias gerais e colheitas de sêmen.

Nas análises de citometria de fluxo não houve diferença entre os tratamentos (p>0,05) para a peroxidação lipídica medida com a sonda C11-BODIPY581/591, bem como para o estresse oxidativo a partir da detecção de ânions superóxido medido pela sonda DHE (tabela 3).

Tabela 3
Médias e desvio padrão da peroxidação lipídica da membrana plasmática (MDHE) e do estresse oxidativo através da mensuração do ânion superóxido (MBP) avaliados por citometria de fluxo.

Tratamentos	MBP	MD HE
Controle	1406,6 ± 505,3ᵇ	2691,6 ± 752,9
O10%	2030,4 ± 448,3ᵃᵇ	2365,0 ± 821,2
O15%	3239,2 ± 2882,6ᵃᵇ	2240,4 ± 554,6
P10%	2663,4 ± 1429,0ᵃᵇ	2916,4 ± 883,4
P15%	2980,1 ± 1429,5ᵃᵇ	3390,8 ± 1027,6
B10%	3065,8 ± 469,7ᵃᵇ	3723,0 ± 1943,3
B15%	3457,1 ± 459,2ᵃᵇ	2786,9 ± 1401,9
PO10%	2414,9 ± 643,7ᵃᵇ	3230,0 ± 752,8
PO15%	3919,3 ± 2618,6ᵃ	2821,3 ± 1385,6
PB10%	3000,5 ± 1139,0ᵃᵇ	2853,8 ± 683,3
PB15%	3491,4 ± 1631,9ᵃᵇ	2064,3 ± 1432,4
BO10%	2579,3 ± 388,3ᵃᵇ	2443,10 ± 874,9
BO15%	2694,0 ± 481,4ᵃᵇ	3099,1 ± 2099,4
PBO10%	3591,4 ± 877,5ᵃᵇ	2870,8 ± 1420,9
PBO15%	3901,4 ± 1535,4ᵃ	2500,4 ± 1170,7

• No qual: O10 = 10% laranja; O15 = 15% laranja; P10 = 10% abacaxi; P15 = 15% abacaxi; B10 = 10% beterraba; B15 = 15% beterraba; PO10 = 10% abacaxi + laranja; PO15 = 15% abacaxi + laranja; PB10 = 10% abacaxi + beterraba; PB15 = 15% abacaxi + beterraba; BO10 = 10% beterraba + laranja; BO15 = 15% beterraba + laranja and PBO10 = 10% abacaxi + beterraba + laranja; PBO15 = 15% abacaxi + beterraba + laranja.

Não houve diferença entre os tratamentos para baixo e alto potencial de membrana mitocondrial medido pela sonda JC-1 (tabela 4).

Tabela 4
Médias e desvio padrão do baixo potencial de membrana mitocondrial (LP%) e alto potencial de membrana mitocondrial (HP%) avaliados pela sonda JC-1 em citometria de fluxo.

Tratamentos	LP	HP
Controle	27,31 ± 19,36	9,23 ± 1,34ᵇc
O10%	31,72 ± 29,23	9,81 ± 2,89ᵇc
O15%	24,83 ± 20,90	6,77 ± 0,93c
P10%	21,62 ± 10,55	14,73 ± 6,19ᵃᵇc
P15%	28,69 ± 21,68	10,73 ± 6,80ᵇc
B10%	43,43 ± 21,68	7,38 ± 2,24c
B15%	34,95 ± 21,67	6,96 ± 2,21c
PO10%	31,34 ± 24,37	14,74 ± 4,56ᵃᵇc
PO15%	27,28 ± 25,01	11,39 ± 4,29ᵇc
PB10%	19,73 ± 5,05	17,94 ± 9,32ᵃᵇ
PB15%	21,99 ± 14,36	11,48 ± 4,57ᵇc
BO10%	33,67 ± 23,94	9,06 ± 2,29ᵇc
BO15%	33,19 ± 23,88	9,49 ± 2,95ᵇc
PBO10%	21,78 ± 7,25	21,15 ± 9,89ᵃ
PBO15%	40,85 ± 23,91	13,82 ± 7,78ᵃᵇc

• No qual: O10 = 10% laranja; O15 = 15% laranja; P10 = 10% abacaxi; P15 = 15% abacaxi; B10 = 10% beterraba; B15 = 15% beterraba; PO10 = 10% abacaxi + laranja; PO15 = 15% abacaxi + laranja; PB10 = 10% abacaxi + beterraba; PB15 = 15% abacaxi + beterraba; BO10 = 10% beterraba + laranja; BO15 = 15% beterraba + laranja and PBO10 = 10% abacaxi + beterraba + laranja; PBO15 = 15% abacaxi + beterraba + laranja.

O tratamento com O15 foi inferior ao tratamento com B15 para integridade de membrana e P15 foi inferior a todos os outros tratamentos para integridade de membrana plasmática e acrossomal, medida pelo FITC-PSA (tabela 5).

Tabela 5
Médias e desvio padrão da integridade de membrana acrossomal (AI%) e integridade de membrana plasmática (MI%) dos espermatozoides após criopreservação, avaliadas pela sonda FITC-PSA em citometria de fluxo.

Tratamentos	AI	MI
Controle	90,83 ± 4,80	26,82 ± 8,58ᵃᵇ
O10%	90,96 ± 6,80	20,64 ± 7,76ᵃᵇ
O15%	93,07 ± 3,49	12,94 ± 5,64ᵇ
P10%	84,16 ± 6,69	24,21 ± 13,14ᵃᵇ
P15%	71,38 ± 8,48ᵇ	24,20 ± 13,90ᵃᵇ
B10%	90,70 ± 5,66	33,99 ± 5,56ᵃᵇ
B15%	91,24 ± 5,76	41,30 ± 21,30ᵃ
PO10%	88,82 ± 5,60	34,24 ± 18,71ᵃᵇ
PO15%	86,44 ± 5,57	27,34 ± 8,41ᵃᵇ
PB10%	87,47 ± 5,82	30,81 ± 9,40ᵃᵇ
PB15%	89,30 ± 3,65	25,46 ± 14,31ᵃᵇ
BO10%	87,47 ± 9,73	31,01 ± 4,98ᵃᵇ
BO15%	88,98 ± 10,28	26,68 ± 6,58ᵃᵇ
PBO10%	90,43 ± 4,88	36,92 ± 7,40ᵃᵇ
PBO15%	90,97 ± 5,26	28,43 ± 10,24ᵃᵇ

• No qual: O10 = 10% laranja; O15 = 15% laranja; P10 = 10% abacaxi; P15 = 15% abacaxi; B10 = 10% beterraba; B15 = 15% beterraba; PO10 = 10% abacaxi + laranja; PO15 = 15% abacaxi + laranja; PB10 = 10% abacaxi + beterraba; PB15 = 15% abacaxi + beterraba; BO10 = 10% beterraba + laranja; BO15 = 15% beterraba + laranja and PBO10 = 10% abacaxi + beterraba + laranja; PBO15 = 15% abacaxi + beterraba + laranja.

4. Discussão

Os meios crioprotetores para armazenamento de esperma têm sido continuamente revisados em seus compostos básicos e aditivos(²⁰). Plantas, frutas e vegetais são conhecidos por terem atividades antioxidantes, androgênicas e anti-infertilidade que podem apresentar efeitos benéficos na reprodução animal(⁸).

As análises realizadas antes do processo de congelamento mostraram que os sucos adicionados ao sêmen conseguiram manter padrões aceitáveis de parâmetros cinéticos(²¹), sem causar efeitos tóxicos aos espermatozoides a princípio.

A análise da motilidade total e progressiva após o descongelamento (Tabela II) mostrou uma queda acentuada desses valores após o processo de criopreservação. Segundo Maxwell e Salamon (1993)(²²), é esperado um declínio de aproximadamente 20% na porcentagem de espermatozoides férteis em relação ao sêmen normal. Durante o processo de criopreservação, o sêmen é exposto ao choque frio, ar atmosférico e diferenças osmóticas, causando maior ocorrência de peroxidação lipídica devido à ação das EROs e danos mecânicos às membranas por alterações na osmolaridade e temperatura(¹, ², ⁴). Assim, após o descongelamento, os espermatozoides tendem a ter menor motilidade e potencial de fertilização como resultado de alterações na integridade da membrana e função celular causadas pela criopreservação(², ²³, ²⁴). Bartoov et al. (1980)(²⁵), relataram que o pH entre 6,0 e 6,5 manteve boas características de motilidade no sêmen ovino. No presente estudo, o suco de beterraba foi o único tratamento que manteve o pH próximo aos resultados obtidos por esses autores, com valores de 6,25, o que pode ser um indicativo de que o pH dos demais tratamentos influenciou negativamente a viabilidade espermática.

Azevedo et al. (2000)(²⁶), estudando diferentes concentrações espermáticas (50, 100 e 200 milhões) em diferentes palhetas (0,25 e 0,50 ml), não encontraram diferenças estatísticas entre motilidade progressiva e concentração espermática. No entanto, houve diminuição da motilidade progressiva quando o enchimento foi realizado em palhetas de 0,25 mL em relação às de 0,50 mL, talvez devido ao menor diâmetro da palheta de 0,25 mL, permitindo maior dano do choque térmico às células durante o processo de criopreservação.

O tratamento B - 10% foi superior aos demais para motilidade progressiva (12,7% ± 8,1), mostrando que o suco de beterraba foi efficiente em manter os espermatozoides em movimento progressivo em níveis superiores ao grupo controle após a criopreservação. O mesmo tratamento também manteve o percentual de motilidade total acima de 30%, em linha com as características desejáveis para carneiros quanto à dose de sêmen congelado segundo o CBRA (2013)(²¹). Os açúcares podem promover melhorias no equilíbrio osmótico e na crioproteção das células espermáticas, além de serem utilizados na ocorrência de fosforilação oxidativa(⁹, ¹⁶). Wruss et al. (2015)(²⁷), ao analisarem o suco de sete diferentes variedades de beterraba, encontraram valores entre 60% de betacianinas e 40% de betaxantinas, que representaram de 70 a 100% do total de compostos fenólicos. Além disso, a composição de açúcar encontrada foi semelhante em todas as variedades, com média de 7,7%, sendo 95% sacarose, seguida de glicose e frutose. O estudo realizado por Fukuhara e Nishikawa (1973)(²⁸) mostrou um efeito significativo do aumento da energia para manter a motilidade do esperma caprino quando uma variedade de açúcares foi adicionada, mas não houve diferença significativa causada pela sacarose, ao contrário da glicose e frutose, que promoveu melhorias.

Daramola et al. (2016)(¹⁶), estudando sucos de pepino, abacaxi e laranja adicionados ao diluente de sêmen ovino criopreservado, encontraram maiores valores de motilidade progressiva, principalmente quando se utilizaram concentrações de 7,5 e 10%. No presente estudo, os sucos de abacaxi e laranja não obtiveram resultados semelhantes, diferentemente do suco de beterraba, que foi estatisticamente melhor em motilidade progressiva que os demais. Sabe-se que as partes das plantas, como frutos, folhas e raízes, podem variar em seus componentes fitoquímicos(²⁹), mas como afirmam Melo et al. (2008)(³⁰), a concentração também varia de acordo com a cultivar, variedade, estágio de maturação, clima e condições edáficas, sendo improvável que uma planta da mesma espécie tenha composição fitoquímica idêntica a outra planta. Melhorias na motilidade espermática foram observadas em sêmen criopreservado usando extrato de erva-doce em sêmen suíno(³¹); utilizando extrato de alecrim em sêmen bovino e ovino, respectivamente(²³, ³², ³³); com a adição de extrato de cravo no sêmen de carneiro(³⁴); uso de água de coco no sêmen suíno(³⁵); uso de suco de romã no sêmen bovino(³⁶, ³⁷); com suco de morango em sêmen bovino e bubalino(³⁸); e com seiva de ráfia, suco de mamão e tomate e água de coco em sêmen bovino refrigerado(³⁹).

Tais achados mostram os possíveis benefícios dos milhares de componentes presentes nas plantas, principalmente no caso de compostos fenólicos que possuem alta capacidade antioxidante devido à capacidade de atuar como doadores de hidrogênio e supressores de oxigênio singlete, além de alguns atuarem como quelantes metálicos(⁸, ⁴⁰, ⁴¹, ⁴²).

A sonda C11-BODIPY581/591 consiste em um análogo de ácido graxo sensível à oxidação, que muda sua luminosidade de vermelho para verde em resposta à presença de várias espécies reativas e peroxinitrito(⁴³). A oxidação da sonda de DHE reage especificamente com os ânions superóxido, emitindo fuorescência, mas a detecção de produtos específicos da reação de DHE com ânions superóxido pode ser difícil de medir devido à formação de outros produtos inespecíficos da reação oxidativa com outras moléculas(⁴⁴). Kasai et ai. (2002)(⁴⁵), utilizando a sonda JC-1 em espermatozoides com diferentes potenciais de membrana mitocondrial, encontraram uma relação significativa entre os parâmetros de motilidade e velocidade com a atividade mitocondrial. Os espermatozoides com baixo potencial de membrana mitocondrial apresentaram valores mais baixos para os parâmetros de velocidade e motilidade em comparação ao grupo com alto potencial de membrana. Além do estresse osmótico que ocorre durante o processo de criopreservação, a exposição dos espermatozoides a baixas temperaturas altera as características físicoquímicas da membrana plasmática, alterando a distribuição de lipídios, a comunicação entre lipídios e proteínas e, consequentemente, aumentando a fluidez da membrana plasmática. membrana plasmática(⁴⁵). Com estruturas comprometidas, a membrana perde sua capacidade semipermeável e compromete todo o funcionamento celular, favorecendo a formação e liberação de EROs(⁴⁶).

5. Conclusão

Os tratamentos não influenciaram a quantidade de ânions superóxido, peroxidação lipídica, potencial de membrana mitocondrial e integridade das membranas plasmática e acrossomal dos espermatozoides. O aumento significativo da motilidade progressiva com o tratamento B10 mostrou que o suco de beterraba promoveu melhorias na motilidade progressiva dos espermatozoides de carneiros submetidos à criopreservação, sem prejudicar outras características espermáticas. Pode-se dizer, assim, que o suco de beterraba adicionado ao diluente BotuBov® promoveu efeito benéfico no sêmen ovino criopreservado, melhorando a motilidade espermática.

Agradecimentos

Este estudo foi financiado, em parte, pela Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior – Brasil (CAPES) – Código de Financiamento 001.

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  06 Fev 2023
• Data do Fascículo
  2023

Histórico

• Recebido
  03 Ago 2022
• Aceito
  10 Nov 2022
• Publicado
  19 Dez 2022