Resumos
Portadores da Síndrome de Down estão sob estresse oxidativo endógeno e crônico que pode ser resultado do excesso de atividade da SOD-1. Este trabalho descreve alguns indicadores e adaptações das defesas frente aos danos oxidativos. Observamos que, nas pessoas com Síndrome de Down, a presença de estresse oxidativo (aumento de 48% na atividade da SOD-1) induziu várias adaptações no metabolismo eritrocitário, sendo que a redução da meta-hemoglobina, via aumento da atividade da meta-hemoglobina redutase (29%), garantiria a eficiência do transporte de oxigênio, enquanto o aumento da GSH (61%) propiciaria a integridade funcional do eritrócito. A diminuição dos valores de concentração de hemoglobina e hematócrito, possivelmente, resulta do aumento de atividade da enzima Glicose-6-fosfato desidrogenase e redução da meia-vida eritrocítica. Os efeitos destas adaptações sob a oxigenação do sangue merecem maiores investigações.
Síndrome de Down; estresse oxidativo; GSH; SOD-1; eritrócito
Down's Syndrome carriers are under endogenous and chronic oxidative stress that can result from an excessive SOD-1enzyme activity. This work describes some indicators and adaptations of the defense system faced with oxidative damage. We observed that, in Down's Syndrome individuals, the presence of oxidative stress (with an increase of 48% in the SOD-1 activity) induced several adaptations of the erythrocyte metabolism, with a reduction of methemoglobin, through an increase of methemoglobin reductase activity (29%) which guaranteed the efficiency of oxygen transportation. The increase of GSH (61%) would propitiate the maintenance of the integrity of the membrane, essential to the functional integrity of erythrocytes. The decrease in the hemoglobin and hematocrit concentrations, possibly, results from the increase in the activity of the glucose-6-phosphate dehydrogenase enzyme, and a reduction in the half-life of erythrocytes. The effects of these adaptations on blood oxygenation require further investigations.
Down's Syndrome; oxidative stress; GSH; SOD-1; erythrocyte
ARTIGO ARTICLE
Implicações do estresse oxidativo sobre o metabolismo eritrocitário de pessoas com Síndrome de Down
Implications of the oxidative stress on the erythrocyte metabolism of Down Syndrome individuals
Rinaldo H. Aguilar-da-SilvaI; Thiago P. MoraesII; Gilberto MoraesIII
IDocente de Bioquímica da Faculdade de Medicina de Marília (Famena)
IIResidente de Clínica Médica Fanema
IIIUniversidade Federal de São Carlos UFSCar
Endereço para correspondência Endereço para correspondência Prof. Dr. Rinaldo H. Aguilar-da-Silva Disciplina de Bioquímica Departamento de Fisiologia Faculdade Estadual de Medicina de Marília Avenida Monte Carmelo, 800 17519-030 Marília-SP Fone/fax: (14) 423-4344 e-mail: rinaldohenrique@uol.com.br
RESUMO
Portadores da Síndrome de Down estão sob estresse oxidativo endógeno e crônico que pode ser resultado do excesso de atividade da SOD-1. Este trabalho descreve alguns indicadores e adaptações das defesas frente aos danos oxidativos. Observamos que, nas pessoas com Síndrome de Down, a presença de estresse oxidativo (aumento de 48% na atividade da SOD-1) induziu várias adaptações no metabolismo eritrocitário, sendo que a redução da meta-hemoglobina, via aumento da atividade da meta-hemoglobina redutase (29%), garantiria a eficiência do transporte de oxigênio, enquanto o aumento da GSH (61%) propiciaria a integridade funcional do eritrócito. A diminuição dos valores de concentração de hemoglobina e hematócrito, possivelmente, resulta do aumento de atividade da enzima Glicose-6-fosfato desidrogenase e redução da meia-vida eritrocítica. Os efeitos destas adaptações sob a oxigenação do sangue merecem maiores investigações.
Palavras-chave: Síndrome de Down; estresse oxidativo; GSH; SOD-1; eritrócito.
ABSTRACT
Down's Syndrome carriers are under endogenous and chronic oxidative stress that can result from an excessive SOD-1enzyme activity. This work describes some indicators and adaptations of the defense system faced with oxidative damage. We observed that, in Down's Syndrome individuals, the presence of oxidative stress (with an increase of 48% in the SOD-1 activity) induced several adaptations of the erythrocyte metabolism, with a reduction of methemoglobin, through an increase of methemoglobin reductase activity (29%) which guaranteed the efficiency of oxygen transportation. The increase of GSH (61%) would propitiate the maintenance of the integrity of the membrane, essential to the functional integrity of erythrocytes. The decrease in the hemoglobin and hematocrit concentrations, possibly, results from the increase in the activity of the glucose-6-phosphate dehydrogenase enzyme, and a reduction in the half-life of erythrocytes. The effects of these adaptations on blood oxygenation require further investigations.
Key words: Down's Syndrome; oxidative stress; GSH; SOD-1; erythrocyte.
Introdução
A Síndrome de Down é uma doença cromossômica que consiste na presença e expressão de três cópias de genes localizados no cromossomo 21. Presume-se que o fenótipo nesta trissomia seja resultante da expressão de certos genes encontrados no cromossomo 21,1 principalmente como conseqüência da duplicação da região 21q22,2 onde se localiza o gene que codifica a superóxido dismutase-1(SOD-1).3-9 A cópia extra do gene da superóxido dismutase-1 (SOD-1) confere aos portadores da Síndrome de Down uma atividade da enzima aumentada em 50% em diferentes tipos de células eritrócitos, leucócitos, plaquetas e fibroblastos.4,10-15 Isto proporcionaria um quadro de agressão endógena constante, dada a aceleração da reação de formação de peróxido de hidrogênio (H2O2) e pelo desequilíbrio entre a atividade da SOD-14 e glutationa peroxidase (GSH-Px),16 com a conseqüente oxidação dos grupos sulfídricos e a peroxidação dos lipídios insaturados causando dano celular.17 Estes pacientes trissômicos possuem algumas características como envelhecimento precoce, dano cerebral e modificações bioquímicas que são secundárias ao dano oxidativo dentro da célula, o que poderia ser conseqüência desse desequilíbrio genético-bioquímico.
Um indicador sensível na avaliação do nível de estresse oxidativo são os glóbulos vermelhos, que, durante seu ciclo vital, entram em contato com as mais diversas estruturas orgânicas. Apesar de apresentarem um metabolismo mínimo, este é fisiologicamente significativo, sendo responsável pela manutenção da estrutura da membrana e da hemoglobina, da forma do eritrócito e da defesa contra o dano oxidativo. Sua função como transportador de gases os torna particularmente susceptíveis à oxidação pelo O2 e radicais livres e, assim, diversos parâmetros da integridade e funcionalidade das células vermelhas são negativamente afetados pelo aumento do estresse oxidativo.18-21 Deste modo, os eritrócitos se apresentam como marcadores biológicos das agressões tóxicas e oxidantes em diferentes órgãos e sistemas.
Frente às repercussões fisiológicas da presença do estresse oxidativo endógeno e crônico, avaliamos suas implicações sobre os índices hematológicos, concentração de meta-hemoglobina e defesas antioxidantes eritrocitárias em indivíduos com Síndrome de Down.
Casuística e Métodos
No presente estudo foram analisados 24 amostras de sangue pertencentes a indivíduos (6,4 ± 1,3 anos) do sexo masculino, 12 portadores da Síndrome de Down da APAE Associação dos Pais e Amigos dos Excepcionais de Marília e 12 indivíduos controle. Todos tiveram autorização de seus responsáveis, que foram previamente esclarecidos sobre a pesquisa. O presente estudo foi realizado de acordo com a declaração de Helsinki (1989) e foi aprovado pelo Comitê de Ética da APAE de Marília SP.
As amostras de sangue foram obtidas por punção venosa e colocadas em tubos de ensaios, um contendo anticoagulante EDTA em solução aquosa a 5% (1 gota/ml de sangue) para a utilização de sangue total e plasma e outro sem anticoagulante para a obtenção de soro.
A enzima SOD-1 foi determinada, segundo Beutler,22 com uma substância denominada pirogalol, que se auto-oxida rapidamente em solução aquosa, produzindo uma coloração amarelada cuja intensidade de cor pode ser determinada em 420 nm. Este processo é dependente da presença de ânions superóxidos. A SOD-1 inibe a auto-oxidação do pirogalol porque catalisa a quebra do ânion superóxido. Esta inibição pode, então, ser monitorada em 420 nm. A quantidade de enzima capaz de promover 50% de inibição é definida como sendo uma unidade de enzima ativa.
Para a determinação da atividade da meta-hemoglobina redutase, o método22 baseia-se na redução da meta-hemoglobina pelo citocromo b5, sendo que este é mantido no seu estado reduzido por ação de um elétron derivado da NADH através da ação enzimática da NADH meta-hemoglobina redutase. Neste teste, o substrato utilizado para receber os elétrons foi o ferricianeto de potássio e a reação monitorada em 340 nm.
A meta-hemoglobina foi determinada, segundo Naoum,23 em 630 nm, e a glutationa reduzida (GSH), segundo Beutler,22 em 412 nm. As determinações hematológicas: hemoglobina (Hb), hematócrito (Hct), hemoglobina corpuscular média (HCM) e volume corpuscular médio (VCM) foram determinadas através de um Contador Coulter Automático.
Para cada uma das variáveis, foram calculadas a média e o desvio padrão. A significância estatística (p <0,05) das diferenças encontradas foi avaliada pelo teste-t de Student. A relação entre variáveis foi determinada pela análise de correlação de Pearson.
Resultados
Os valores médios da SOD-1 foram de 2.191,30 U/g de Hb para o grupo controle e 3.245,20 U/g de Hb para o grupo Síndrome de Down. O teste estatístico mostrou que, no nível de significância de 5%, os valores da atividade no grupo Síndrome de Down são, significativamente, diferentes do grupo controle (P<0,0001), revelando aumento de, aproximadamente, 48% quando comparadas as médias dos dois grupos (Figura 1).
Em relação à enzima meta-hemoglobina redutase, os valores da atividade foram significativamente aumentados no grupo Síndrome de Down (24.96 U/g de Hb) em relação ao grupo controle (19,28 U/g de Hb). O teste estatístico (P<0,001) revelou o aumento de, aproximadamente, 29% no grupo Síndrome de Down (Figura 2).
O teste de correlação linear demonstrou que, em nível de significância de 5%, existiu correlação positiva (controle : r=0,59 e Síndrome de Down: r=0,72) entre os níveis da atividade enzimática da SOD-1 e da meta-hemoglobina redutase, em ambos os grupos. O coeficiente de determinação (r2) foi de 35% no grupo controle e 52% no grupo Síndrome de Down.
Para a GSH, os valores obtidos para o grupo controle (5,923 µmoles/g Hb ± 0,94) mantiveram-se dentro do intervalo de referência (6.57 µmoles/g Hb ± 1.04; média ± SD). No grupo Síndrome de Down, o teste estatístico mostrou que, no nível de significância de 5%, os valores obtidos (9,69 µmoles/g Hb ± 1,85) são, significativamente, diferentes do grupo controle (P<0.001), revelando o aumento de, aproximadamente, 61% quando comparadas as médias dos dois grupos.
Os valores de meta-hemoglobina foram de 0,736% (± 0,28) para o grupo controle e 2,027% (± 0,56) para o grupo Síndrome de Down. O teste estatístico, no nível de significância de 5%, revelou que os valores são estatisticamente diferentes (P<0.001).
As determinações hematológicas mostraram-se significativamente diferentes para concentração de Hb e Hct com P<0.001 (Tabela 1).
Discussão
Os eritrócitos são células altamente especializadas para a função de transporte de O2. Essa atividade só pode ocorrer em decorrência da presença do seu sistema enzimático herdado durante o período eritroblástico, que mantém-se ativo durante o tempo em que eles permanecem na circulação sangüínea. A importância do sistema oxirredutor eritrocitário reside no fato de que, tanto a glutationa no seu estado reduzido, quanto o ferro no estado Fe++, são fatores determinantes na manutenção da integridade funcional do eritrócito, incluindo sua capacidade de deformabilidade e de ligação reversível do O2. Deste modo, os processos oxidativos estão intimamente relacionados ao metabolismo das células vermelhas incluindo a via glicolítica, via das pentoses fosfato, metabolismo da glutationa, metabolismo do NAD e NADP e atividades das enzimas SOD-1 e meta-hemoglobina redutase.
Diversos agentes químicos, incluindo os peróxidos, podem oxidar o Fe++ na hemoglobina para Fe+++, produzindo a meta-hemoglobina, que não possui mais capacidade de ligar-se ao O2, e íon superóxido.
Fisiologicamente, em indivíduos normais, a produção de meta-hemoglobina é constante. Porém, as enzimas de reconversão do processo atuam no sentido de manter valores fisiológicos de, aproximadamente, 1,7%, o que não comprometerá o funcionamento do sistema carreador de O2 do sangue. Deste modo, a quantidade de meta-hemoglobina circulante em indivíduos saudáveis resulta do equilíbrio entre sua produção e redução.
O processo de redução da meta-hemoglobina em células vermelhas normais é conseguido, primariamente, por um sistema ligado a NADH,24 onde a meta-hemoglobina redutase utiliza NADH gerado na reação da gliceraldeído-3-fosfato-desidrogenase para reduzir o ferro da hemoglobina de forma trivalente para a bivalente.
No caso de indivíduos com Síndrome de Down, sujeitos ao estresse oxidativo endógeno crônico, os efeitos sobre a integridade estrutural e funcional da hemoglobina seriam muito mais acentuados. No entanto, observamos aumento da atividade da meta-hemoglobina redutase, o que corrobora os dados de Pantelakis et al25 para Síndrome de Down e o encontrado em outros modelos de estresse oxidativo.26,27,28 Este aumento seria compensação metabólica secundária ao aumento da concentração de meta-hemoglobina, conseqüente ao aumento de radicais livres, como evidenciado pela correlação positiva estabelecida entre as atividades da SOD-1 e meta-hemoglobina redutase.
Schraufstatter et al29 e Hyslop et al30 descreveram o efeito dos oxidantes, principalmente o H2O2 (que em Síndrome de Down está aumentado), inibindo a via glicolítica, principalmente, na reação da gliceraldeído-3-fosfato-desidrogenase (G3 PDH). Esta inibição foi acompanhada por elevação dos intermediários metabólicos, gliceraldeído-3-fosfato e diidroxiacetona-fosfato em aproximadamente 1/6, e diminuição das concentrações de lactato na mesma proporção. Conseqüente a isto, ocorreu uma diminuição nos níveis de NADH. Pastor et al31 observaram aumento da atividade da GSH-Px (8,3%) e da catalase (24,3%) em eritrócitos de pessoas com Síndrome de Down, evidenciando indução, por excesso de H2O2, provavelmente devido à resposta adaptativa ao estresse oxidativo. Assim, a inibição da gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase seria minimizada, de forma a garantir um suprimento adequado de NADH para a atividade da meta-hemoglobina redutase.
Isto pode estar refletido nos valores de meta-hemoglobina observados que, embora aumentados em relação ao grupo controle, encontram-se dentro do intervalo de referência de normalidade. Este fato indica que a resposta de defesa é efetiva em ajustar o sistema ao nível normal de homeostase redox, numa tentativa de prevenir o aumento da formação de meta-hemoglobina que poderia levar à formação de corpos de Heinz e hemólise.
Recebido: 06/06/2003
Aceito após modificações: 09/09/2003
Avaliação: Editor e dois revisores externos
Conflito de interesse: não declarado
- 1. Groner Y, Elroy-Stein O, Avraham KB, Schickler M, Knobler H, Min-Golomb D, Bar-Peled O, Yarom R, Rotshenker S. Cell damage by excess CuZn SOD and Down's syndrome. Biomed Pharmacother 1994;48(5-6):231-240.
- 2. Niebuhr E. Down's syndrome: the possibility of a pathogenetic segment on chromosome 21. Humangenetik 1974;21(2): 9-101.
- 3. Williams JD, Summit RL, Martens PR, Kimbrell RA. Familial Down syndrome due to t(10; 21) translocation: vidence that the Down phenotype is related to trisomy of a specific segment of chromosome 21. Am J Human Genet 1975;27(4): 78-485.
- 4. Sinet PM, Couturier J, Dutrillaux B, Poissonnier M, Raoul O, Rethore MO, Allard D, Lejeune J, Jerome H. Trisomie 21 et superoxyde dismutase-1: tentative de localisation sur la sous bande 21q22.1. Exp Cell Res 1976;97:47-55.
- 5. Hagemeijer A, Smit EM. Partial trisomy 21: further evidence that trisomy of band 21q22 is essential for Down's phenotype. Hum Genet 1977;38(1):15-23.
- 6. Philip T, Fraisse J, Sinet PM, Lauras B, Robert JM, Freycon F. Confirmation of assignment of the human SOD's gene to chromosome 21q22. Cytogenet. Cell Genet 1978; 22(1-6):521-52.
- 7. Garber P, Sinet PM, Jerome H, Lejeune J. Copper/zinc superoxide dismutase activity in trisomy 21 by translocation. [Letter]. Lancet 1979;2(8148):914-915.
- 8. Ho-Lee KH, Abe S, Yanabe Y, Matsuda L, Yoshida MC. Superoxide dismutase activity and chromosome damage in cultured chromosome instability syndrome cells. Mutat Res.1990;244(3): 51-256.
- 9. Koremberg JR, Kalousek DK, Anneren G, Pulst SM, Hall JG, Epstein CJ, Cox DR. Deletion of chromosome 21 and normal intelligence: molecular definition of the lesion. Hum Genet 1991;87(2):112-118.
- 10. Tan YH, Tischfiels J, Ruddle FH. The linkage of genes for the human interferon-induced antiviral protein and indophenol oxidase-B traits to chromosome G-21. J Exp Med 1973;137(2):317-330.
- 11. Sichitiu S, Sinet PM, Lejeune J, Frezal J. Surdosage de la forme dimérique de lindophenoloxydase dans la trisome 21 secondaire au surdosage genique. Humangenetik 1974;3(1):65-72.
- 12. Frants RR, Eriksson AW, Jongbloet PH, Hamers AJ. Superoxide dismutase in Down syndrome. [Letter]. Lancet 1975;2(7923):2-43.
- 13. Gilles L, Ferradini C, Foos J, Pucheault J, Allard D, Sinet Pm, Jerome H. The estimation of red cell superoxide dismutase activity by pulse radiolysis in normal and trisomic 21 subjects. FEBS Lett 1976;69(1): 55-58.
- 14. Gerli G, Zenoni L, Locatelli GF, Mongiat R, Piattoni F, Orsini BG, Montagnani A, Gueli MR, Gualandri V. Erythrocyte antioxidant system in Down syndrome. Am J Med Genet Suppl 1990;7:272-273.
- 15. Omata F, Nakazawa H, Nakano M, Arimori S. Erythrocyte superoxide dismutase in various hematological diseases. Tokai J Exp Clin Med 1990;5(2-3):99-106.
- 16. Yim MB, Chock PB, Stadtman ER. Copper, zinc superoxide dismutase catalyzes hydroxyl radical production from hydrogen peroxide. Proc Natl Acad Sci USA 1990;87(13):5.006-5.010.
- 17. Wolf SP, Garner A, Dean RT. Free radicals, lipids and protein degradation. Trens Biochem Sci 1986;11:27-31.
- 18. Maridonneau I, Braquet P, Garay RP. Na+ and K+ transport damage induced by oxygen free radicals in human red cell membranes. J Biol Chem 1983;258: 3.107-3.113.
- 19. Rohn TT, Nelson LK,Waeg G, Quinn MT. U-101033E(2,4-diaminopyrrolopyrimidine), a potent inhibitor of membrane lipid peroxidation as assessed by the production of 4-hydroxynonenal, malondialdehyde, and 4-hydroxynonenal-protein adducts. Biochem Pharmacol 1998;56:1.371-1.379.
- 20. Snyder LM, Fortier NL, Leb L, Mckenney J, trainor J, Sheerin H, Mohandas N. The role of membrane protein sulfhydryl groups in hydrogen peroxide-mediated membrane damage in human erythrocytes. Biochim Biophys Acta 1988;937:229-240.
- 21. Davies KJA, Goldberg AL. Oxygen radicals stimulate intracellular proteolysis and lipid peroxidation by independent mechanisms in erythrocytes. J Biol Chem 1987;262:8.220-8.226.
- 22. Beutler E. Red cell metabolism: a manual of biochemical methods. Grune & Stratton. New York, 1984.
- 23. Naoum PC.Diagnóstico das Hemoglobinopatias. Sarvier Editora. São Paulo, 1987.
- 24. Beutler E, Rundles W. Hematologia. Guanabara Koogan. Rio de Janeiro, 1972.
- 25. Pantelakis SN, Karaklis AG, Alexiou D, Vardas E, Valaes T. Red cell enzymes in trisomy 21. Amer J Human Genet 1970;22(2):184-193.
- 26. Perry GM, Anderson BB. Utilization of red cell FAD by methaemoglobin reductase at the expense of glutathione reductase in heterozygous beta-thalassemia. Eur J Haematol 1991;46(5):290-295.
- 27. Della-Rovere F, Granata A, Broccio M, Zirilli A, Broccio G. Hemoglobin oxidative stress in cancer. Anticancer Res 1995;15(5B):2.089-2.095.
- 28. El-Mekawi S, Yagil R, Meyerstein N. Effect of oxidative stress on avian erythrocytes. J Basic Clin Physiol Pharmacol 1993;4(3):199-211.
- 29. Schraufstatter IU, Hinshaw DB, Hyslop PA, Spragg RG, Cochrane CG. Oxidant injury of cells: DNA strand-breaks activate polyadenosine diphosphate-ribose polymerase and lead to depletion of nicotinamide adenine dinucleotide. J Clin Invest 1986;77(4):1.312-1.320.
- 30. Hyslop PA, Hinshaw DB, Halsey Jr WA, Schraufstatter IU, Sauerheber RD, Spragg RG, Jackson JH, Cochrane CG. Mechanisms of oxidant mediated cell injury: the glycolytic and mitochondrial pathways of ADP phosphorylation are the major intracellular targets inactivated by hydrogen peroxide. J Biol Chem 1988; 263(4):1.665-1.675.
- 31. Pastor MC, Sierra C, Doladé M, Navarro E, Brandi N, Cabré E, Mira A, Serés A. Antioxidant enzymes and fatty acid status in erythrocytes of Down syndrome patients. Clin Chem 1998;44:924-929.
- 32. Bartosz G, Kedziora J, Retelewska W. Decreased oxidant-induced proteolysis in erythrocytes with enhanced antioxidative defense enzymes due to Down's syndrome. Clin Chim Acta 1991;198:239-244.
- 33. Bosman GJ, Visser FE, De Man AJ, Bartholomeus IG, De Grip WJ. Erythrocyte membrane changes of individuals with Down's syndrome in various stages of Alzheimer-type dementia. Neurobiol Aging 1993; 14(3):223-228.
- 34. Kedziora J, Koter M, Bartel H, Bartosz G, Leyko W, Jeske J. Ultrastructural modifications of the erythrocyte membrane in Down's syndrome. Acta Biol Med Ger 1981;40(4-5):423-428.
- 35. Wachtel TJ, Pueschel SM. Macrocytosis in Down syndrome. Am J Ment Retard 1991;95(4):417-420.
- 36. Ajlaan SK, Al-Naama LM, Al-Naama MM. Correlation between normal glucose-6-phosphate dehydrogenase level and haematological parameters. East Mediterr Health J 2000;6(2-3):391-395.
- 37. Ben-Yoseph O, Boxer PA, Ross BD. Noninvasive assessment of the relative roles of cerebral antioxidant enzymes by quantification of pentose phosphate pathway activity. Neurochem Res 1996;21(9):1.005-1.012.
- 38. Rosner F, Ong BH, Paine RS, Mahanand D. Biochemical differentiation of trisomic Down's syndrome (mongolism) from that due to translocation. N Engl J Med 1965;25:1.356-1.361.
- 39. Shih LY, Wong P, Inouye T, Makler M, Hsia DYY. Enzymes in Down's syndrome. Lancet 1965;2:746-747.
- 40. Phillips J, Herring RM, Goodman HO, King Jr JS. Leucocyte alkaline phosphatase and erythrocyte glucose-6-phosphate dehydrogenase in Down's syndrome. J Med Genet 1967;4(4):268-273.
- 41. Magnani M, Stocchi V, Novelli G, Dacha M, Fornaini G. Red blood cell metabolism in Down´s syndrome. Clin Physiol Biochem 1987;5(1):9-14.
- 42. Ibarra B, Rivas F, Medina C, Franco ME, Romero-Garcia F, Enriquez C, Galarza M, Hernandez-Cordova A, Hernandez T. Hematological and biochemical studies in children with Down syndrome. Ann Genet 1990; 33(2):84-87.
- 43. Lopes-Torres M, Perez-Campo R, Cadenas S, Rojas C, Barja G. A comparative study of free radical in vertebrates II: non-enzymatic antioxidants and oxidative stress. Comp Biochem Physiol B 1993;105(3-4):757-763.
- 44. Laaksonen DE, Atalay M, Niskanen L, Uusitupa M, Hanninen O, Sen CK. Blood glutathione homeostasis as a determinant of resting and exercise-induced oxidative stress in young men. Redox Rep 1999;4(1-2): 53-59.
- 45. Sen CK. Glutathione homeostasis in response to exercise training and nutritional supplements. Mol Cell Biochem 1999;196(1-2): 31-42.
- 46. Meister A, Anderson ME. Gluthatione. A Rev Biochem 1983;52:711-760.
- 47. Kurata M, Suzuki M, Haruta K, Takeda K. Relationship between erythrocyte deformability and glutathione under oxidative stress. Comp Biochem Physiol 1994; 107A(1):7-12.
- 48. Tavazzi B, Di Pierro D, Amorini AM, Fazzina G, Tuttobene M, Giardina B, Lazzarino G. Energy metabolism and lipid peroxidation of human erythrocytes as a function of increased oxidative stress. Eur J Biochem 2000;267:684-689.
- 49. Zeres CR, Tanaka KR. Erythrocyte metabolism. In: Embury SH et al. Sickle cell disease basic principles and clinical practice. Raven Press, New York, 1994.
- 50. Aguilar-da-Silva RH. Caracterização do quadro de estresse oxidativo em pessoas portadoras da síndrome de Down. São Carlos-SP, 1999. Tese (Doutoramento em Ciências Biológicas) Departamento de Ciências Biológicas e da Saúde, Universidade Federal de São Carlos.
Datas de Publicação
-
Publicação nesta coleção
27 Abr 2004 -
Data do Fascículo
2003
Histórico
-
Recebido
06 Jun 2003 -
Aceito
09 Set 2003