Acessibilidade / Reportar erro

Compostos polifenólicos do kino de Eucalyptus citriodora

Polyphenol compounds of the kino of Eucalyptus citriodora

Resumo

Phytochemical analysis of the kino of Eucalyptus citriodora led to the isolation of 1-O,2-O-digaloil-6-O-trans -p-cumaroil-beta-D-glucopyranoside, 1-O-trans-p-cumaroil-6-O -cinamoil-beta-D-glucopyranoside, alpha and beta 6-O-trans-p-cumaroil-D-glucopyranoside, 7-methylaromadendrin-4'-O-6''- trans-p-cumaroil-beta-D-glucopyranoside, aromadendrin, aromadendrin-7-methyl-ether, naringenin, sakuranetin, kaempferol-7-methyl-ether and galic acid. Structural elucidation of the isolated compounds was established on the basis of spectral data, particularly by the use of 1D NMR and several 2D shift correlated NMR pulse sequences (¹H,¹H-COSY, HMQC, HMBC).

Eucalyptus citriodora; kino; polyphenols


Eucalyptus citriodora; kino; polyphenols

ARTIGO

Compostos polifenólicos do kino de Eucalyptus citriodora

Polyphenol compounds of the kino of Eucalyptus citriodora

Marinalva Oliveira Freitas; Mary Anne S. Lima; Edilberto R. Silveira* * e-mail: edil@ufc.br

Departamento de Química Orgânica e Inorgânica, Universidade Federal do Ceará, CP 12200, 60451-970 Fortaleza – CE, Brasil

ABSTRACT

Phytochemical analysis of the kino of Eucalyptus citriodora led to the isolation of 1-O,2-O-digaloil-6-O-trans -p-cumaroil-b-D-glucopyranoside, 1-O-trans-p-cumaroil-6-O -cinamoil-b-D-glucopyranoside, a and b 6-O-trans-p-cumaroil-D-glucopyranoside, 7-methylaromadendrin-4'-O-6''- trans-p-cumaroil-b-D-glucopyranoside, aromadendrin, aromadendrin-7-methyl-ether, naringenin, sakuranetin, kaempferol-7-methyl-ether and galic acid. Structural elucidation of the isolated compounds was established on the basis of spectral data, particularly by the use of 1D NMR and several 2D shift correlated NMR pulse sequences (1H,1H-COSY, HMQC, HMBC).

Keywords:Eucalyptus citriodora; kino; polyphenols.

INTRODUÇÃO

Eucalyptus (Mirtaceae) é um gênero originário da Austrália constituído de aproximadamente 600 espécies. Apesar de mundialmente conhecidas pelo alto valor terapêutico e comercial de seus óleos essenciais, as espécies deste gênero também são caracterizadas pela formação de "kino", um exudato espesso e quebradiço depois de seco encontrado nas cavidades dos caules. Os veios de kino são formados pela quebra ou dissolução de bandas de células do parênquima no xilema ou floema dos troncos das árvores, como um mecanismo de defesa contra as infecções patogênicas causadas por insetos, fungos ou queimadas1.

Devido à sua marcante propriedade adstringente, o kino de Eucalyptus possui uma longa história de uso medicinal e na indústria de manufatura de couros. A composição química em várias espécies já foi investigada, e mostrou-se constituída particularmente de compostos polifenólicos, incluindo flavonóides, taninos e heterosídeos2-10. Estudos anteriores do kino de E. citriodora nativo da Índia revelaram éter 7-metil-aromadendrina, campferol, ácido elágico, éter dimetil-aromadendrina e citriodorol como principais constituintes2. Na investigação fitoquímica atual, utilizando o kino de E. citriodora cultivado no Nordeste do Brasil, são relatados o isolamento de 1-O,2-O-digaloil-6-O-trans -p-cumaroil-b-D-glicopiranosídeo (1), 1-O-trans-p-cumaroil-6-O -cinamoil-b-D-glicopiranosídeo (2), 6-O-trans-p-cumaroil-D-glicopiranosídeo nas configurações a (3a) e b (3b), 7-metil-aromadendrina-4'-O-6'' -trans-p-cumaroil-b-D-glicopiranosídeo (4), aromadendrina (5), 7-metil-aromadendrina (6), naringenina (7), sakuranetina (8), 7-metil-campferol (9) e ácido gálico (10).

RESULTADOS E DISCUSSÃO

O composto 1 foi obtido como um sólido amorfo amarelo, p.f. 167,9-170,2 ºC, [a]20D: -70º (c = 0.05, MeOH). Análise do espectro de RMN 1H indicou sinais típicos de dois grupamentos galoil através dos singletos em dH 7,05 (s, H-2'/6') e 7,11 (s, H-2''/ H-6''), com integração para dois hidrogênios cada. Os sinais em dH 7,40 (d, J = 8,6 Hz, H-2'''/H-6''') e 6,77 (d, J = 8,6 Hz, H-3'''/H-5''') foram relacionados a um grupo trans-p-cumaroil, em virtude da presença de dois hidrogênios trans-olefínicos característicos em dH 7,63 (d, J = 16,0 Hz, H-b) e 6,30 (d, J = 16,0 Hz, H-a), respectivamente. Os sinais na faixa de dH 3,68 a 5,17, em conjunto com o sinal do hidrogênio anomérico em dH 5,88 (d, J = 8,6 Hz, H-1), indicaram a presença de uma unidade b-glicosídica. A confirmação da existência de dois grupos galoil e um trans-p-cumaroil foi possível pela análise dos espectros de RMN 13C, que exibiu sinais relativos a três carbonilas em dC 168,4, 168,6 e 166,6. Os valores dos sinais observados em dC 94,2 (C-1), 76,7 (C-3), 75,9 (C-5), 74,1 (C-2), 71,4 (C-4), e 64,3 (C-6) foram indicativos da existência de uma unidade b-glicose 1,2,6-trissubstituída através da comparação com valores descritos na literatura, considerando-se efeitos a- e b- causados pela esterificação nas hidroxilas11 (Tabela 1). Esta sugestão foi definitivamente confirmada pela análise do espectro bidimensional HMBC, através das correlações a longa distância entre o hidrogênio anomérico em d 5.88 (H-1) e a carbonila em dC 166,6; (C-7'), do hidrogênio em dH 5,17 (H-2) com o carbono anomérico em dC 94,2 (C-1) e a carbonila em dC 168,5 (C-7''), além dos acoplamentos observados de ambos os hidrogênios do grupo metilênico da glicose em d 4,57 e 4,45 (H-6) com a carbonila em dC 168,4 (C-7'''). Os dados obtidos revelaram o composto 1 como sendo o 1-O,2-O-digaloil-6-O-trans -p-cumaroil-b-D-glicopiranosídeo, descrito anteriormente como constituinte do Rhubarb, uma das mais importantes drogas na região asiática constituída por extratos de espécies de Rheum (Polygonaceae)12.

O composto 2 apresentou-se como um sólido incolor, p. f. 116,9-119,6 ºC. A banda de absorção no espectro de IV em 3400 cm-1 foi relacionada a um grupo hidroxila, e as absorções em 1702 e 1684 cm-1 foram correspondentes às duas carbonilas a,b-insaturadas. O espectro de RMN 1H exibiu sinais típicos do anel aromático de grupos trans-p-cumaroil em dH 6,80 (H-3'''/5''') e 7,46 (H-2'''/6''') e cinamoil em dH 7,39 (H-4'''') e 7,60 (H-5''''), além dos sinais relacionados aos hidrogênios a e b dos dois sistemas em dH 6,37 e 7,73 e dH 6,56 e 7,71, respectivamente. A unidade glicosídica foi caracterizada como uma b-glicose 1,6-dissubstituída baseado nos valores de deslocamentos químicos e das constantes de acoplamentos dos sinais em dH 3,47 (H-2), 3,69 (H-5), 4,53 e 4,34 (2H-6) e do hidrogênio anomérico em dH 5,59 (d, J = 7,6 Hz, H-1) (Tabela 1). Em particular, as correlações a mais de uma ligação no espectro de HMBC entre o hidrogênio anomérico em dH 5,59 (H-1) com a carbonila do grupo p-cumaroíl em dC 167,7 (C-7'''), e dos hidrogênios metilênicos em dH 4,34 e 4,56 (2H-6) com a outra carbonila em dC 168,6 (C-7''''), definitivamente estabeleceram a estrutura do composto 2 como sendo 1-O-cinamoil-6-O-trans-p-cumaroil -b-D-glicopiranosídeo3.

O composto 3 apresentou-se como um sólido amarelo-claro e mostrou bandas no espectro de IV características de grupamento hidroxila e carbonila em 3339 e 1690 cm-1, respectivamente. De maneira análoga aos compostos 1 e 2, o espectro de RMN 1H de 3 apresentou absorções referentes a um grupo trans-p-cumaroíla em dH 6,34 (H-a), 6,81 (H-3'/5'), 7,45 (H-2''''/6'''') e 7,63 (H-b). Foram observados ainda sinais relativos aos hidrogênios anoméricos de uma unidade b-glicose em dH 4,51 (d, J = 7,7 Hz, H-1) e do seu respectivo isômero a em dH 5,12 (d, J = 3,6 Hz, H-1) (Tabela 1). Os valores da integração dos sinais das duas unidades de açúcar, em adição aos valores dos deslocamentos químicos de RMN 1H e RMN 13C observados, possibilitou determinar o composto 3 como sendo a mistura dos isômeros configuracionais 6-O-trans-p-cumaroil-b-D-glicopiranosídeo (3a) e trans-p-cumaroil-a-D-glicopiranosídeo (3b), anteriormente isolados de Picrorhiza scophulariiflora13.

O composto 4 apresentou-se como um sólido branco amorfo, com p. f. 194,9-196,1 ºC. O espectro de RMN 1H apresentou sinais de hidrogênios aromáticos em um sistema AB em dH 6,25 (H-6) e 6,35 (H-8), de um sistema AA'BB' típico de anel B de flavonóides p-dissubstituídos em dH 7,46 (H-3'/5') e 7,74 (H-2'/6'), além de dois hidrogênios oximetínicos em dH 4,77 (H-3) e 5,47 (H-2), e uma metoxila em dH 3,71 (OCH3-7). Os dados obtidos em comparação com a literatura caracterizaram a estrutura do flavonóide 7-metil-aromadendrina (3,5,4'-tri-hidroxi-7-metoxi-flavanona) como unidade aglicônica14. Semelhantemente ao composto 3, foi também observada a presença de uma unidade b-glicose substituída em C-6'', com um grupo trans-p-cumaroil pela comparação dos valores dos deslocamentos químicos dos carbonos do composto 3 no espectro de RMN 13C. Esta observação foi confirmada pela análise do espectro bidimensional HMBC, que também permitiu a localização da unidade de açúcar no carbono C-4' da aglicona, através da correlação do hidrogênio anomérico em dH 5,64 (H-1) com o carbono em dC 159,4 (C-4'). A atribuição inequívoca dos dados de carbono e hidrogênio e a comparação com dados da literatura permitiram definir o composto 4 como sendo 7-metil-aromadendrina-4'-O-6''-trans -p-cumaroil-b-D-glicopiranosídeo 3.

Os compostos 5 e 6 apresentaram-se na forma de cristais brancos com p.f. 222,8-225,5 ºC e 182,8-183,9 ºC, respectivamente. A determinação da estrutura de flavanonóis para ambos os compostos foi possível através da existência de sistemas AB na região de hidrogênios alifáticos (5: dH 4,97 e 4,53, 6: dH 5,02 e 4,58), e sistemas AA'BB' (5: dH 7,35 e 6,83 , 6:dH 7,37 e 6,85) e AB (5: dH 5,92 e 5,88, 6: dH 6,09 e 6,04) na região de hidrogênios aromáticos nos espectros de RMN 1H. O grupo metoxila adicional em dH 3,82 no composto 6, foi localizado no carbono 7 da estrutura flavonoídica, através da sua correlação a longa distância com o carbono insaturado em dC 168,8 (C-7), confirmando desta forma os compostos 5 e 6 como sendo a aromadendrina (3,5,7,4'-tetra-hidroxi-flavanona) e o seu derivado metilado na posição 7, respectivamente14.

O composto 7 apresentou-se como um sólido branco cristalino com p.f. 227,8-229,9 ºC e o composto 8 como um sólido de cor amarela com p.f. 74,9-76,1 ºC. Os espectros de RMN 1H de 7 e 8 mostraram-se semelhantes aos dos compostos 5 e 6, exceto pelos sinais de um sistema ABX na região de hidrogênios alifáticos (7: dH 5,34, 3,11 e 2,71, 8: dH 5,30, 3,08 e 2,67) caracterizando a estrutura de flavanonas. Esta sugestão foi confirmada pelo espectro de RMN 13C que exibiu para cada composto um sinal adicional relacionado a um carbono metilênico em dC 44,1 (C-3). Estes dados, associados com aqueles obtidos da análise dos espectros bidimensionais (COSY, HMQC e HMBC) e comparação com dados da literatura, possibilitou identificar os compostos como sendo a naringenina (5,7,4'-tri-hidroxiflavanona) (7) e a sakuranetina (5,4'-di-hidroxi-7-metoxiflavanona) (8)14.

O composto 9 apresentou-se na forma de um sólido amorfo de cor amarela e com p.f. 215,2-218,5 ºC. Os sinais do sistema ABX observados para os compostos 7 e 8 mostraram-se ausentes no espectro de RMN 1H do composto 9, sugerindo a existência de um flavonol. Esta observação foi confirmada no espectro de RMN 13C que revelou a ausência de dois carbonos oxigenados e a presença de dois carbonos insaturados adicionais em dC 148,3 (C-2) e 138,5 (C-3). Tais dados permitiram identificar a estrutura do composto 9 como sendo o 7-metil-campferol14.

Dados da literatura revelam o kino de Eucalyptus como uma prolífica fonte de compostos polifenólicos. O isolamento de flavonóides e heterosídeos do kino de E. citriodora do Nordeste do Brasil corrobora com os dados registrados para o kino de outras espécies do gênero. Os compostos 2, 4 e 7 já foram isolados do kino de E. maculata3,10, o composto 8 do kino de E. citriodora3, o com posto 9 dos kinos de E. maculata, E. callophylla, E. corymbosa e E. citriodora2,6,10, e o composto 10 dos kinos de E. astringens, E. lehmanii e E. platypus4. No entanto, este é o primeiro relato do isolamento do composto 1 e da mistura dos isômeros 3a-3b em exudatos de Eucalyptus.

PARTE EXPERIMENTAL

Procedimentos gerais

Os pontos de fusão foram obtidos em um aparelho Mettler FP82HT e os valores não foram corrigidos. Os espectros de infravermelho foram registrados em um espectrofotômetro Perkin Elmer 1000 utilizando pastilhas de KBr anidro. Para a obtenção dos espectros de massa foi utilizado um espectrômetro Hewlett-Packard 5971 por impacto de elétrons a 70 eV. Os espectros de RMN foram obtidos em espectrômetro Bruker Avance DRX-500; operando a 500 MHz para RMN 1H e 125 MHz para RMN 13C. As placas de CCD foram visualizadas em câmara com lâmpada ultravioleta (lmax = 254 e 365 nm) e reveladas sob aquecimento com solução de vanilina/ácido perclórico em etanol.

Material vegetal

O kino foi coletado de um espécimen de Eucalyptus citriodora Hook cultivado no Horto de Plantas Medicinais Francisco José de Abreu Matos da Universidade Federal do Ceará, Fortaleza, CE, Brasil. O material vegetal foi identificado pelo Dr. A. G. Fernandes do Herbário Prisco Bezerra (EAC), Departamento de Biologia da Universidade Federal do Ceará, cuja exsicata encontra-se depositada sob o número 35532.

Extração e isolamento

O kino de E. citriodora (40 g) foi dissolvido em uma mistura de EtOH:H2O 1:1 (400 mL) e submetido à partição líquido-líquido com os solventes hexano, CHCl3, EtOAc e n-BuOH.

A fração CHCl3 (6,4 g) foi cromatografada em Sephadex LH-20 utilizando MeOH como solvente. Foram obtidas 25 frações de 10 mL que foram combinadas em 5 sub-frações após a análise comparativa em CCD. Sucessivas cromatografias do tipo flash da sub-fração (2-3) (1,53 g) utilizando a mistura de solventes CHCl3/MeOH 10% de forma isocrática, levou ao isolamento dos compostos 5 (97 mg), 6 (352 mg), 7 (9 mg) e 8 (5 mg). A sub-fração (4-10) (830 mg) foi submetida a sucessivas cromatografias em Sephadex LH-20 utilizando MeOH como solvente, para fornecer o composto 9 (5 mg). A sub-fração (18-20) (530 mg) foi submetida à cromatografia flash utilizando a mistura de solventes CHCl3/MeOH 6%. As frações obtidas foram posteriormente combinadas de acordo com as suas semelhanças após análise em CCD. A sub-fração (18-20) (30-40) foi recromatografada em Sephadex LH-20 utilizando MeOH, para fornecer o composto 2 (9 mg). Cromatografia flash utilizando a mistura acetona/MeOH 60% da sub-fração (18-20)(21-25) (25 mg) forneceu o composto 4 (10 mg).

A fração AcOEt (5.42 g) foi submetida a sucessivas cromatografias flash utilizando os solventes CHCl3, acetona e MeOH, seguindo um gradiente de concentração em ordem crescente de polaridade, para fornecer os compostos 1 (40 mg), 3a-3b (24 mg) e 10 (12 mg).

AGRADECIMENTOS

Ao CNPq/CAPES/PADCT/PRONEX/FUNCAP/FINEP pelas bolsas e auxílios concedidos.

Recebido em 13/12/06; aceito em 24/4/07; publicado na web em 25/10/07

  • 1. Hillis, W. E.; Hasegawa, M.; Phytochemistry 1963, 2, 195.
  • 2. Satwalekar, A. S.; Gupta, T. R.; Narashimha, R. P. L.; J. Indian Inst. Sci. 1957, 39, 195.
  • 3. Rashwan, O. A.; Molecules 2002, 7, 75.
  • 4. Hillis, W. E.; Yazaki, Y.; Phytochemistry 1974, 13, 495.
  • 5. Mcgooken, A.; Heilbron, I. M.; J. Pharmacol 1926, 26, 421.
  • 6. Hillis, W. E.; Aust. J. Sci. Res.1952, A5, 379.
  • 7. Hillis, W. E.; Aust. J. Apllied Sci. 1951, 2, 385.
  • 8. Hillis, W. E.; Carle, A.; Aust. J. Chem 1960, 13, 390.
  • 9. Echeverri, F.; Torres, F.; Cardona, G.; Lopez, J.; Quinones, W.; Gallego, L. H.; Pelaez, C. A.; Rojas, M.; Garcia, F.; Resttrepo, L. M.; Rev. Boliv. Quim 1992, 11, 43.
  • 10. Gell, R. J.; Pinhey, J. T.; Ritchie, E.; Aust. J. Chem 1958, 11, 372.
  • 11. Nawwar, M. A. M.; Souleman, A. M. A.; Buddrus, J.; Bauer, H.; Linscheid, M.; Tetrahedron 1984, 25, 49.
  • 12. Kashiwada, Y.; Nonaka, G.; Nishioka, I.; Yamagishi, T.; Phytochemistry 1988, 27, 1473.
  • 13. Huang, S.; Liao, X.; Nie, Q.; Ding, L.; Peng, S.; Helv. Chim. Acta 2004, 87, 598.
  • 14. Agrawal, P. K.; Carbon-13 NMR of flavonoids, Elsevier:Amsterdam, 1989.
  • *
    e-mail:
  • Datas de Publicação

    • Publicação nesta coleção
      21 Jan 2008
    • Data do Fascículo
      2007

    Histórico

    • Aceito
      24 Abr 2007
    • Recebido
      13 Dez 2006
    Sociedade Brasileira de Química Secretaria Executiva, Av. Prof. Lineu Prestes, 748 - bloco 3 - Superior, 05508-000 São Paulo SP - Brazil, C.P. 26.037 - 05599-970, Tel.: +55 11 3032.2299, Fax: +55 11 3814.3602 - São Paulo - SP - Brazil
    E-mail: quimicanova@sbq.org.br