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Aspectos anatomopatológicos e avaliação de agentes infecciosos em 32 gatos com colângio-hepatite

Anatomopathological aspects and determination of infectious agents in 32 cats with cholangiohepatitis

RESUMO:

A colângio-hepatite é considerada uma causa frequente de insuficiência hepática em gatos e é classificada em neutrofílica, linfocítica e esclerosante. Os objetivos deste estudo foram determinar a frequência de colângio-hepatite em gatos diagnosticados na Região Metropolitana de Porto Alegre, descrever seus aspectos anatomopatológicos e estabelecer uma associação com as infecções por Escherichia coli, vírus da imunodeficiência felina (FIV) e vírus da leucemia felina (FeLV). No período de janeiro de 2000 a julho de 2016 o Setor de Patologia Veterinária da Universidade Federal do Rio Grande do Sul realizou 1915 necropsias de gatos, destes, 32 foram diagnosticados com colângio-hepatite, representando 1,7% dos casos. Destes, a colângio-hepatite linfocítica (CHL) foi diagnosticada em 68,7% (22/32), a neutrofílica (CHN) em 21,9% (7/32) e a esclerosante (CHE) com 9,4% (3/32). A idade variou de quatro meses a 16 anos, com a mediana de seis anos, acometendo predominantemente gatos sem raça definida. Somente na CHN observou-se predisposição por machos, verificado em 85,7% (6/7) dos casos. Enterite e pancreatite foram identificadas concomitantemente com a colângio-hepatite em 56,2% (18/32) dos casos, cada, e a formação de tríade foi identificada em 46,9% (15/32) dos gatos. Através da imuno-histoquímica, 68,2% (15/22) dos gatos com CHL, foram positivos para FIV, 40,9% (9/22) para FeLV e 31,8% (7/22) marcação para ambos os retrovírus. Na CHN, 85,7% (6/7) positivos para FIV, 57,1% (4/7) para FeLV e 42,8% (3/7) imunorreação para os dois retrovírus. Na CHE, 100% (3/3) dos casos apresentaram marcação para FeLV, 33,3% (1/3) para FIV e 33,3% (1/3) para ambos. Imunomarcação para E. coli foi observada em 27,3% (6/22) dos casos da CHL, 28,6% (2/7) da CHN e em 33,3% (1/3) da CHE. E. coli, Enterococcus sp. e Klebsiella pneumoniae foram os micro-organismos mais frequentes isolados no exame bacteriológico. A visualização da E. coli, através da IHQ no sistema hepatobiliar de gatos diagnosticados com colângio-hepatite associados à inflamação, sugere que a doença se desenvolveu secundariamente à infecção bacteriana ascendente.

TERMOS DE INDEXAÇÃO:
Colângio-hepatite; doença hepatobiliar; colangite; vírus da imunodeficiência felina; vírus da leucemia felina; Escherichia coli; felinos; patologia

ABSTRACT:

Cholangiohepatitis is considered a frequent cause of liver failure in cats, and are classified as neutrophilic, lymphocytic and sclerosing. The aims of this study was to determine the frequency of cholangiohepatitis in cats diagnosed in the metropolitan region of Porto Alegre, to describe the anatomopathological aspects and to establish an association with Escherichia coli, feline immunodeficiency virus (FIV) and feline leukemia virus (FeLV). From January 2000 to July 2016, the Department of Veterinary Pathology of the Universidade Federal do Rio Grande do Sul performed 1915 cat necropsies, of which 32 were diagnosed with cholangiohepatitis, representing 1.7% of the cases. Of these, lymphocytic cholangiohepatitis (LCH) was diagnosed in 68.7% (22/32), neutrophilic (NCH) in 21.9% (7/v) and sclerosing cholangiohepatitis (SCH) with 9.4% (3/32) of the cases. In general, age ranged from four months to 16 years, with the median age of six years, and predominantly affected cats with mixed breed. Only in NCH demonstrated male predisposition, verified in 85.7% (6/7) of this cases. Enteritis and pancreatitis were identified concomitantly with cholangiohepatitis in 56.2% (18/32) cases, each, and triad formation was identified in 46.9% (15/32) of cats. In the immunohistochemistry, we observed that 68.2% (15/22) of the cats with LCH were positive for FIV, 40.9% (9/22) for FeLV, and 31.8% (7/22) positive for both retroviruses. In NCH, 85.7% (6/7) was positive for FIV, 57.1% (4/7) for FeLV, and 42.8% (3/7) immunoreactions for the two retroviruses. In SCH, 100% (3/3) of the cases presented FeLV marking, 33.3% (1/3) for FIV and 33.3% (1/3) for both. Immunostaining for E. coli was observed in 27.3% (6/22) of LCH, 28.6% (2/7) of NCH, and 33.3% (1/3) of SCH. E. coli, Enterococcus sp. and Klebsiella pneumoniae were the most frequently microorganisms isolated in the bacteriological examination. The visualization of E. coli by the immunohistochemistry in the hepatobiliary system of cats diagnosed with cholangiohepatitis suggests that the disease developed secondary to ascending bacterial infection.

INDEX TERMS:
Cholangiohepatitis; hepatobiliary disease; cholangitis; feline immunodeficiency virus; feline leukemia virus; Escherichia coli; cats; pathology

Introdução

A colângio-hepatite consiste na inflamação dos ductos biliares e do parênquima hepático circunjacente e é considerada uma causa frequente de insuficiência hepática em gatos (Cullen & Brown 2013Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p., Barros 2016Barros C.S.L. 2016. Fígado, vias biliares e pâncreas exócrino, p.222-265. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro. 856p.). Três formas dessa doença são reconhecidas com base nos aspectos histológicos, e são classificadas em neutrofílica (CHN), linfocítica (CHL) e esclerosante (CHE) (Cullen & Stlaker 2016Cullen J.M. & Stlaker M.J. 2016. Liver and biliary system, p.307-308. In: Maxie M.G. (Ed.), Jubb, Kennedy and Palmer’s Pathology of Domestic Animals. Vol.2. 6th ed. Elsevier, St Louis. 654p. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-7020-5318-4.00008-5.
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). A infecção bacteriana ascendente é provavelmente uma das causas dessa doença e Escherichia coli a mais frequente nestes casos (Day 1995Day D.G. 1995. Feline cholangiohepatitis complex. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 25(2):375-385. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50032-4. PMid:7785169.
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, Cullen & Stlaker 2016Cullen J.M. & Stlaker M.J. 2016. Liver and biliary system, p.307-308. In: Maxie M.G. (Ed.), Jubb, Kennedy and Palmer’s Pathology of Domestic Animals. Vol.2. 6th ed. Elsevier, St Louis. 654p. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-7020-5318-4.00008-5.
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). Em alguns casos observam-se, simultaneamente, lesões inflamatórias no pâncreas, intestino e sistema hepatobiliar, caracterizando a tríade felina (Weiss et al. 1996Weiss D.J., Gagne J.M. & Armstrong J. 1996. Relationship between inflammatory hepatic disease and inflammatory bowel disease, pancreatitis, and nephritis in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 209(6):1114-1116. PMid:8800259., Cullen & Brown 2013Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p., Cullen & Stlaker 2016Cullen J.M. & Stlaker M.J. 2016. Liver and biliary system, p.307-308. In: Maxie M.G. (Ed.), Jubb, Kennedy and Palmer’s Pathology of Domestic Animals. Vol.2. 6th ed. Elsevier, St Louis. 654p. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-7020-5318-4.00008-5.
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). Processos imunomediados, colelitíase, trematódeos hepatobiliares, protozoários e síndrome nefrótica também têm sido apontados como fatores envolvidos na patogenia dessa doença (Day 1995Day D.G. 1995. Feline cholangiohepatitis complex. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 25(2):375-385. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50032-4. PMid:7785169.
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, Barros 2016Barros C.S.L. 2016. Fígado, vias biliares e pâncreas exócrino, p.222-265. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro. 856p.). Clinicamente, observam-se sinais de insuficiência hepática, caracterizadas, predominantemente, por icterícia e caquexia (Barros 2016Barros C.S.L. 2016. Fígado, vias biliares e pâncreas exócrino, p.222-265. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro. 856p.), porém muitas vezes os sinais são inespecíficos (Cullen & Brown 2013Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p.). O diagnóstico é baseado nos exames laboratoriais como mensuração de atividades enzimáticas hepáticas e perfil hematológico, correlacionados com os sinais clínicos, porém o diagnóstico definitivo será através do exame histopatológico (Day 1995Day D.G. 1995. Feline cholangiohepatitis complex. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 25(2):375-385. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50032-4. PMid:7785169.
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, Stonehewer 2006Stonehewer J. 2006. Fígado e pâncreas, p.358-372. In: Chandler E.A. & Gaskell R.M. (Eds), Clínica e Terapêutica em Felinos. 3ª ed. Roca, São Paulo. 632p., German 2009German A. 2009. How I treat feline cholangiohepatitis. Vet. Focus 19:41-46.).

Este trabalho tem como objetivos determinar a frequência de colângio-hepatite em gatos diagnosticados na Região Metropolitana de Porto Alegre, no período de janeiro de 2000 a julho de 2016, descrever seus aspectos anatomopatológicos e analisar a associação com as infecções por Escherichia coli, vírus da imunodeficiência felina (FIV) e vírus da leucemia felina (FeLV).

Material e Métodos

Foram revisados os laudos de necropsias arquivados do Setor de Patologia Veterinária da Universidade Federal do Rio Grande do Sul (SPV-UFRGS) no período de janeiro de 2000 a julho de 2016, e selecionados para o estudo gatos diagnosticados com “colangite”, “colângio-hepatite” e/ou “tríade felina”. Foram considerados somente os casos em que a colângio-hepatite foi a causa da morte ou a razão para eutanásia do gato. Foram excluídos do trabalho os casos com marcada autólise, inflamação hepatobiliar discreta, neoplasmas, septicemias e hepatite sem o envolvimento biliar. Os dados referentes à identificação do felino, como raça, sexo e idade, e as lesões macroscópicas e microscópicas foram revisados e compilados. Dos casos selecionados, realizou-se a busca dos blocos de parafina arquivados para a confecção de lâminas histológicas com cortes de 3µm, para posterior coloração pela técnica de hematoxilina e eosina (HE). Baseado nas alterações microscópicas, a colângio-hepatite foi classificada conforme Cullen & Stlaker (2016)Cullen J.M. & Stlaker M.J. 2016. Liver and biliary system, p.307-308. In: Maxie M.G. (Ed.), Jubb, Kennedy and Palmer’s Pathology of Domestic Animals. Vol.2. 6th ed. Elsevier, St Louis. 654p. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-7020-5318-4.00008-5.
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. A graduação da inflamação foi baseada na densidade do infiltrado inflamatório e classificada em discreta, moderada e acentuada. A graduação da hiperplasia de ductos biliares, foi baseada nos achados descritos por Otte et al. (2014)Otte C.M.A., Rothuizen J., Favier R.P., Penning L.C. & Vreman S. 2014. A morphological and immunohistochemical study of the effects of prednisolone or ursodeoxycholic acid on liver histology in feline lymphocytic cholangitis. J. Feline Med. Surg. 16(10):796-804. http://dx.doi.org/10.1177/1098612X14520811. PMid:24496321.
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. Para a avaliação do grau de fibrose, cortes histológicos de fígado foram submetidos à coloração de tricrômico de Masson (TM) e posteriormente classificados em discreta, moderada e acentuada.

Secções de fígado e órgãos linfoides (linfonodo e/ou baço) foram submetidas à técnica de IHQ pelo método de polímero universal marcado com peroxidase (MACH 4 Universal HRP-Polymer - Biocare Medical), para os agentes Escherichia coli, FIV e FeLV. Controles positivos foram inseridos simultaneamente com as lâminas testadas e consistiam de casos testados previamente (Rolim et al. 2017Rolim V.M., Pavarini S.P., Campos F.D., Pignone V., Faraco C., Muccillo M.S., Roehe P.M., da Costa F.V. & Driemeier D. 2017. Clinical, pathological, immunohistochemical and molecular characterization of feline chronic gingivostomatitis. J. Fel. Med. Surg. 19(4):403-409. PMid:26858258.). Para os controles negativos, utilizou-se tampão fosfato-salino (PBS) ao invés de anticorpo primário. Os protocolos IHQ realizados constam no Quadro 1.

Quadro 1.
Anticorpos e protocolos imuno-histoquímicos utilizados em casos de colângio-hepatite em gatos diagnosticados no SPV-UFRGS

No período de julho de 2015 a julho de 2016 foram coletadas amostras de bile e fígado de gatos com suspeita de doença hepática infecciosa para a realização do exame bacteriológico. Uma alçada (aproximadamente 10μL) e uma gota (aproximadamente 30μL) de fígado e bile, respectivamente, foram inoculadas em Ágar Mueller Hinton suplementado com 5% de sangue ovino e em Ágar McConkey. As placas foram então incubadas em aerobiose a 37oC por até 72 horas.

Resultados

No período de janeiro de 2000 a julho de 2016 o SPV-UFRGS realizou 1.915 necropsias de gatos, destes, 117 vieram a óbito ou foram submetidos à eutanásia devido a doenças hepatobiliares, sendo que 32 foram diagnosticados com colângio-hepatite, representando 1,7% do total de casos e 27,3% em relação às doenças hepatobiliares. A idade variou de quatro meses a 16 anos, com a idade média de 7,7 anos (mediana de seis anos). Em 84,4% (27/32) dos casos afetou gatos sem raça definida (SRD), e os 15,6% (5/32) restantes, gatos com raça. Em relação ao sexo, 56,2% (18/32) dos gatos eram machos e 43,8% (14/32) fêmeas. Do total dos gatos diagnosticados com colângio-hepatite, em 56,2% (18/32) apresentaram graus variados de pancreatite, 56,2% (18/32) enterite e em 46,9% (15/32) com lesões inflamatórias simultâneas no sistema hepatobiliar, pâncreas e intestino delgado.

Colângio-hepatite linfocítica

Do total de 32 diagnósticos de colângio-hepatite, 22 casos foram classificados como CHL (68,7%). Destes, 90,9% (20/22) dos gatos eram SRD e 9,1% (2/22) com raça (Himalaia e Persa). Em 50% (11/22) dos casos acometeram fêmeas e a outra metade, machos. A idade variou de um ano a 16 anos, com idade média de 7,9 anos (mediana de 7,5 anos).

À necropsia, 54,5% (12/22) dos gatos com CHL apresentaram escore corporal regular, 31,8% (7/22) ruim, e em 13,6% (3/22), identificou-se caquexia. Sinal de desidratação, analisado pela retração do globo ocular para dentro da sua órbita (enoftalmia), foi identificado em 68,2% (15/22) dos gatos. Em 50% (11/22) dos casos, as mucosas (conjuntival e oral) estavam ictéricas, 31,8% (7/22) pálidas, e 18,2% (4/22) normocoradas. O tecido subcutâneo apresentou-se difusamente ictérico em 36,4% (8/22) dos casos. Em 59,1% (13/22) dos casos foi identificado líquido translúcido a avermelhado na cavidade abdominal (ascite), 18,2% (4/22) na cavidade torácica, e em 9,1% (2/22), no saco pericárdio. Desvios portossistêmicos venosos extra-hepáticos (“shunts”) foram relatados em 13,6% (3/22) dos gatos. Quanto ao padrão macroscópico do fígado, 50% (11/22) encontraram-se aumentados de volume (Fig.1A), 22,7% (5/22) diminuídos, e em 27,3% (6/22), não houve alteração em relação ao tamanho do órgão. Quanto à coloração do tecido hepático, 36,4% (8/22) eram acastanhados, 31,8% (7/22) alaranjados, 18,2% (4/22) pálidos e 13,6% (3/22) amarelos. Em 86,4% (19/22) dos casos de CHL, os fígados encontraram-se firmes à palpação, e 13,6% (3/22) friáveis. Acentuação do padrão lobular e superfície capsular com aspecto irregular foram identificadas em 68,2% (15/22) e 31,8% (7/22) dos casos, respectivamente. Em 22,7% (5/22) dos casos apresentavam descrição da superfície de corte do tecido hepático, em que foram observadas áreas claras circunjacentes às vermelhas (Fig.1B). Áreas nodulares, esbranquiçadas a pardas, relativamente delimitadas de distribuição multifocal sobre a superfície capsular, que ao corte se aprofundavam no parênquima foram visualizadas em 63,6% (14/22) e áreas vermelhas multifocais em 9,1% (2/22) dos casos.

Fig.1.
Aspectos macroscópicos e microscópicos de colângio-hepatite linfocítica em gatos. (A) Fígado discretamente aumentado de volume, pálido, com a superfície capsular levemente irregular e acentuação do padrão lobular. (B) Superfície de corte do fígado mostrando áreas claras circunjacentes às vermelhas. (C) Proliferação de tecido conjuntivo fibroso, de distribuição multifocal a coalescente associado com infiltrado inflamatório composto por linfócitos e plasmócitos, e discreta proliferação de ductos biliares. HE, obj.10x. (D) Infiltrado inflamatório composto predominantemente por linfócitos e plasmócitos, distribuídos no espaço porta e ao redor de ductos biliares proliferados e ocasionalmente dilatados e preenchidos por debris celulares, associado por discreta fibrose periportal. HE, obj.20x.

Nos casos de CHL, observou-se infiltrado inflamatório, composto predominantemente por linfócitos e plasmócitos, de distribuição multifocal, principalmente nas regiões periportais, com intensidade variando de moderada a acentuada. Em 54,5% (12/22) dos casos, o grau de proliferação de ductos biliares foi classificado como discreto, 27,3% (6/22) moderado, e 18,2% (4/22) acentuado. Dilatação de ductos biliares, por vezes preenchidos por restos celulares foi visualizada em 40,9% (9/22) dos casos de CHL. A proliferação de tecido conjuntivo fibroso foi identificada discretamente nas regiões periportais em 40,9% (9/22), moderada em 36,4% (8/22) e acentuada, com formação de pontes, em 22,7% (5/22) dos casos (Fig.1C e D). Colestase intra-hepática foi visualizada de maneira discreta em 45,4% (10/22) dos casos, moderada em 27,3% (6/22), 9,1% (2/22) acentuada, e em 18,2% (4/22) não foi identificada esta alteração histológica.

Em 68,2% (15/22) dos gatos com CHL apresentaram lesões histológicas de pancreatite, caracterizadas por infiltrado inflamatório, com predomínio de linfócitos e plasmócitos, distribuídos de maneira multifocal no interstício, perivascular e também nas regiões periductais. A intensidade da inflamação foi moderada em 45,4% (10/22) dos casos, discreto em 13,6% (3/22) e acentuado em 9,1% (2/22). Fibrose intersticial multifocal, associada à inflamação, foi verificada em discreta quantidade em 31,8% (7/22) dos casos, moderada em 13,6% (3/22) e acentuada em 4,5% (1/22). Necrose de gordura peripancreática foi observada em 22,7% (5/22) dos casos. No intestino delgado, 59,1% (13/22) dos gatos com CHL apresentaram discreto a moderado infiltrado inflamatório linfoplasmocitário, distribuído multifocalmente na submucosa e lâmina própria, em 9,1% (2/22) dos casos o infiltrado inflamatório estendeu-se ao redor das glândulas de Brünner. Lesões microscópicas pancreáticas e entéricas concomitantes àquelas observadas no sistema hepatobiliar foram identificadas em 54,5% (12/22) dos gatos com CHL.

Em relação à investigação de agentes infecciosos nos casos de CHL, através da IHQ, 27,3% (6/22) dos casos apresentaram marcação para Escherichia coli no interior de ductos biliares (Fig.2A) e ocasionalmente entremeando os agregados inflamatórios. Quanto aos vírus, 40,9% (9/22) dos casos apresentaram imunomarcação intracitoplasmática nos linfócitos dos órgãos linfoides para FeLV (Fig.2B), e em 22,7% (5/22) observaram-se discreta marcação multifocal nos agregados de células inflamatórias do tecido hepatobiliar (Fig.2C). Na avaliação IHQ anti-FIV, 68,2% (15/22) dos gatos apresentaram imunorreação intracitoplasmática e intranuclear em linfócitos de órgão linfoide, destes, em 45,4% (10/22) apresentaram ocasionais linfócitos imunomarcados no fígado de distribuição multifocal periportal (Fig.2D). Obteve-se marcação para ambos os vírus em 31,8% (7/22) dos gatos com CHL.

Fig.2.
Investigação de agentes infecciosos nos gatos diagnosticados com colângio-hepatite. (A) Marcação anti-E. coli no interior de um ducto biliar em um caso de colângio-hepatite linfocítica (CHL). IHQ, AEC, obj.40x. (B) Marcação multifocal e intracitoplasmática anti-FeLV no baço de um gato com CHL. IHQ, AEC, obj.20x. (C) Imunorreação anti-FeLV multifocal no citoplasma de plasmócitos e macrófagos, localizados no espaço porta. IHQ, AEC, obj.40x. (D) Marcação anti-FIV em ocasionais linfócitos localizados ao redor de um ducto biliar. IHQ, AEC, obj.40x. Detalhe: imuno-histoquímica positiva em linfócitos de um linfonodo de um gato com CHL. IHQ, AEC, obj.40x.

O exame bacteriológico foi realizado em 27,3% (6/22) dos gatos com CHL, onde se obteve crescimento bacteriano para os seguintes agentes: Klebsiella pneumoniae (2/6), crescimento misto para Enterococcus sp. e E. coli (1/6) e Salmonella sp. com E. coli (1/6). Sendo que, em 33,3% (2/6) destes, não houve crescimento bacteriano significativo nas amostras de bile e/ou fragmento hepático.

Colângio-hepatite neutrofílica

Sete gatos foram diagnosticados com CHN, perfazendo 21,9% dos diagnósticos. Destes, 71,4% (5/7) eram SRD e 28,6% (2/7) com raça definida (Siamês e Cornish Rex). Quanto ao sexo, 85,7% (6/7) dos gatos com CHN eram machos, e 14,3% (1/7), fêmeas. A idade variou de quatro meses a cinco anos, com idade média de 5,8 anos (mediana de três anos).

Em 57,1% (4/7) dos gatos com CHN estavam com estado nutricional ruim, 28,6% (2/7) regular, e 14,3% (1/7) com caquexia. Quanto à coloração das mucosas (conjuntival e oral), 71,4% (5/7) encontraram-se pálidas, e em 28,6% (2/7), levemente ictéricas. O tecido subcutâneo encontrou-se ictérico em 28,6% (2/7) dos casos. Ascite e hidrotórax foram identificadas em 42,8% (3/7) e 28,6% (2/7) dos casos, respectivamente. O fígado de 71,4% (5/7) dos gatos diagnosticados com CHN apresentava discreto aumento de volume. Em relação à consistência, 42,8% (3/7) eram friáveis à palpação e 14,3% (1/7) levemente firmes. Quanto à coloração, 28,6% (2/7) eram alaranjados, 28,6% (2/7) vermelhos pálidos e 28,6% (2/7) castanhos. Acentuação do padrão lobular foi identificada em 71,4% (5/7) dos casos. Áreas multifocais vermelhas, assim como áreas multifocais arredondadas esbranquiçadas, foram identificadas em 28,6% (2/7) dos casos, cada (Fig.3A). Material fibrilar levemente amarelado (fibrina) sobre a superfície capsular foi descrito em 14,3% (1/7).

Fig.3.
Achados macroscópicos e microscópicos da colângio-hepatite neutrofílica em gatos. (A) Fígado levemente aumentado de volume, alaranjado, com acentuação do padrão lobular, múltiplas áreas esbranquiçadas e vermelhas na superfície capsular. (B) Infiltrado inflamatório composto por neutrófilos no lúmen e no epitélio dos ductos biliares, estendendo-se nas regiões periportais e de distribuição multifocal. HE, obj.10x. (C) Infiltrado inflamatório, composto predominantemente por neutrófilos, com ocasionais linfócitos e plasmócitos, localizados na região periportal, lúmen e epitélio ductal. HE, obj.40x. (D) Infiltrado neutrofílico e debris celulares no interior de um ducto biliar, e agregado neutrofílico no parênquima hepático circunjacente. HE, obj.40x.

Os casos de CHN foram caracterizados por moderado a acentuado infiltrado inflamatório multifocal periportal, ocasionalmente envolvendo o epitélio ductal, composto, predominantemente, por neutrófilos, com ocasionais linfócitos e plasmócitos (Fig.3B). Quanto ao grau de proliferação de ductos biliares, 71,4% (5/7) dos casos foi classificado como discreto, 14,3% (1/7) moderado e 14,3% (1/7) acentuado. Dilatação de ductos biliares, com o lúmen preenchido por restos celulares foi visualizada em 57,1% (4/7) dos gatos (Fig.3C,D). Em relação ao grau de fibrose, identificada através do TM, 71,4% (5/7) dos casos apresentaram discreta proliferação de tecido conjuntivo fibroso periportal, 14,3% (1/7) moderado e 14,3% (1/7) acentuado. Em 57,1% (4/7) dos casos observou colestase intra-hepática moderada.

Pancreatite foi observada em 28,6% (2/7) dos gatos com CHN, estes apresentaram moderado infiltrado inflamatório intersticial multifocal, composto predominantemente por linfócitos e plasmócitos, com ocasionais neutrófilos, e em 14,3% (1/7) observou discreta fibrose intersticial, associada com moderada necrose da gordura peripancreática. Em 57,1% (4/7) dos gatos apresentavam enterite, e exibiram infiltrado inflamatório discreto a moderado, composto por linfócitos e plasmócitos, distribuídos multifocalmente na submucosa e lâmina própria. Nestes casos, pancreatite concomitante com a enterite foi identificada em 28,6% (2/7) dos gatos com CHN.

Quanto à identificação de agentes infecciosos, 28,6% (2/7) dos gatos apresentaram marcação para E. coli, visualizada através da IHQ, multifocalmente no interior de ductos biliares e em ocasionais agregados inflamatórios. Em relação ao FeLV, em 57,1% (4/7) dos casos observaram imunomarcação intracitoplasmática nos órgãos linfoides, não identificando marcação no tecido hepatobiliar para este agente. Imunorreatividade para FIV foi identificada em 85,7% (6/7) dos gatos com CHN, destes, 50% (3/6) apresentaram, ainda, marcação intracitoplasmática e intranuclear em raras células inflamatórias no fígado. A associação entre FeLV e FIV foi identificada em 42,8% (3/7) dos casos da forma neutrofílica.

Em 14,3% (1/7) dos casos de CHN foi coletada amostra de bile e fígado para a realização do exame bacteriológico, onde constatou crescimento misto de Enterococcus sp. e E. coli.

Colângio-hepatite esclerosante

Três gatos foram diagnosticados com CHE (9,4% dos casos). Destes, 66,7% (2/3) eram fêmeas e SRD, e 33,3% (1/3), macho da raça Persa. A idade variou de quatro a 14 anos, com média de nove anos (mediana de 10 anos).

À necropsia, 66,7% (2/3) dos gatos com CHE apresentaram estado corporal ruim, e em 33,3% (1/3), caquexia. Mucosas conjuntivais e oral, e tecido subcutâneo de coloração amarela, líquido translúcido na cavidade abdominal e desvios portossistêmicos venosos extra-hepáticos (“shunts”) foram observados em todos os casos. Em relação ao padrão macroscópico do fígado, 66,7% (2/3) dos casos encontraram-se diminuídos de tamanho, castanhos pálidos, firmes à palpação, com a superfície capsular irregular, com acentuação do padrão lobular e áreas multifocais a coalescentes esbranquiçadas (Fig.4A). Em 33,3% (1/3) dos casos, não houve alteração quanto ao tamanho do órgão, onde observou ainda, consistência firme e coloração castanha a levemente amarelada, contendo áreas vermelhas multifocais na superfície capsular, intercaladas com pequenas áreas nodulares esbranquiçadas. Dilatação nos ductos biliares e na vesícula foi observada em 66,7% (2/3), ainda, ao corte observaram ductos biliares intra-hepáticos evidentes, espessados, calibrosos e amarelados (Fig.4B).

Fig.4.
Aspectos macroscópicos e microscópicos de colângio-hepatite esclerosante em gatos. (A) Fígado diminuído de volume, com superfície capsular irregular, observando-se múltiplas áreas nodulares e esbranquiçadas. (B) Superfície de corte do tecido hepático, mostrando ductos biliares intra-hepáticos espessados, calibrosos e amarelados, de distribuição multifocal. (C) Proliferação de tecido conjuntivo fibroso, proliferação de ductos biliares, que se encontram dilatados e preenchidos por debris celulares, além de infiltrado inflamatório de linfócitos e plasmócitos. HE, obj.10x. (D) Acentuada fibrose multifocal a coalescente, com formação de pontes. Tricrômico de Masson, obj.5x.

Os três casos apresentaram lesões microscópicas, caracterizadas por substituição do parênquima hepático normal por acentuada proliferação de tecido conjuntivo fibroso (evidenciado pela coloração de Tricrômico de Masson), de distribuição multifocal a coalescente, por vezes com formação de pontes, associada com moderado infiltrado inflamatório multifocal periportal, composto principalmente por linfócitos e plasmócitos, e com proliferação de ductos biliares em grande quantidade, por vezes apresentavam-se dilatados e ocasionalmente preenchidos por restos celulares (Fig.4C,D). A vesícula biliar foi coletada e analisada em 66,7% (2/3) dos casos, onde observou moderada hiperplasia do epitélio de revestimento da mucosa, com a formação de discretas projeções digitiformes que se orientavam para a luz do órgão.

Alterações microscópicas no pâncreas e no intestino delgado estavam presentes em 33,3% (1/3) dos casos de CHE, e se caracterizam por moderado infiltrado inflamatório de linfócitos e plasmócitos multifocalmente no interstício (pâncreas), submucosa, lâmina própria e ocasionalmente ao redor de glândulas de Brünner (intestino delgado).

Quanto aos resultados da IHQ, 33,3% (1/3) dos casos apresentaram marcação para E. coli associada à inflamação. Em 100% (3/3) foi positivo para FeLV com marcação em órgão linfoide, e 66,7% (2/3), imunorreação discreta em agregados inflamatórios no sistema hepatobiliar. Em relação à IHQ anti-FIV, 33,3% (1/3) dos gatos diagnosticados com CHE apresentaram imunomarcação intracitoplasmática e intranuclear em tecido linfoide, não identificando marcação no fígado. A presença dos dois agentes virais foi verificada em 33,3% (1/3) dos casos.

Em relação aos resultados do exame bacteriológico, em 33,3% (1/3) dos casos de CHE se realizou a coleta de bile e fígado, onde verificou crescimento de Citrobacter sp.

Discussão

No presente trabalho, a frequência de colângio-hepatite em gatos foi de 1,7% do total e 27,3% em relação às doenças hepatobiliares. Em uma pesquisa semelhante, a frequência foi de 0,86% (Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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). Apesar da baixa frequência, a colângio-hepatite é a segunda doença hepática mais comum em gatos (Zawie & Garvey 1984Zawie D.A. & Garvey M.S. 1984. Feline hepatic disease. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 14(6):1201-1230. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(84)50154-5. PMid:6393553.
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, Cullen & Brown 2013Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p.).

Quanto à classificação, no presente estudo a CHL foi a mais frequente, representando 68,7% dos casos, seguida pela CHN e CHE, com 21,9% e 9,4%, respectivamente. Gagne et al. (1999)Gagne J.M., Armstrong P.J., Weiss D.J., Lund E.M., Feeney D.A. & King V.L. 1999. Clinical features of inflammatory liver disease in cats: 41 cases (1983-1993). J. Am. Vet. Med. Assoc. 214(4):513-516. PMid:10029853. e Warren et al. (2011)Warren A., Center S., McDonough S., Chiotti R., Goldstein R., Meseck E., Jacobsen M., Rowland P. & Simpson K. 2011. Histopathologic features, immunophenotyping, clonality, and eubacterial fluorescent in situ hybridization in cats with lymphocytic cholangitis/cholangiohepatitis. Vet. Pathol. 48(3):627-641. http://dx.doi.org/10.1177/0300985810384409. PMid:21097715.
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descrevem que a forma linfocítica é a mais frequente, porém, diversos pesquisadores relatam que a CHN é a forma mais comum em gatos (Van den Ingh et al. 2006Van den Ingh T.S.G.A.M., Cullen J.M. , Twedt D.C., Van Winkle T., Desmet V.J. & Rothuizen J. 2006. Morphological classification of biliary disorders of canine and feline liver, p.61-76. In: Rothuizen J., Bunch S.E., Charles J.A., Cullen J., Desmet V., Szatmari V., Twedt D., Van den Ingh T., Van Winkle T. & Washabau R. (Eds), WSAVA Standards for Clinical and Histological Diagnosis of Canine and Feline Liver Diseases. Elsevier Saunders, Edinburgh. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-7020-2791-8.50009-5.
https://doi.org/10.1016/B978-0-7020-2791...
, Morgan et al. 2009Morgan M., Rondeau M., Rankin S., Shofer F., Berent A., Van Winkle T. & Washabau R. 2009. A survey of feline inflammatory hepatobiliary disease using the WSAVA classification system. J. Vet. Intern. Med. 22:806., Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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, Hirose et al. 2014Hirose N., Uchida K., Kanemoto H., Ohno K., Chambers J.K. & Nakayama H. 2014. A retrospective histopathological survey on canine and feline liver diseases at the University of Tokyo between 2006 and 2012. J. Vet. Med. Sci. 76(7):1015-1020. http://dx.doi.org/10.1292/jvms.14-0083. PMid:24717415.
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). O número reduzido de casos de CHE tem sido atribuído ao fato de que a maioria dos gatos morre espontaneamente ou é submetido à eutanásia antes que a doença progrida para a sua fase terminal (Day 1995Day D.G. 1995. Feline cholangiohepatitis complex. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 25(2):375-385. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50032-4. PMid:7785169.
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).

De uma maneira geral, gatos SRD foram os mais afetados no presente estudo, assim como descrito por Clark et al. (2011)Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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e Marolf et al. (2012)Marolf A.J., Leach L., Gibbons D.S., Bachand A. & Twedt D. 2012. Ultrasonographic findings of feline cholangitis. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 48(1):36-42. http://dx.doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671. PMid:22186719.
https://doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671....
. Este dado é atribuído possivelmente ao fato de estes animais representarem a maioria da população felina encaminhadas para o SPV-UFRGS. Diversos pesquisadores relatam que não há predisposição racial em gatos com colângio-hepatite (Morgan et al. 2009Morgan M., Rondeau M., Rankin S., Shofer F., Berent A., Van Winkle T. & Washabau R. 2009. A survey of feline inflammatory hepatobiliary disease using the WSAVA classification system. J. Vet. Intern. Med. 22:806., Marolf et al. 2012Marolf A.J., Leach L., Gibbons D.S., Bachand A. & Twedt D. 2012. Ultrasonographic findings of feline cholangitis. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 48(1):36-42. http://dx.doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671. PMid:22186719.
https://doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671....
), porém, na forma linfocítica, a raça Persa é a mais acometida (Lucke & Davies 1984Lucke V.M. & Davies J.D. 1984. Progressive lymphocytic cholangitis in the cat. J. Small Anim. Pract. 25(5):249-260. http://dx.doi.org/10.1111/j.1748-5827.1984.tb03388.x.
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, German 2009German A. 2009. How I treat feline cholangiohepatitis. Vet. Focus 19:41-46.). Gatos com CHL e CHE não apresentaram predisposição sexual, concordando com diversas pesquisas (Lucke & Davies 1984Lucke V.M. & Davies J.D. 1984. Progressive lymphocytic cholangitis in the cat. J. Small Anim. Pract. 25(5):249-260. http://dx.doi.org/10.1111/j.1748-5827.1984.tb03388.x.
https://doi.org/10.1111/j.1748-5827.1984...
, Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
https://doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.0...
, Marolf et al. 2012Marolf A.J., Leach L., Gibbons D.S., Bachand A. & Twedt D. 2012. Ultrasonographic findings of feline cholangitis. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 48(1):36-42. http://dx.doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671. PMid:22186719.
https://doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671....
), porém, na forma neutrofílica, os machos foram mais frequentes, corroborando com diversos estudos (Gagne et al. 1999Gagne J.M., Armstrong P.J., Weiss D.J., Lund E.M., Feeney D.A. & King V.L. 1999. Clinical features of inflammatory liver disease in cats: 41 cases (1983-1993). J. Am. Vet. Med. Assoc. 214(4):513-516. PMid:10029853., Morgan et al. 2009Morgan M., Rondeau M., Rankin S., Shofer F., Berent A., Van Winkle T. & Washabau R. 2009. A survey of feline inflammatory hepatobiliary disease using the WSAVA classification system. J. Vet. Intern. Med. 22:806., Hirose et al. 2014Hirose N., Uchida K., Kanemoto H., Ohno K., Chambers J.K. & Nakayama H. 2014. A retrospective histopathological survey on canine and feline liver diseases at the University of Tokyo between 2006 and 2012. J. Vet. Med. Sci. 76(7):1015-1020. http://dx.doi.org/10.1292/jvms.14-0083. PMid:24717415.
https://doi.org/10.1292/jvms.14-0083....
).

A idade média dos gatos com colângio-hepatite foi de 7,7 anos (mediana de seis anos). Em pesquisas semelhantes, a idade média variou de nove a 11,2 anos (Gagne et al. 1999Gagne J.M., Armstrong P.J., Weiss D.J., Lund E.M., Feeney D.A. & King V.L. 1999. Clinical features of inflammatory liver disease in cats: 41 cases (1983-1993). J. Am. Vet. Med. Assoc. 214(4):513-516. PMid:10029853., Morgan et al. 2009Morgan M., Rondeau M., Rankin S., Shofer F., Berent A., Van Winkle T. & Washabau R. 2009. A survey of feline inflammatory hepatobiliary disease using the WSAVA classification system. J. Vet. Intern. Med. 22:806., Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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, Marolf et al. 2012Marolf A.J., Leach L., Gibbons D.S., Bachand A. & Twedt D. 2012. Ultrasonographic findings of feline cholangitis. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 48(1):36-42. http://dx.doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671. PMid:22186719.
https://doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671....
). Gatos com apresentação da forma neutrofílica apresentaram idade média inferior (5,8 anos) quando comparados com gatos diagnosticados com CHL e CHE (7,9 e nove anos, respectivamente). Este dado está de acordo com o descrito na literatura (Gagne et al. 1999Gagne J.M., Armstrong P.J., Weiss D.J., Lund E.M., Feeney D.A. & King V.L. 1999. Clinical features of inflammatory liver disease in cats: 41 cases (1983-1993). J. Am. Vet. Med. Assoc. 214(4):513-516. PMid:10029853., Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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, Cullen & Brown 2013Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p.), entretanto, apesar da CHN acometer gatos de qualquer idade, alguns pesquisadores descrevem que esta forma é mais comum em idosos (Shaker et al. 1991Shaker E.H., Zawie D.A., Garvey M.S. & Gilbertson S.R. 1991. Suppurative cholangiohepatitis in a cat. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 27:148-150., Center 2009Center S.A. 2009. Diseases of the gallbladder and biliary tree. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 39(3):543-598. http://dx.doi.org/10.1016/j.cvsm.2009.01.004. PMid:19524793.
https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2009.01.0...
, German 2009German A. 2009. How I treat feline cholangiohepatitis. Vet. Focus 19:41-46., Hirose et al. 2014Hirose N., Uchida K., Kanemoto H., Ohno K., Chambers J.K. & Nakayama H. 2014. A retrospective histopathological survey on canine and feline liver diseases at the University of Tokyo between 2006 and 2012. J. Vet. Med. Sci. 76(7):1015-1020. http://dx.doi.org/10.1292/jvms.14-0083. PMid:24717415.
https://doi.org/10.1292/jvms.14-0083....
).

Mau estado corporal, desidratação, mucosas ictéricas, efusões abdominais e torácicas, foram alterações macroscópicas frequentes, identificadas, principalmente, nos casos mais crônicos, como na CHL e CHE. Desvios portossistêmicos venosos extra-hepáticos adquiridos foram identificados 13,6% dos casos de CHL e em todos os casos da forma esclerosante. Estas alterações são frequentes em casos de doenças hepáticas em gatos e são descritas por diversos pesquisadores (Day 1998Day M.J. 1998. Imunohistochemical characterization of the lesions of the feline progressive lymphocytic cholangitis/cholangiohepatitis. J. Comp. Pathol. 119(2):135-147. http://dx.doi.org/10.1016/S0021-9975(98)80058-3. PMid:9749358.
https://doi.org/10.1016/S0021-9975(98)80...
, Ilha et al. 2004Ilha M.R.S., Loretti A.P., Barros C.S.L., Mazzanti A. & Breitsameter I. 2004. Cirrose biliar em felinos associada à ectasia do ducto cístico e desvios portossistêmicos extra-hepáticos. Ciência Rural 34(4):1147-1153. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782004000400028.
https://doi.org/10.1590/S0103-8478200400...
, Marolf et al. 2012Marolf A.J., Leach L., Gibbons D.S., Bachand A. & Twedt D. 2012. Ultrasonographic findings of feline cholangitis. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 48(1):36-42. http://dx.doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671. PMid:22186719.
https://doi.org/10.5326/JAAHA-MS-5671....
, Barros 2016Barros C.S.L. 2016. Fígado, vias biliares e pâncreas exócrino, p.222-265. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro. 856p.). Gatos diagnosticados com CHN apresentavam, predominantemente, estado corporal ruim, e variação no grau de icterícia e de ascite, assim como descrito na literatura (Hirsch & Doige 1983Hirsch V.M. & Doige C.E. 1983. Suppurative cholangitis in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 182(11):1223-1226. PMid:6863138., Day 1995Day D.G. 1995. Feline cholangiohepatitis complex. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 25(2):375-385. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50032-4. PMid:7785169.
https://doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50...
, Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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). Sugere-se que ascite e a formação de desvios portossistêmicos, ocorreram em consequência da hipertensão portal em decorrência de doença hepática crônica. A hipoproteinemia, em função da insuficiência hepática, também está envolvida na formação das efusões cavitárias (Ilha et al. 2004Ilha M.R.S., Loretti A.P., Barros C.S.L., Mazzanti A. & Breitsameter I. 2004. Cirrose biliar em felinos associada à ectasia do ducto cístico e desvios portossistêmicos extra-hepáticos. Ciência Rural 34(4):1147-1153. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782004000400028.
https://doi.org/10.1590/S0103-8478200400...
). A icterícia deve-se a colestase, que ocorre pelo impedimento do fluxo dentro dos canalículos, e como consequência de lesão hepática difusa (icterícia hepática) (Barros 2016Barros C.S.L. 2016. Fígado, vias biliares e pâncreas exócrino, p.222-265. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro. 856p.).

Os fígados apresentaram variação na sua apresentação, porém, a maioria dos casos de CHL, observou fígado aumentado de tamanho, alaranjado a acastanhado, firme e com áreas esbranquiçadas multifocais na superfície capsular, que se aprofundavam no parênquima. Dados semelhantes foram descritos por diversos pesquisadores (Lucke & Davies 1984Lucke V.M. & Davies J.D. 1984. Progressive lymphocytic cholangitis in the cat. J. Small Anim. Pract. 25(5):249-260. http://dx.doi.org/10.1111/j.1748-5827.1984.tb03388.x.
https://doi.org/10.1111/j.1748-5827.1984...
, Barros 2016Barros C.S.L. 2016. Fígado, vias biliares e pâncreas exócrino, p.222-265. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro. 856p.). Hepatomegalia é um achado comum na colângio-hepatite, provavelmente decorrente do infiltrado inflamatório e é descrita por Prasse et al. (1982)Prasse K.W., Mahaffey E.A., DeNovo R. & Cornelius L. 1982. Chronic lymphocytic cholangitis in three cats. Vet. Pathol. 19(2):99-108. http://dx.doi.org/10.1177/030098588201900201. PMid:7072097.
https://doi.org/10.1177/0300985882019002...
, Sherding (2000)Sherding R.G. 2000. Feline jaundice. J. Feline Med. Surg. 2(3):165-169. http://dx.doi.org/10.1053/jfms.2000.0088. PMid:11716613.
https://doi.org/10.1053/jfms.2000.0088....
e Fragkou et al. (2016)Fragkou F.C., Adamama-Moraitou K.K., Poutahidis T., Prassinos N.N., Kritsepi-Konstantinou M., Xenoulis P.G., Steiner J.M., Lidbury J.A., Suchodolski J.S. & Rallis T.S. 2016. Prevalence and clinicopathological features of triaditis in a prospective case series of symptomatic and asymptomatic cats. J. Vet. Intern. Med. 30(4):1031-1045. http://dx.doi.org/10.1111/jvim.14356. PMid:27296565.
https://doi.org/10.1111/jvim.14356....
. O aspecto macroscópico do fígado dos casos de CHE corrobora com o descrito por Ilha et al. (2004)Ilha M.R.S., Loretti A.P., Barros C.S.L., Mazzanti A. & Breitsameter I. 2004. Cirrose biliar em felinos associada à ectasia do ducto cístico e desvios portossistêmicos extra-hepáticos. Ciência Rural 34(4):1147-1153. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782004000400028.
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, sendo caracterizado por diminuição do volume do órgão, firme à palpação e com a superfície capsular irregular, provavelmente causadas pela substituição do parênquima hepático por proliferação de tecido conjuntivo.

A CHL caracterizou-se por múltiplos agregados de linfócitos nos espaços portas, com graus variáveis de proliferação de ductos biliares e fibrose. Na CHN observou infiltrado neutrofílico nas regiões periportais, envolvendo também o epitélio e/ou lúmen dos ductos biliares. Em alguns casos, evidenciou infiltrado inflamatório misto, proliferação de ductos biliares e fibrose periportal. Nos casos de CHE, observou acentuada proliferação de tecido conjuntivo fibroso, hiperplasia e dilatação de ductos biliares, além de infiltrado inflamatório predominantemente linfoplasmocitário. As alterações microscópicas encontradas nas diferentes classificações das colângio-hepatites são descritas na literatura (Day 1995Day D.G. 1995. Feline cholangiohepatitis complex. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 25(2):375-385. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50032-4. PMid:7785169.
https://doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50...
, Ilha et al. 2004Ilha M.R.S., Loretti A.P., Barros C.S.L., Mazzanti A. & Breitsameter I. 2004. Cirrose biliar em felinos associada à ectasia do ducto cístico e desvios portossistêmicos extra-hepáticos. Ciência Rural 34(4):1147-1153. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782004000400028.
https://doi.org/10.1590/S0103-8478200400...
, Van den Ingh et al. 2006Van den Ingh T.S.G.A.M., Cullen J.M. , Twedt D.C., Van Winkle T., Desmet V.J. & Rothuizen J. 2006. Morphological classification of biliary disorders of canine and feline liver, p.61-76. In: Rothuizen J., Bunch S.E., Charles J.A., Cullen J., Desmet V., Szatmari V., Twedt D., Van den Ingh T., Van Winkle T. & Washabau R. (Eds), WSAVA Standards for Clinical and Histological Diagnosis of Canine and Feline Liver Diseases. Elsevier Saunders, Edinburgh. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-7020-2791-8.50009-5.
https://doi.org/10.1016/B978-0-7020-2791...
, Center 2009Center S.A. 2009. Diseases of the gallbladder and biliary tree. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 39(3):543-598. http://dx.doi.org/10.1016/j.cvsm.2009.01.004. PMid:19524793.
https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2009.01.0...
, Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
https://doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.0...
, Cullen & Brown 2013Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p., Cullen & Stlaker 2016Cullen J.M. & Stlaker M.J. 2016. Liver and biliary system, p.307-308. In: Maxie M.G. (Ed.), Jubb, Kennedy and Palmer’s Pathology of Domestic Animals. Vol.2. 6th ed. Elsevier, St Louis. 654p. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-7020-5318-4.00008-5.
https://doi.org/10.1016/B978-0-7020-5318...
). Barros (2016)Barros C.S.L. 2016. Fígado, vias biliares e pâncreas exócrino, p.222-265. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro. 856p. descreve que a fibrose está associada à inflamação crônica da região portal e geralmente é observada em gatos com colângio-hepatite. A hiperplasia de ductos biliares é uma resposta inespecífica a vários tipos de lesão hepática, principalmente após doenças que causam obstrução física do fluxo normal da bile.

Enterite e pancreatite foram identificadas concomitantemente com a colângio-hepatite. Estes dados estão de acordo com diversas pesquisas semelhantes, onde a frequência de enterite em gatos com colângio-hepatite variou de 34% a 83,3% (Weiss et al. 1996Weiss D.J., Gagne J.M. & Armstrong J. 1996. Relationship between inflammatory hepatic disease and inflammatory bowel disease, pancreatitis, and nephritis in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 209(6):1114-1116. PMid:8800259., Swift et al. 2000Swift N.C., Marks S.L., MacLachlan N.J. & Norris C.R. 2000. Evaluation of serum feline trypsin-like immunoreactivity for the diagnosis of pancreatitis in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 217(1):37-42. http://dx.doi.org/10.2460/javma.2000.217.37. PMid:10909444.
https://doi.org/10.2460/javma.2000.217.3...
, Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
https://doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.0...
, Twedt et al. 2014Twedt D.C., Cullen J., McCord K., Janeczko S., Dudak J. & Simpson K. 2014. Evaluation of fluorescence in situ hybridization for the detection of bacteria in feline inflammatory liver disease. J. Feline Med. Surg. 16(2):109-117. http://dx.doi.org/10.1177/1098612X13498249. PMid:23884636.
https://doi.org/10.1177/1098612X13498249...
, Fragkou et al. 2016Fragkou F.C., Adamama-Moraitou K.K., Poutahidis T., Prassinos N.N., Kritsepi-Konstantinou M., Xenoulis P.G., Steiner J.M., Lidbury J.A., Suchodolski J.S. & Rallis T.S. 2016. Prevalence and clinicopathological features of triaditis in a prospective case series of symptomatic and asymptomatic cats. J. Vet. Intern. Med. 30(4):1031-1045. http://dx.doi.org/10.1111/jvim.14356. PMid:27296565.
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) e de pancreatite em 50% a 65,2% (Weiss et al. 1996Weiss D.J., Gagne J.M. & Armstrong J. 1996. Relationship between inflammatory hepatic disease and inflammatory bowel disease, pancreatitis, and nephritis in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 209(6):1114-1116. PMid:8800259., Swift et al. 2000Swift N.C., Marks S.L., MacLachlan N.J. & Norris C.R. 2000. Evaluation of serum feline trypsin-like immunoreactivity for the diagnosis of pancreatitis in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 217(1):37-42. http://dx.doi.org/10.2460/javma.2000.217.37. PMid:10909444.
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, Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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, Twedt et al. 2014Twedt D.C., Cullen J., McCord K., Janeczko S., Dudak J. & Simpson K. 2014. Evaluation of fluorescence in situ hybridization for the detection of bacteria in feline inflammatory liver disease. J. Feline Med. Surg. 16(2):109-117. http://dx.doi.org/10.1177/1098612X13498249. PMid:23884636.
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).

A formação de tríade também foi identificada. Em outras pesquisas, a frequência dessa condição variou de 29,6% a 55,5% (Weiss et al. 1996Weiss D.J., Gagne J.M. & Armstrong J. 1996. Relationship between inflammatory hepatic disease and inflammatory bowel disease, pancreatitis, and nephritis in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 209(6):1114-1116. PMid:8800259., Swift et al. 2000Swift N.C., Marks S.L., MacLachlan N.J. & Norris C.R. 2000. Evaluation of serum feline trypsin-like immunoreactivity for the diagnosis of pancreatitis in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 217(1):37-42. http://dx.doi.org/10.2460/javma.2000.217.37. PMid:10909444.
https://doi.org/10.2460/javma.2000.217.3...
, Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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, Twedt et al. 2014Twedt D.C., Cullen J., McCord K., Janeczko S., Dudak J. & Simpson K. 2014. Evaluation of fluorescence in situ hybridization for the detection of bacteria in feline inflammatory liver disease. J. Feline Med. Surg. 16(2):109-117. http://dx.doi.org/10.1177/1098612X13498249. PMid:23884636.
https://doi.org/10.1177/1098612X13498249...
, Fragkou et al. 2016Fragkou F.C., Adamama-Moraitou K.K., Poutahidis T., Prassinos N.N., Kritsepi-Konstantinou M., Xenoulis P.G., Steiner J.M., Lidbury J.A., Suchodolski J.S. & Rallis T.S. 2016. Prevalence and clinicopathological features of triaditis in a prospective case series of symptomatic and asymptomatic cats. J. Vet. Intern. Med. 30(4):1031-1045. http://dx.doi.org/10.1111/jvim.14356. PMid:27296565.
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). Tríade foi observada em todas as classificações histológicas da colângio-hepatite, como descrita por Clark et al. (2011)Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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. Uma explicação para o maior desenvolvimento de tríade nos gatos está relacionada com as características anatômicas dessa espécie, representadas pela fusão do ducto biliar comum com o ducto pancreático maior antes de entrarem no duodeno, o que predispõe a infecção bacteriana ascendente (Cullen & Brown 2013Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p., Cullen & Stlaker 2016Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p.).

Infecções virais concomitantes com colângio-hepatite em gatos são raras (Lucke & Davies 1984Lucke V.M. & Davies J.D. 1984. Progressive lymphocytic cholangitis in the cat. J. Small Anim. Pract. 25(5):249-260. http://dx.doi.org/10.1111/j.1748-5827.1984.tb03388.x.
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, Nakayama et al. 1992Nakayama H., Uchida K., Lee S.K., Uetsuka K., Hasegawa A. & Goto N. 1992. Three cases of feline sclerosing lymphocytic cholangitis. J. Vet. Med. Sci. 54(4):769-771. http://dx.doi.org/10.1292/jvms.54.769. PMid:1391190.
https://doi.org/10.1292/jvms.54.769....
, Brain et al. 2006Brain P.H., Barrs V.R., Martin P., Baral R., White J.D. & Beatty J.A. 2006. Feline cholecystitis and acute neutrophilic cholangitis: clinical findings, bacterial isolates and response to treatment in six cases. J. Fel. Med. Surg. 8(2):91-103. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2005.09.001. PMid:16278090.
https://doi.org/10.1016/j.jfms.2005.09.0...
, Center 2009Center S.A. 2009. Diseases of the gallbladder and biliary tree. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 39(3):543-598. http://dx.doi.org/10.1016/j.cvsm.2009.01.004. PMid:19524793.
https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2009.01.0...
). Callanan et al. (1992)Callanan J.J., Thompson H., Toth S.R., Lawrence C.E., Willett B. & Jarrett O. 1992. Clinical and pathological findings in feline immunodeficiency virus experimental infection. Vet. Immunol. Immunopathol. 35(1/2):3-13. http://dx.doi.org/10.1016/0165-2427(92)90116-8. PMid:1337400.
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descreveram o desenvolvimento de colângio-hepatite, com marcada hiperplasia de ductos biliares, após infecção experimental por FIV. Uma possível explicação para a alta frequência de gatos com colângio-hepatite e infectados pelos retrovírus, é a acentuada linfopenia causada por estes, em decorrência da diminuição nos níveis de linfócitos T auxiliares (CD4+), nos quais tem um papel importante no desenvolvimento da resposta (Fighera & Graça 2016Fighera R.A. & Graça D.L. 2016. Sistema hematopoiético, p.311-405. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro . 856p.). Isso leva ao comprometimento o sistema imunológico do gato, o que causa infecções secundárias (Hartmann 2012Hartmann K. 2012. Clinical aspects of feline retroviruses: a review. Viruses 4(11):2684-2710. http://dx.doi.org/10.3390/v4112684. PMid:23202500.
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). Uma possível explicação para a maior frequência de gatos com CHN infectados pelos retrovírus, é que 85,7% dos felinos diagnosticados nessa classificação são machos e jovens, nos quais são mais suscetíveis às infecções por agentes virais imunossupressores devido ao comportamento errante e agressivo destes, pois, a transmissão dos retrovírus nessa espécie ocorre, principalmente, através da saliva, por meio de mordeduras em brigas (Fighera & Graça 2016Fighera R.A. & Graça D.L. 2016. Sistema hematopoiético, p.311-405. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro . 856p.). Deve-se considerar que esta maior frequência de gatos FIV e/ou FeLV positivos neste estudo, pode estar relacionada a população de felinos atendidos na Região Metropolitana de Porto Alegre, que provavelmente apresenta uma alta prevalência de infecções por retrovírus, sem que isto esteja relacionado com a colângio-hepatite. Em humanos, existe uma colangiopatia infecciosa em pacientes imunodeprimidos, associada ao vírus da imunodeficiência humana (HIV) e de etiologia multifatorial, sendo a principal causa, as infecções secundárias (Flores & Osvaldt 2005Flores C. & Osvaldt A.B. 2005. Colangite infecciosa, p.320-324. In: Rohde L. & Osvaldt A.B. (Eds), Rotinas em Cirurgia Digestiva. Artmed, Porto Alegre. 519p.).

Escherichia coli foi identificada através da IHQ em 28,1% dos gatos, sendo que na CHL, 27,3% dos casos foram positivos, na CHN com 28,6% e CHE com 33,3%. E. coli, Enterococcus sp., Klebsiella pneumoniae, além de outras bactérias comensais intestinais, foram os principais isolados no exame bacteriológico. Estes dados corroboram com os descritos na literatura (Brain et al. 2006Brain P.H., Barrs V.R., Martin P., Baral R., White J.D. & Beatty J.A. 2006. Feline cholecystitis and acute neutrophilic cholangitis: clinical findings, bacterial isolates and response to treatment in six cases. J. Fel. Med. Surg. 8(2):91-103. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2005.09.001. PMid:16278090.
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, Wagner et al. 2007Wagner K.A., Hartmann F.A. & Trepanier L.A. 2007. Bacterial culture results from liver, gallbladder, or bile in 248 dogs and cats evaluated for hepatobiliary disease: 1998-2003. J. Vet. Intern. Med. 21(3):417-424. PMid:17552445.). Diversos pesquisadores sugerem o envolvimento da E. coli em casos de colângio-hepatite de gatos (Kaufman 1994Kaufman A.C. 1994. Infectious causes of feline hepatobiliary disease. Vet. Med. 89:869-873., Wagner et al. 2007Wagner K.A., Hartmann F.A. & Trepanier L.A. 2007. Bacterial culture results from liver, gallbladder, or bile in 248 dogs and cats evaluated for hepatobiliary disease: 1998-2003. J. Vet. Intern. Med. 21(3):417-424. PMid:17552445., Clark et al. 2011Clark J.E.C., Haddad J.L., Brown D.C., Morgan M.J., Van Winkle T.J. & Rondeau M.P. 2011. Feline cholangitis: a necropsy study of 44 cats (1986 e 2008). J. Fel. Med. Surg. 13(8):570-576. http://dx.doi.org/10.1016/j.jfms.2011.05.002.
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, Otte et al. 2012Otte C.M.A., Gutiérrez O.O., Favier R.P., Rothuizen J. & Penning L.C. 2012. Detection of bacterial DNA in bile of cats with lymphocytic cholangitis. Vet. Microbiol. 156(1/2):217-221. http://dx.doi.org/10.1016/j.vetmic.2011.10.023. PMid:22101090.
https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2011.10...
, Cullen & Stlaker 2016Cullen J.M. & Stlaker M.J. 2016. Liver and biliary system, p.307-308. In: Maxie M.G. (Ed.), Jubb, Kennedy and Palmer’s Pathology of Domestic Animals. Vol.2. 6th ed. Elsevier, St Louis. 654p. http://dx.doi.org/10.1016/B978-0-7020-5318-4.00008-5.
https://doi.org/10.1016/B978-0-7020-5318...
), porém, a visualização de bactérias no lúmen dos ductos biliares em cortes histológicos é descrita em raros casos (Lapointe et al. 2000Lapointe J.M., Higgins R., Barrette N. & Milette S. 2000. Enterococcus hirae enteropathy with ascending cholangitis and pancreatitis in a kitten. Vet. Pathol. 37(3):282-284. http://dx.doi.org/10.1354/vp.37-3-282. PMid:10810996.
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, Ilha et al. 2004Ilha M.R.S., Loretti A.P., Barros C.S.L., Mazzanti A. & Breitsameter I. 2004. Cirrose biliar em felinos associada à ectasia do ducto cístico e desvios portossistêmicos extra-hepáticos. Ciência Rural 34(4):1147-1153. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782004000400028.
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). Em dois casos, não houve crescimento bacteriano significativo nas amostras. A antibioticoterapia pode ser apontada como uma provável causa do insucesso no isolamento de micro-organismos nestes gatos. Sugere-se ainda, que pode haver ausência do agente infeccioso no sistema hepatobiliar do gato no momento da necropsia, por causa da cronicidade da lesão hepática e também, pelo avançado estágio da doença clínica (Ilha et al. 2004Ilha M.R.S., Loretti A.P., Barros C.S.L., Mazzanti A. & Breitsameter I. 2004. Cirrose biliar em felinos associada à ectasia do ducto cístico e desvios portossistêmicos extra-hepáticos. Ciência Rural 34(4):1147-1153. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782004000400028.
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).

A visualização de E. coli, através da IHQ no sistema hepatobiliar de gatos diagnosticados com colângio-hepatite associados à inflamação, sugere-se que a doença se desenvolveu por infecção bacteriana ascendente. Micro-organismos pertencentes à flora comensal do trato gastrointestinal seriam capazes de invadir a árvore biliar, provocando a inflamação. As formas linfocítica e esclerosante podem ser estágios evolutivos da doença, quando o agente infeccioso já teria sido destruído, mas mecanismos imunológicos perpetuariam a agressão ao sistema hepatobiliar (Zawie & Garvey 1984Zawie D.A. & Garvey M.S. 1984. Feline hepatic disease. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 14(6):1201-1230. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(84)50154-5. PMid:6393553.
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, Center & Rowland 1994Center S.A. & Rowland P.H. 1994. The cholangitis/cholangiohepatitis complex in the cat. Proceedings 12th Annual Am. College Vet. Intern. Med. Forum, California, p.766-771., Day 1995Day D.G. 1995. Feline cholangiohepatitis complex. Vet. Clin. N. Am., Small Anim. Pract. 25(2):375-385. http://dx.doi.org/10.1016/S0195-5616(95)50032-4. PMid:7785169.
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, Barros 2016Barros C.S.L. 2016. Fígado, vias biliares e pâncreas exócrino, p.222-265. In: Santos R.L. & Alessi A.C. (Eds), Patologia Veterinária. 2ª ed. Roca, Rio de Janeiro. 856p.). Diversos pesquisadores fornecem evidências adicionais de uma patogênese imunomediada na CHL, de maneira semelhante à colangite esclerosante primária e cirrose biliar primária em humanos (Day 1998Day M.J. 1998. Imunohistochemical characterization of the lesions of the feline progressive lymphocytic cholangitis/cholangiohepatitis. J. Comp. Pathol. 119(2):135-147. http://dx.doi.org/10.1016/S0021-9975(98)80058-3. PMid:9749358.
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, Cullen & Brown 2013Cullen J.M. & Brown D.L. 2013. Sistema hepatobiliar e pâncreas exócrino, p.453-454. In: McGavin M.D. & Donald J.F (Eds), Bases da Patologia em Veterinária. 5ª ed. Elsevier, Rio de Janeiro. 1324p.). Otte et al. (2012)Otte C.M.A., Gutiérrez O.O., Favier R.P., Rothuizen J. & Penning L.C. 2012. Detection of bacterial DNA in bile of cats with lymphocytic cholangitis. Vet. Microbiol. 156(1/2):217-221. http://dx.doi.org/10.1016/j.vetmic.2011.10.023. PMid:22101090.
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sugerem que a presença de bactérias na bile de gatos é secundária e não é a causa da CHL, pois a invasão bacteriana retrógrada pelo ducto biliar comum pode ser facilitada por dilatações e peristaltismo reduzido devido à inflamação crônica dos canais biliares.

Conclusões

A colângio-hepatite linfocítica foi a classificação histológica mais frequente, afetando principalmente gatos idosos. A forma neutrofílica foi a segunda mais frequente e acometeu predominantemente jovens. A colângio-hepatite esclerosante foi pouco observada em gatos.

Mau estado corporal, desidratação, mucosas ictéricas, efusões abdominais e torácicas, foram os principais achados macroscópicos nos gatos diagnosticados com as diferentes classificações de colângio-hepatite. Os fígados apresentaram variação na sua apresentação macroscópica, sendo que, nas formas crônicas da colângio-hepatite, observou frequentemente fígado firme, castanho, de superfície irregular e com acentuação do padrão lobular. Lesões no pâncreas e intestino foram comumente encontradas em gatos com colângio-hepatite.

A maioria dos gatos do presente estudo apresentava infecção por vírus da imunodeficiência felina e/ou vírus da leucemia felina concomitantemente com a colângio-hepatite.

Bactérias comensais do trato gastro intestinal como Escherichia coli, Enterococcus sp. e Klebsiella pneumoniae foram os principais micro-organismos isolados no exame bacteriológico.

A visualização de E. coli através da IHQ nas diferentes classificações de colângio-hepatite, sugere causa infecciosa nos casos analisados.

A colângio-hepatite deve ser incluída no diagnóstico diferencial de gatos com sinais clínicos de insuficiência hepática.

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Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    Maio 2018

Histórico

  • Recebido
    08 Mar 2017
  • Aceito
    17 Abr 2017
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