Resistência de espécies arbóreas tropicais à ação de Ganoderma philippii

Resistance of tropical arboreous species to the action of Ganoderma philippii

RESUMO

A resistência da madeira a fungos xilófagos é uma característica desejável em madeiras comerciais e nas empregadas na arborização urbana. Isso porque a ação desses fungos pode levar à perda das propriedades físicas, redução da resistência mecânica e durabilidade da madeira. Entretanto, pouco se sabe sobre a resistência de madeiras tropicais a fungos apodrecedores. Nesse contexto, este trabalho teve como objetivo avaliar a resistência natural da madeira de 28 espécies arbóreas tropicais submetidas à ação de Ganoderma philippii, através da análise da perda de massa obtida em um ensaio in vitro. Segundo os critérios de classificação de resistência a fungos da ASTM D2017 (2005), a maioria das espécies foi considerada altamente resistente, exceto Amburana cearensis, Pterocarpus rohrii, Joannesia princeps e Basiloxylon brasiliensis consideradas resistentes. A comparação dos valores de perda de massa obtidos entre todas as espécies arbóreas, após a ação de Ganoderma philippii, demonstrou que Joannesia princeps, Amburana cearensis, Pterocarpus rohrii, Basiloxylon brasiliensis, Barnebydendron riedelii, Parkia pendula, Cariniana legalis, Copaifera langsdorffii, Terminalia mameluco, Spondias venulosa, Astronium concinnum e Zeyheria tuberculosa tiveram perda de massa estatisticamente maior que as demais espécies.

Palavras-chave:
Fungos xilófagos; Perda de massa; Biodeterioração da madeira; Mata Atlântica

ABSTRACT

The wood resistance to xylophagous fungi is a desirable characteristic of commercial woods and in the urban afforestation. This happens because the action of xylophagous fungi can lead to the loss of physical properties, reduction of mechanical resistance and the durability of the wood. Nevertheless, very little is known about the resistance of tropical timber to wood-rot fungi. In this context, the present work aims to evaluate the natural resistance of wood from 28 different species of tropical timber, subjected to the action of Ganoderma philippii, through the analysis of loss in mass obtained with in vitro test method. According to criteria by ASTM D2017 (2005), the majority of species was considered highly resistant, except Amburana cearensis, Pterocarpus rohrii, Joannesia princeps and Basiloxylon brasiliensis, considered resistant. The comparison of values of loss in mass after the attack of Ganoderma philippii showed that Joannesia princeps, Amburana cearensis, Pterocarpus rohrii, Basiloxylon brasiliensis, Barnebydendron riedelii, Parkia pendula, Cariniana legalis, Copaifera langsdorffii, Terminalia mameluco, Spondias venulosa, Astronium concinnum and Zeyheria tuberculosa had statistically higher loss of mass than the other species tested.

Keywords:
Wood-destroying fungi; Loss in mass; Biodeterioration of timber; Rain Forest

1 INTRODUÇÃO

Os agentes biológicos deterioram a madeira a fim de utilizar seus constituintes como fonte de energia e como forma de abrigo (OLIVEIRA, 2016). Dentre eles, os fungos são responsáveis pela maior proporção de danos causados à madeira, pois ocorrem com maior frequência nesse tipo de material (MORESCHI, 2013; VIVIAN et al., 2015).

Há relatos de fungos do gênero Ganoderma encontrados em associação à podridão da base e do tronco de diversas espécies arbóreas, nativas e exóticas, bem como àquelas utilizadas na arborização urbana (SILVA, 2014). Fungos desse gênero pertencem à Família Polyporaceae (anteriormente Ganodermataceae). São conhecidos principalmente por sua utilização na medicina tradicional da Ásia Oriental, entretanto a maioria das espécies de Ganoderma são consideradas patogênicas a plantas. Isso porque provocam a podridão de raízes, caules e mortalidade de diversas árvores (incluindo árvores urbanas), culturas perenes, palmeiras selvagens e espécies ornamentais, podendo resultar em perdas econômicas. Além disso, desempenham papel ecologicamente importante na decomposição e deslignificação de plantas lenhosas, retornando os nutrientes ao solo (LEE; CHANG, 2016; HAPUARACHCHI et al., 2019). As espécies de Ganoderma são cosmopolitas, distribuem-se em algumas regiões temperadas, contudo, possuem ampla distribuição nas regiões tropicais do mundo (CAO; YUAN, 2013; LUANGHARN et al., 2019).

Ganoderma philippii é responsável pela podridão radicular vermelha em uma ampla variedade de culturas lenhosas perenes comerciais, principalmente acácias e eucalipto, em plantações na Indonésia e na Malásia (COETZEE et al., 2011; AGUSTINI et al., 2014; YUSKIANTI et al., 2014; LEE; CHANG; 2016). O fungo ocasiona podridão radicular vermelha nas espécies agrícolas e florestais hospedeiras Abies sp., Acacia mangium Wild., Camellia sinensis (L.) Kuntze., Coffea arabica L., Fagus sp., Fagus sylvatica L., Hevea brasiliensis (Willd. ExA. Juss.) Mull. Arg., Theobroma cacao L., Theobroma grandiflorum (Willd. ex. Spreng.) K. Schum e, podridão de raiz em Albizia lebbeck (L.) Benth., Lannea sp., Mangifera indica L., Melia sp., Sapindus sp., Schefflera sp., Vernicia sp. (SOUZA; ALMEIDA; SOUZA, 2014; HAPUARACHCHI et al., 2019). Trata-se de um parasita facultativo, que pode viver em raízes, em detritos lenhosos mortos e pode se espalhar principalmente pelo contato entre raízes vivas e raízes doentes e/ou detritos lenhosos infectados (LEE; CHANG; 2016). Pode infectar tanto árvores jovens como adultas (FRANCIS et al., 2014; GILL et al., 2016) e, atualmente, não existem métodos efetivos de controle da doença (LEE; CHANG; 2016).

Para minimizar o ataque desses agentes, o uso de madeiras de elevada resistência natural é uma linha de ação economicamente viável (ALVES et al., 2006). Entretanto, a escassez das madeiras nativas de alta durabilidade natural nas florestas de produção leva a um aumento do valor comercial no mercado consumidor (ARAÚJO; MAGALHÃES; OLIVEIRA, 2011; LAZAROTTO et al., 2016) e a falta de dados a respeito das propriedades e possíveis usos comerciais e industriais é um dos fatores limitantes para a utilização de novas espécies florestais (ALVES et al., 2006).

Dessa forma, o conhecimento acerca da heterogeneidade das espécies florestais permite observar variações sobre a durabilidade natural entre espécies, a suscetibilidade a agentes biodeterioradores da madeira, que podem provocar danos e prejuízos por afetar suas condições de uso, e possibilita inferir sobre a utilização racional destas (CARVALHO et al., 2015). Além de permitir a previsão do comportamento dessas espécies em condições favoráveis ao aparecimento desses organismos, a necessidade de uso de compostos químicos (que podem ser prejudiciais ao meio ambiente, ser humano e animais, podendo ser em muitos casos evitados), elevando a integridade da construção e segurança para as pessoas, evitando assim também gastos desnecessários com a reposição de peças deterioradas e minimizando os impactos sobre as florestas remanescentes (MODES et al., 2012; SILVA et al., 2014; STALLBAUN et al., 2016). Logo, estudos sobre a durabilidade ou resistência natural de madeiras nativas são de grande importância (MODES et al., 2012).

Portanto, fungos decompositores de madeira estão associados à podridão de espécies arbóreas, podendo trazer prejuízos e riscos à comercialização de produtos madeireiros e queda ou necessidade de remoção de árvores utilizadas na arborização de centros urbanos, devido às alterações nas propriedades físicas, na redução da resistência mecânica e durabilidade da madeira. Nesse contexto, o presente estudo teve o objetivo de avaliar in vitro a resistência natural da madeira de 28 espécies arbóreas tropicais ao ataque de Ganoderma philippii.

2 MATERIAL E MÉTODO

2.1 Coleta do corpo de frutificação

A coleta do corpo de frutificação do fungo foi feita no município de Seropédica, no Estado do Rio de Janeiro, em um fragmento de Mata Atlântica (22°75’ S/ 43°69’ O). A amostra selecionada foi coletada em árvore viva de Inga laurina (Sw.) Wild sendo armazenada em saco de papel, identificada (data, local de coleta e informações sobre a amostra) e encaminhada ao Laboratório Oficial de Diagnóstico Fitossanitário (L.O.D.F) da Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ) para posterior análise.

2.2 Caracterização morfológica e molecular

A caracterização morfológica foi feita com base na análise da morfologia do pericarpo, píleo (ou chapéu), lamelas e poros. Um fragmento do corpo de frutificação coletado foi isolado em placas de petri contendo meio Batata-Dextrose-Ágar (BDA) em capela fluxo laminar e incubado em estufa a 25 ± 1^oC para crescimento por cinco dias. Posteriormente, foram repicados e armazenados em tubos de ensaio em cultura pura.

A extração de DNA da amostra fúngica foi feita com o DNeasyPlant Mini Kit (QIAGEN BRASIL), conforme instruções do fabricante. Com o DNA extraído foi realizado o teste de Polymerase Chain Reaction (PCR) utilizando-se os primers ITS1 (5’-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3’) e ITS4 (5’- TCCTCCGCTTATTGATATGC- 3’) e o Extract-N-Amp PCR Kit (SIGMA) para a amplificação do fragmento de DNA em termociclador PTC-200 (MJ Research) com os ciclos: 94^oC por cinco minutos; 35 ciclos de 94°C por 30 segundos, 62°C por 60 segundos e 72°C por 60 segundos; 72°C por sete minutos; 4°C por cinco minutos. O produto amplificado foi visualizado através da eletroforese em gel de agarose a 1,2% em tampão TAE 1X contendo brometo de etídio 10 mg/mL. Foram aplicados 16 µL do produto de PCR da amostra na canaleta do gel e submetido à corrente elétrica de aproximadamente 88 volts por 20 minutos. O amplicon foi visualizado em transiluminador de luz ultravioleta para a análise da massa molecular.

O produto de PCR foi encaminhado para a purificação e sequenciamento na empresa Myleus Biotecnologia. A sequência obtida da região genômica do Internal Transcribed Spacer (ITS) foi comparada com as sequências depositadas no GenBank pela ferramenta BLASTn (NATIONAL CENTER FOR BIOTECNOLOGY INFORMATION, 2020), que permite comparar a porcentagem de similaridade dos fragmentos de DNA obtidos em relação às sequências já depositadas.

2.3 Obtenção e corte das peças de madeira

Foram utilizados corpos de prova de madeira de 28 espécies arbóreas nativas da Mata Atlântica cedidas pelo Laboratório de Processamento de Madeira (LPM) da UFRRJ, provenientes de plantios do Espírito Santo (ES) (Tabela 1) e remanescentes do estudo de Rolim e Piotto (2018) que, dentre outras análises de peças do mesmo indivíduo arbóreo, definiram a massa específica e o usos dessas espécies (com potencial madeireiro, envolvendo usos estruturais, construções, movelaria, embalagens, utensílios, ferramentas, incluindo usos na arborização urbana). A determinação da resistência natural das madeiras a fungos xilófagos foi realizada por meio de um ensaio de apodrecimento acelerado, segundo as recomendações da American Society for Testingand Materials (ASTM), com adaptações.

Tabela 1
Lista contendo as espécies de madeira, nomes vulgar, científico e família, utilizadas para avaliação da resistência ao ataque de Ganoderma philippii

Nome Vulgar	Nome Científico	Família
Gonçalo-alves	Astronium concinnum (Engl.) Schott	Anacardiaceae
Cajá	Spondias venulosa (Engl.) Engl.	Anacardiaceae
Aderne	Astronium graveolens Jacq.	Anacardiaceae
Pequiá-sobre	Aspidosperma pyricollum Müll. Arg.	Apocynaceae
Ipê-felpudo	Zeyheria tuberculosa (Vell.) Bureau ex Verl.	Bignoniaceae
Peroba-amarela	Paratecoma peroba (Record &Mell.) Kuhlm.	Bignoniaceae
Ipê-amarelo	Handroanthus serratifolius (Vahl.) S. O. Grose	Bignoniaceae
Louro	Cordia trichotoma (Vell.) Arráb. ExStend.	Boraginaceae
Pelada	Terminalia mameluco Pickel	Combretaceae
Boleira	Joannesia princeps Vell.	Euphorbiaceae
Tachi-branco	Tachigali vulgaris L. G. Silva & H. C. Lima	Fabaceae
Araribá-vermelho	Centrolobium tomentosum Guillem. Ex Benth.	Fabaceae
Cerejeira	Amburana cearensis (Allemão) A. C. Sm.	Fabaceae
Pau-brasil	Paubrasilia echinata (Lam.) Gagnon, H. C. Lima & G. P. Lewis	Fabaceae
Caingá	Moldenhawera papillanthera L. P. Queiroz, G. P. Lewis & R. Allkin	Fabaceae
Jueirana-vermelha	Parkia pendula (Willd.) Benth.	Fabaceae
Guaribú-sabão	Barnebydendron riedelii (Tul.) J.H. Kirkbride	Fabaceae
Jacarandá-da-bahia	Dalbergia nigra (Vell.) Allemão ex Benth.	Fabaceae
Macanaíba-pele-de-sapo	Bowdichia virgilioides Kunth	Fabaceae
Copaíba	Copaifera langsdorffii Desf.	Fabaceae
Pau-ferro	Libidibia ferrea var. parvifolia Benth.	Fabaceae
Pau-sangue	Pterocarpus rohrii Vahl.	Fabaceae
Angico-preto	Senegalia polyphylla (DC.) Britton & Rose	Fabaceae
Jequitibá-rosa	Cariniana legalis (Mart.) Kuntze	Lecythidaceae
Sapucaia-vermelha	Lecythis pisonis Cambess.	Lecythidaceae
Farinha-seca	Basiloxylon brasiliensis (All.) K. Schum.	Malvaceae
Oiticica	Clarisia racemosa Ruiz & Pav.	Moraceae
Parajú	Manilkara longifolia (A. DC.) Dubard	Sapotaceae

• Fonte: Autores (2020).

As peças de madeira foram cortadas nas dimensões 2,0 x 2,0 x 1,0 cm (comprimento, largura e espessura), e o experimento foi conduzido em Delineamento Inteiramente Casualizado (DIC), com 16 repetições para o fungo e 16 repetições para as testemunhas (corpos de prova que não foram expostos ao fungo).

Os corpos de prova correspondentes aos tratamentos com fungo foram secos em estufa a 84 ± 2°C. Ao mesmo tempo, os corpos de prova correspondentes às testemunhas permaneceram em uma sala de condicionamento com temperatura de 28 ± 5°C e umidade de 75 ± 5% medidas com o termo-higrômetro (MinipaMT-242). Todos os corpos de prova foram pesados em balança analítica de precisão (AND A&D Company, LimitedFx200i), até que atingissem o peso de equilíbrio (≤ 0,01g). Assim que as peças atingiram o peso de equilíbrio obteve-se a massa seca inicial dos corpos de prova dos tratamentos (R1) e a massa seca inicial dos corpos de prova da testemunha (W1). Antes de serem expostos aos fungos, os corpos de prova foram esterilizados em autoclave (FABBE - PRIMAR Industrial LTDA. e UUFERCO 103) a 120ºC, pressão de 1 atm, por 30 minutos.

2.4 Preparo e inoculação dos frascos de cultura

Os frascos de cultura preparados para inserção das amostras eram de vidro transparente, com capacidade de 225 mL e tampa rosqueável. Para cada frasco adicionaram-se 40 mL de água destilada, 90 g de solo franco-argilo arenoso devidamente seco ao ar, com pH 5,56 e alimentadores de papel de filtro (porosidade grossa qualitativa) de 29x35 mm. Tais frascos foram devidamente identificados e esterilizados em autoclave a 120°C, pressão de 1 atm, por 30 minutos.

Fragmentos do fungo foram retirados dos tubos de cultura e repicados em placas de petri contendo meio BDA em capela fluxo laminar. As placas foram incubadas em estufa a 25 ± 1^oC para crescimento fúngico, por cerca de cinco dias. Após o crescimento do fungo e resfriamento dos frascos autoclavados, adicionou-se em capela fluxo laminar 10 mm² do micélio fúngico com auxílio de um molde, sobre o alimentador de papel de filtro. Assim, permaneceram até que o micélio tivesse coberto o alimentador (três semanas). Após, adicionou-se um corpo de prova de cada espécie de madeira por frasco de cultura.

2.5 Exposição dos corpos de prova aos fungos e manipulação após a exposição

Os frascos contendo os corpos de prova permaneceram em sala de incubação escura à temperatura de 28 ± 5°C e umidade de 75 ± 5% por 16 semanas. As peças retiradas tiveram o micélio aderido removido cuidadosamente com o auxílio de uma escova. Os corpos de prova correspondentes ao tratamento fúngico, cujo micélio havia sido removido, foram novamente submetidos à secagem em estufa a 84 ± 2°C até o peso de equilíbrio (≤0,01g) e novamente pesados, obtendo-se o peso R2. As amostras-testemunha também foram removidas dos frascos, tiveram qualquer presença de micélio fúngico removida e foram novamente submetidas à sala de condicionamento para atingirem o peso de equilíbrio (≤ 0,01g) (W2).

2.6 Análise e tabulação dos dados

As diferenças entre massa seca inicial e após o período de exposição do tratamento com o fungo e das amostras-testemunha permitiram obter a perda de massa através das equações abaixo - Equação (1) e Equação (2) - e da classificação estabelecidas pela ASTM D2017 (2005) (Tabela 2).

$\mathrm{P}\mathrm{e}\mathrm{r}\mathrm{d}\mathrm{a}\mathrm{}\mathrm{d}\mathrm{e}\mathrm{}\mathrm{m}\mathrm{a}\mathrm{s}\mathrm{s}\mathrm{a}\mathrm{}\mathrm{\%}=\left[\right(R_1-R_2)\mathrm{}/\mathrm{}{R}_1]\mathrm{}\mathrm{x}\mathrm{}100\mathrm{}$ (1)

$\mathrm{P}\mathrm{e}\mathrm{r}\mathrm{d}\mathrm{a}\mathrm{}\mathrm{d}\mathrm{e}\mathrm{}\mathrm{m}\mathrm{a}\mathrm{s}\mathrm{s}\mathrm{a}\mathrm{}\mathrm{\%}\mathrm{}=\mathrm{}\left[\right(W_1-W_2)/W_1]x100$ (2)

Em que: R₁ = massa seca inicial anterior à inoculação de Ganoderma philippii; R₂ = massa seca após o período de exposição à Ganoderma philippii; W₁ = massa seca inicial testemunha; W₂ = massa seca após o período de exposição das testemunhas.

A análise estatística dos dados foi feita pelo software BioEstat5.3, em que a comparação dos valores de perda de massa de cada uma das espécies de madeira submetidas ao ataque do fungo com a perda de massa das amostras-testemunha foi feita através do Teste de Mann-Whitney. E, o Teste de Kruskal-Wallis seguido do Teste de Dunn permitiu comparar os valores de perda de massa entre todas as espécies de madeira testadas sob a ação do fungo. Para ambos os testes foram considerados 5% de significância.

Tabela 2
Classificação da resistência da madeira exposta a fungos apodrecedores, segundo a ASTM D2017 (2005)

Classe de resistência	Perda de Massa (%)
Altamente resistente (AR)	0 - 10
Resistente (R)	11 - 24
Moderadamente resistente (MR)	25 - 44
Não resistente (NR)	>45

• Fonte: Autores (2020).

3 RESULTADOS E DISCUSSÃO

A amostra fúngica foi identificada como Ganoderma philippii (Bres. & Henn. Ex Sacc.) Bres. Grande parte das espécies de madeira testadas foram consideradas altamente resistentes pela classificação da ASTM D2017 (2005), por apresentarem perda de massa de 0 a 10% (Tabela 2, Tabela 3).

Tabela 3
Valores médios de perda de massa em porcentagem (%) de cada uma das amostras submetidas ao ensaio de apodrecimento acelerado e suas respectivas classificações quanto à resistência a fungos de apodrecimento, segundo a ASTM D2017 (2005)

Espécie	Perda de massa %
	Testemunha	CR	Ganoderma philippii	CR
Tachigali vulgaris	1,77	AR	3,68	AR
Manilkara longifolia	1,16	AR	3,96	AR
Zeyheria tuberculosa	4,69	AR	5,53	AR
Centrolobium tomentosum	0,82	AR	4,86	AR
Amburana cearensis	11,23	R	14,36	R
Paubrasilia echinata	1,23	AR	2,81	AR
Cariniana legalis	1,96	AR	8,00	AR
Moldenhawera papillanthera	0,73	AR	7,81	AR
Parkia pendula	1,5	AR	9,82	AR
Barnebydendron riedelii	4,22	AR	10,22	AR
Paratecoma peroba	0,36	AR	1	AR
Dalbergia nigra	1,6	AR	3,39	AR
Lecythis pisonis	3,01	AR	2,7	AR
Bowdichia virgilioides	1,88	AR	1,62	AR
Astronium concinnum	0,79	AR	6,04	AR
Terminalia mameluco	0,72	AR	6,69	AR
Cordia trichotoma	1,46	AR	6,35	AR
Aspidosperma pyricollum	1,09	AR	3,30	AR
Copaifera langsdorffii	1,83	AR	6,70	AR
Libidibia ferrea	0,33	AR	3,67	AR
Spondias venulosa	2,35	AR	6,63	AR
Clarisia racemosa	1,51	AR	2,08	AR
Astronium graveolens	1,35	AR	2,89	AR
Handroanthus serratifolius	0,32	AR	2,14	AR
Pterocarpus rohrii	2,35	AR	13,56	R
Joannesia princeps	4,03	AR	16,31	R
Basiloxylon brasiliensis	7,58	AR	11,22	R
Senegalia polyphylla	0,44	AR	5,99	AR

• Fonte: Autores (2020). Em que: CR = Classificação da Resistência ASTM D2017 (2005); AR = Altamente Resistente; R = Resistente.

Entretanto, as espécies Basiloxylon brasiliensis, Pterocarpus rohrii, Amburana cearensis, Joannesia princeps foram consideradas resistentes à Ganoderma philippii por apresentarem valores médios de perda de massa de 11,22%; 13,56%; 14,36%; 16,31%; respectivamente. Sendo Joannesia princeps, a espécie que obteve maior valor médio de perda de massa.

Considerando a comparação, pelo Teste de Kruskal-Wallis e Teste de Dunn a 5% de probabilidade, dos valores de perda de massa de todas as espécies de madeira sob ação do Ganoderma philippii, obtiveram-se os resultados demonstrados na Figura 1.

As espécies Joannesia princeps, Amburana cearensis, Pterocarpus rohrii, Basiloxylon brasiliensis, Barnebydendron riedelii, Parkia pendula, Cariniana legalis, Copaifera langsdorffii, Terminalia mameluco, Spondias venulosa, Astronium concinnum e Zeyheria tuberculosa apresentaram os valores de perda de massa superiores à maioria das espécies de madeira testadas (Figura 1). Enquanto as espécies que apresentaram menores valores de perda de massa foram Paratecoma peroba, Clarisia racemosa, Bowdichia virgilioides, Handroanthus serratifolius, Paubrasilia echinata, Astronium graveolens, Aspidosperma pyricollum, Dalbergia nigra, Libidibia ferrea, Manilkara longifolia e Centrolobium tomentosum (Figura 1).

Figura 1
Comparações pelo Teste de Kruskal-Wallis e Teste de Dunn a 5% de probabilidade entre os valores de perda de massa de todas as espécies de madeira submetidas ao ataque provocado por Ganoderma philippii (Bres. & Henn. Ex Sacc.) Bres. Médias seguidas pela mesma letra não diferem entre si, a 5% de probabilidade

De modo geral, a resistência à deterioração das madeiras naturalmente duráveis pode ser atribuída à presença no cerne de extrativos (substâncias oriundas do metabolismo secundário como taninos, resinas, ceras, gorduras, que podem ser removidas da madeira por extração com água ou outros solventes) que podem ser tóxicas para os microrganismos, inibitórios no processo degradativo, exercer um efeito antioxidante e/ou reduzir a permeabilidade da madeira à água, ao ar ou às hifas (PALA, 2007).

No entanto, Basiloxylon brasiliensis apresentou a formação de gotículas de extrativos na superfície de alguns corpos de prova submetidos à Ganoderma philippii e, apesar disso, foi considerada resistente (Tabela 3) e quando foi feita a comparação das perdas de massa das amostras submetidas à ação fúngica, Basiloxylon brasiliensis foi uma das espécies com maior perda de massa observada (Figura 1). O que indica que a composição química das substâncias que compõem seu extrativo, possivelmente, não lhe confere alta resistência à Ganoderma philippii. E é provável que a perda de massa da espécie possa ter sido influenciada pela saída dos extrativos, como evidenciado no estudo de Oliveira, Tomasello e Silva (2005) que analisando Corymbia citriodora (Hook)K.D. Hill. & L.A.S. Johnson e Eucalyptus paniculata Sm. submetidos à Gloeophyllum trabeum (Pers.) Murril observaram uma grande exsudação de extrativos solúveis em água, visualizada pela formação de gotículas nas amostras e um apodrecimento nitidamente superior às demais espécies e afirmam que podem ser atribuídos à perda de massa conferida pela saída de extrativos quanto ao apodrecimento propriamente dito.

Além disso, Basiloxylon brasiliensis possui densidade média e é a quinta espécie de menor densidade dentre todas as analisadas neste estudo, com densidade básica de 0,553 g/cm³, de acordo com Rolim e Piotto (2018). Tendo em vista que Melo e Paes (2006) observaram uma relação diretamente proporcional entre a densidade e a resistência de madeiras de Cordia trichotoma, Mimosa tenuiflora (Willd.) Poir., Croton sonderianus Mull. Arg., Mimosa caesalpinifolia Benth. aos fungos Postia placenta (Fr.) M.J. Larsen & Lombard e Polyporus fumosus (Pers.) Fr., em que as espécies de maior densidade se apresentaram mais resistentes. Dessa forma, Basiloxylon brasiliensis pode não ter apresentado alta resistência por possuir valores médios de densidade. Entretanto, Alves et al. (2006) não observaram relação entre a resistência natural de espécies de madeira e suas densidades. E ainda, a ação de Ganoderma philippii pode ser um obstáculo aos usos a que Basiloxylon brasiliensis se destina, tais como usos estruturais leves, movelaria, construções, carpintaria, revestimentos, embalagens e utensílios (ROLIM; PIOTTO, 2018).

Pterocarpus rohrii, além de ter sido classificado como resistente (Tabela 3), foi uma das espécies com maior perda de massa (Figura 1). Tais resultados podem ter ocorrido por se tratar de uma espécie de densidade média a baixa, sendo a terceira espécie de menor densidade (0,479 g/cm³) (ROLIM; PIOTTO, 2018). E por poder ser utilizada para embalagens, caixotaria, eventualmente laminação e utensílios, segundo os mesmos autores, pode ter sua utilização afetada.

Amburana cearensis, classificada como resistente, (Tabela 3), foi também uma das espécies que perderam mais massa pela ação de Ganoderma philippii (Figura 1). De modo semelhante, em um estudo de resistência ao ataque de fungos causadores de podridão-mole, Paes, Morais e Lima (2005) observaram que Amburana cearensis apresentou perdas de 22,78%, sem apresentar diferenças nas posições medula-casca analisadas e sendo classificada como resistente. Trata-se de uma espécie de densidade média a baixa, sendo a nona espécie de menor densidade dentre as analisadas no presente estudo e cuja densidade básica é de 0,602 g/cm³, segundo Rolim e Piotto (2018). O mesmo autor define os usos dessa espécie como estruturais leves, para mobiliários, esquadrias e revestimentos internos e utensílios. Dessa forma, quando sob a ação de Ganoderma philippii, pode ocorrer o comprometimento da madeira para essas utilizações.

E, como visto, a durabilidade natural da madeira pode estar relacionada com a concentração de extrativos fenólicos (taninos, polifenois, estilbenos, lignanas e flavonoides), como no caso de Amburana cearensis, que possui cerne rico em uma substância denominada cumarina e por isso é conhecida popularmente como cumaru (STANGERLIN et al., 2013). Para os mesmos autores, madeiras com alto teor de extrativos, como Amburana cearensis, tendem à estabilização da perda de massa em um menor período de tempo, em decorrência do esgotamento do mecanismo enzimático da cultura fúngica, quando comparadas a madeiras com baixo teor de extrativos, como o marupá (Simarouba amara Aubl.). Contudo, os corpos de prova dessa espécie não apresentaram liberação expressiva de extrativos sob ação de Ganoderma philippii, o que pode ter ocorrido em função da relação entre a composição da cumarina e outras substâncias e os mecanismos de ação de Ganoderma philippii. Como evidenciado por Costa (1975), fatores como o tipo de fungo apodrecedor e a própria espécie de madeira podem influenciar consideravelmente a resistência das madeiras ao apodrecimento.

Joannesia princeps, por sua vez, considerada resistente e com o maior valor médio de perda de massa (Tabela 2), foi uma das espécies que mais perdeu massa na comparação estatística entre a perda de massa de todas as espécies (Figura 1). Esses resultados podem estar associados aos seus valores de densidade, que são os menores dentre todas as espécies analisadas neste estudo, possuindo 0,408 g/cm³ de densidade básica (ROLIM; PIOTTO, 2018). E ainda, de acordo com o mesmo autor, a espécie possui utilizações estruturais, para segmentos de embalagens, caixotarias, revestimentos sem necessidade de excelente textura e eventualmente pode ser laminada, utilizações que podem ser lesadas caso a madeira seja exposta a esse fungo apodrecedor.

A comparação entre os valores de perda de massa das amostras-testemunha e das amostras submetidas à ação de Ganoderma philippii foi demonstrada através das medianas obtidas pelo Teste estatístico de Mann-Whitney a 5% de probabilidade (Tabela 4). Somente as espécies Zeyheria tuberculosa x testemunha; Amburana cearensis x testemunha e Lecythis pisonis x testemunha não apresentaram diferenças significativas.

Dessa forma, pode-se considerar que a maioria das espécies arbóreas sofreu a ação de Ganoderma philippii. Ação evidenciada pela perda de massa estatisticamente significativa em relação às amostras que não continham os fungos.

Tabela 4
Comparação entre valores de perda de massa em porcentagem (%) das amostras-testemunha e das amostras submetidas ao ataque de Ganoderma philippii (Bres. &Henn. ExSacc.) Bres., seus respectivos valores de mediana, média, erro padrão, valor p e U

Espécies arbóreas		Mediana	Média	Erro padrão	Valor p	U
Tachigali vulgaris	Testemunha	1,82 a	1,77	±0,33	0,0003	33
	Ganoderma philippii	3,37 b	3,68	±0,32
Manilkara longifolia	Testemunha	0,84 a	1,16	±0,29	0,002	46
	Ganoderma philippii	2,23 b	3,96	±1,60
Zeyheria tuberculosa	Testemunha	4,72 b	4,69	±0,13	0,2136	95
	Ganoderma philippii	5,04 b	5,53	±0,47
Centrolobium tomentosum	Testemunha	0,8 a	0,82	±0,12	0,0093	59
	Ganoderma philippii	1,18 b	4,86	±3,08
Amburana cearensis	Testemunha	10,9 a	11,23	±0,49	0,407	106
	Ganoderma philippii	11,11 a	14,36	±1,56
Paubrasilia echinata	Testemunha	1,33 a	1,23	±0,13	0,0005	35
	Ganoderma philippii	2,21 b	2,81	±0,49
Cariniana legalis	Testemunha	1,72 a	1,96	±0,18	< 0,0001	16
	Ganoderma philippii	5,57 b	8,00	±1,72
Moldenhawera papillanthera	Testemunha	0,67 a	0,73	±0,08	< 0,0001	0
	Ganoderma philippii	2,87 b	7,81	±2,91
Parkia pendula	Testemunha	1,44 a	1,50	±0,14	< 0,0001	20
	Ganoderma philippii	3,39 b	9,82	±3,22
Barnebydendron riedelii	Testemunha	4,33 a	4,22	±0,24	0,002	46
	Ganoderma philippii	6,87 b	10,22	±2,03
Paratecoma peroba	Testemunha	0,12 a	0,36	±0,13	0,002	46
	Ganoderma philippii	0,83 b	1,00	±0,17
Dalbergia nigra	Testemunha	1,03 a	1,60	±0,41	0,0237	68
	Ganoderma philippii	2,76 b	3,39	±0,70
Lecythis pisonis	Testemunha	3,06 a	3,01	±0,27	0,5217	111
	Ganoderma philippii	2,79 a	2,87	±0,24
Bowdichia virgilioides	Testemunha	1,68 a	1,88	±0,23	0,0159	64
	Ganoderma philippii	2,07 b	2,13	±0,12
Astronium concinnum	Testemunha	0,65 a	0,79	±0,15	< 0,0001	18
	Ganoderma philippii	4,0 b	6,04	±1,22
Terminalia mameluco	Testemunha	0,6 a	0,72	±0,19	< 0,0001	6
	Ganoderma philippii	6,13 b	6,69	±1,26
Cordia trichotoma	Testemunha	1,53 a	1,46	±0,18	0,0007	38
	Ganoderma philippii	2,97 b	6,35	±2,03
Aspidosperma pyricollum	Testemunha	0,78 a	1,09	±0,26	0,0006	37
	Ganoderma philippii	1,67 b	3,30	±0,90
Copaifera langsdorffii	Testemunha	1,82 a	1,83	±0,17	< 0,0002	30
	Ganoderma philippii	3,88 b	6,70	±2,04
Libidibia ferrea	Testemunha	0,24 a	0,33	±0,07	< 0,0001	0
	Ganoderma philippii	2,2 b	3,67	±0,86
Spondias venulosa	Testemunha	1,6 a	2,35	±0,57	< 0,0001	21
	Ganoderma philippii	5,37 b	6,63	±1,41
Clarisia racemosa	Testemunha	1,5 a	1,51	±0,10	0,0382	73
	Ganoderma philippii	2,1 b	2,08	±0,23
Astronium graveolens	Testemunha	1,26 a	1,35	±0,13	0,0159	64
	Ganoderma philippii	2,95 b	2,89	±0,44
Handroanthus serratifolius	Testemunha	0,33 a	0,32	±0,04	< 0,0001	0
	Ganoderma philippii	1,55 b	2,14	±0,54
Pterocarpus rohrii	Testemunha	2,08 a	2,35	±0,19	< 0,0001	14
	Ganoderma philippii	6,56 b	13,56	±3,80
Joannesia princeps	Testemunha	3,98 a	4,03	±0,25	< 0,0001	2
	Ganoderma philippii	9,74 b	16,31	±3,42
Basiloxylon brasiliensis	Testemunha	7,45 a	7,58	±0,60	0,0067	56
	Ganoderma philippii	9,57 b	11,22	±1,12
Senegalia polyphylla	Testemunha	0,40 a	0,44	±0,10	< 0,0001	1
	Ganoderma philippii	3,03 b	5,99	±1,61

• Fonte: Autores (2020). Em que: Medianas seguidas na vertical em pares (testemunha x Ganoderma philippii) por uma mesma letra não diferem entre si, a 5% de probabilidade; Valor p = probabilidade de significância; U = Teste de Mann-Whitney.

As espécies Libidibia ferrea, Senegalia polyphylla, Handroanthus serratifolius, Paubrasilia echinata e Aspidosperma pyricollum, que são as cinco espécies testadas de maior densidade básica (1,08; 1,027; 1,027; 0,973, 094 g/cm³), respectivamente (ROLIM; PIOTTO, 2018), apresentaram diferenças significativas quando comparadas com a testemunha, o que mostra que, apesar de pouco, perderam massa pela ação dos fungos. Essas espécies foram classificadas como altamente resistentes à Ganoderma philippii (Tabela 3). Embora também classificadas como altamente resistentes, Zeyheria tuberculosa, Lecythis pisonis, Cordia trichotoma e Clarisia racemosa, exceto Amburana cearensis considerada resistente para Ganoderma philippii (Tabela 3), que são espécies de densidade média a alta (0,795; 0,855; 0,595; 0,708; 0,602 g/cm³), respectivamente (ROLIM; PIOTTO, 2018), não diferiram significativamente da testemunha. Não sendo observada uma relação clara entre a densidade dessas espécies e a resistência ao fungo Ganoderma philippii.

Além disso, observou-se a liberação de extrativos em algumas espécies de madeira quando submetidas à ação de Ganoderma philippii, através da formação de gotículas de extrativos na superfície de alguns corpos de prova, principalmente em Paubrasilia echinata, em termos de quantidade visualmente observada. Alguns corpos de prova dessa espécie apresentaram certa distinção entre a superfície coberta pelo micélio fúngico, sem a liberação de extrativos e a superfície com liberação de extrativos, sem o desenvolvimento expressivo do micélio fúngico, o que sugere que os extrativos dessa espécie podem estar inibindo o crescimento de Ganoderma philippii e conferindo resistência à espécie, tendo em vista que foi classificada como altamente resistente (Tabela 3) e uma das espécies com menor perda de massa sob ação do fungo (Figura 1). No entanto, são necessários estudos posteriores para definir as classes de substâncias que compõem o extrativo dessa espécie e sua relação com a resistência à Ganoderma philippii.

A madeira de Paubrasilia echinata, segundo Silva (2007), possui alto teor de extrativos no cerne, um padrão normalmente observado para as angiospermas, e a resistência natural dessa espécie não pode ser definida por um fator isolado, mas possivelmente pela interação de vários de seus componentes, como extrativos e polímeros da parede celular. No estudo de Silva et al. (2007) foram avaliados os efeitos de Pycnoporus sanguineus (L.) Murril., Gloeophyllum trabeum (Pers.) Murrill, Chaetomium globosum Kunze e Cryptotermesbrevis sobre a perda de peso e composição química de extrativos e polissacarídeos da parede celular da madeira de Caesalpinia echinata Lam. (atual Paubrasilia echinata Gagnon, H. C. Lima & G. P. Lewis) e foi demonstrado que o cerne dessa espécie é altamente resistente aos fungos apodrecedores e cupins de madeira seca estudados por esses autores e apontam que a alta resistência dessa espécie a xilófagos pode ser atribuída a extrativos tóxicos na madeira.

Como anteriormente mencionado, Oliveira, Tomasello e Silva (2005) afirmaram que a perda de massa pode ser conferida pela saída de extrativos quanto ao apodrecimento fúngico ao analisarem Corymbia citriodora e Eucalyptus paniculata sob ação de Gloeophyllum trabeum. De tal maneira, pode-se esperar que a perda de massa nas espécies que apresentaram a liberação de extrativos possa ter sido influenciada tanto pela saída dessas substâncias, quanto pela ação do fungo. Entretanto, Lecythis pisonis teve um número considerável de amostras apresentando liberação de extrativos sob a ação de Ganoderma philippii e desenvolvimento pouco expressivo do micélio fúngico na superfície de seus corpos de prova. E ainda assim, não apresentou perda de massa estatisticamente considerável em relação à testemunha, o que demonstra que a saída de extrativos não influenciou em sua massa. E que a composição de seu extrativo pode conferir resistência à Ganoderma philippii, tendo em vista que foi classificada como altamente resistente (Tabela 3) e não esteve entre as espécies com maior perda de massa (Figura 1).

Clarisia racemosa também apresentou, em algumas das amostras, quantidade aparentemente grande de extrativos quando sob a ação de Ganoderma philippii e foi classificada como altamente resistente (Tabela 3) e uma das espécies de menos perdeu massa quando comparada com as demais (Figura 1). Enquanto, Moldenhawera papillanthera considerada altamente resistente (Tabela 3) e com valores de perda de massa intermediários (Figura 1); Handroanthus serratifolius e Astronium graveolens consideradas altamente resistentes (Tabela 3) e com um dos menores valores de perda de massa e Basiloxylon brasiliensis, como mencionado anteriormente, apresentaram liberação considerável de extrativos para Ganoderma philippii. Isso aponta para a importância desses extrativos como uma provável forma de resistência da madeira, principalmente para Paubrasilia echinata, Clarisia racemosa e Lecythis pisonis, que tiveram uma liberação mais expressiva, podendo também ser uma possível alternativa de controle para Ganoderma philippii e um critério a ser considerado na seleção de espécies de madeira. No entanto, como observado em Basiloxylon brasiliensis, cujo extrativo parece não inibir completamente a ação de Ganoderma philippii, o potencial de resistência natural não pode ser associado somente ao teor (quantidade de extrativos) e à massa específica da madeira, mas às classes químicas (qualidade dos extrativos) (STANGERLIN et al., 2013), o que evidencia a necessidade de estudos posteriores que definam a composição química dos extrativos dessas espécies, tendo em vista que podem possuir diferentes classes de substâncias com potenciais distintos.

Em um estudo desenvolvido por Silva et al. (2014), os fungos Postia placenta (Fr.) M.J. Larsen & Lombard e Basidiomiceto 1 provocaram uma deterioração mais intensa nas madeiras de Eucalyptus grandis W. Hill. Ex. Maiden e do híbrido Eucalyptus grandis x Eucalyptus urophylla S. T. Blake provenientes de uma fazenda São Sebastião, em Guaçuí, no Espírito Santo e o fungo Basidiomiceto 1 atacou menos a madeira da fazenda Bananal do Sul, de Cachoeiro de Itapemirim, no Espírito Santo. Com base nisso, os autores apontam que, provavelmente, esse fungo pode ser mais adaptado a microclimas comuns na Fazenda São Sebastião e Fazenda Paraíso, em Espera Feliz, Minas Gerais, que são locais de altitude. E demonstra que, possivelmente, madeiras de locais de baixa altitude podem desenvolver extrativos que conferem a elas maior resistência a tais fungos, o que pode ser uma variável a ser considerada na avaliação da resistência de madeiras a fungos apodrecedores.

Em contraste aos resultados obtidos para Tachigali vulgaris submetida à Ganoderma philippii, que permitiram classificá-la como altamente resistente (Tabela 3), Sousa et al. (2016) consideraram a madeira de Tachigali vulgaris L. G. Silva & H.C. Lima como de baixa resistência natural ao apodrecimento, Stallbaun et al. (2016) classificaram-na como resistente ao fungo Postia placenta em três amostras da região central e altamente resistente no topo e na base, de acordo com as posições longitudinais do tronco; e ainda observaram maior resistência em comparação com Pinus sp., utilizado como tratamento-controle. E observaram que os corpos de prova de Tachigali vulgaris com maior densidade demostraram maior resistência ao fungo Postia placenta.

Em relação à Handroanthus serratifolius, considerada como altamente resistente (Tabela 3), Reis et al. (2019) encontraram resultados semelhantes, classificando-a como a mais resistente ao ataque de fungos dentre as avaliadas em um estudo que observou a resistência natural do cedro-espanhol (Cedrela odorata L.), ipê-amarelo [Handroanthus serratifolius (Vahl) S.O. Grose] e tauari (Couratarisp.) ao fungo Pycnoporussanguineus (L.) Murrill, utilizando como madeira de controle, lenha (Cecropia sp.), de baixa resistência natural. Flores e Pérez (2016) baseados na ação de Polyporus sanguineus (L.) Murril., Polyporus versicolor (L.) Fr. e Ganoderma applanatum (Pers.) Pat., também classificaram Tabebuia serratifolia (Vahl) G. Nichols [sinônimo de Handroanthus serratifolius (Vahl) S. O. Grose] como altamente resistente, assim como Clarisia racemosa. E foi constatado que a porcentagem de extrativos de madeira das espécies estudadas teve alta correlação com a durabilidade natural da madeira, enquanto a densidade básica das madeiras estudadas não apresentou correlação significativa com a resistência à ação destrutiva dos três fungos utilizados.

Além disso, Stangerlin et al. (2013) sugerem estudos para adequação do período de ataque dos fungos apodrecedores Gloeophyllum trabeum (Pers.) Murril e Trametes versicolor (L.Fr.) Pilát. estabelecido pela ASTM D2017 para as madeiras tropicais, podendo ser feita uma revisão desse parâmetro na norma. O que demonstra a carência de estudos que expliquem esse tipo de comportamento e de uma norma aplicada às espécies tropicais e a fungos como Ganoderma philippii. E tais resultados evidenciam a complexidade dos fatores ligados a durabilidade natural da madeira (OLIVEIRA; TOMASELLO; SILVA, 2005).

4 CONCLUSÃO

Ganoderma philippii demonstrou ser capaz de causar podridão na maioria das espécies arbóreas testadas, evidenciada pela perda de massa estatisticamente significativa em relação às amostras não inoculadas.

As espécies arbóreas tropicais analisadas apresentam diferentes níveis de resistência à Ganoderma philippii, sendo consideradas, em sua maioria, como altamente resistentes e algumas como resistentes.

Algumas das espécies arbóreas mais resistentes provavelmente possuem compostos/metabólitos secundários (extrativos) que inibem o crescimento desse fungo, o que pode ser objeto de futuros estudos.

AGRADECIMENTOS

À CAPES pela concessão da bolsa de estudos, ao Laboratório Oficial de Diagnóstico Fitossanitário e ao Dr. Fábio Souto de Almeida.

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  30 Abr 2021
• Data do Fascículo
  Jan-Mar 2021

Histórico

• Recebido
  23 Abr 2020
• Aceito
  21 Ago 2020
• Publicado
  15 Mar 2021