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CALOGÊNESE E RIZOGÊNESE EM EXPLANTES DE MOGNO (Swietenia macrophylla King) CULTIVADOS IN VITRO

CALLOGENESIS AND RHIZOGENESIS IN MAHOGANY (Swietenia macrophylla King) EXPLANTS CULTURED in vitro

RESUMO

A exploração de árvores tropicais realizada de forma indiscriminada, buscando espécies de alto valor econômico, tem levado várias espécies, como o mogno (Swietenia macrophylla King), ao perigo de extinção. O desenvolvimento de uma metodologia de regeneração de gemas, direta ou indireta, poderia auxiliar na obtenção de um grande número de mudas e constituir uma perspectiva à propagação sexuada. Essa última é limitada pelo fato das sementes perderem rapidamente a capacidade germinativa. No presente trabalho, foram utilizados dois tipos de explantes: fragmentos foliares e de raízes de plantas cultivadas in vitro. Após desinfestação, os explantes foram colocados em meio de cultura de Murashige e Skoog (1962) contendo três quartos da concentração de sais, vitaminas do mesmo meio, 30g.L-1 de sacarose, auxina (ácido naftalenoacético, ANA, 0,11 µM e 0,54 µM), citocinina (cinetina, CIN, 1,2 µM, 2,3 µM, 4,7 µM e 9,3 µM; 6benziladenina, BA, 2,2 µM, 4,4 µM e 8,8 µM ou 2-isopenteniladenina, 2-iP, 2,5 µM) e 7g.L-1 de ágar. As variáveis testadas foram a concentração e o tipo de regulador de crescimento e a origem dos explantes. A cada 30 dias, os explantes foram avaliados pela contagem do número de explantes formando calos ou raízes e a consistência dos calos. Foram obtidos calos a com base nos dois tipos de explantes. Nos explantes foliares, 90% deles formaram calos em meios de cultura contendo BA 4,4 µM com ANA 0,54 µM e BA 8,9 µM com ANA 0,11 ou 0,54 µM. Nos explantes de raízes, a maior percentagem de explantes com calos foi de 55%, no meio de cultura com BA 2,2 µM e ANA 0,54 µM. Raízes adventícias foram obtidas partindo de calos e do limbo dos explantes foliares, em meios de cultura com CIN e ANA. Não foi observada a formação de gemas adventícias.

Palavras-chave:
cultura in vitro; espécie tropical; Meliaceae; organogênese

ABSTRACT

The indiscriminate exploitation of tropical trees in a search for economically valuable species leads to the risk of extinction of several species. This is the case of mahogany (Swietenia macrophylla King) in Brazil. The establishment of a method of direct or indirect bud regeneration could help to produce a great number of plantlets and could constitute an alternative to sexual propagation. The latter is limited by the fact that mahogany seeds lose their germinative power soon after harvest. In this work, two kinds of explants were used: leaf and root fragments from in vitro cultured plants. After disinfection, the explants were cultured in petri dishes containing modified Murashige and Skoog (1962) culture medium, with three-quarters of salt concentration, vitamins, 30 g.L-1 sucrose and 7 g.L-1 agar. The combinations of growth substances were: naphthaleneacetic acid (ANA 0.11 µM and 0.54 µM) and one type of cytokinin, kinetin (CIN 1.2 µM, 2.3 µM, 4.7 µM and 9.3 µM), 6-benzylaminopurine (BA 2.2 µM, 4.4 µM and 8.8 µM) or 2-isopentenyladenine (2-iP 2.5 µM). The variables were the concentration and combinations of the growth regulators and the explant origin.The cultures were evaluated every 30 days, the number of explants forming calluses or roots was recorded and the callus consistency was observed. Calluses were formed in both kinds of explants. In leaf explants, 90% of explants formed callus when culture medium contained 4.4 µM BA with 0.54 µM ANA and 8.9 µM BA with 0.11 or 0.54 µM ANA. For root explants, the combination that gave the highest number of calluses was 2.2 µM BA and 0.54 µM ANA and 55% of them formed callus. Adventitious roots were regenerated from leaf calluses or directly from leaf lamina cultured in media containing CIN and ANA. However, adventitious buds were not obtained with the growth regulator combinations tested in these experiments.

Key words:
in vitro tissue culture; Meliaceae; organogenesis; tropical species

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Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    Jan-Jun 2004

Histórico

  • Recebido
    21 Maio 2003
  • Aceito
    12 Abr 2004
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