SciELO - Scientific Electronic Library Online

 
vol.46 número2Transporte de compostos nitrogenados em soja cultivada com diferentes fontes de nitrogênioGerminação das sementes de marmelo: meios e períodos de estratificação e processos de preparo índice de autoresíndice de assuntospesquisa de artigos
Home Pagelista alfabética de periódicos  

Serviços Personalizados

Journal

Artigo

  • Português (pdf)
  • Artigo em XML
  • Como citar este artigo
  • SciELO Analytics
  • Curriculum ScienTI
  • Tradução automática

Indicadores

Links relacionados

Compartilhar


Bragantia

versão impressa ISSN 0006-8705versão On-line ISSN 1678-4499

Bragantia v.46 n.2 Campinas  1987

https://doi.org/10.1590/S0006-87051987000200012 

ARTIGOS

 

Embriogênese somática in vitro de cultivares de cenoura1

 

Somatic embryogenesis in vitro from carrot cultivars

 

 

Benedita Maria RodriguesI, 2; Walter José SiqueiraI, 2; João Baptista FornasierII, 2; Rogério Salles LisbãoII, 2; Herculano Penna Medina FilhoI, 2

ISeção de Genética, Instituto Agronômico (IAC), Caixa Postal 28, 13001 Campinas (SP)
IISeção de Hortaliças Diversas, IAC

 

 


RESUMO

Objetivando a definição da metodologia básica para a obtenção em meio de cultura sólido de embriogênese somática, em explantes de hipocótilo e folha cotiledonar de cenoura (Daucus carota L.) cultivares Kuroda, Nantes e Brasília foi realizado um experimento em condições de laboratório, utilizando-se as concentrações de 0,5; 1,0; 2,5 e 5,0 mg/litro do ácido 2,4 diclorofenoxiacético (2,4-D) e 1,0 mg/litro do ácido b-naftoxiacético (NOA). Pelos resultados obtidos, os explantes de hipocótilo foram em geral mais adequados para o desenvolvimento do processo de embriogênese somática nos três cultivares estudados. A melhor concentração de 2,4-D na indução da embriogênese foi de 0,5 mg/litro. O tratamento com o NOA apresentou maior freqüência de embriogênese comparativamente àqueles com o 2,4-D. Houve uma resposta diferencial dos cultivares e explantes utilizados em relação aos diferentes meios de cultura.

Termos de indexação: cenoura, Daucus carota L., embriogênese somática, meios de cultura e tipos de explantes.


SUMMARY

An investigation was conducted under laboratory conditions, to define the basic methodology in solid culture, to achieve somatic embryogenesis in tissue of hypocotyl and cotyledon of carrot (Daucus carota L.) cultivars Kuroda, Nantes and Brasília. Different concentrations of 2,4-D (0.5; 1.0; 2.5 and 5.0 mg/l) were studied in comparison to 1.0 mg/l of NOA. The results showed that the hypocotyl explants of the three cultivars were more adequate to develop somatic embryogenesis than the cotyledonary tissues. The best concentration of 2,4-D for inducting embryogenesis was 0.5 mg/l, independently of the kind of explant and cultivar. However it was less efficient than NOA at 1.0 mg/l. It was also observed that the carrot cultivars and the explants studied, reacted differently to the tissue culture medium utilized.

Index terms: carrot, Daucus carota L., somatic embryogenesis, culture media, explants.


 

 

Texto completo disponível apenas em PDF.

Full text available only in PDF format.

 

 

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BAYLLISS, M.W. The effects of 2,4-D on growth and mitosis in suspension cultures of Daucus carota. Plant Science Letters, 8:99-103, 1977.        [ Links ]

EVANS, D.A.; SHARP, W.R. & MEDINA FILHO, H.P. Somaclonal and gametoclonal variation. American Journal of Botany, 71(6):759-774, 1984.        [ Links ]

FAZIO, G.M. de. Aspectos ultra-estruturais de "callus" de raiz de cenoura (Daucus carota L.) cultivados em meio de cultura sólido e em condições de luz e temperatura ambientes. Arquivos do Instituto Biológico, São Paulo, 42:9-16, 1975.        [ Links ]

HALPERIN, W. & WETHERELL, D.F. Adventive embryony in tissue cultures of the wild carrot, Daucus carota. American Journal of Botany, 51 (3):274-283, 1964.        [ Links ]

HOAGLAND, D.R. & SNYDES, W.C. Nutrition of strawberry plant under controlled conditions: (A) Effects of boron and certain other elements; (B) Susceptibility to injury to sodium salts. Proceedings of the American Society for Horticultural Science, 30:288-294, 1934.        [ Links ]

ILLG, R.D. & SIQUEIRA, W.J. Variabilidade genética induzida através da cultura de tecidos. In: COLÓQUIO DE CITOGENÉTICA E EVOLUÇÃO DE PLANTAS, 1., Piracicaba, 1984. p.125-135.        [ Links ]

KAMADA, H. & HARADA, H. Studies on the organogenesis in carrot tissue cultures. I. Effects of growth regulators on somatic embryogenesis and root formation. Zeitschrift fuer Pflanzen-Physiologie, Bd. 91(3):255-266, 1979.        [ Links ]

LARKIN, P.J. & SCOWCROFT, W.R. Somaclonal variation: a novel source of variability from cell cultures from plant improvement. Theoretical and Applied Genetics, 60:197-214, 1981.        [ Links ]

__________&__________. Somaclonal variation and crop improvement. In: GENETIC engineering of plants and agricultural perspective. New York, Plenum Press, 1983. p.289-314.        [ Links ]

LEVINE, M. The growth of normal plant tissue "in vitro" as affected by chemical carcinogens and plant growth substances. I. The culture of the carrot taproot meristem. American Journal of Botany, 37:445-458, 1950.        [ Links ]

MANETTI FILHO, J. Tolerância de tecidos de cenoura (Daucus carota L.) a níveis elevados de manganês. Indução e seleção. Campinas, UNICAMP, 1981. 97p. Tese (Mestrado)        [ Links ]

MARX, J.L. Instability in plants and the ghost of Lamark. Science, 224:1415-1416, 1984.        [ Links ]

MURASHIGE, T. & SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum, 15:473-497, 1962.        [ Links ]

NOVAK, F.J. The change of kariotype in callus cultures of Allium sativum L. Caryologia, 27:45-54, 1974.        [ Links ]

__________. Phenotype and cytological status of plants regenerated from callus cultures of Allium sativum L. Zeitschrift fuer Pflanzenzüchtung, 84:250-260, 1980.        [ Links ]

OONO, K. Genetic variability in rice plants regenerated from cell cultures. In: CELL AND TISSUE CULTURES TECHNIQUES FOR CEREAL CROP IMPROVEMENT. Proceedings. New York, Gordon and Breach Science Publ., 1983. p.95-104.        [ Links ]

RONCHI, V.N.; CALIGO, M.A.; NOZZOLINI, M. & LUCCARINI, G. Stimulation of carrot somatic embriogenesis by proline and serine. Plant Ceil Reports, 3:210-214, 1984.        [ Links ]

SOUZA, E.L.S. & TORRES, A.C. Propagação vegetativa da cenoura. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE OLERICULTURA, 22, Vitória, 1982. Resumos, p.146.        [ Links ]

STEWARD, F.C.; MAPES, M.O. & MEARS, K. Growth and organized development of cultured cells. II. Organization in cultures grown from freely suspended cells. American Journal of Botany, 45:705-708, 1958.        [ Links ]

WIGGANS, S.C. Growth and organ formation in callus tissues derived from Daucus carota. American Journal of Botany, 41:321-326, 1954.        [ Links ]

 

 

Recebido para publicação em 25 de novembro de 1986.

 

 

1 Trabalho apresentado no I Encontro da Associação Brasileira de Cultura de Tecidos de Planta (ABCTP), em Botucatu, SP, em 26 de setembro de 1985.
2 Com bolsa de pesquisa do CNPq.

Creative Commons License Todo o conteúdo deste periódico, exceto onde está identificado, está licenciado sob uma Licença Creative Commons