Efectos de la dexmedetomidina en conjunto con el precondicionamiento isquémico remoto en la lesión de isquemia-reperfusión renal en ratones

Resúmenes

Introducción y objetivos:

El objetivo de este estudio fue evaluar los efectos del precondicionamiento isquémico remoto mediante breve isquemia del miembro posterior unilateral en combinación con la dexmedetomidina en la lesión de isquemia-reperfusión renal por medio de histopatología e inmunoreactividad de la caspasa-3 activa en ratones.

Métodos:

28 ratones machos albinos Wistar fueron divididos en 4 grupos. Grupo I (Sham cirugía control], n =7): se realizó laparotomia y disección del pediculo renal en 65 min de anestesia y los ratones fueron observados bajo anestesia durante 130min. Grupo II (isquemia-reperfusión, n = 7): en el sexagésimo quinto minuto de anestesia, los pídiculos renales bilaterales fueron pinzados; después de 60min de isquemia, se realizaron 24h de reperfusión. Grupo III (isquemia-reperfusión + dexmedetomidina, n = 7): al quinto minuto de reperfusión, la dexmedetomidina (100 μg/kg intraperitoneal) fue administrada en el grupo con isquemia-reperfusión; la reperfusión duró 24 h. Grupo IV (isquemia-reperfusión + precondicionamiento isquémico remoto + dexmedetomidina, n=7): después de la laparotomía, se aplicaron 3 ciclos de precondicionamiento isquémico (10 min de isquemia y 10 min de reperfusión) en el miembro posterior izquierdo y después de 5 min en el grupo in.

Resultados:

Las puntuaciones de lesión histopatológica e inmunoreactividad de la caspasa-3 activa fueron significativamente menores en el grupo Sham en comparación con los otros grupos. Las puntuaciones de lesión histopatológica de los grupos III y IV fueron significativamente menores que las del grupo II (p = 0,03 y p = 0,05). La inmunorreactividad de la caspasa-3 fue significativamente menor en el grupo IV que en el grupo II (p = 0,01) y no hubo diferencia significativa entre los grupos II y III (p = 0,06).

Conclusiones:

El condicionamiento farmacológico con dexmedetomidina y precondicionamiento isquémico remoto en combinación con dexmedetomidina disminuyen de modo significativo la lesión de isquemia-reperfusión renal histomorfológicamente. El uso combinado de los 2 métodos previene la apoptosis via caspasa-3 activa.

Riñó; Lesión de isquemia-reperfusión; Dexmedetomidina; Caspasa-3; Precondicionamiento isquémico; Apoptosis

Background and objectives:

The aim of this study was to evaluate the effects of remote ischemic preconditioning by brief ischemia of unilateral hind limb when combined with dexmedetomidine on renal ischemia-reperfusion injury by histopathology and active caspase-3 immunoreactivity in rats.

Methods:

28 Wistar albino male rats were divided into 4 groups. Group I (Sham, n = 7): Laparotomy and renal pedicle dissection were performed at 65th minute of anesthesia and the rats were observed under anesthesia for 130min. Group II (ischemia-reperfusion, n = 7): At 65th minute of anesthesia bilateral renal pedicles were clamped. After 60 min ischemia 24 h of reperfusion was performed. Group III (ischemia-reperfusion + dexmedetomidine, n = 7): At the fifth minute of reperfusion (100 μg/kg intra-peritoneal) dexmedetomidine was administered with ischemia-reperfusion group. Reperfusion lasted 24 h. Group IV (ischemia-reperfusion + remote ischemic preconditioning + dexmedetomidine, n = 7): After laparotomy, three cycles of ischemic preconditioning (10 min ischemia and 10 min reperfusion) were applied to the left hind limb and after 5 min with group III.

Results:

Histopathological injury scores and active caspase-3 immunoreactivity were significantly lower in the Sham group compared to the other groups. Histopathological injury scores in groups III and IV were significantly lower than group II (p = 0.03 and p = 0.05). Active caspase-3 immunoreactivity was significantly lower in the group IV than group II (p = 0.01) and there was no significant difference between group II and group III (p = 0.06).

Conclusions:

Pharmacologic conditioning with dexmedetomidine and remote ischemic preconditioning when combined with dexmedetomidine significantly decreases renal ischemia- reperfusion injury histomorphologically. Combined use of two methods prevents apoptosis via active caspase-3.

Kidney; Ischemia-reperfusion injury; Dexmedetomidine; Caspase-3; Ischemic preconditioning; Apoptosis

Justificativa e objetivos:

Avaliar os efeitos do pré-condicionamento isquêmico remoto, mediante breve isquemia de membro posterior unilateral, em combinação com dexmedetomidina em lesão de isquemia-reperfusão renal por meio de histopatologia e imunorreatividade da caspase-3 ativa em ratos.

Métodos:

Foram divididos em quatro grupos 28 ratos machos albinos Wistar. Grupo I (Sham cirurgia controle], n = 7): laparotomia e dissecção do pedículo renal foram feitas em 65 minutos de anestesia e os ratos foram observados sob anestesia por 130 minutos. Grupo II (isquemia-reperfusão, n = 7): no 65° minuto de anestesia, os pedículos renais bilaterais foram pinçados; após 60 minutos de isquemia, foi feita reperfusão de 24 horas. Grupo III (isquemia-reperfusão + dexmedetomidina, n = 7): no quinto minuto de reperfusão, dexmedetomidina (100 mg/kg intraperitoneal) foi administrada ao grupo com isquemia-reperfusão. A reperfusão durou 24 horas. Grupo IV (isquemia-reperfusão + pré-condicionamento isquêmico remoto + dexmedetomidina, n = 7): após a laparotomia, três ciclos de pré-condicionamento isquêmico (10minutos de isquemia e 10minutos de reperfusão) foram aplicados no membro posterior esquerdo e depois de cincominutos ao grupo III.

Resultados:

Os escores de lesão histopatológica e imunorreatividade da caspase-3 ativa foram significativamente menores no grupo Sham em comparação com os outros. Os escores de lesão histopatológica dos grupos III e IV foram significativamente menores do que os do II (p = 0,03 e p = 0,05). A imunorreatividade da caspase-3 foi significativamente menor no grupo IV do que no II (p = 0,01) e não houve diferença significante entre os grupos II e III (p = 0,06).

Conclusões:

O condicionamento farmacológico com dexmedetomidina e o pré-condicionamento isquêmico remoto em combinação com dexmedetomidina diminuem de modo significante a lesão de isquemia-reperfusão renal histomorfologicamente. O uso combinado dos dois métodos previne a apoptose via caspase-3 ativa.

Rim; Lesão de isquemia-reperfusão; Dexmedetomidine; Caspase-3; Pré-condicionamento isquêmico; Apoptose

Introducción

La lesión renal aguda isquémica es un síndrome clínico con altas tasas de mortalidad y morbilidad. Debido a la gran demanda de energía y a la compleja red microvascular renal, el rinón es altamente sensible a la lesión de isquemia-reperfusión (IR)¹–⁴. Los mecanismos de la lesión de IR renal son multifactoriales, incluyendo hipoxia, daños a los radicales libres y respuestas inflamatorias sistémicas⁵. La reperfusión isquémica del tejido renal induce condiciones celulares complejas y la muerte de las células renales debido a la apoptosis⁶.

La apoptosis es una forma de muerte celular programada genéticamente. Dos vías principales desempeñan un papel en la apoptosis epitelial. La primera, conocida como la via extrínseca o de receptor de muerte, está estimulada por moléculas de la familia TNF-α conectada al ligando CD95 (ligando Fas = CD95) a través de signos extracelulares. Esa vía se conecta a la segunda vía, la vía intrínseca o mitocondrial, a través de la activación de la caspasa-3, que incluye el citocromo c y la familia de proteínas Bcl-2, y en su conjunto aumentan la apoptosis⁷.

La apoptosis de células tubulares renales es el resultado de una lesión renal y un importante contribuyente de la fisiopatología de la IR. Tanto la inflamación como la apoptosis coexisten en la lesión de IR renal. Durante la hipoxia, la actividad de la caspasa aumenta como resultado de la acumulación intracelular de Ca²⁺. La caspasa se hace activa en los tejidos isquémicos y es un indicador de muerte celular⁸. Estas alteraciones, que pueden observarse en células tubulares, pueden causar la pérdida de los bordes en cepillo de las células tubulares proximales y escaparse desde la membrana basal de las células hacia la luz tubular, con la eventual obstrucción del túbulo⁹,¹⁰.

Entre los métodos usados para reducir los efectos de la lesión de IR, el precondicionamiento isquémico remoto (PCIR) y el condicionamiento farmacológico son los que se usan más a menudo¹¹. En la revisión de la literatura en lengua inglesa no encontramos ningún estudio de modelo de IR experimental que investigase los efectos del uso del condicionamiento farmacológico con la dexmedetomidina administrada en combinación con PCIR.

El objetivo de este estudio experimental fue investigar histopatológicamente los efectos renales del PCIR unilateral administrado en combinación con la dexmedetomidina en la extremidad inferior y evaluar la inmunorreactividad de la caspasa-3 activa en modelo de IR renal en ratones.

Materiales y métodos

En total se utilizaron 28 ratones adultos machos, albinos Wistar, con un peso de 250-300g. Al comienzo de la investigación los ratones se mantuvieron en temperatura ambiente (21-22 °C) y con una humedad relativa del 40-60% en un ciclo de claro/oscuro (12/12 h) y alimentados con una dieta estándar de pienso y agua ad libitum. Después de la aprobación por parte del Comité de Ética en Experimentación Animal de la institución, el estudio fue realizado en el Laboratorio Multidisciplinario de Experimentación Animal. La anestesia se suministró con cetamina (50 mg/kg) y clorhidrato de xilazina (10mg/kg) y administrada por vía intraperitoneal (IP). Después de la anestesia, los animales fueron divididos en 4 grupos.

• Grupo I (Sham, n = 7). Después de la laparotomia, los pídiculos renales derecho e izquierdo fueron expuestos en el minuto 65 de la anestesia, y los ratones se mantuvieron bajo anestesia durante 130 min sin ninguna otra intervención.

• Grupo II (IR, n = 7). Después de 60 min de isquemia, el pinzamiento fue retirado y la reperfusión de los riñones se permitió por 24 h.

• Grupo III (IR+ dexmedetomidina, n = 7). Después de 60 min de isquemia, el pinzamiento fue retirado y se administraron 100 μg/kg de dexmedetomidina (Precedex 100 μg/2ml, Abbott Laboratories, IL, EE. UU.) por vía IP, y la reperfusión de los riñones se permitió por 24 h.

• Grupo IV (IR+ PCIR + dexmedetomidina, n = 7). Enseguida a la laparotomía, después de 5 min de PCIR y 60min posteriores de isquemia renal, el pinzamiento fue retirado y se administraron 100 μg/kg de dexmedetomidina (Precedex 100μg/2ml, Abbott Laboratories). Finalmente, se realizaron 24h de reperfusión (fig. 1).

Figura 1
Representación esquemática del protocolo experimental. D, dexmedetomidina; I, isquemia; R, reperfusión.

Quedó estipulado que se expondrían los pídiculos renales en el Grupo I y se iniciaría la isquemia en el minuto 65 de la anestesia en los grupos II y III para sincronizar todos los grupos para el tiempo de precondicionamiento del grupo IV y estandarizar el inicio de los procedimientos. Las muestras de tejido se obtuvieron después de 24 h de reperfusión.

Para proteger los ratones de la hipotermia, la mesa de operación fue calentada con un calentador de lámpara durante el estudio y la temperatura corporal se midió con una sonda rectal y se mantuvo a 3.737,5°C. Una solución salina por vía subcutánea a cada hora, una dosificación de 3 ml/kg, fue administrada para prevenir la deshidratación. Durante el tiempo de espera el abdomen se cerró con un tapón de gasa estéril húmeda y con una pinza quirúrgica. En todos los grupos, el riñón izquierdo fue retirado bajo anestesia para análisis histomorfológico, y los ratones fueron sacrificados por sangría de punción cardíaca al término del estudio. Los riñones fueron colocados en formol taponado al 10% y mojados en parafina, cortados en láminas de 4-5μm y coloreados con hematoxilina y eosina para el estudio histológico con el uso de un microscopio de luz.

Modelo de isquemia-reperfusión renal

Los pedículos renales bilaterales fueron expuestos después de la laparotomía. La isquemia renal total de los pedículos renales bilaterales se mantuvo con pinzamiento microvascular atraumático. La oclusión adecuada fue confirmada por la falta de pulsación en los pedículos renales y por la palidez de los riñones. Después del periodo isquémico, las pinzas microvasculares fueron retiradas y se inició la reperfusión.

Modelo de precondicionamiento isquémico remoto

Para el efecto del torniquete del PCIR se emplearon un método que mostró ser eficaz por cintilografía de perfusión y un medidor de láser¹²,¹³. Para esa finalidad, el miembro posterior izquierdo del ratón fue amarrado con una tira elástica (1 cm de ancho y 30 cm de largo) en la ingle, aplicando presión alrededor. Se realizaron 3 ciclos de 10 min de isquemia, seguidos por 10min de reperfusión (65min en total). La interrupción del flujo sanguíneo se confirmó con el uso de un medidor de la corriente del láser (láser Flo BPM2, Vasamedic, EE. UU.).

Evaluación histomorfológica de tejido renal

Las secciones de tejido renal después del IR fueron calculadas por microscopia de luz por dos histólogos «ciegos» para las designaciones de los grupos de animales, que investigaron las alteraciones estructurales de los túbulos proximales (atrofia tubular, pérdida del borde tubular en cepillo, vacuolización, dilatación tubular, formación de cálculo), la infiltración de células mononucleares (CMN), las alteraciones intersticiales estructurales, la morfologia del corpúsculo renal y las células en necrosis y apoptosis.

La clasificación de las imágenes transversales se hizo por medio de puntuaciones semicuantitativas en cuanto a lesiones tubulointersticiales de la siguiente forma: 0 = ninguna lesión; 1=0-25%; 2 = 26-45%; 3=46-75%, y 4 = 76-100%¹⁴.

Métodos de inmunohistoquímica

Los tejidos renales fueron colocados en formol tamponado al 10%, y después de los procedimientos histológicos de rutina fueron mojados en parafina y seccionados en cortes de 3 μm de espesor con un micrótomo y recolectados en láminas revestidas con poli-L-lisina.

Las muestras fueron almacenadas en un horno a 60°C durante 12h. Enseguida, un anticuerpo monoclonal anticaspasa-3 especifico para ratones (RB-10287-R7 LabVision) se usó para calcular la inmunorreactividad anticaspasa-3.

La actividad de la peroxidasa endógena fue bloqueada usando una solución de peróxido de hidrógeno al 3% en alcohol. Las secciones de lisina fueron tratadas con el anticuerpo anticaspasa-3 a 4 °C durante la noche y enseguida incubadas con un anticuerpo secundario biotinilado durante 30min. Después de la aplicación del kit Vector Elite ABC (Vector Laboratories Inc., Burlingame, EE. UU.), el complejo biotina-avidina-peroxidasa para el anticuerpo fue visualizado usando el 0,02% de solución de 3,3'-diaminobenzidina. Después de la contracoloración con hematoxilina de Mayer, se procedió al análisis de la imagen.

La tasa de coloración positiva se calculó usando un indicador de puntuación semicuantitativo (1-4) para la densidad y la distribución.

Criterios de exclusión

Los ratones que necesitaron reanimación fueron excluidos del estudio.

Análisis estadístico

Para los análisis estadísticos se usó el programa SPSS (versión 15,0; SPSS, Chicago, IL, EE. UU.). El análisis de varianza de Kruskal-Wallis se hizo para analizar los datos. El test U de Mann-Whitney fue usado para las comparaciones pareadas de los grupos. Todos los datos se expresaron en media ±desviación estándar. Los valores de p<0,05 fueron considerados como indicadores de significación estadística.

Resultados

En total, 28 ratones fueron incluidos en el grupo de estudio. Un ratón del grupo IV murió durante el período de reperfusión y quedó excluido del estudio. Las puntuaciones histomorfológicas e inmunohistoquímicas de las lesiones de los grupos de estudio aparecen en las tablas 1 y 2.

Tabla 1
Resultados histomorfológicos de las lesiones de los grupos

	CMN	AETP	AG	ETL
Grupo I (n = 7) Sham	0,14 ± 0,38	0,0 ± 0,0	0,0 ± 0,0	0,28 ± 0,48
Grupo II (n = 6) IR	1,0 ± 0,63	1,67 ± 0,82	0,50 ± 0,55	3,83 ± 2,22
Grupo III (n =7) IR + Dex	0,28 ± 0,49	0,71 ± 0,75	0,0 ± 0,0	1,42 ± 1,27
Grupo IV (n = 7) IR + PCIR + Dex	0,28 ± 0,49	0,71 ± 0,75	0,0 ± 0,0	1,42 ± 1,61
pa	0,04b	0,00b	0,01b	0,008b

• AETP, alteraciones estructurales de los túbulos proximales; AG, alteraciones glomerulares; CMN, infiltración de células mononucleares; ETLI, puntuación total de las lesiones histológicas.
• Datos expresados como media ± DE.
• ^a
  Test de Kruskal-Wallis.
• ^b
  p<0,05; diferencia significativa entre los grupos.

Tabla 2
Resultados inmunohistoquímicos de las lesiones de los grupos

Grupo I (n = 7) Sham	0,85 ± 0,37
Grupo II (n = 6) IR	2,50 ± 0,54
Grupo III (n = 7) IR + Dex	1,71 ± 0,75
Grupo IV (n = 7) IR + PCIR + Dex	1,42 ± 0,53

• Datos expresados como media ± DE.

Puntuaciones histomorfológicas de las lesiones renales

Infiltración de CMN. Las puntuaciones histomorfológicas de las lesiones del grupo Sham fueron significativamente menores que los del grupo IV (p = 0,01). Las puntuaciones de las lesiones del grupo IR fueron significativamente mayores que las de los grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex (p = 0,04y p = 0,04, respectivamente; fig. 2).

Figura 2
Puntuaciones de infiltración de células mononucleares detectada por examen histomorfológico renal. *Comparación del grupo IR con el grupo Sham (p = 0,01). ^≠Comparación de los grupos IR + Dex y IR + PCIR + Dex con el grupo IV (p < 0,05).

Alteraciones estructurales de los túbulosproximales. Las puntuaciones histomorfológicas de las lesiones del grupo Sham fueron significativamente menores que las de los grupos IR, IR + Dex e IR + PCIR + Dex (p< 0,01, p = 0,02 y p = 0,02, respectivamente). El grupo IR obtuvo puntuaciones significativamente más elevadas que los grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex (p = 0,05 y p = 0,05, respectivamente), mientras que no se registró diferencia significativa entre los grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex (p = 1,00; fig. 3).

Figura 3
Puntuaciones de alteración de lesión tubular detectada por el examen histomorfológico renal. *Comparación de los grupos IR, IR + Dex y IR + PCIR + Dex con el grupo Sham (p < 0,01). ^≠Comparación del grupo IR con los grupos IR + Dex y IR + PCIR + Dex (p = 0,05).

Alteraciones glomerulares. Las puntuaciones histomorfológicas de las lesiones del Sham fueron significativamente menores que las del grupo IV (p = 0,04). El grupo IR obtuvo puntuaciones significativamente más elevadas que los grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex (p = 0,04 y p = 0,04, respectivamente), mientras que no se registró diferencia significativa entre los grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex (p = 1,00; fig. 4).

Figura 4
Puntuaciones de alteración de lesión glomerular detectada por histomorfología renal. *Comparación del grupo IR con o grupo Sham (p < 0,01). ^≠Comparación del grupo IR con os grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex (p < 0,05).

Puntuación histopatológica total de las lesiones. La puntuación histomorfológica total de las lesiones del grupo Sham fue significativamente menor que la del grupo IV (p = 0,003). La comparación del grupo IR con los grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex mostró puntuaciones significativamente más elevadas que las del grupo IR (p = 0,03 y p = 0,05, respectivamente), mientras que no se registró diferencia significativa entre los grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex (p = 0,79; fig. 5).

Figura 5
Puntuación histopatológico total de las lesiones detectadas por histomorfología renal. *Comparación del grupo IR con o grupo Sham (p < 0,01). ^≠Comparación del grupo IR con los grupos IR + Dex y IR + PCIR + Dex (p < 0,05).

Puntuación inmunohistoquímica de las lesiones. Las puntuaciones de la coloración inmunohistoquímica del grupo IR fueron significativamente más elevadas que las del grupo Sham (p = 0,001). No hubo diferencia estadisticamente significativa entre los grupos IR e IR + Dex (p = 0,06).

En la comparación de las puntuaciones de las lesiones entre los grupos IR + PCIR + Dex e IR, las del grupo IR + PCIR + Dex fueron significativamente menores (p = 0,01). Las puntuaciones de las lesiones de los grupos IR + Dex e IR + PCIR + Dex no fueron diferentes (p = 0,47; fig. 6).

Figura 6
Puntuación de la inmunohistoquímica renal. *Comparación del grupo IR con el grupo Sham (p < 0,01). ^≠Comparación del grupo IR con los grupos IR + Dex y IR + PCIR + Dex (p = 0,01).

Ninguna infiltración celular o pérdida de borde en cepillo se observó en las secciones del grupo Sham (fig. 7A, B). Sin embargo, en el grupo IV observamos una infiltración peritubular de CMN, más prominente en el área cortical, y una pérdida de borde en cepillo de las células del túbulo proximal, atrofia tubular, dilatación tubular y vacuolización. En algunos de los túbulos se observó la acumulación de material proteico, junto con la formación de castas y desechos celulares en la luz de los túbulos (fig. 8A, B).

Figura 7
Secciones (A y B) del grupo Sham. D, túbulo distal, borde en cepillo; G, glomerular; P, túbulo proximal.

Figura 8
Secciones (A y B) del grupo IR. D, túbulo distai; (→) acumulación de material proteico en los túbulos; (⋆) vertido para dentro de la luz de células epiteliales tubulares; L, glomerular; P, túbulo proximal.

En el grupo IR + Dex hubo una pérdida del borde en cepillo de las células tubulares, atrofia tubular, dilatación tubular, vacuolización y acumulación de material proteico y desechos celulares en la luz de los túbulos, aunque en menor cantidad que en el grupo IR (fig. 9A, B).

Figura 9
Secciones (A y B) del grupo IR + Dex. D, túbulo distai; (➩) acumulación de material proteico que será reducido en comparación con los otros grupos; G, glomerular; P, túbulo proximal.

Comparado con el grupo IR, el grupo IR + PCIR + Dex presentó atrofia tubular, dilatación tubular, vacuolización, acumulación de material proteico y desechos celulares en la luz de los túbulos, como también pérdida del borde en cepillo de las células tubulares, aunque en menor cantidad. Sin embargo, en comparación con el grupo IR+ Dex, las alteraciones tubulares fueron menos acentuadas (fig. 10A, B).

Figura 10
Secçiõnes (A y B) del grupo IR + PCIR +Dex. D, túbulo distai; (←) acumulación de material proteico que será reducido en comparación con los otros grupos; G, glomerular; P, túbulo proximal.

La intensidad de la coloración inmunohistoquímica fue mayor en las células positivas para caspasa-3 activa en el grupo IR en comparación con el grupo Sham, mientras que fue menor en las células de los grupos IR + Dex e IR+ PCIR+ Dex comparados con el grupo IR. La intensidad de la coloración de las células positivas para caspasa-3 activa del grupo IR+ PCIR+ Dex fue menor en comparación con el grupo IR + Dex (fig. 11).

Discusión

La insuficiencia renal aguda que se da como resultado de la isquemia puede estar siendo causada por la hipotensión, por la hipovolemia y por la hipoperfusión secundaria a la deshidratación, como también la lesión de IR en cirugías mayores, como las cardiotorácicas, vasculares y trasplantes¹⁵–¹⁸. La lesión de IR es una de las causas más comunes de insuficiencia renal aguda en el perioperatorio¹⁸.

Métodos como el PCIR y el condicionamiento farmacológico con dexmedetomidina, que son usados para prevenir o tratar lesiones de IR renal, han mostrado efectos positivos en la lesión de IR en muchos estudios anteriores¹¹.

En una investigación en la literatura no encontramos ningún estudio que calculase los efectos de la combinación de esos 2 métodos en lesión de IR. Este estudio experimental, usando un modelo de ratón de IR renal, comparó los efectos del uso de dexmedetomidina pura o PCIR en combinación con la dexmedetomidina contra la apoptosis renal, evaluando por medio de la inmunoreactividad de la caspasa-3 y puntuaciones histopatológicos de las lesiones.

De acuerdo con nuestros resultados, el uso de la dex-medetomidina pura o en combinación con PCIR redujo significativamente la infiltración de CMN, las alteraciones glomerulotubulares y la puntuación total de lesiones de IR. En ambos grupos, todas las puntuaciones, con excepción de las alteraciones tubulares (p = 0,05), fueron parecidas a las puntuaciones del grupo Sham. Hubo una reducción significativa de la inmunoreactividad de la caspasa-3 en el grupo dexmedetomidina en combinación con PCIR, lo que sugiere que la apoptosis, la principal vía de lesión IR, puede ser reducida o prevenida con el uso de esa combinación.

Varios períodos de isquemia y reperfusión fueron usados en modelos de lesión de IR renal en muchos estudios¹⁹–²². El período isquémico crítico depende del órgano, y de la isquemia con duración superior a 5 min para el cerebro y a 15-20 min para el hígado y el riñón, que puede causar muerte neuronal e infarto²³. Williams et al.²⁰ investigaron los efectos de la lesión de IR en muestras de sangre y tejidos obtenidos posreperfusión después de 45 min de isquemia renal, relatando que la lesión de IR renal se dio más tempranamente en la cuarta hora y alcanzó el pico en la vigésima cuarta hora.

Los efectos protectores de los órganos de la dexmedetomidina contra la lesión de IR fueron demostrados en varios tejidos, como el cerebro, el corazón y los riñones²⁴–²⁷. Los efectos de la dexmedetomidina en la lesión de IR renal en ratones fueron investigados por Kocoğlu et al.¹⁹. Esos investigadores relataron una disminución significativa en las puntuaciones histopatológicos de lesión, detectadas en el minuto 45 después de la administración IP de 100 μg/kg de dexmedetomidina al inicio de la reperfusión. En nuestro estudio, con la misma dosis de dexmedetomidina administrada al inicio de la reperfusión se obtuvo un efecto renoprotector evidenciado por reducciones significativas de las puntuaciones histológicas de las lesiones. Ese efecto renoprotector se halló no solo durante el período inicial después de la lesión de reperfusión, sino que permaneció hasta la vigésima cuarta hora, que fue considerada el pico de la lesión de IR²⁰.

Figura 11
Imágenes seccionales coloradas de la caspasa-3 en la inmunohistoquímica de los grupos experimentales Sham (A), IR (B), IR + Dex (C) y IR + PCIR + Dex (D). ➩: la inmunocoloración de la caspasa-3 activa indica células epiteliales positivas en el túbulo proximal. (C y D) Secciones de inmunocoloración de la caspasa-3 activa positiva observada en las células epiteliales del túbulo proximal, disminuida en el grupo B.

Aunque el mecanismo subyacente al efecto protector de la dexmedetomidina en IR renal no sea claro, se considera que la dexmedetomidina aumenta el flujo sanguíneo renal y la filtración glomerular, reduciendo así la liberación de noradrenalina²⁸.

Villela et al.²⁹ relataron que la administración de dexmedetomidina a bajas dosis en perros anestesiados redujo la osmolaridad urinaria y el nivel plasmático de vasopresina y causó la diuresis de agua libre. En pacientes que no tenian enfermedad renal pero que fueron sometidos a la cirugía torácica, al administrar una infusión de dexmedetomidina Frumento et al.³⁰ relataron una mejoria de la función renal, inclusive del flujo urinario y de la filtración glomerular en el periodo postoperatorio.

Uno de los mecanismos más probables de la acción de la dexmedetomidina es proteger el riñón al inhibir la respuesta al estrés quirúrgico y prevenir la vasoconstricción mediada por el sistema adrenérgico³¹–³⁴. Ese mecanismo de acción también puede aumentar la vasodilatación arterial renal a través de efectos vasculares directos¹⁹. Existe una comunicación de que PKC desempena un papel importante en el precondicionamiento isquémico y abre los canales de K+ dependientes de ATP mitocondrial y sarcolemático al estimular las vías de transducción intracelular, induciendo a la síntesis de proteínas celulares protectoras. En un estudio de las vías alternativas de transducción de signos, los agonistas del receptor alfa-2B han demostrado estimular la actividad de PKC y la producción de trifosfato de inositol en células de túbulos colectores renales distales, lo que sugiere que los agonistas alfa-2 imitan la protección celular mimica por PCI³⁵,³⁶. Gu et al.¹⁸ investigaron el mecanismo de acción de la dexmedetomidina in vitro con el cultivo de células humanas estabilizadas del túbulo proximal renal, privadas de oxígeno y glucosa. Los investigadores relataron tanto un aumento significativo de la expresión de fosfo-Akt en un cultivo de células tubulares después del tratamiento con dexmedetomidina, dependiente de la dosis, como un efecto del adrenorreceptor alfa-2. La vía fosfo-Akt garantiza la viabilidad celular al inhibir las vías de apoptosis intrinsecas controladas por caspasa a través de la fosforilación de la Bcl-2 pro-apoptótica, lo que desencadena la muerte celular y el aumento de las expresiones de Bcl-2 y Bcl-XL antiapoptóticas.

El efecto neuroprotector de la dexmedetomidina fue relatado como siendo el resultado de un aumento de las expresiones de Bcl-2 y Mdm-2 antiapoptóticas; ese aumento ha sido asociado a una reducción de los niveles de caspasa-3 y Bax³⁷ proapoptóticas. La vía Akt es esencial para la recuperación de IR renal. En este estudio, como un indicador de apoptosis, se calculó la inmunoreactividad de la caspasa-3. La activación de la caspasa-3 es el paso final de la apoptosis, que es común a las 2 principales vías de apoptosis y un indicador definitivo de muerte celular. La administración de dexmedetomidina mostró disminuir la inmunoreactividad de la caspasa-3 activa, pero no de modo significativo (p = 0,06) en comparación con la lesión de IR.

Esa diferencia estadísticamente no significativa puede ser explicada por el pequeño número de sujetos del estudio. El precondicionamiento isquémico es un método aplicado mecánica o farmacológicamente antes de la isquemia del órgano objeto para reducir el nivel posterior de la lesión de IR. El objetivo del precondicionamiento isquémico es aplicar la isquemia y la reperfusión de órganos objeto en cortos intervalos de tiempo, para garantizar que el(los) órgano(s) objeto(s) pueda(n) tolerar bien la isquemia. La gran demanda de energia y la intensa red microvascular de los riñones los hacen vulnerables a la lesión de IR, que es considerada una de las principales causas de lesión renal en la estenosis de arteria renal y cirugía microvascular renal. La lesión de IR renal es la principal causa de morbimortalidad cardiovascular y está asociada con el atraso de la función del injerto postrasplante y con la aparición de lesión renal en cirugía cardíaca y aórtica y también con la lesión renal poschoque¹–⁴,³⁸,³⁹.

Estudios tanto experimentales como clinicos en la literatura muestran que el PCI de órgano distante puede proteger el rinón⁴⁰,⁴¹. Similarmente a nuestro estudio, Wever et al.⁴⁰ investigaron el efecto del precondicionamiento isquémico derecho (PCID) en la extremidad posterior en la lesión de IR renal. En contraste, esos autores compararon el efecto de la administración de PCID, continuamente o periódicamente, y también en una o 2 extremidades. Aunque hayan realizado 3 ciclos de PCID, los investigadores usaron periodos I/R de 4/4min e investigaron los eventuales efectos en el minuto25 de isquemia. Los autores relataron que la expresión de la molécula-1, indicando lesión renal y tubular renal, disminuyó significativamente en el grupo con 3 ciclos de I/R. Además, esa protección no se asoció a la adenosina, uno de los elementos-clave en la lesión de IR. El mecanismo subyacente del PCID y sus vías de transducción todavia no han sido completamente elucidados. Ambas vías de origen neural y transmisores bioquimicos pueden desempenar un papel en el mecanismo del PCID⁴². Esos mecanismos pueden variar, dependiendo del órgano objeto y del protocolo de precondicionamiento aplicado. En los métodos de isquemia miocárdica que usaron PCID renal, la expresión de la proteina NF-κB seguida por la abertura de los canales de K+/ATP fue considerada importante⁴³.

Aunque la lesión de IR renal sea un problema clinico común e importante, las estrategias para reducir la lesión de IR son insuficientes y se requieren nuevos tratamientos. En la literatura no existen informes sobre la protección farmacológica y mecánica en la lesión de IR renal en ratones.

Así, 2 métodos diferentes fueron usados en las lesiones de IR renal en ratones: la dexmedetomidina, ampliamente relatada como eficaz, y el PCID, que demostró ser eficaz en algunos estudios¹¹, fueron combinados y comparados. De forma similar a la dexmedetomidina, el uso combinado de dexmedetomidina y PCID impidió la lesión histopatológica y mejoró las puntuaciones de la lesión de IR, excepto en las puntuaciones de alteraciones tubulares, para niveles próximos al grupo Sham. Al mismo tiempo, la disminución significativa de la inmunoreactividad de la caspasa-3, en comparación con el grupo IR, sugiere que el uso combinado de dexmedetomidina y PCID puede prevenir la apoptosis. El uso de dexmedetomidina pura disminuyó la inmunorreactividad de la caspasa-3 activa, aunque no de modo significativo, lo que nos indica que esos 2 métodos trabajan por medio de vías similares. Esos 2 métodos de protección pueden aumentar el efecto uno del otro.

En nuestro estudio, usamos xilazina, un agente anestésico con actividad alfa-2-agonista, y la cetamina⁴², que sugirieron tener efectos negativos sobre la lesión de IR. Las puntuaciones histopatológicas y la inmunoreactividad de la caspasa-3 activa fueron normales en el grupo Sham, indicando que la cetamina no tuvo un efecto negativo sobre nuestros resultados.

Nosotros no mostramos el efecto aislado del PCID en la apoptosis, que desempena un papel fundamental en el mecanismo de la lesión de IR, lo que constituye una limitación del presente estudio. Otros factores limitantes fueron la no evaluación del estrés oxidativo y de los mediadores inflamatorios, que también son los responsables de la lesión IR y de la vía neurogénica.

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Fechas de Publicación

• Publicación en esta colección
  Nov-Dec 2014

Histórico

• Recibido
  04 Jul 2013
• Acepto
  02 Ene 2014