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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Cultura de embrião e indução de brotos in vitro para micropropagação do pinhão-manso]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of this work was to optimize the cultivation and embryo development, as well as to evaluate in vitro micropropagation induction of physic nut (Jatropha curcas). In the initial stage, the influence of sucrose (concentrations of 0, 15, 30 and 60 g L-1) on the development of embryos in basal MS medium was evaluated. From the seedlings generated in the embryo culture, microcuttings were excised and inoculated on MS medium supplemented with the plant regulators 6-benzyladenine (BA), 6-benzylaminopurine (BAP), kinetin (6-furfuryladenine) (KIN) and 4-(3-indolyl) butyric acid (IBA), in the concentrations of 0.5, 1.0, 2.0 and 3.0 mg L-1. The results showed that the range of 15 to 30 g L-1 of exogenous supplementation with sucrose promotes the best shoot elongation of plants; however, rhizogenesis is more vigorous in the range from 30 to 60 g L-1, in which a significant increase of the number of roots occurs. In the micropropagation phase, BAP at 2.0 mg L-1 concentration induces a higher number of shoots, while KIN (1.0 and 2.0 mg L-1) promotes a higher number of leaves. Callogenesis occurs on the shoot base, being more significant when supplemented with 2.0 mg L-1 of 6-BAP. The best sucrose concentration, for plant vigor and speed in obtaining explants, is 30 g L-1. In micropropagation, the best results for direct shoot organogenesis occur at 2.0 mg L-1 BAP concentration.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><b><font size="2" face="Verdana">FISIOLOGIA VEGETAL</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="Verdana"><b>Cultura de embri&atilde;o e indu&ccedil;&atilde;o de brotos in vitro para   micropropaga&ccedil;&atilde;o do pinh&atilde;o-manso</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="3" face="Verdana">Embryo culture and in vitro induction   of shoots    for micropropagation of physic nut</font></b></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><b><font size="2" face="Verdana">Leandro Cesar Lopes; Isaac Stringueta Machado;   Elaine Cristina Magoga; Juliana Granito de Andrade;   Henrique Curi Penna; Lucas Eduardo Fischer Moraes</font></b><font size="2" face="Verdana"><sup></sup></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Universidade Estadual Paulista, Faculdade   de Ci&ecirc;ncias Agron&ocirc;micas, Caixa Postal 237, CEP 18610-307   Botucatu, SP,    E-mail: <a href="mailto:lclopesagro@gmail.com">lclopesagro@gmail.com</a>, <a href="mailto:isaac@fca.unesp.br">isaac@fca.unesp.br</a>, <a href="mailto:isaac@fca.unesp.br">elainemagoga@yahoo.com.br</a>, <a href="mailto:isaac@fca.unesp.br">hinoro_x3@hotmail.com</a>, <a href="mailto:riquecpenna@hotmail.com">riquecpenna@hotmail.com</a>, <a href="mailto:riquecpenna@hotmail.com">lefmoraes@fca.unesp.br</a></font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMO</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">O objetivo deste trabalho foi   otimizar o cultivo e desenvolvimento de embri&otilde;es, bem como avaliar a indu&ccedil;&atilde;o da   micropropaga&ccedil;&atilde;o do pinh&atilde;o-manso (<i>Jatropha curcas</i>) in vitro.   Na primeira etapa, foi avaliada a influ&ecirc;ncia da sacarose (concentra&ccedil;&otilde;es 0,   15, 30 e 60 g L<sup>-1</sup>) no desenvolvimento de embri&otilde;es em   meio basal MS. Das pl&acirc;ntulas geradas no cultivo de embri&otilde;es, foram   excisadas microestacas e colocadas em meio MS suplementado com os reguladores   vegetais 6-benziladenina (BA), 6-benzilaminopurina (BAP), cinetina   (6-furfuriladenina) (KIN) e &aacute;cido 4-(3-indolil) but&iacute;rico   (AIB), nas concentra&ccedil;&otilde;es 0,5, 1,0, 2,0 e 3,0 mg L<sup>-1</sup>.   Os resultados evidenciaram que a faixa de 15 a 30 g L<sup>-1 </sup>de suplementa&ccedil;&atilde;o ex&oacute;gena da sacarose promove o melhor alongamento da   parte a&eacute;rea das plantas; a rizog&ecirc;nese, contudo, &eacute; mais vigorosa na faixa de 30   a 60 g L<sup>-1</sup>, em que ocorre aumento significativo do   n&uacute;mero de ra&iacute;zes. Na fase de micropropaga&ccedil;&atilde;o, o BAP &agrave; concentra&ccedil;&atilde;o de   2,0 mg L<sup>-1</sup> induz maior n&uacute;mero de brota&ccedil;&otilde;es, enquanto   a KIN (1,0 e 2,0 mg L<sup>-1</sup>) promove maior n&uacute;mero de   folhas. Ocorre calog&ecirc;nese na base das brota&ccedil;&otilde;es, mais significativa na   suplementa&ccedil;&atilde;o com 2,0 mg L<sup>-1</sup> de 6-BAP.   A melhor concentra&ccedil;&atilde;o de sacarose, quanto ao vigor vegetal e rapidez na   obten&ccedil;&atilde;o de explantes, &eacute; de 30 g L<sup>-1</sup>.   Na micropropaga&ccedil;&atilde;o, os melhores resultados da organog&ecirc;nese direta de   brota&ccedil;&otilde;es ocorrem &agrave; concentra&ccedil;&atilde;o de 2,0 mg L<sup>-1 </sup>de   BAP.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Termos para indexa&ccedil;&atilde;o: </b><i>Jatropha curcas</i>,   auxinas, citocininas, germina&ccedil;&atilde;o in vitro, organog&ecirc;nese, sacarose.</font></p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">The objective of   this work was to optimize the cultivation and embryo development, as well as to   evaluate    in vitro micropropagation induction of physic nut (<i>Jatropha curcas</i>).   In the initial stage, the influence of sucrose (concentrations of 0, 15, 30 and   60 g L<sup>-1</sup>) on the development of embryos in basal MS   medium was evaluated. From the seedlings generated in the embryo culture,   microcuttings were excised and inoculated on MS medium supplemented with the   plant regulators 6-benzyladenine (BA), 6-benzylaminopurine (BAP),   kinetin (6-furfuryladenine) (KIN) and 4-(3-indolyl) butyric   acid (IBA), in the concentrations of 0.5, 1.0, 2.0 and 3.0 mg L<sup>-1</sup>.   The results showed that the range of 15 to 30 g L<sup>-1</sup> of exogenous supplementation with sucrose promotes the best shoot elongation of   plants; however, rhizogenesis is more vigorous in the range from 30 to   60 g L<sup>-1</sup>, in which a significant increase of the   number of roots occurs. In the micropropagation phase, BAP at   2.0 mg L<sup>-1</sup> concentration induces a higher number of   shoots, while KIN (1.0 and 2.0 mg L<sup>-1</sup>) promotes a   higher number of leaves. Callogenesis occurs on the shoot base, being more   significant when supplemented with 2.0 mg L<sup>-1 </sup>of 6-BAP.   The best sucrose concentration, for plant vigor and speed in obtaining   explants, is 30 g L<sup>-1</sup>. In micropropagation, the best   results for direct shoot organogenesis occur at 2.0 mg L<sup>-1</sup> BAP concentration. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Index terms:</b> <i>Jatropha curcas</i>,   auxins, cytokinins, in vitro germination, organogenesis, sucrose.</font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Introdu&ccedil;&atilde;o</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">O pinh&atilde;o-manso (<i>Jatropha   curcas</i> L.) &eacute; uma esp&eacute;cie perene, resistente &agrave; seca e a solos de baixa   fertilidade, nativa da Am&eacute;rica tropical (Graf, 1992). Apresenta grande   potencial econ&ocirc;mico, pois suas sementes cont&ecirc;m cerca de 40-50% de &oacute;leo   rico em hidrocarbonetos reduzidos, que podem ser convertidos em compostos   similares aos derivados do petr&oacute;leo, como o biodiesel; e, ainda, apresentam   propriedades interessantes para a ind&uacute;stria de f&aacute;rmacos e tintas (Arruda   et al., 2004). </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Ocorre atualmente um crescente interesse no plantio do pinh&atilde;o-manso.   No entanto, ainda s&atilde;o incipientes os esfor&ccedil;os de melhoramento da esp&eacute;cie,   entre os quais pode-se destacar o trabalho de Laviola et al. (2012), em   que esses autores concluem que tais esfor&ccedil;os devem ser inicialmente usados para   se identificar &aacute;rvores de elevado di&acirc;metro de caule, elevado n&uacute;mero de ramos e   volume de copa, para aumentar as chances de se encontrar &aacute;rvores   excepcionalmente produtivas. Tamb&eacute;m, Bhering et al. (2012), com o objetivo   de estimar ganho gen&eacute;tico no melhoramento do pinh&atilde;o-manso, estudaram   diferentes &iacute;ndices de sele&ccedil;&atilde;o e a melhor estrat&eacute;gia de sele&ccedil;&atilde;o para a esp&eacute;cie,   por meio da avalia&ccedil;&atilde;o de par&acirc;metros como produtividade de fruto e de semente,   anatomia de caule e copa, juvenilidade e inser&ccedil;&atilde;o da primeira infloresc&ecirc;ncia, e   conclu&iacute;ram que a utiliza&ccedil;&atilde;o de &iacute;ndices de sele&ccedil;&atilde;o &eacute; relevante para maximizar os   ganhos gen&eacute;ticos e favorecer a melhor distribui&ccedil;&atilde;o de caracter&iacute;sticas   desej&aacute;veis.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">&Eacute; clara a exist&ecirc;ncia de grandes desafios para que o pinh&atilde;o-manso   possa se tornar vi&aacute;vel para o cultivo em larga escala e produ&ccedil;&atilde;o do &oacute;leo   combust&iacute;vel. Assim, a biotecnologia, aliada a programas de melhoramento, poder&aacute;   auxiliar no desenvolvimento de cultivares agron&ocirc;micas e na produ&ccedil;&atilde;o comercial   de mudas com alta qualidade fitossanit&aacute;ria em menor per&iacute;odo de tempo. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">O cultivo de embri&otilde;es &#150; que ainda necessita de defini&ccedil;&atilde;o de   protocolo, para elabora&ccedil;&atilde;o de meio    nutritivo &#150; &eacute; uma das t&eacute;cnicas biotecnol&oacute;gicas mais promissoras na pesquisa com   o pinh&atilde;o-manso. Seu desenvolvimento requer estudo da rela&ccedil;&atilde;o e   balanceamento dos diversos componentes empregados na composi&ccedil;&atilde;o de meios de   cultura. Neste sentido, resultados come&ccedil;am a ser divulgados, relativos &agrave;   composi&ccedil;&atilde;o org&acirc;nica como a adi&ccedil;&atilde;o de sacarose ao cultivo de embri&otilde;es. Nunes et al. (2008) testaram a influ&ecirc;ncia da   sacarose no cultivo de embri&otilde;es de pinh&atilde;o-manso, em diferentes est&aacute;dios   de matura&ccedil;&atilde;o, e conclu&iacute;ram que concentra&ccedil;&otilde;es superiores a 30 g L<sup>-1</sup>,   comumente usadas na cultura de tecidos de plantas, maximizam a percentagem de   germina&ccedil;&atilde;o de embri&otilde;es oriundos de frutos imaturos; os resultados indicaram a   faixa de 60 g L<sup>-1</sup> como ideal para este tipo de   procedimento.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">A pesquisa da micropropaga&ccedil;&atilde;o da esp&eacute;cie foi conduzida pela   multiplica&ccedil;&atilde;o mediante indu&ccedil;&atilde;o de gemas advent&iacute;cias, por organog&ecirc;nese direta   (sem passar pela fase de calo), a partir de gemas axilares e &aacute;pices caulinares.   Os resultados poder&atilde;o contribuir para o estabelecimento, desenvolvimento e   multiplica&ccedil;&atilde;o em larga escala da esp&eacute;cie in vitro. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">O objetivo deste trabalho foi otimizar o cultivo e   desenvolvimento de embri&otilde;es, bem como avaliar a indu&ccedil;&atilde;o da micropropaga&ccedil;&atilde;o do   pinh&atilde;o-manso (<i>Jatropha curcas</i>) in vitro.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Material e M&eacute;todos</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">O trabalho foi conduzido durante o ano de 2011, no Laborat&oacute;rio de   Biotecnologia de Plantas, do Departamento de Recursos Naturais, setor Ci&ecirc;ncias   Ambientais, da Faculdade de Ci&ecirc;ncias Agron&ocirc;micas, Fazenda Lageado, Universidade   Estadual Paulista (Unesp), Campus de Botucatu, Botucatu, SP.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Sementes maduras e oriundas de poliniza&ccedil;&atilde;o aberta foram   selecionadas em banco de germoplasma, instalado na Fazenda Experimental S&atilde;o   Manuel, da mesma faculdade. Em condi&ccedil;&otilde;es laboratoriais, no mesmo dia da   coleta em campo, ap&oacute;s lavagem com detergente neutro, foram retirados os tegumentos,   e realizadas outras lavagens em &aacute;gua corrente com detergente neutro e enx&aacute;gues   com &aacute;gua destilada e deionizada est&eacute;ril, e as sementes permaneceram imersas por   12 horas. Ap&oacute;s este tempo, procedeu-se &agrave; desinfec&ccedil;&atilde;o das sementes com   etanol a 70% por 1 min, seguida de imers&atilde;o em solu&ccedil;&atilde;o de hipoclorito de   s&oacute;dio a 2% de cloro ativo e uma gota de Tween 20, durante 20 min; e,   em seguida, foram feitas quatro lavagens em &aacute;gua destilada e deionizada   est&eacute;ril, seguidas de imers&atilde;o nesta &uacute;ltima &aacute;gua.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Em c&acirc;mara de fluxo laminar, em condi&ccedil;&otilde;es ass&eacute;pticas, foram   extra&iacute;dos 100 embri&otilde;es que foram, em seguida, imersos (30 min) e   manipulados em solu&ccedil;&otilde;es de &aacute;cido asc&oacute;rbico (0,5 mg L<sup>-1</sup>)   e polivinilpirrolidona (5 g L<sup>-1</sup>) e colocados em meio   indutor do desenvolvimento do embri&atilde;o.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">O desenvolvimento de embri&otilde;es foi pesquisado em delineamento   experimental inteiramente casualizado, constitu&iacute;do de quatro tratamentos do   meio Murashige-Skoog (MS) com 0, 15, 30 e 60 g L<sup>-1</sup> de sacarose. O pH do meio foi aferido em 5,8, antes da autoclavagem a   120&deg;C e 1 atm, por 20 min, e a gelifica&ccedil;&atilde;o foi obtida com   8 g L<sup>-1</sup> de &aacute;gar. Cada tratamento foi constitu&iacute;do de   oito repeti&ccedil;&otilde;es, e cada repeti&ccedil;&atilde;o por um explante/tubo de ensaio de   15/2 cm (altura/di&acirc;metro), com 20 mL de meio. Os frascos foram   dispostos em sala de crescimento, sem luz nas primeiras 48 horas e, a   seguir, com fotoper&iacute;odo de 16 horas de luz por 8 horas de escuro, com   intensidade luminosa de 2.000 lux e temperatura ambiente de 25&#176;C.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Os resultados foram obtidos aos 20 dias de cultivo e   monitorados por meio das taxas de desenvolvimento da pl&acirc;ntula inteira, em cada   tratamento. Pl&acirc;ntulas inteiras, observadas nos diferentes tratamentos, foram   coletadas e fotografadas, e suas partes a&eacute;reas foram separadas dos sistemas   radiculares, tendo-se obtido os seguintes par&acirc;metros fisiol&oacute;gicos: massa de   mat&eacute;ria fresca (MF) e de mat&eacute;ria seca (MSE), altura das partes a&eacute;reas (H),   n&uacute;mero de ra&iacute;zes (NR), comprimento das ra&iacute;zes (CR). A MSE foi obtida pela   desidrata&ccedil;&atilde;o da MF &#150; em estufa a 40&#176;C, at&eacute; obten&ccedil;&atilde;o de massa constante &#150;,    ambas obtidas em miligramas em balan&ccedil;a de precis&atilde;o. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Para a etapa posterior, a micropropaga&ccedil;&atilde;o de    pl&acirc;ntulas com 20 dias e desenvolvidas a partir dos embri&otilde;es, foram   excisados &aacute;pices caulinares e microestacas que continham gemas axilares. Ap&oacute;s a   retirada das folhas, os explantes foram colocados em meio nutritivo basal MS,   suplementado com as seguintes concentra&ccedil;&otilde;es de reguladores vegetais (BA, 6-benziladenina;   BAP, 6-benzilaminopurina; KIN, cinetina 6-furfuriladenina; e AIB,   &aacute;cido 4-(3-indolil) but&iacute;rico): T1, 0,5 mg L<sup>-1</sup> de BA; T2, 1,0 mg L<sup>-1</sup> de BA; T3, 2,0 mg L<sup>-1</sup> de BA; T4, 3,0 mg L<sup>-1</sup> de BA; T5, 0,5 mg L<sup>-1</sup> de BAP; T6, 1,0 mg L<sup>-1</sup> de BAP; T7,   2,0 mg L<sup>-1 </sup>de BAP; T8, 3,0 mg L<sup>-1 </sup>de BAP; T9, 0,5 mg L<sup>-1 </sup>de KIN; T10,   1,0 mg L<sup>-1 </sup>de KIN; T11, e 2,0 mg L<sup>-1 </sup>de KIN; e T12, 3,0 mg L<sup>-1</sup> de KIN. A todos   os tratamentos foi adicionado 0,5 mg L<sup>-1</sup> de AIB.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Os balanceamentos assim propostos foram comparados com meio   basal, sem a adi&ccedil;&atilde;o de    reguladores vegetais (T0). Foram oito repeti&ccedil;&otilde;es por tratamento, e cada   repeti&ccedil;&atilde;o foi constitu&iacute;da por um explante por tubo de ensaio de 15/2 cm   altura/di&acirc;metro, que continha 20 mL do meio espec&iacute;fico. Os frascos   foram dispostos em sala de crescimento, em fotoper&iacute;odo de 16 horas de luz   por 8 horas de escuro, &agrave; intensidade luminosa de 2.000 lux e   temperatura ambiente de 25&#176;C.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">A micropropaga&ccedil;&atilde;o pela organog&ecirc;nese direta in    vitro foi avaliada ao final de 70 dias, pelas taxas de brota&ccedil;&atilde;o da parte   a&eacute;rea das plantas, para obten&ccedil;&atilde;o da frequ&ecirc;ncia do n&uacute;mero de brotos dentro do   per&iacute;odo. Ao final da experimenta&ccedil;&atilde;o, foram obtidos os valores de massa de   mat&eacute;ria fresca (MF), massa de mat&eacute;ria seca (MSE) e n&uacute;mero de folhas das   brota&ccedil;&otilde;es regeneradas.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">O delineamento experimental inteiramente casualizado foi   utilizado, e os resultados da primeira etapa (MF, MSE, H, NR,e CR), assim como   os valores em frequ&ecirc;ncia, MF, MSE e NF, das brota&ccedil;&otilde;es micropropagadas na   segunda etapa, foram transformados (&#8730;x = 5) e comparados por   an&aacute;lise de vari&acirc;ncia, e as m&eacute;dias foram comparadas pelo teste de Tukey, a 5% de   probabilidade, pelo programa ASSISTAT (Silva, 2011). </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados e Discuss&atilde;o</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">A germina&ccedil;&atilde;o ocorreu em 100% dos embri&otilde;es empregados, que   apresentavam, em sua totalidade, cotil&eacute;dones j&aacute; diferenciados na semente   madura. Foram produzidos tecidos clorofilados na primeira semana e folhas   verdadeiras aos 12 dias de cultivo. N&atilde;o ocorreram diferen&ccedil;as   significativas nas m&eacute;dias MF e MSE a 5% de probabilidade, o que evidencia que a   germina&ccedil;&atilde;o e a produ&ccedil;&atilde;o de biomassa pelas pl&acirc;ntulas desenvolvidas independem da   presen&ccedil;a da sacarose no meio de cultura, pelo menos at&eacute; o vig&eacute;simo dia de   experimenta&ccedil;&atilde;o. A <a href="#tab01">Tabela 1</a> apresenta os resultados encontrados aos   20 dias de estabelecimento in vitro dos embri&otilde;es.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><a name="tab01"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/pab/v47n7/a04tab01.jpg"> </p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Diferentemente do encontrado na presente pesquisa, Yamada &amp;   Sato (1978) relataram ser essencial a presen&ccedil;a da sacarose no crescimento das   culturas in vitro, mas o seu excesso pode ser prejudicial, pelo efeito   inibit&oacute;rio na s&iacute;ntese de clorofila, que reduz a capacidade fotossint&eacute;tica dos   tecidos. No desenvolvimento de pl&acirc;ntulas in vitro, Spera (1995) trabalhou   com <i>Jatropha podagrica </i>Hook. e verificou que concentra&ccedil;&otilde;es de   sacarose at&eacute; 30 g L<sup>-1</sup> foram suficientes para o bom   desenvolvimento do material estudado. Os resultados diversos evidenciam a   import&acirc;ncia da realiza&ccedil;&atilde;o de mais estudos da curva de resposta, em fun&ccedil;&atilde;o do   aumento da concentra&ccedil;&atilde;o de sacarose e outros a&ccedil;&uacute;cares n&atilde;o redutores (rafinose,   estaquiose, etc.), para o pinh&atilde;o-manso e outras esp&eacute;cies. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Com rela&ccedil;&atilde;o ao alongamento (H) das pl&acirc;ntulas germinadas, os   resultados mostraram que a sacarose, a concentra&ccedil;&otilde;es de 15 e 30 g L<sup>-1</sup>,   apresenta maior efic&aacute;cia neste processo. A aus&ecirc;ncia de sacarose no meio   causou o atraso do crescimento, e o maior n&iacute;vel de sacarose (60 g L<sup>-1</sup>)   tamb&eacute;m mostrou efeito inibit&oacute;rio. Este resultado concorda com o de George &amp;   Sherrington (1984), que observaram que o aumento da concentra&ccedil;&atilde;o de sacarose   estimulou o alongamento da parte a&eacute;rea e a forma&ccedil;&atilde;o de ra&iacute;zes em algumas   esp&eacute;cies.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">O n&uacute;mero de ra&iacute;zes foi significativamente superior nas   concentra&ccedil;&otilde;es de sacarose de 30 a 60 g L<sup>-1</sup>.   Os resultados encontrados concordam com os de Collins &amp; Dixon (1992)   que, ao trabalhar com a orqu&iacute;dea <i>Diuris longifolia</i> R. Br., verificaram   que a influ&ecirc;ncia do aumento das concentra&ccedil;&otilde;es &#150; de 20 para 40 g L<sup>-1</sup> &#150; incrementou as taxas de enraizamento, dobrou o n&uacute;mero de plantas enraizadas e   melhorou o desenvolvimento destas. No entanto, Damiani &amp; Schuch (2009)   analisaram diferentes concentra&ccedil;&otilde;es de sacarose (0, 15 e 30 g L<sup>-1</sup>),   no crescimento in vitro de pl&acirc;ntulas de mirtilo (<i>Vaccinium ashei</i> J.M.   Reade), e verificaram que maiores percentagens de enraizamento ocorreram em   meio sem a adi&ccedil;&atilde;o de sacarose.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Diferentemente do n&uacute;mero, o comprimento das ra&iacute;zes n&atilde;o foi   afetado pela presen&ccedil;a da sacarose, pois os efeitos dos tratamentos n&atilde;o   diferiram a 5% de probabilidade. Estes resultados discordam daqueles   encontrados por Moreira et al. (2007), que verificaram efeito positivo da   sacarose no comprimento de ra&iacute;zes de <i>Sophronitis purpurata</i> (Lindl. &amp;   Paxton) C. Berg &amp; M.W. Chase x <i>Cattleya warneri</i> T. Moore ex   Warner<i>,</i> especialmente &agrave;s concentra&ccedil;&otilde;es de 15 e 20 g L<sup>-1</sup> de sacarose.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Na micropropaga&ccedil;&atilde;o pela organog&ecirc;nese direta in vitro, ocorreu   efeito significativo dos tratamentos para as vari&aacute;veis pesquisadas   (<a href="#tab02">Tabela 2</a>), aos 70 dias de inocula&ccedil;&atilde;o dos explantes obtidos na fase   de cultivo e desenvolvimento de embri&otilde;es. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><a name="tab02"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/pab/v47n7/a04tab02.jpg"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Marino &amp; Bertazza (1990) descrevem que, entre as   citocininas, a BA &eacute; a mais empregada no cultivo de tecidos, pois, em geral,   induz maiores taxas de prolifera&ccedil;&atilde;o do que outras, como a zeatina ou cinetina.   No entanto, para o pinh&atilde;o-manso, os resultados mostraram que o   n&uacute;mero de brota&ccedil;&otilde;es e diferencia&ccedil;&atilde;o das gemas advent&iacute;cias ocorreram em n&iacute;veis   inferiores no meio acrescido de 6-benziladenina, em compara&ccedil;&atilde;o aos outros   reguladores vegetais testados, tendo-se obtido apenas um broto por repeti&ccedil;&atilde;o,   como ocorreu no tratamento controle.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">A an&aacute;lise dos resultados mostrou que as citocininas BAP e KIN   proporcionaram os melhores resultados na multiplica&ccedil;&atilde;o de brota&ccedil;&otilde;es (NB), e a concentra&ccedil;&atilde;o   de 2,0 mg L<sup>-1</sup> de BAP (T7) evidenciou superioridade   em rela&ccedil;&atilde;o aos demais tratamentos. Os n&iacute;veis de BAP atuam diferentemente   segundo a esp&eacute;cie vegetal, como mostrado por Araujo et al. (2006), em   estudo sobre propaga&ccedil;&atilde;o in vitro de h&iacute;bridos de orqu&iacute;deas, em que encontraram   maior brota&ccedil;&atilde;o em meio MS suplementado com 4,0 mg L<sup>-1</sup> de BAP. Ao trabalhar com porta-enxertos h&iacute;bridos de <i>Prunus domestica</i> L.x<i> Prunus persica </i>(L.) Batsch, Marino (1982) concluiu que a   concentra&ccedil;&atilde;o de 1,0 mg L<sup>-1</sup> de BAP promoveu as   maiores taxas de multiplica&ccedil;&atilde;o in vitro de brota&ccedil;&otilde;es advent&iacute;cias.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Os meios suplementados com cinetina promoveram maiores taxas em   brota&ccedil;&otilde;es advent&iacute;cias e, entre as concentra&ccedil;&otilde;es empregadas &#150; 1,0 e   2,0 mg L<sup>-1</sup> (T10 e    T11, respectivamente) &#150;, produziram melhores resultados em n&uacute;mero de folhas   diferenciadas. Os resultados obtidos corroboram os de Taiz &amp; Zeiger   (2004) que observaram que, em folhas isoladas e tratadas com cinetina, ocorre   impedimento da a&ccedil;&atilde;o das proteases e RNA-ses foliares, promotoras da senesc&ecirc;ncia.   Em decorr&ecirc;ncia disto, no tratamento das plantas com este regulador   vegetal, foram observados os maiores &iacute;ndices fisiol&oacute;gicos, com maior   desenvolvimento, em raz&atilde;o do aumento da &aacute;rea foliar e da massa de mat&eacute;ria seca,   em que se destacam as concentra&ccedil;&otilde;es de 1,0 e 2,0 mg L<sup>-1</sup>,   especialmente no incremento da massa de mat&eacute;ria seca. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Segundo Concei&ccedil;&atilde;o et al. (2004), a varia&ccedil;&atilde;o na produ&ccedil;&atilde;o de   mat&eacute;ria seca est&aacute; associada, principalmente, &agrave; varia&ccedil;&atilde;o na &aacute;rea foliar. &Agrave;   medida que aumenta o &iacute;ndice de &aacute;rea foliar, a absor&ccedil;&atilde;o de luz e a taxa de   produ&ccedil;&atilde;o de mat&eacute;ria seca tamb&eacute;m aumentam; essas observa&ccedil;&otilde;es s&atilde;o confirmadas   pelos resultados obtidos no presente trabalho.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">O tratamento com 2,0 mg L<sup>-1</sup> de BAP   apresentou maiores valores de massa de mat&eacute;ria fresca e, tamb&eacute;m, a maior   multiplicidade de gemas e brotos advent&iacute;cios. O observado alinha-se ao   descrito por Caldas et al. (1998), que descreveram as diferen&ccedil;as entre as   atua&ccedil;&otilde;es das citocininas, em que o BAP induz alta taxa de multiplica&ccedil;&atilde;o de   brota&ccedil;&otilde;es em muitos sistemas de micropropaga&ccedil;&atilde;o, enquanto a KIN permite apenas   o crescimento normal sem brota&ccedil;&otilde;es advent&iacute;cias m&uacute;ltiplas. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Dos quatro reguladores empregados, apenas BAP e KIN (T6 a T12)   induziram 100% de ocorr&ecirc;ncia da calog&ecirc;nese, na base das brota&ccedil;&otilde;es advent&iacute;cias   obtidas na micropropaga&ccedil;&atilde;o; o BAP promoveu os maiores valores em massa de   mat&eacute;ria fresca de calos (<a href="#tab02">Tabela 2</a>). Estes resultados se alinham aos   encontrados por Machado et al. (2009), que trabalharam com indu&ccedil;&atilde;o   da calog&ecirc;nese em <i>Ananas erectifolius</i> L.B. Sm., em que o regulador   vegetal thidiazuron, que como o BAP pertence ao grupo das citocininas,   mostrou-se poderoso indutor da calog&ecirc;nese; este resultado &eacute; dissonante do   conhecimento cl&aacute;ssico de que as auxinas s&atilde;o os principais indutores deste   processo (Hinojosa, 2005).</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Embora este evento fisiol&oacute;gico seja interessante para estudos   posteriores da obten&ccedil;&atilde;o de variabilidade somaclonal, nos programas de   melhoramento da esp&eacute;cie, e seja bastante comum em explantes in vitro de   esp&eacute;cies lenhosas<i>, </i>n&atilde;o &eacute;, contudo, considerado favor&aacute;vel na   micropropaga&ccedil;&atilde;o, conforme descrito por Bassan et al. (2006). Erig &amp;   Schuch (2005) tamb&eacute;m relataram que a forma&ccedil;&atilde;o de calos na zona de enraizamento   &eacute; indesej&aacute;vel, pois pode afetar a qualidade das ra&iacute;zes, principalmente no que   se refere &agrave; conex&atilde;o vascular com a planta. Ainda, neste aspecto, Hamann (1998)   observou que em esp&eacute;cies consideradas de dif&iacute;cil enraizamento, geralmente h&aacute;   forma&ccedil;&atilde;o de calos precedentes &agrave; forma&ccedil;&atilde;o de ra&iacute;zes.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Os calos obtidos na presente pesquisa apresentaram-se bastante   fri&aacute;veis, caracter&iacute;stica favorecida por uma alta rela&ccedil;&atilde;o entre auxina e   citocinina ou pela adi&ccedil;&atilde;o de outros aditivos ao meio nutritivo, como os   compostos que cont&ecirc;m grupos &#150;SH (glutationa, etilxantato de    s&oacute;dio e dietilditiocarbamato), ou ainda, misturas complexas (&aacute;gua de coco e   suco de batata ou cenoura), citados por Caldas et al. (1998).   A libera&ccedil;&atilde;o de c&eacute;lulas, a partir de calos fri&aacute;veis, &eacute; mais r&aacute;pida do que a   partir de calos compactos, o que favorece a regenera&ccedil;&atilde;o de novas plantas e   sele&ccedil;&atilde;o de bi&oacute;tipos variantes nos programas de melhoramento da esp&eacute;cie   (Pescador et al., 2000).</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Conclus&otilde;es</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">1. Para o cultivo de embri&otilde;es de pinh&atilde;o-manso in vitro,   a sacarose n&atilde;o afeta a percentagem e biomassa total das pl&acirc;ntulas germinadas, e   a concentra&ccedil;&atilde;o de 30 g L<sup>-1</sup> mostrou-se mais eficiente   na promo&ccedil;&atilde;o do alongamento da parte a&eacute;rea e aumento do n&uacute;mero de ra&iacute;zes.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">2. A concentra&ccedil;&atilde;o 2,0 mg L<sup>-1</sup> de 6-benzilaminopurina promove a indu&ccedil;&atilde;o de maior n&uacute;mero de brota&ccedil;&otilde;es e   gemas advent&iacute;cias por explante micropropagado.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">3. A calog&ecirc;nese ocorre, ainda que em meio basal MS   isento de reguladores vegetais; contudo, a suple&shy;menta&ccedil;&atilde;o ex&oacute;gena de   2,0 mg L<sup>-1</sup> de 6-benzilaminopurina otimiza este   processo. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Agradecimentos</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">&Agrave; Funda&ccedil;&atilde;o de Amparo &agrave; Pesquisa do Estado de S&atilde;o Paulo, pelo   apoio financeiro.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana"><b>Refer&ecirc;ncias </b></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">ARAUJO, A.G. de; PASQUAL, M.; SILVA, B.A. da; VILLA, F.;   ROCHA, H.S.; COSTA, F.C. Propaga&ccedil;&atilde;o in vitro de pl&acirc;ntulas de orqu&iacute;dea em   diferentes meios de cultura e concentra&ccedil;&otilde;es de citocinina. <b>Plant Cell and     Culture Micropropagation</b>, v.2, p.68-73, 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000074&pid=S0100-204X201200070000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">ARRUDA, F.P. de; BELTR&Atilde;O, N.E. de M.; ANDRADE, A.P. de;   PEREIRA, W.E.; SEVERINO, L.S. Cultivo do pinh&atilde;o-manso (<i>Jatropha     curcas</i> L.) como alternativa para o Semi-&Aacute;rido nordestino. <b>Revista       Brasileira de Oleaginosas e Fibrosas</b>, v.8, p.789-799, 2004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000076&pid=S0100-204X201200070000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">BASSAN, J.S.; REINIGER, L.R.S.; ROCHA, B.H.G.; SEVERO,   C.R.P.; FL&Ocirc;RES, A.V. Oxida&ccedil;&atilde;o fen&oacute;lica, tipo de explante e meios de cultura no   estabelecimento in vitro de canaf&iacute;stula (<i>Peltophorum dubium</i> (Spreng.) Taub.). <b>Ci&ecirc;ncia Florestal</b>, v.16, p.381-390, 2006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000078&pid=S0100-204X201200070000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">BHERING, L.L.; LAVIOLA, B.G.;   SALGADO, C.C.; SANCHEZ, C.F.B.; ROSADO, T.B.;   ALVES, A.A. Prediction of genetic gains in physic nut using selection indexes. <b>Pesquisa     Agropecu&aacute;ria Brasileira</b>, v.47, p.402-408, 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000080&pid=S0100-204X201200070000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">CALDAS, L.S.; HARIDASAN, P.; FERREIRA, M.E. Meios   nutritivos. In: TORRES, A.C.; CALDAS, L.S.; BUSO, J.A. <b>Cultura de     tecidos e transforma&ccedil;&atilde;o gen&eacute;tica de plantas</b>. Bras&iacute;lia: Embrapa-SPI:   Embrapa CNPH, 1998. v.1, p.87-132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000082&pid=S0100-204X201200070000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">COLLINS, M.T.; DIXON, K.W. Micropropagation of an   Australian terrestrial orchid <i>Diuris longifolia</i> R.Br. <b>Australian     Journal of Experimental Agriculture</b>, v.32, p.131-135, 1992.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000084&pid=S0100-204X201200070000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">CONCEI&Ccedil;&Atilde;O, M.K. da; LOPES, N.F.; FORTES, G.R. de L.   Parti&ccedil;&atilde;o de mat&eacute;ria seca entre &oacute;rg&atilde;os de batata-doce (<i>Ipomoea batatas</i> (L.) Lam.), cultivares Ab&oacute;bora e Da Costa. <b>Revista Brasileira de Agroci&ecirc;ncia</b>,   v.10, p.313-316, 2004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000086&pid=S0100-204X201200070000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">DAMIANI, C.R.; SCHUCH, M.W. Enraizamento <i>in vitro</i> de   mirtilo em condi&ccedil;&otilde;es fotoautotr&oacute;ficas. <b>Ci&ecirc;ncia Rural</b>, v.39, p.1012-1017,   2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000088&pid=S0100-204X201200070000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">ERIG, A.C.; SCHUCH, M.W. Micropropaga&ccedil;&atilde;o fotoautotr&oacute;fica e   uso da luz natural. <b>Ci&ecirc;ncia Rural</b>, v.35, p.961-965, 2005.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000090&pid=S0100-204X201200070000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">GEORGE, E.F.; SHERRINGTON, P.D. <b>Plant   propagation by tissue culture</b>. Eversley: Exegetics, 1984. 709p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000092&pid=S0100-204X201200070000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">GRAF, A.B. <b>Hortica</b>. New Jersey:   Roehrs Company, 1992. 1078p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000094&pid=S0100-204X201200070000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">HAMANN, A. Adventitious root formation in   cuttings of loblolly pine (<i>Pinus taeda</i> L.): developmental sequence   and effects of maturation. <b>Trees</b>, v.12, p.175-180, 1998.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000096&pid=S0100-204X201200070000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">HINOJOSA, G.F. Auxinas em plantas superiores: s&iacute;ntese e   propriedades fisiol&oacute;gicas. In: BARRUETO CID, L.P. (Ed.). <b>Horm&ocirc;nios     vegetais em plantas superiores</b>. Bras&iacute;lia: Embrapa Recursos Gen&eacute;ticos e   Biotecnologia, 2005. p.15-57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000098&pid=S0100-204X201200070000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">LAVIOLA, B.G.; ALVES, A.A.; GURGEL, F.L.; ROSADO, T.B.;   ROCHA, R.B.; ALBRECHT, J.C. 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Indu&ccedil;&atilde;o de calog&ecirc;nese em meristemas de curau&aacute; in vitro. <b>Revista Brasileira de Oleaginosas e Fibrosas</b>, v.13, p.83-90, 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000102&pid=S0100-204X201200070000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">MARINO, G. Primi   risultati sulla moltiplicazione <i>in vitro</i> di quattro portinnesti, ibridi   di susino e pesco, selezionati in Francia. <b>Rivista della     Ortoflorofrutticoltura Italiana</b>, v.66, p.369-375, 1982.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000104&pid=S0100-204X201200070000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">MARINO, G.; BERTAZZA, G. Micropropagation of <i>Actinidia   deliciosa</i> cvs. Hayvard and Tomuri. <b>Scientia Horticulturae</b>, v.45,   p.65-74, 1990.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000106&pid=S0100-204X201200070000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">MOREIRA, B.M.T.; TOMBA, E.C.; ZONETTI, P. da C. Crescimento   in vitro de pl&acirc;ntulas de orqu&iacute;dea (<i>Laelia purpurata </i>Lind. var. <i>venosa</i> x <i>Cattleya warneri</i> T. 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Diferentes suplementos no cultivo in vitro de embri&otilde;es de   pinh&atilde;o-manso. <b>Pesquisa Agropecu&aacute;ria Brasileira</b>, v.43, p.9-14,   2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000110&pid=S0100-204X201200070000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">PESCADOR, R.; ARA&Uacute;JO, P.S.; MAAS, C.H.; REBELO, R.A.;   GIOTTO, C.R.; WENDHAUSEN JUNIOR, R.; LARGURA, G.; TAVARES, L.B.B.   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Acesso em: 20 jun. 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000114&pid=S0100-204X201200070000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">SPERA, M.R.N. <b>Propaga&ccedil;&atilde;o in vitro de <i>Jatropha   podagrica</i> Hook</b>. 1995. 78p. Disserta&ccedil;&atilde;o (Mestrado) - Universidade   Federal de Lavras, Lavras.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000116&pid=S0100-204X201200070000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">TAIZ, L.; ZEIGER, E. <b>Fisiologia vegetal</b>. 3.ed. Porto Alegre: Artmed, 2004. 719p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000118&pid=S0100-204X201200070000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">YAMADA, Y.; SATO, F. The photoautotrophic   culture of chlorophyllous cells. <b>Plant and Cell Physiology</b>, v.19, p.691-699,   1978.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=000120&pid=S0100-204X201200070000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
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