Atividade fungitóxica de Momordica charantia L. no controle de Sclerotium rolfsii Sacc.

Fungitoxic activity of Momordica charantia L. to control of Sclerotium rolsii Sacc.

FITOSSANIDADE

Atividade fungitóxica de Momordica charantia L. no controle de Sclerotium rolfsii Sacc.

Fungitoxic activity of Momordica charantia L. to control of Sclerotium rolsii Sacc.

Flaviana Andrade Faria^I,*; César Júnior Bueno^II; Marli de Fátima Stradioto Papa^I

^IDepartamento de Fitossanidade, Engenharia Rural e Solos, Faculdade de Engenharia de Ilha Solteira, Universidade Estadual Paulista "Júlio de Mesquita Filho", Rua Monção, 226, Cx. Postal 31, 15385-000, Ilha Solteira, São Paulo, Brasil

^IICentro Experimental Central, Instituto Biológico, Agência Paulista de Tecnologia dos Agronegócios, Campinas, São Paulo, Brasil

RESUMO

O fungo Sclerotium rolfsii causa grandes perdas em algumas culturas econômicas. Por produzir estruturas de resistência (escleródios), este fungo é de difícil controle. Há escassez de novos ingredientes ativos eficientes para o controle deste patógeno. Assim, o objetivo do presente trabalho foi verificar se existe atividade fungitóxica na planta Momordica charantia (melão-de-sãocaetano), com potencial futuro para ser estudado no controle de S. rolfsii. Para isso, dois ensaios foram realizados, um in vitro (laboratório) e outro in vivo (câmara de crescimento). Em in vitro, escleródios do patógeno ficaram em contato com extratos hidroetanólico e aquoso de folhas e ramos de M. charantia e sem extrato por 7, 14, 21 e 28 dias. A sobrevivência dos escleródios foi avaliada em meio de cultura específico, após cada tempo. Em in vivo, testou-se a ação dos mesmos extratos de maneira preventiva e curativa (aplicação aos 6 e 3 dias antes do plantio; no dia do plantio; e aos 3 e 6 dias após o plantio) e no tratamento de semente, no patossistema feijoeiro cv. Carioquinha versus S. rolfsii. A eficiência da ação dos extratos foi avaliada por meio da severidade da doença. Os extratos hidroetanólico e aquoso, in vitro, de forma semelhante, controlaram 100% os escleródios, num período de 0 a 7 dias. No ensaio in vivo, o extrato hidroetanólico, aplicado tanto em 6 ou 3 dias, antes do plantio, de forma preventiva, diminuiu a severidade da doença em 74%. Há atividade fungitóxica na parte aérea da planta de melão-de-são-caetano, com potencial futuro de estudo para controlar S. rolfsii, preferencialmente, de maneira preventiva.

Palavras-chaves: extratos de plantas, melão-de-são-caetano, escleródios, fungo fitopatogênico habitante do solo.

ABSTRACT

The fungus Sclerotium rolfsii causes major economic losses in agriculture. Due to the resistance structures (sclerotia) production in soil, this pathogen is difficult to be controlled in field. Furthermore, new reports of active ingredients to control of this pathogen are scarces in literature. The objective of the present work was to verify the existence of fungitoxic activity in Momordica charantia (bitter gourd) with future potential of study to control S. rolfsii. Assays were carried out in vitro (laboratory) and in vivo (growth chamber). In vitro, sclerotia of the pathogen were placed in contact with hydroethanolic and aqueous extracts of leaves and stem of M. charantia for 7, 14, 21 and 28 days. To the control, sclerotia were placed in flasks without extract. After each time, the survival of sclerotia was evaluated in specific culture medium. In vivo, the activity of the extracts was investigated preventively and curatively (application at 6 and 3 days before the planting; at the day of planting, and at 3 and 6 days after the planting), and the extracts also were applied in seed treatment to the pathosystem common bean cv. Carioquinha versus S. rolfsii. The efficacy of the extracts was evaluated by disease severity. The hydroethanolic and aqueous extracts inhibited 100% of germination of sclerotia in vitro in a period from 0-7 days. When applied at 6 and 3 days before planting, the hydroethanolic extract reduced 74% of disease severity. These results showed fungitoxic activity in bitter gourd aerial part that could be potentially studied to control of S. rolfsii, preferably applied preventively.

Key words: plants extract, bitter gourd, sclerotia, soilborne phytopathogenic fungi.

Introdução

O fungo fitopatogênico Sclerotium rolfsii Sacc., habitante do solo, polífago, pode causar podridão em raízes, colo de plantas jovens, em sementes, danos em plântulas, folhas e frutos (BEDENDO, 1995; FARR et al., 1989).

O fungo produz estruturas de resistência chamadas de escleródios, sendo globosos, pequenos, de 0,5-1,5 mm de diâmetro. Os escleródios são produzidos na ausência de hospedeiros e/ou condições climáticas desfavoráveis (BIANCHINI et al., 1997). A presença destas estruturas no solo dificulta o controle do patógeno.

A utilização de cultivares resistentes é a melhor opção de controle, principalmente para fungos fitopatogênicos habitantes do solo. No entanto, há culturas que ainda não têm cultivares resistentes a determinados fungos de solo e, mesmo em culturas que têm cultivares resistentes, essas estão sujeitas à quebra de resistência, devido à variabilidade genética destes fitopatógenos.

O brometo de metila, fungicida erradicante, foi utilizado, nos últimos 60 anos, como fumigante de solo, em pré-plantio, para o controle de fitopatógenos. As vantagens do brometo são a alta eficiência, a rapidez de resultados, amplo espectro de ação, menores problemas de resistência dos organismos alvo, facilidade de penetração no solo e possibilidade de aplicação em diferentes regiões geográficas, tipos de solo e de clima. Os seus pontos falhos são o risco para o meio ambiente, com destruição da camada de ozônio, e para o homem, com condição insegura para aplicação e alta toxicidade (GHINI, 2001). Devido aos pontos falhos, tal produto está sendo retirado do mercado.

Kimati et al. (1997) mencionam os seguintes ingredientes ativos para o controle do fungo S. rolfsii: a) Preventivo – quintozene (amendoin, batata, feijão e tomate); b) Curativo – tiofanato metílico (ervilha e feijão) e c) Tratamento de Semente – quintozene (feijão) e captan (soja). De acordo com os dados de Kimati et al. (1997), há poucos ingredientes ativos para o controle deste patógeno, principalmente para serem utilizados de maneira preventiva e curativa, o que implica na necessidade de pesquisas, na busca de novos ingredientes ativos, pois o mesmo pode desenvolver, ao longo do tempo, resistência aos atuais ingredientes.

A planta melão-de-são-caetano (Momordica charantia L.) contém inúmeras propriedades medicinais. Na área agronômica, essa planta já apresentou os seguintes efeitos: a) inseticida para a lagarta Spodoptera litura Fabr. e para o pulgão Aphis craccivora Koch (AMNART; CHADIN, 1983); b) larvicida para o mosquito Culex sp. (SRIVASTAVA; NERALIYA, 1997) e c) nematicida para o nematóide Meloidogyne incognita (DIAS et al., 2000). Além disto, essa planta possui atividade antibacteriana detectada por Anwar et al. (2000) e, também, atividade antifúngica já constatada sobre Colletotrichum gloeosporiodes de mamoeiro (CELOTO et al., 2008), Cercosporidium personatum de amendoim (SAXENA et al., 2002) e sobre outros fungos como Alternaria alternata, Emericellopsis terricola, Fusarium solani, Macrophomina phaseolina e Stemphylium helianthi, que infectam o girassol (BHUTTA et al., 1999).

O melão-de-são-caetano, da família Cucurbitaceae, é originário do leste indiano ou do sul da China (ROBINSON; DECKER-WALTERS, 1997). No Brasil, a espécie é uma planta daninha bastante frequente em pomares, hortas, cafezais, sobre cercas, alambrados e terrenos baldios (LORENZI, 2000).

Em função da revisão levantada, o objetivo do presente trabalho foi verificar se existe alguma atividade fungitóxica na planta de melão-de-sãocaetano com potencial para ser utilizado no controle do fungo S. rolfsii.

Material e métodos

O trabalho foi desenvolvido no Laboratório de Microbiologia e Fitopatologia, da Faculdade de Engenharia – FE, Campus de Ilha Solteira, da Universidade Estadual Paulista "Júlio de Mesquita Filho" – Unesp, em Ilha Solteira, Estado de São Paulo, no período de Outubro de 2006 a Setembro de 2007.

As partes aéreas (folhas e ramos novos e maduros) da planta de melão-de-são-caetano foram coletadas na região de Ilha Solteira, Estado de São Paulo. Quanto à preparação inicial do material vegetal, tais como acondicionamento, lavagem, desinfestação, moagem etc., seguiu-se a mesma metodologia empregada por Celoto et al. (2008).

O procedimento para preparar os extratos hidroetanólico e aquoso do melão-de-são-caetano foi o mesmo utilizado por Celoto et al. (2008).

Um isolado do fungo S. rolfsii, obtido de feijoeiro, foi utilizado para a realização de dois ensaios: 1) in vitro – laboratório e 2) in vivo – condições de câmara de crescimento.

Tanto no ensaio in vitro quanto no in vivo foram utilizados escleródios do fungo, os quais foram produzidos seguindo metodologia empregada por Bueno et al. (2007).

Ensaio in vitro

O delineamento experimental empregado foi o inteiramente casualizado com um arranjo fatorial 3 [Tratamentos: a) Extrato hidroetanólico; b) Extrato aquoso e c) Controle – sem extrato] x 5 (Períodos de avaliação semanal – 0 a 28 dias).

Para cada período de avaliação e para cada extrato, havia dois frascos de Erlenmeyers de 250 mL, contendo cada um 100 mL de extrato, mantidos em agitador orbital mecânico (40 rpm), em temperatura ambiente de laboratório. Os frascos foram envolvidos com papel alumínio, para evitar possível degradação dos extratos pela ação da luz.

Em cada frasco, foram colocadas duas bolsas de náilon, contendo cada uma ±100 estruturas do patógeno.

Após o tempo de exposição das estruturas em contato com cada extrato, as mesmas foram removidas e, em seguida, plaqueadas em meio específico, visando a verificar a sobrevivência das mesmas. A metodologia empregada para a avaliação da sobrevivência do fungo foi à mesma empregada por Bueno et al. (2007).

De cada bolsa de náilon, 10 escleródios foram semeados na superfície do meio de cultura de cada placa de Petri, num total de 5 repetições. Portanto, a parcela experimental (repetição) foi constituída por uma placa de Petri, contendo 10 escleródios semeados.

Ensaio in vivo

O delineamento experimental empregado foi o de blocos ao acaso, com 16 tratamentos e 8 repetições cada, sendo a parcela experimental (repetição) constituída por um vaso (copo plástico de 300 mL), contendo uma semente de feijão do cultivar "Carioquinha", e inoculação ou não de dois escleródios junto à semente.

Os tratamentos foram: 1) Extrato hidroetanólico – aplicação preventiva com 6 dias antes do plantio; 2) Extrato hidroetanólico – aplicação preventiva com 3 dias antes do plantio; 3) Extrato aquoso – aplicação preventiva com 6 dias antes do plantio; 4) Extrato aquoso – aplicação preventiva com 3 dias antes do plantio; 5) Extrato hidroetanólico – aplicação curativa no dia do plantio; 6) Extrato hidroetanólico – aplicação curativa com 3 dias após o plantio; 7) Extrato hidroetanólico – aplicação curativa com 6 dias após o plantio; 8) Extrato aquoso – aplicação curativa no dia do plantio; 9) Extrato aquoso – aplicação curativa com 3 dias após o plantio; 10) Extrato aquoso – aplicação curativa com 6 dias após o plantio; 11) Extrato hidroetanólico – tratamento de semente; 12) Extrato aquoso – tratamento de semente; 13) Controle – sem aplicação de extratos e colocação de escleródios com 6 dias antes do plantio; 14) Controle – sem aplicação de extratos e colocação de escleródios com 3 dias antes do plantio; 15) Controle – sem aplicação de extratos e colocação de escleródios no dia do plantio; 16) Controle Geral – sem aplicação de extratos e sem inoculação de escleródios.

A metodologia empregada para inocular o patógeno foi à mesma adotada por Chaves e Costa (1998), modificando-se apenas na questão da cobertura da semente com os escleródios. Chaves e Costa (1998) utilizaram areia e, no presente trabalho, o próprio substrato foi utilizado. Dois escleródios foram dispostos juntamente com uma semente, ambos colocados a um centímetro de profundidade. O substrato empregado foi o mesmo utilizado por Matsumoto et al. (2000), ou seja, solo (Latossolo Vermelho distrófico típico argiloso), areia e esterco bovino curtido (3:1:1, v/v), esterilizado em autoclave (1h a 1 atm) com 20 dias de antecedência.

Tanto no tratamento preventivo quanto no curativo foram aplicados 50 mL de cada extrato, junto à semente mais os escleródios ou a planta mais os escleródios.

No tratamento das sementes utilizou-se a proporção de 5 mL de extrato em 8 sementes, num tempo de exposição de 5 minutos. Após o tempo, as sementes foram plantadas diretamente nos vasos.

Este ensaio foi conduzido em câmara de crescimento, regulada com temperatura de 27±2ºC e fotoperíodo de 12 horas de luz e 12 horas de escuro.

Avaliou-se a severidade da doença, com 14 dias após a germinação das sementes, em todos os tratamentos, de acordo com a seguinte escala de notas: 0 – plântulas sadias e sem sintomas de necrose no colo; 1 – plântulas com necrose no colo; 2 – tombamento de pós-emergência; 3 – tombamento de pré-emergência.

Análise estatística

Os dados do ensaio in vitro e in vivo foram submetidos à análise não-paramétrica. A análise constituiu-se do teste de Kruskal-Wallis, seguido do teste de comparações múltiplas de Dunn. O programa utilizado foi o SAS - Statistical Analysis System (SAS, 1999).

Resultados e discussão

Os extratos hidroetanólico (de cor verde escuro; pH = 6,9) e aquoso (de cor marrom esverdeado; pH = 7,5) da planta melão-de-são-caetano controlaram 100% as estruturas de resistência do fungo S. rolfsii, sendo esse controle compreendido no período de 0 a 7 dias (Tabela 1). Esse controle precoce das estruturas, característica essa desejável, demonstrou que ambos os extratos têm potencial fungitóxico, para o controle de S. rolfsii, em condições in vitro.

Os extratos hidroetanólico e aquoso não diferiram entre si com relação ao controle de escleródios de S. rolfsii. No entanto, ambos os extratos diferiram significativamente do tratamento controle (Tabela 1).

Atividade antimicrobiana de macerado de tecido da planta M. charantia foi observada, em condições in vitro, sobre Bacillus subtilis, B. cereus, Escherichia coli, Proteus vulgaris, Salmonella sp., Staphylococcus aureus, Saccharomyces cerevisiae, Rhodotorula glutinis, Candida sp., Rhizopus sp., Mucor racemosus, Penicillium sp., Aspergillus niger, A. flavus, A. oryzae e Trichoderma sp. (HE, 1998).

Saxena et al. (2002) constataram que extratos etanólicos de folhas de Saraca indica, Murraya koenigii, Callistemon lanceolatus, Callistemon citrinus, Allium sativum, Zingiber officinale, Cassia siamea, Ipomoea fistulosa e, também, de M. charantia, inibiram, em condições in vitro, completamente, o crescimento do fungo Cercosporidium personatum de amendoim. Bhutta et al. (1999) verificaram, em condições in vitro, que a difusão de semente de 32 plantas, incluindo a de M. charantia, na concentração de 0,5 a 1%, possui alto poder de inibição de crescimento de A. alternata, E. terricola, F. solani, M. phaseolina e S. helianthi, que atacam a cultura do girassol.

Atividade fungitóxica do extrato hidroetanólico da planta M. charantia, em condições in vitro, foi observada, também, em Colletotrichum gloeosporiodes de mamoeiro por Celoto et al. (2008).

Ram (1997) relatou in vitro a inibição do crescimento micelial de Alternaria brassicae por meio de extrato de bulbo de Allium sativum. Nwosu e Okafor (1995), quando estudaram o efeito dos extratos de arruda (Ruta graveolens) e gengibre (Zingiber officinale) na germinação de escleródios de S. rolfsii, observaram, respectivamente, 100 e 75% de inibição da germinação de escleródios do fungo.

De acordo com os dados analisados e expostos na Tabela 2, os tratamentos podem ser enquadrados em cinco grandes grupos por ordem de eficiência no controle da doença. No primeiro grupo, o mais eficiente de todos, encontram-se o controle geral e o extrato hidroetanólico preventivo (6 dias). No segundo grupo, enquadram-se o extrato hidroetanólico utilizado tanto de maneira preventiva quanto curativa (3 dias). No terceiro grupo, encontram-se o extrato aquoso preventivo (6 e 3 dias), extrato hidroetanólico curativo (6 dias), extrato aquoso curativo (3 e 6 dias), controle curativo (0 dias) e, por fim, o extrato hidroetanólico (tratamento de semente). No quarto grupo, enquadram-se os controles preventivos (6 e 3 dias) e o extrato aquoso (tratamento de semente). No quinto grupo, o menos eficiente de todos, encontram-se os extratos hidroetanólico e aquoso curativo (0 dias). Portanto, conclui-se que o extrato hidroetanólico, quando aplicado com 50 mL, de maneira preventiva, em um volume de 300 mL de substrato, tanto com 6 quanto para 3 dias antes do plantio, é o mais eficiente de todos os tratamentos testados. A severidade média da doença, nestes tratamentos, foi para uma nota média de 0,6 em comparação com a nota média de 2,1 do tratamento controle (média total dos controles sem aplicação de extrato e com colocação de escleródio). Nestes tratamentos detectou-se uma redução da severidade da doença de aproximadamente 74%. Além disto, 55% das plantas não apresentaram nenhum sintoma da doença (Tabela 2).

De maneira pouco eficiente no controle da doença, o extrato aquoso não apresentou diferença quando aplicado de maneira preventiva e curativa nos períodos testados de 3 e 6 dias (Tabela 2).

No dia do plantio (0 dias), com a pior eficiência quanto ao controle da doença, tanto o extrato hidroetanólico quanto o aquoso, de maneira curativa, não apresentaram diferenças entre si (Tabela 2). No tratamento de semente, o melhor resultado quanto ao controle da doença foi quando se utilizou o extrato hidroetanólico (Tabela 2).

Um fato curioso foi que o controle sem aplicação de extratos, mas com colocação de escleródios e plantio do feijoeiro no mesmo dia (0 dias), apresentou um certo controle da doença (Tabela 2). Amorim (1995) relata que em condições de alta umidade no solo pode haver redução da longevidade dos escleródios. No entanto, os tratamentos controle sem aplicação de extratos, mas com colocação de escleródios e plantio de feijoeiro somente depois de 6 e 3 dias, não apresentaram redução significativa da severidade da doença (Tabela 2).

Em condições in vivo já foi observada ação de controle do extrato hidroetanólico de M. charantia em Colletotrichum musae sobre frutos de bananeira (Marli de Fátima Stradioto Papa, comunicação pessoal). De acordo com a caracterização dos extratos, o pH do extrato hidroetanólico, 6,9, pode não ter influenciado negativamente na germinação dos escleródios do fungo, pois as suas estruturas germinam numa faixa de 2,6 a 7,7 segundo Bianchini et al. (1997).

Com isso, a redução significativa na severidade da doença, com o uso do extrato hidroetanólico, de maneira preventiva, em condições in vivo, deve-se à existência de algum princípio ou substância com ação fungitóxica extraída dos tecidos da planta pelo etanol. Este fato não foi observado com tanta eficiência no extrato aquoso. Segundo Falkenberg et al. (2004), o solvente escolhido deve ser o mais seletivo possível, extraindo apenas as substâncias desejadas ou em maior quantidade. A água extrai as saponinas e alcalóides. Já o álcool extrai as saponinas e os taninos, enquanto que o metanol ou hidrometanol fazem obter os heterosídeos em geral. Portanto, no extrato hidroetanólico, no presente trabalho, deve haver uma determinada substância bioativa, obtida em grande quantidade, específica para o fungo S. rolfsii. Pode haver, também, mais de uma substância bioativa no extrato hidroetanólico. Já no extrato aquoso, tais substâncias podem não estar presentes ou estarem em quantidades muito baixas.

Pretorius et al. (2002) estudaram o controle de Mycosphaerella pinodes em folhas de ervilha por meio da ação de extrato obtido de bulbo de Eucomis autumnalis. O extrato preveniu a infecção dos esporos de M. pinodes, nas folhas de ervilha, mesmo nas folhas inoculadas com os esporos do fungo, antes e depois do tratamento com o extrato. Pretorius et al. (2002) salientaram ainda que o extrato de E. autumnalis não demonstrou ser fitotóxico para as folhas de ervilha, mesmo quando aplicado em altas concentrações.

No presente trabalho, os extratos hidroetanólico e aquoso do melão-de-são-caetano não causaram fitotoxidez nas plantas de feijoeiro do cv. Carioquinha e, também, não propiciaram falhas na germinação das sementes.

Hoassain et al. (2005) constataram que extratos de Neen (Azadirachta indica) seguido de Allium sativum, Polygonum hydropiper e Vatpata exibiram alta atividade antifúngica sobre Bipolaris sorokiniana, Alternaria tenuis, Curvularia lunata, Fusarium spp. e Aspergillus spp. Outro fato observado por Hoassain et al. (2005) foi que os extratos destas plantas apresentaram maior eficiência na atividade antifúngica quando não diluídos.

Os extratos da planta M. charantia, além de possuir atividade antifúngica e antibacteriana, também, contêm atividade nematicida para Meloidogyne incognita, segundo relatos de Dias et al. (2000).

No extrato de uma ou mais partes da planta (sementes, folhas, haste, raízes ou frutos) de melão-desão- caetano foram encontradas substâncias bioativas como alcalóides, flavonóides, saponinas, glicosídeos, açúcares redutores, resinas, constituintes fenólicos, óleo fixado e ácidos livres (TORRES et al., 2002). Chandravadana et al. (1997) relataram uma substância bioativa chamada de "momordicines" presentes em plantas de M. charantia. Essa substância pode ser isolada de folhas secas da planta. No trabalho de Chandravadana et al. (1997), dependendo da dosagem utilizada, aliás muito pequena, as substâncias Momordicines I e II podem inibir mais ou menos o crescimento dos fungos Colletotrichum gloeosporioides e Cladosporium cucumerinum. A Momordicine I, na proporção de 0,5 e 1,0 mg mL^-1, controlou o crescimento de C. gloeosporioides com 33,3 e 58,89%, respectivamente. Já a Momordicine II, na proporção de 0,25 e 0,5 mg mL^-1, inibiu o crescimento do mesmo fungo com 16,7 e 22,9%, respectivamente.

Segundo dados de Kimati et al. (1997), há somente o ingrediente ativo (i.a.) quintozene para o controle preventivo de S. rolfsii nas culturas do amendoim, batata, feijão e tomate. Este produto, para ser efetivo na forma preventiva, deve ser aplicado com 2 L de calda por m², em toda área, ou 3 L por 10 m de linha, 2-3 dias antes do plantio para as culturas do amendoim e feijão ou incorporado ao solo (30 kg do produto comercial Kobutol 750 – i.a. quintozene – por hectare) à profundidade de 10 cm, tratando apenas as linhas para a cultura da batata.

De acordo com os resultados obtidos no presente trabalho e das citações de existência de substâncias bioativas relatadas por Torres et al. (2002) e por Chandravadana et al. (1997), a planta de melão-desão- caetano tem potencial futuro para ser explorada na busca de novos ingredientes ativos, principalmente, no tratamento do solo, de maneira preventiva, visando o controle de S. rolfsii.

A utilização de extratos vegetais a campo tem alguns complicadores tais como, baixo rendimento na obtenção de extratos, queda da estabilidade da eficiência durante a armazenagem, problemas na armazenagem, dentre outros.

No entanto, para se chegar a este novo (s) ingrediente (s) ativo (s), futuros trabalhos com a planta M. charantia ainda devem ser realizados, visando a enfocar os seguintes fatores: a) testar plantas com diferentes níveis de suscetibilidade ao fungo; b) estudar diferentes níveis de diluição dos extratos; c) testar diferentes tipos de solventes (extratores); d) testar diferentes doses na aplicação dos extratos no solo ou na planta; e) testar diferentes intervalos de aplicação dos extratos no solo ou na planta; f) comparar os itens a, b, c, d e e com a inclusão de um tratamento contendo o ingrediente ativo quintozene; g) tentar correlacionar todos os dados dos ensaios in vivo com os ensaios in vitro; h) nos ensaios in vitro, deve-se tentar isolar as diferentes substâncias bioativas, testando essas substâncias de maneira isolada e com diversas combinações; i) determinar a toxicologia da(s) substância(s) ativa às pessoas, animais e meio ambiente.

Conclusão

Os extratos hidroetanólico e aquoso, in vitro, de forma semelhante, controlaram 100% os escleródios, num período de 0 a 7 dias. No ensaio in vivo, o extrato hidroetanólico, aplicado tanto em 6 ou 3 dias, antes do plantio, de forma preventiva, diminuiu a severidade da doença em 74%. Há atividade fungitóxica na parte aérea da planta de melão-desão- caetano, com potencial futuro de estudo para controlar S. rolfsii, preferencialmente, de maneira preventiva.

Received on November 7, 2007.

Accepted on May 7, 2008.

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  04 Abr 2012
• Data do Fascículo
  Set 2009

Histórico

• Aceito
  07 Maio 2008
• Recebido
  07 Nov 2007