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Revista Latino-Americana de Enfermagem

Print version ISSN 0104-1169

Rev. Latino-Am. Enfermagem vol.20 no.2 Ribeirão Preto May/Apr. 2012

http://dx.doi.org/10.1590/S0104-11692012000200017 

ARTÍCULO ORIGINALE

 

El receptor de aerobactina IutA, una proteína aislada en columna de agarosa, no es esencial para la infección por Escherichia coli uropatógena1

 

 

Taise Natali LandgrafI; Alan BerleseII; Fabricio Freitas FernandesIII; Mariani Lima MilaneziIV; Roberto MartinezV; Ademilson Panunto-CasteloVI

IEstudiante de maestría, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Brasil. Becario de iniciación científica, FAPESP
IIEstudiante de maestría, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Brasil. Becario de maestría, FAPESP
IIIEstudiante de doctorado, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Brasil
IVEstudiante de maestría, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Brasil. Becario de Entrenamiento Técnico, FAPESP
VDoctor, Profesor Asociado, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Brasil
VIDoctor, Profesor, Faculdade de Filosofia, Ciências e Letras de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo, Brasil

Correspondencia

 

 


RESUMEN

La falta de una clara comprensión de los mecanismos de participación de las lectinas en el proceso de colonización por  Escherichia coli, nos motivó a identificar la presencia de otras lectinas que no han sido descritas en Escherichia coli. En este estudio, se aisló una proteína de 75kDa de Escherichia coli en una columna de Sepharosa, correspondiente al receptor de aerobactina (IutA). La asociación de IutA con cepas virulentas de Escherichia coli es controvertido, especialmente en Escherichia coli uropatógena (UPEC), lo que nos llevó a evaluar la presencia del gen iutA en UPECs aisladas de pacientes con infección urinaria. El gen estaba presente en 38% de los aislamientos, lo que sugiere una débil asociación con la virulencia. Debido a la existencia de redundancia en los sistemas de captura de hierro, se sugiere que IutA puede ser una ventaja, sin embargo no es esencial para la UPEC.

Descriptores: Escherichia coli Uropatogénica; Sideróforos; Lectina; Virulencia.


 

 

Introducción

La microbiota intestinal de mamíferos incluye varias especies bacterianas(1) que, normalmente, establecen relación de mutualismo con el hospedero. El primer paso en el proceso de colonización de un hospedero es una relación entre el agente colonizador y el epitelio del organismo colonizado(2). En bacterias gram-negativas, gran variedad de moléculas o estructuras pueden funcionar como adesinas que promueven mejor adhesión al receptor de la célula epitelial(3).

Escherichia coli es lo más abundante de todos los micro-organismos que colonizan el intestino de muchos animales. Excepto en acogedores inmunocomprometidos, o cuando las barreras gastrointestinales son rotas, esas bacterias raramente causan enfermedad. El papel de las adesinas y lectinas en la simbiosis de Escherichia coli con el hospedero no es bien conocido, lo que contrasta con Escherichia coli patógenas que tienen algunas fimbrias asociadas a virulencia. Después del trabajo pionero(4), que logró la primera evidencia de que E. coli contenía lectina, algunos autores demostraron que proteínas con propiedad lectínica, tales como las fimbrias tipo 1 y P, eran factores de virulencia determinantes para el proceso de colonización e infección, especialmente en el epitelio de la vejiga. La fimbria del tipo 1 es uno de los factores de virulencia de E. coli más estudiados, estando presente en un 80% de las cepas de UPECs(5). Además de las fimbrias tipo 1 y P, fue descrito que la fimbria F17 es importante para la patogénesis de E. coli enterotoxigénica en rumiantes(6).

Una vez que lectinas han sido descritas como importantes componentes en el proceso de colonización e infección por bacterias y que algunos de los mecanismos subyacentes a la virulencia de E. coli no son completamente comprendidos, se buscó, aquí, identificar otras lectinas no descritas como marcadores moleculares.

Marcadores moleculares de patógenos han sido útiles para acelerar el diagnóstico, la prevención y el tratamiento de muchas enfermedades infecciosas. En infecciones del trato urinario (ITU), estudios que usan métodos moleculares se mostraron esenciales para la comprensión de la epidemiología de esas infecciones, una vez que las tasas de ITUs son muy altas y gran número de organismos diferentes pueden ser los agentes etiológicos de esas infecciones. Además, cepas de E. coli son la causa más común de ITUs(7), comprendiendo grupo extremadamente heterogéneo(8). ITU es un problema de salud pública que necesita de tratamiento efectivo para la prevención(9). Así, la comprensión de los principios que guían estudios sobre marcadores moleculares es esencial para enfermeros de todas las áreas de la práctica clínica, ya que esos profesionales son responsables por la planificación, evaluación e implementación de estrategias que llevan a la asistencia más efectiva para los pacientes y la comunidad.

En este trabajo, se identificó una proteína con relación a agarose de 75kDa de E. coli como candidata a una nueva proteína con actividad lectínica y con papel putativo en la virulencia de E. coli. Esa proteína fue identificada como precursora del receptor de la aerobactina férrica (IutA), un receptor de sideróforo, codificado por un gene del plasmidio pColV-30(10), asociado con virulencia de algunas cepas de E. coli(11). Se evaluó, también, en este estudio, la presencia del gene iutA en cepas de UPEC para correlación con la infección bacteriana.

 

Métodos

Aislamiento de proteína de E. coli que se une a carbohidratos

Separados de UPEC (gentilmente cedidos por el Dr. Ebert Hanna, Invent Biotecnología Ltda, Ribeirão Preto, SP, Brasil) fueron cultivados en medio Eagle, modificado por Dulbecco (DMEM)(12), a 37ºC, bajo agitación constante a 200rpm, por toda la noche. Para evaluar la influencia de iones en la producción de proteínas bacterianas, DMEM fue suplementado con 22mM de KH2PO4, 10mM de CaCl2, 0,25mM de Fe(NO3)3 ó 22mM de KH2PO4 más 0,25mM de Fe(NO3)3(12). Las células fueron recobradas por centrifugación (10.000 × g, por 15 minutos, a 4°C), nuevamente suspendidas en 25mL de TBS-azida (solución salina tamponada con Tris-HCl a 50mM conteniendo 10mM de CaCl2, 2% (v/v) de Triton X-100 y 0,02% (m/v) de azida sódica, 100mM de MOPS, pH 7,4) y puestas en baño de hielo con 5 cambios de 30 segundos cada, a 60Hz (Vibra-cell, Sonics & Materiales Inc., Danbury, EEUU). Los lisados bacterianos fueron centrifugados a 10.000 × g, por 15 minutos, a 4°C. Los sobrenadantes fueron sometidos a dos procesos: A. incubación seriada con Sepharose CL-4B y resinas inmovilizadas con carbohidratos (d-galactose, d-manose, d-GlcNAc o lactosa), por 1 hora, a la temperatura ambiente. Después del lavado de las resinas con TBS para remoción del material no adsorbido, ésas fueron sometidas a la SDS-Page; B. cromatografía de afinidad en columna de Sepharose CL-4B, con volumen de lecho de 1mL, en sistema automatizado ÄKTA Purifier (GE Healthcare Life Sciences, Uppsala, Suecia). El material adsorbido a la columna fue fraccionado con 1M de NaCl o 0,1% (v/v) de ácido acético en agua. La cromatografía fue monitorizada por absorbancia a 280nm y las fracciones divididas fueron colectadas en pools, concentrados y procesados contra TBS, utilizándose Amicon Ultra-15 (membrana de exclusión con tamaño de 10kDa) (Millipore, Billerica, EEUU), de acuerdo con instrucciones del fabricante. Las proteínas de las fracciones concentradas fueron separadas en gel de poliacrilamida a 10%, en condiciones aisladas (SDS-Page). Los geles fueron rubicundos con azul de Coomassie.

Identificación de proteínas

Las proteínas rubicundas con azul de Coomassie fueron recortadas y tripsinizadas en el gel, anteriormente al análisis por 1D nLC-MS-MS, usando el sistema de espectrometría de masa (MS) 4000 QTrap (Applied Biosystems) tandem MS system (Fingerprints Proteomics Facility, Universidad de Dundee). Los resultados fueron analizados usando el programa Mascot (www.matrixscience.com).

Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) del gene iutA en cepas de UPEC

Cepas de UPEC, separadas de la orina de pacientes hospitalizados, fueron colectadas en la Unidad de Emergencia del Hospital de las Clínicas de la Facultad de Medicina de Ribeirão Preto, Universidad de São Paulo, en el período de julio a septiembre de 2009. Esas cepas fueron sometidas a PCR para detección del gene iutA. El plasmídeo pPOC9-iutA, gentilmente cedido por el Dr.Michael El'Connell, Dublin City University, Irlanda(13), fue utilizado como control positivo. Los ensayos de PCR fueron realizados con 20μL de un mejunje conteniendo 1 colonia de cada cepa testada, 1,25μM de cada par de iniciadores 5'-AAATTCCATATGATG ATAAGCAAAAAG-3' y 5'-TTCAAGCTTTCAGAACAGCA CAGAGTAG-3', 0,2mM de cada desoxinucleosideo trifosfato, compresa de PCR concentrado 10X, 1,5mM de MgCl2, 2U de la enzima Taq ADN polimerasa (Fermentas, Burlington, Canadá). A PCR fue realizada en un aparato Eppendorf Master Cycler Gradient Thermocycler (Eppendorf Scientific, Inc., Westbury, EEUU), en las siguientes condiciones: 94°C por 5 minutos, 30 ciclos de 94°C por 1 minuto, 51°C por 1 minuto y 72°C por 2,5 minutos y, en el final de eses 30 ciclos, 72°C por 5 minutos. Las reacciones fueron mantenidas a 4°C hasta el uso. Los productos de la PCR (amplicons) fueron analizados en gel de agarose a 1%, después de la marcación con bromuro de etidio, siendo los amplicons identificados con base en los tamaños de los productos amplificados.

Este trabajo fue aprobado por el Comité de Ética de la Escuela de Enfermería de Ribeirão Preto, Universidad de San Paulo, bajo Protocolo nº0737/2006.

 

Resultados

E. coli presenta una proteína de 75kDa con relación al agarose

Para identificar proteínas que relacionan los carbohidratos que podrían ser específicas para la colonización, inicialmente, se cultivó E. coli en medio mínimo (DMEM), que mimetiza las condiciones del trato intestinal(12). Cuando el sobrenadante del lisado de E. coli participó de la incubadora de manera serial con Sepharose CL-4B y resinas inmovilizadas con carbohidrato, no fueron detectadas proteínas adsorbidas a Sepharose (Figura 1A, raya 1), o a cualquiera una de las otras resinas (datos no mostrados). Teniendo como base el trabajo de Kenny et al.(12), que lograron aumento en la producción de factores de virulencia de EPEC, cuando suplementaran el medio mínimo con sales, se cultivaron, aquí, bacterias en medio DMEM suplementados con 22mM de KH2PIO4, 10mM de CaCl2, 0,25mM de Fe(NO3)3 o 22mM de KH2PO4 más 0,25 mM Fe(EN EL3)3. La inducción de proteínas que relacionan la Sepharose fue observada apenas en bacterias que fueron cultivadas en medio DMEM suplementado con CaCl2 (Figura 1A, raya 3). En la preparación, se logró una proteína mayoritaria de 75kDa, seguida por proteínas secundarias con MM>97kDa, ~85kDa y un dúplex de ~40kDa. El hecho da agarose ser un soporte para inmovilizar carbohidrato hizo con que fuese incubado el lisado primero con Sepharose CL-4B, seguido de las otras resinas. Como la proteína de 75-kDa relacionó a la Sepharose CL-4B, no fue posible detectar proteínas en las otras resinas.

 

 

Proteína de 75kDa corresponde a la IutA de E. coli

Las proteínas de 75kDa de E. coli, logradas por cromatografía de afinidad, en columnas de Sepharose, después de la fracción 1M de NaCl y 0,1% de ácido acético, fueron sometidas a la electroforesis (Figura 1B y C, respectivamente) y a la identificación por MS. Las secuencias trípticas de la proteína de 75kDa ha mostrado alta identidad con la proteína envuelta en el apresamiento de hierro por la bacteria, la proteína IutA.

Detección del gene iutA en cepas de UPEC

El hecho de IutA ser expresa en condiciones que mimetizan el sitio de colonización de E. coli y haber sido asociado a la virulencia(11), motivó a determinarse, en este estudio, la presencia del gene iutA en cepas de E. coli y correlacionarla a la infección bacteriana. Para detectar el gene iutA en cepas de UPEC, inicialmente se acarreó una reacción de amplificación en un plasmídeo producido con iutA (pPOC9-iutA). Como mostrado en la Figura 2, raya +, el producto amplificado tenía tamaño entre 2.322 y 2.027 pares de bases (pb), lo que es consistente con el tamaño esperado de 2.202pb para el gene iutA. El pPOC9-iutA fue usado como control positivo (Figura 2, raya +) en todas las reacciones.

El gene fue detectado en 14 de 37 separados de UPEC (datos no mostrados). Para confirmar las amplificaciones, los separados positivos fueron sometidos a otra reacción de amplificación (Figura 2). A pesar de las muestras de las rayas 5 y 6 presenten flaca amplificación, se validó, aquí, que 14 separados de UPEC contenían el gene iutA, lo que rehace una positividad del 38% entre los separados. No hubo ninguna asociación entre a positividad de IutA en UPEC y la gravedad de las infecciones (datos no mostrados), llevando  a cuestionarse si IutA sería realmente es un factor de virulencia de E. coli.

 

Discusión

Hasta el momento, apenas algunas proteínas que relacionan los carbohidratos fueron identificadas en E. coli. Además, el papel de esas moléculas en la interacción proteína/carbohidrato, mediando la colonización bacteriana es poco conocida(6). Así, se invirtió esfuerzo en el sentido de identificar nuevas proteínas que relacionan los carbohidratos que podrían estar envueltas en la colonización por E. coli. Se relata, aquí, el aislamiento y la identificación de una proteína de 75kDa como el receptor de aerobactina férrica (IutA), que parece tener propiedad lectínica y ser importante para la colonización.

Curiosamente, IutA fue expresa apenas en E. coli cultivadas en medio DMEM suplementado con calcio, lo que mimetiza las condiciones encontradas en el ambiente del intestino(12). Además, esa proteína no fue producida por bacterias cultivadas en caldo LB, mismo cuando suplementado con CaCl2 (datos no mostrados), sugiriendo que señales adicionales, tales como el estrés nutricional, pueden ser responsables por la producción de esa proteína.

La adsorción de la proteína de 75kDa a la Sepharose fue reproducida, mismo cuando sometida a la cromatografía de afinidad en columna de Sepharose, lo que llevó a la sugestión de que la proteína tiene una relación con la galactose, una vez que Sepharose es un polímero que consiste en residuos alternados de b-d-galactopiranose-3-O-relacionada y 3,6-anidro-a-1-galactopiranose 4-O-relacionada(14). Aunque ninguna proteína de 75kDa haya sido fraccionada con 0,1M de d-galactose o lactosa de la columna (datos no mostrados), se imaginó la hipótesis de que mayor especificidad de esa proteína por las unidades repetidas del disacárido que componen la agarose y baja especificidad por monosacárido o disacárido, como ocurre con algunas lectinas vegetales, se evitó la fracción de la proteína. No hay duda de que ése es un de los motivos por el cual la clasificación de las lectinas, de acuerdo con la especificidad por monosacáridos, generalmente enmascaró las características raras que esas proteínas frecuentemente demuestran para di, tri o tetra sacárido, con constantes desde asociación hasta 1.000 veces mayor cuando comparado a los monosacáridos. Además, muchas veces la conformación tridimensional del oligosacárido suministra estructuras complejas que no pueden ser mimetizadas por azúcares simples(15). La identificación de la proteína de 75kDa de E. coli como IutA, que es un receptor para el sideróforo aerobactina férrica, fue un resultado bastante interesante, una vez que esa molécula, implicada en el apresamiento de hierro, está envuelta en el proceso de colonización, siendo esencial para el crecimiento bacteriano en el hospedero(10,16). Sideróforos y sistemas de captación de sideróforo desempeñan papel crucial en la virulencia microbiana, pues son esenciales para la patogénesis bacteriana. Sin embargo, existe redundancia de eses sistemas, lo que torna difícil la asociación entre virulencia y un receptor de sideróforo específico(17). Aunque IutA sea expresa en bacterias patógenas y frecuentemente sea asociada a la virulencia(11), no se detectó el gene iutA preferencialmente entre los separados de UPEC, pues apenas 38% de los separados de UPEC presentaron gene iutA. Esos hallazgos corroboran un estudio reciente(18) que mostró positividad en apenas 14% de separados de orina.

Varios estudios han demostrado el modo de acción del receptor de sideróforos, tales como receptor de aerobactina, pero ninguna mención ha sido hecha sobre la dependencia de la interacción proteína/carbohidrato en ese sistema. A pesar de la glicosilación de proteínas en bacterias ser limitada, otros glicoconjugados son abundantes(19). Esos glicoconjugados podrían, de alguna forma, interactuar con proteína, como en organismos de mayor complejidad. Además, sideróforos glicosilados han sido encontrados, como salmoquelinas, aunque no esté claro el porqué de esa modificación(20).

 

Conclusión

La correlación entre IutA con relación a Sepharose y sistema proteico para la absorción de hierro por E. coli ofrece interesante averiguación sobre la participación de lectinas en ese proceso. La identificación de nuevas proteínas que relacionan los carbohidratos es un campo abierto para muchos hallazgos, como un posible envolvimiento de esas proteínas en el proceso de colonización de tejido. En este estudio, se demostró  que, aunque IutA pueda ser importante para la infección por EPEC, esa proteína no desempeña papel esencial en ese proceso.

 

Agradecimientos

Agradecemos al Dr. Leandro L. Oliveira, Denissami ASF Lima, Brandão Izaíra, Ana Paula Masson y Ana Flávia Gembre para la asistencia técnica, el Dr. Ebert Hanna de Invent Biotecnologia, Brasil, para proporcionar comensales E. coli y el Dr. Michael O'Connell de la Dublin City University, Irlanda, por la generosa donación del plásmido pPOC9-iutA. Agradecemos a la Dra. Andrea Kaufmann Zeh para una revisión crítica del manuscrito.

 

Referencias

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Correspondencia:
Ademilson Panunto-Castelo
Universidade de São Paulo. Faculdade de Filosofia, Ciências e Letras de Ribeirão Preto
Departamento de Biologia
Av. Bandeirantes, 3900
Bairro: Monte Alegre
CEP: 14040-901, Ribeirão Preto, SP, Brasil
E-mail: apcastelo@usp.br

 

 

Recibido: 4.3.2011
Aceptado: 11.10.2011

 

 

1 Apoio financiero de la FAPESP, proceso nº 06/04482-6.