Acessibilidade / Reportar erro

Evaluación in vitro de antagonistas contra patógenos de fruto de guanábana (Annona muricataL.)en Nayarit, México

In vitro evaluation of antagonists against soursop fruit pathogens (Annona muricata L.) in Nayarit, Mexico

Resumen

En Nayarit, México, la producción de guanábana es afectada por los patógenos de fruto Pestalotiopsis sp. y Colletotrichum gloeosporioides que provocan pudrición seca y Lasiodiplodia pseudotheobromae pudrición blanda. En el presente estudio, se evaluó el antagonismo in vitro de tres especies de Streptomyces, tres de Trichoderma y tres de Bacillus. Las cepas de Trichoderma mostraron diferente inhibición en los patógenos evaluados, Trichoderma longibrachiatum mostró el mayor PICR, que fueron de 60.45, 59.33 y 57.9 al confrontarse contra C. gloeosporioides, Pestalotiopsis sp., y L. pseudotheobromae, respectivamente. En el caso de las bacterias, el mayor PICR fue de 58.22 % con B. methylotrophicus contra Pestalotiopsis sp. Las cepas de Streptomyces fueron las más eficaces y podrían estudiarse en futuras investigaciones sobre el control biológico de patógenos de fruto, ya que ejercieron el 100 % de inhibición excepto S. viridochromogenes que presentó un porcentaje de inhibición de crecimiento radial (PICR) de 88.3 % contra Lasiodiplodia pseudotheobromae.

Palabras clave:
Control biológico; antagonismo; fitopatógeno; confrontación

Abstract

In Nayarit, Mexico, soursop production is affected by the pathogens of Pestalotiopsis sp. and Colletotrichum gloeosporioides that cause dry rot and Lasiodiplodia pseudotheobromae soft rot. In the present study, the in vitro antagonism of three species of Streptomyces, three of Trichoderma and three of Bacillus were evaluated. The Trichoderma strains showed different inhibition in the pathogens evaluated, Trichoderma longibrachiatum showed the highest PIRG in vitro, which was 60.45, 59.33 and 57.9 when confronted against C. gloeosporioides, Pestalotiopsis sp., and L. pseudotheobromae, respectively. The bacteria showed lower PIRG than the fungi. B. methylotrophicus exhibited the highest capacity of inhibition of the experiment with 58.22 % of PIRG against Pestalotiopsis sp. The Streptomyces strains were the most effective and could be studied in future researches on the biological control of fruit pathogens, since they exerted 100 % inhibition except S. viridochromogenes that presented a percentage of inhibition of radial growth (PIRG) of 88.3 % against Lasiodiplodia pseudotheobromae.

Index terms
Biological control; antagonism; phytopathogen; confrontation

Introduction

La guanábana (Annona muricata L.) se produce en diez Estados de México, principalmente en Nayarit (2 529 ha y 21 810 t) (SIAP, 2017 SIAP - Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. Anuario estadístico de la producción agrícola. Disponível em: https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola/. Acesso em: 02. jun. 2017.
https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola/...
). Sin embargo, su producción es afectada por enfermedades fúngicas, las cuales perjudican su fisiología y por ende su rendimiento (JIMÉNEZ, 2017 JIMÉNEZ, D. R. Las enfermedades de las plantas: Impactos, amenazas y control. Boletín de la Real Academia de Córdoba, Córdoba, v.166, p.111-130, 2017. ). La calidad del fruto en otros países se puede afectar por Fusarium chlamydosporum Wollenweber y Reinking, Colletotrichum acutatum J. H. Simmond, C. gloeosporioides (Penz) Penz. y Sacc. (ALBERTO; OTANES, 2016 ALBERTO, R. T.; OTANES A. T. Morphological and molecular identification and fungicide sensitivity assay of pathogens attacking guyabano (Annona muricata) in Philippines. Plant Pathology e Quarantine, Chiangi Rai, v.6, n.1, p.60-79, 2016. ), Penicillium sp., Rhizopus stolonifer (Ehrenb.) Vuill. y Aspergillus niger P.E.L. van Tieghem (OKIGBO; OBIRE, 2009 OKIGBO, R.; OBIRE, O. Mycoflora and production of wine from fruits of soursop (Annona muricata L.). International Journal of Wine Research, Auckland, v.1, p.1-9, 2009. ). Para Nayarit, México se ha reportado a Pestalotiopsis sp. y C. gloeosporioides como causantes de la pudrición seca y Lasiodiplodia pseudotheobromae A.J.L. Phillips, A. Alves e Crous como el agente causal de la pudrición blanda de fruto de A. muricata (CAMBERO et al. 2019 CAMBERO, A. C.; LUNA, E. G.; RIOS, V. C.; DIAZ, H.; RODRÍGUEZ, P. M.; BETANCOURT, A. A.; CAMBERO, C. J. Causal agents of the rot of fruit soursop (Annona muricata L.) in Nayarit, Mexico. Revista Bio Ciencias,Tepic, v.6, p.1-13, 2019. ).

Como una alternativa para el manejo de enfermedades, se encuentran los microorganismos como Trichoderma (PADDER; SHARMA, 2011 PADDER, B. A.; SHARMA, P. N. In vitro and in vivo antagonism of biocontrol agents against Colletotrichum lindemuthianum causing bean anthracnose. Archives of Phytopathology and Plant Protection, Berlin, v.44, n.10, p.961-969, 2011. ; LANDERO et al. 2015 LANDERO, V. N.; NIETO, A. D.; TÉLIZ, O. D.; ALATORRE, R. R.; ORTÍZ, G. C.; OROZCO, S. M. Biological control of anthracnose by postharvest application of Trichoderma spp. on maradol papaya fruit. Biological Control, Dordrecht, v.91, p.88-93, 2015. ), Bacillus y Streptomyces, que han mostrado capacidad antifúngica in vitro contra diversos hongos patógenos (UTKHEDE; SHOLBERG, 1986 UTKHEDE, R. S.; SHOLBERG, P. L. In vitro inhibition of plant pathogens by Bacillus subtilis and Enterobacter aerogenes and in vivo control of two postharvest cherry diseases. Canadian Journal of Microbiology, Ottawa, v.32, p.963-967, 1986. ; DÁVILA et al. 2013 DÁVILA, M. M.; GALLEGOS, M. G.; HERNÁNDEZ, C. F.; OCHOA, F. Y.; FLORES, O. A. Actinomicetos antagónicos contra hongos fitopatógenos de importancia agrícola. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, Chapingo, v.4, n.8, p.1187-1196, 2013. ; KAMIL et al. 2018 KAMIL, F.; SAEED, E.; EL-TARABILY, K.; ABUQAMAR, S. Biological control of mango dieback disease caused by Lasiodiplodia theobromae using Streptomycete and non-streptomycete actinobacteria in the United Arab Emirates. Frontiers in Microbiology, Lausanne, v.9, n.829, p. 1-19, 2018. ). Además, no contaminan el ambiente, lo cual permite un manejo sustentable de la problemática fitosanitaria de A. muricata en Nayarit.

Por lo anterior, el objetivo del trabajo fue, evaluar el efecto antifúngico in vitro de cepas de Streptomyces, Trichoderma y Bacillus contra L. pseudotheobromae, C. gloeosporioides y Pestalotiopsis sp., agentes causales de pudriciones en frutos de guanábana en Nayarit, México.

Los hongos fitopatógenos se obtuvieron del cepario del Laboratorio de Parasitología Agrícola del CEMIC 03 de la Universidad Autónoma de Nayarit (UAN). Mientras que las cepas antagonistas: Streptomyces sp. SLe5, S. viridochromogenes TDI-4, S. tubercidicus 14241, Trichoderma harzianum Rifai, T. asperellum Samuels, Lieckfeld y Nirenberg, T. longibrachiatum Rifai, Bacillus subtilis, B. methylotrophicus y B. amyloliquefaciens, fueron proporcionadas por el cepario del CIAD, sede Chihuahua, campus Cuauhtémoc. Para las confrontaciones con Streptomyces spp., se colocaron cuatro explantes con el antagonista de 6 mm de diámetro en cajas de Petri (90 x 15 mm) en los puntos cardinales previamente crecidos en medio Czapek-Dox-Agar (CDA) y se incubaron a 28 °C por 10 d. Posteriormente, se situó un explante de Agar Papa Dextrosa (PDA) de 6 mm de diámetro con micelio del patógeno (7 d de crecimiento) en el centro de la caja de Petri (CASTILLO et al. 2001 CASTILLO, F. E.; GALLEGOS, M. G.; HERNÁNDEZ, C. F.; CEPEDA, S. M.; ZAMORA, V. V. Efectividad de actinomicetos aislados de la rizosfera de papa sobre Rhizoctonia solani kühn in vitro. Revista Mexicana de Fitopatología, Chapingo, v.19, n.2, p.203-207, 2001. ; PÉREZ et al. 2015 PÉREZ, C. D.; GARCÍA, G. N.; GALLEGOS, M. G.; RUIZ, C. M.; BERLANGA, R. D.; RIOS, V. C. Aislamiento de actinomicetos asociados a rizosfera de árboles de manzano antagónicos a Fusarium equiseti. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, Chapingo, v.6, n.7, p.1629-1638, 2015. ). Después de las mediciones correspondientes a esta confrontación, el explante de los patógenos que no mostraron crecimiento (100 % de inhibición) al estar en confrontación contra las cepas de Streptomyces, se transfirieron a una nueva caja con PDA sin presencia del antagonista, para observar si tenían acción fungistática o fungicida. Para los bioensayos con Trichoderma, se realizaron confrontaciones duales en cajas de Petri (90 × 15 mm) con PDA, con discos de 6 mm de diámetro de PDA con crecimiento micelial (sin conteo de conidios) del antagonista y el patógeno correspondiente con 7 d de crecimiento (BELL et al. 1982 BELL, D. K.; WELLS, H. D.; MARKHAM, C. R. In vitro antagonism of Trichoderma species against six fungal plant pathogens. Phytopathology, St Paul, v.72, p.379-382, 1982. ). Por otra parte, en las confrontaciones con Bacillus, se colocaron cuatro explantes de 6 mm de diámetro en los puntos cardinales crecidos previamente en medio PDA, posteriormente, en el centro de la caja se colocó el explante de 6 mm de diámetro con micelio del patógeno con 7 d de crecimiento.

Todas las confrontaciones fueron incubadas a 28° C en una incubadora Precision Scientific (Modelo 31534) en ausencia de luz y se midió el crecimiento radial del patógeno cada 24 h con un vernier digital KNOVA® hasta que los patógenos testigos llenaron por completo la caja de Petri (RIOS et al. 2016 RIOS, V. C.; CARO, C. J.; BERLANGA, R. D.; RUIZ, C. M.; ORNELAS, P. J.; SALAS, M. M.; VILLALOBOS, P. E.; GUERRERO, P. V. Identification and antagonistic activity in vitro of Bacillus spp. and Trichoderma spp. isolates against common phytopathogenic fungi. Revista Mexicana de Fitopatología, Chapingo, v.34, n.1, p.84-99, 2016. ). A cada uno de los antagonistas se evaluó el porcentaje de inhibición de crecimiento radial (PICR), con la formula, PICR = (R1 – R2) / R1 × 100, (R1= radio del patógeno testigo, R2= radio del patógeno en confrontación) (EZZIYYANI et al. 2004 EZZIYYANI, M.; PÉREZ, S. C.; REQUENA, M. E.; RUBIO, L.; CANDELA, C. M. Biocontrol por Streptomyces rochei -Ziyani-, de la podredumbre del pimiento (Capsicum annuum L.) causada por Phytophthora capsici. Anales de Biología, Murcia, v.26, p.69-78, 2004. ). A los datos de PICR se les aplicó un análisis de varianza (ANVA) con el Statistical Analysis System versión 9.0 (SAS, 2002 SAS INSTITUTE. SAS user’s guide. Version 9.0. Cary, 2002. ), y la separación de medias se realizó mediante la prueba de Tukey (p = 0.05). Las pruebas se realizaron por triplicado, cada repetición constó de tres unidades experimentales y como testigo se consideraron 10 cajas del patógeno sin presencia de antagonista. De las cepas evaluadas de Streptomyces (Fig. 1), las tres inhibieron el 100 % el crecimiento micelial de L. pseudotheobromae, C. gloeosporioides y Pestalotiopsis sp., excepto S. viridochromogenes que presentó un PICR de 88.3 % contra este L. pseudotheobromae.

Figure 1
Antagonismo in vitro de Streptomyces spp. contra patógenos de fruto de guanábana. (St: S. tubercidicus, Sv: S. viridochromogenes, Ssp: Streptomyces sp., Cg: C. gloeosporioides, Pe: Pestalotiopsis sp., Lp: L. pseudotheobromae). Barras con la misma literal son estadísticamente iguales (p= 0.05).

Esto difiere con Palaniyandi et al. (2011) PALANIYANDI, S. A.; YANG, S. H.; CHENG, J. H.; MENG, L.; SUH, J. W. Biological control of anthracnose (Colletotrichum gloeosporioides) in yam by Streptomyces sp. MJM5763. Journal of Applied Microbiology, Oxford, v.111, p.443-455, 2011. , al obtener un PICR de 57.5 % al confrontar Streptomyces sp. MJM5763 contra Pestalotia sp. Las tres cepas de Streptomyces tuvieron un efecto fungistático contra Pestalotiopsis sp. y L. pseudotheobromae, mientras que contra C. gloeosporioides presentaron un efecto fungicida in vitro.

Esto posiblemente se deba a que estos microorganismos producen diferentes enzimas (amilasa, asparaginasa, catalasa) y antibióticos (tetraciclina, eritromicina, rifampicina, neomicina, cloranfenicol) (KAVITHA et al. 2010 KAVITHA, A.; VIJAYALAKSHMI, M.; SUDHAKAR, P.; NARASIMHA, G. Screening of Actinomycete strains for the production of antifungal metabolites. African Journal of Microbiology Research, Nairobi, v.4, n.1, p.27-32, 2010. ; REYES et al. 2015 REYES, T. A.; RINCÓN, E. G.; EVANGELISTA, M. Z.; QUIÑONES, A. E.; LÓPEZ, P. L. Lucha entre microbios: una herramienta para el control de enfermedades de plantas. Revista Digital Universitaria, Coyoacán, v.16, n.11, p.1-15, 2015. ) o compuestos antifúngicos como nistanina, anfotericina, natamicina, que contaminan el medio y al mismo tiempo inhiben el crecimiento de los fitopatógenos (KOONTZ; MARCY, 2003 KOONTZ, J.; MARCY, J. Formation of natamycin: cyclodextrin inclusion complexes and their characterization. Journal of Agricultural and Food Chemistry, Washington, v.51, p.7106-7110, 2003. ). De las cepas de Trichoderma evaluadas (Fig. 2), T. longibrachiatum fue el más efectivo contra C. gloeosporioides, Pestalotiopsis sp. y L. pseudotheobromae, con inhibiciones de 60.45, 59.33 y 57.9 %, respectivamente. Mientras que T. harzianum vs C. gloeosporioides, T. asperellum vs Pestalotiopsis y C. gloeosporioides mostraron valores menores al 45.07 %. Resultados similares obtuvieron Landero et al. (2015) LANDERO, V. N.; NIETO, A. D.; TÉLIZ, O. D.; ALATORRE, R. R.; ORTÍZ, G. C.; OROZCO, S. M. Biological control of anthracnose by postharvest application of Trichoderma spp. on maradol papaya fruit. Biological Control, Dordrecht, v.91, p.88-93, 2015. al confrontar cepas de T. longibrachiatum, T. harzianum y T. asperellum contra C. gloeosporioides aislado de papaya (Carica papaya), donde reportaron PICR de 53.26 a 55.82 %. El género Trichoderma ha sido el más evaluado para el control de enfermedades causadas por hongos fitopatógenos como C. gloeosporioides por su facilidad para ser aislado, cultivado y crecido en diversos sustratos, entre otros atributos (PEREIRA et al. 2010 PEREIRA, B. M.; SÃO, J. A.; HOJO, R. T.; SOUSA, S.; BOAS, S. V.; OLVEIRA, D. N. Avaliação antagónica in vitro de Trichoderma spp. a Rhizopus stolonifer en maracujazeiro amarelo. Summa Phytopathologica, Botucatu, v.36, n.1, p.61-67, 2010. ; SANMARTÍN et al. 2012 SANMARTÍN, N. P.; LÓPEZ, X.; PEMBERTHY, M. P.; GRANADA, D.; RUEDA, E. A. Análisis del modo de acción y de la capacidad antagónica de Trichoderma asperellum sobre Colletotrichum gloeosporioides y Fusarium sp. Revista Tumbaga, Ibagué. v.2, n.7, p.29-49, 2012. ; BHADRA et al. 2014 BHADRA, M.; KHAIR, A.; HOSSAINS, A.; SIKDER, M. Efficacy of Trichoderma spp. and fungicides against Lasiodiplodia theobromae. Bangladesh Journal of Scientific and Industrial Research, Dhaka, v.49, n.2, p.125-130, 2014. ). Las especies de Bacillus demostraron diferente inhibición en los patógenos (Fig. 3), el PICR (58.22 %) más alto se observó en la confrontación de B. methylotrophicus vs Pestalotiopsis sp. Sin embargo, al confrontarse contra C. gloeosporioides su inhibición fue menor (23.16 %). Por otra parte, B. methylotrophicus vs L. pseudotheobromae y B. amyloliquefaciens vs C. gloeosporioides, ejercieron un PICR de 54.57 y 53.02 %, respectivamente. Porcentajes similares obtuvieron Ruiz et al. (2017) RUIZ, C. M.; RIOS, V. C.; BERLANGA, R. D.; ORNELAS, P. J.; ACOSTA, M. C.; ROMO, C. A; ZAMUDIO, F. P.; PÉREZ, C. D. Incidence and causal agents of root diseases and its antagonists in apple orchards of Chihuahua, Mexico. Revista Mexicana de Fitopatología, Chapingo, v.35, n.3, p.437-462, 2017. , al evaluar a B. methylotrophicus y B. amyloliquefaciens contra Phytophthora cactorum y Pythium spp. con 91.6 y 18.8 %, respectivamente. Los bajos porcentajes inhibición de B. subtilis contrastan con lo obtenido por Ruiz et al. (2014) RUIZ, S. E.; MEJÍA, B. M.; CRISTÓBAL, A. J.; VALENCIA, B. A.; REYES, R. A. Actividad antagónica de filtrados de Bacillus subtilis contra Colletotrichum gloeosporioides (Penz.). Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, Chapingo, v.5, n.7, p.1325-1332, 2014. , al evaluar una cepa de la misma especie contra C. gloeosporioides obtuvieron un PICR de 77.9 %. Cabe mencionar que Streptomyces es el género menos utilizado comercialmente como agente de control biológico de patógenos a comparación con Trichoderma y Bacillus, por lo que se deberían de realizar futuros estudios para el control de fitopatógenos y de esta manera disminuir el uso de fungicidas químicos.

Figure 2
Antagonismo in vitro de tres especies de Trichoderma vs agentes causales de las pudriciones de fruto de guanábana. (Tl: T. longibrachiatum, Th: T. harzianum, Ta: T. asperellum, Cg: C. gloeosporioides, Pe: Pestalotiopsis sp., Lp: L. pseudotheobromae).

Figure 3
Confrontación in vitro de Bacillus spp. contra patógenos causantes de pudriciones de fruto de guanábana. (Bm: B. methylotrophicus, Ba: B. amyloliquefaciens, Bs: B. subtilis, Cg: C. gloeosporioides, Pe: Pestalotiopsis sp., Lp: L. pseudotheobromae).

Agradecimientos

Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACyT) y al Proyecto apoyado por el “Fondo Sectorial de Investigación en Materia Agrícola, Pecuaria, Acuacultura, Agrobiotecnología y Recursos Fitogenéticos” Núm. 266891.

  • ALBERTO, R. T.; OTANES A. T. Morphological and molecular identification and fungicide sensitivity assay of pathogens attacking guyabano (Annona muricata) in Philippines. Plant Pathology e Quarantine, Chiangi Rai, v.6, n.1, p.60-79, 2016.
  • BELL, D. K.; WELLS, H. D.; MARKHAM, C. R. In vitro antagonism of Trichoderma species against six fungal plant pathogens. Phytopathology, St Paul, v.72, p.379-382, 1982.
  • BHADRA, M.; KHAIR, A.; HOSSAINS, A.; SIKDER, M. Efficacy of Trichoderma spp. and fungicides against Lasiodiplodia theobromae. Bangladesh Journal of Scientific and Industrial Research, Dhaka, v.49, n.2, p.125-130, 2014.
  • CAMBERO, A. C.; LUNA, E. G.; RIOS, V. C.; DIAZ, H.; RODRÍGUEZ, P. M.; BETANCOURT, A. A.; CAMBERO, C. J. Causal agents of the rot of fruit soursop (Annona muricata L.) in Nayarit, Mexico. Revista Bio Ciencias,Tepic, v.6, p.1-13, 2019.
  • CASTILLO, F. E.; GALLEGOS, M. G.; HERNÁNDEZ, C. F.; CEPEDA, S. M.; ZAMORA, V. V. Efectividad de actinomicetos aislados de la rizosfera de papa sobre Rhizoctonia solani kühn in vitro. Revista Mexicana de Fitopatología, Chapingo, v.19, n.2, p.203-207, 2001.
  • DÁVILA, M. M.; GALLEGOS, M. G.; HERNÁNDEZ, C. F.; OCHOA, F. Y.; FLORES, O. A. Actinomicetos antagónicos contra hongos fitopatógenos de importancia agrícola. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, Chapingo, v.4, n.8, p.1187-1196, 2013.
  • EZZIYYANI, M.; PÉREZ, S. C.; REQUENA, M. E.; RUBIO, L.; CANDELA, C. M. Biocontrol por Streptomyces rochei -Ziyani-, de la podredumbre del pimiento (Capsicum annuum L.) causada por Phytophthora capsici. Anales de Biología, Murcia, v.26, p.69-78, 2004.
  • JIMÉNEZ, D. R. Las enfermedades de las plantas: Impactos, amenazas y control. Boletín de la Real Academia de Córdoba, Córdoba, v.166, p.111-130, 2017.
  • KAMIL, F.; SAEED, E.; EL-TARABILY, K.; ABUQAMAR, S. Biological control of mango dieback disease caused by Lasiodiplodia theobromae using Streptomycete and non-streptomycete actinobacteria in the United Arab Emirates. Frontiers in Microbiology, Lausanne, v.9, n.829, p. 1-19, 2018.
  • KAVITHA, A.; VIJAYALAKSHMI, M.; SUDHAKAR, P.; NARASIMHA, G. Screening of Actinomycete strains for the production of antifungal metabolites. African Journal of Microbiology Research, Nairobi, v.4, n.1, p.27-32, 2010.
  • KOONTZ, J.; MARCY, J. Formation of natamycin: cyclodextrin inclusion complexes and their characterization. Journal of Agricultural and Food Chemistry, Washington, v.51, p.7106-7110, 2003.
  • LANDERO, V. N.; LARA, V. F.; ANDRADE, H. P.; AGUILAR, P. L.; AGUADO, R. G. Alternativas para el control de Colletotrichum spp. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, Chapingo, v.7, n.5, p.1189-1198, 2016.
  • LANDERO, V. N.; NIETO, A. D.; TÉLIZ, O. D.; ALATORRE, R. R.; ORTÍZ, G. C.; OROZCO, S. M. Biological control of anthracnose by postharvest application of Trichoderma spp. on maradol papaya fruit. Biological Control, Dordrecht, v.91, p.88-93, 2015.
  • OKIGBO, R.; OBIRE, O. Mycoflora and production of wine from fruits of soursop (Annona muricata L.). International Journal of Wine Research, Auckland, v.1, p.1-9, 2009.
  • PADDER, B. A.; SHARMA, P. N. In vitro and in vivo antagonism of biocontrol agents against Colletotrichum lindemuthianum causing bean anthracnose. Archives of Phytopathology and Plant Protection, Berlin, v.44, n.10, p.961-969, 2011.
  • PALANIYANDI, S. A.; YANG, S. H.; CHENG, J. H.; MENG, L.; SUH, J. W. Biological control of anthracnose (Colletotrichum gloeosporioides) in yam by Streptomyces sp. MJM5763. Journal of Applied Microbiology, Oxford, v.111, p.443-455, 2011.
  • PEREIRA, B. M.; SÃO, J. A.; HOJO, R. T.; SOUSA, S.; BOAS, S. V.; OLVEIRA, D. N. Avaliação antagónica in vitro de Trichoderma spp. a Rhizopus stolonifer en maracujazeiro amarelo. Summa Phytopathologica, Botucatu, v.36, n.1, p.61-67, 2010.
  • PÉREZ, C. D.; GARCÍA, G. N.; GALLEGOS, M. G.; RUIZ, C. M.; BERLANGA, R. D.; RIOS, V. C. Aislamiento de actinomicetos asociados a rizosfera de árboles de manzano antagónicos a Fusarium equiseti. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, Chapingo, v.6, n.7, p.1629-1638, 2015.
  • REYES, T. A.; RINCÓN, E. G.; EVANGELISTA, M. Z.; QUIÑONES, A. E.; LÓPEZ, P. L. Lucha entre microbios: una herramienta para el control de enfermedades de plantas. Revista Digital Universitaria, Coyoacán, v.16, n.11, p.1-15, 2015.
  • RIOS, V. C.; CARO, C. J.; BERLANGA, R. D.; RUIZ, C. M.; ORNELAS, P. J.; SALAS, M. M.; VILLALOBOS, P. E.; GUERRERO, P. V. Identification and antagonistic activity in vitro of Bacillus spp. and Trichoderma spp. isolates against common phytopathogenic fungi. Revista Mexicana de Fitopatología, Chapingo, v.34, n.1, p.84-99, 2016.
  • RUIZ, C. M.; RIOS, V. C.; BERLANGA, R. D.; ORNELAS, P. J.; ACOSTA, M. C.; ROMO, C. A; ZAMUDIO, F. P.; PÉREZ, C. D. Incidence and causal agents of root diseases and its antagonists in apple orchards of Chihuahua, Mexico. Revista Mexicana de Fitopatología, Chapingo, v.35, n.3, p.437-462, 2017.
  • RUIZ, S. E.; MEJÍA, B. M.; CRISTÓBAL, A. J.; VALENCIA, B. A.; REYES, R. A. Actividad antagónica de filtrados de Bacillus subtilis contra Colletotrichum gloeosporioides (Penz.). Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, Chapingo, v.5, n.7, p.1325-1332, 2014.
  • SANMARTÍN, N. P.; LÓPEZ, X.; PEMBERTHY, M. P.; GRANADA, D.; RUEDA, E. A. Análisis del modo de acción y de la capacidad antagónica de Trichoderma asperellum sobre Colletotrichum gloeosporioides y Fusarium sp. Revista Tumbaga, Ibagué. v.2, n.7, p.29-49, 2012.
  • SAS INSTITUTE. SAS user’s guide. Version 9.0. Cary, 2002.
  • SIAP - Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. Anuario estadístico de la producción agrícola. Disponível em: https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola/ Acesso em: 02. jun. 2017.
    » https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola/
  • UTKHEDE, R. S.; SHOLBERG, P. L. In vitro inhibition of plant pathogens by Bacillus subtilis and Enterobacter aerogenes and in vivo control of two postharvest cherry diseases. Canadian Journal of Microbiology, Ottawa, v.32, p.963-967, 1986.

Fechas de Publicación

  • Publicación en esta colección
    06 Abr 2020
  • Fecha del número
    2020

Histórico

  • Recibido
    05 Mayo 2019
  • Acepto
    03 Jun 2019
Sociedade Brasileira de Fruticultura Via de acesso Prof. Paulo Donato Castellane, s/n , 14884-900 Jaboticabal SP Brazil, Tel.: +55 16 3209-7188/3209-7609 - Jaboticabal - SP - Brazil
E-mail: rbf@fcav.unesp.br